邢勝利，宋麗麗，張志平，魏濤，馬歌麗，邢進，黎園，楊旭

1.江蘇合拓環(huán)境技術有限公司，江蘇 無錫 214000；2.鄭州輕工業(yè)大學 食品與生物工程學院，河南 鄭州 450001；3.鄭州市代謝工程和系統(tǒng)生物學重點實驗室，河南 鄭州 450001

0 引言

自然界存在的大量農(nóng)業(yè)廢棄物(如玉米秸稈、小麥秸稈、稻草、麩皮等)是轉化生物基化學品(如乙醇、丁醇、L-乳酸等)的潛在原料[1]，其主要成分(如纖維素、半纖維素等)可被纖維素酶降解產(chǎn)生可發(fā)酵單糖(如葡萄糖、木糖等)，并通過微生物發(fā)酵生產(chǎn)相應的產(chǎn)品[2]。纖維素酶是由外切葡聚糖酶、內(nèi)切葡聚糖酶和β-葡萄糖苷酶組成的復合酶，通過協(xié)同催化作用將纖維素和半纖維素轉化為可發(fā)酵性糖[3]。同傳統(tǒng)物化處理方式相比，纖維素酶水解纖維素和半纖維素具有轉化率高、副產(chǎn)物少、反應條件溫和、能耗低等優(yōu)點[4]。目前，木質(zhì)纖維類原料生化轉化的主要問題是纖維素酶用量大且成本高[5]，如何降低纖維素酶的生產(chǎn)成本，是促進纖維素酶在多個領域更廣泛應用的重要課題。業(yè)界普遍認為,里氏木霉是目前分泌纖維素酶能力最強的微生物，在纖維素酶發(fā)酵產(chǎn)業(yè)應用廣泛[6]。

培養(yǎng)基可為微生物的生長和代謝產(chǎn)物的形成提供必需的營養(yǎng)物質(zhì)和能量，是影響發(fā)酵水平的關鍵因素[7]。傳統(tǒng)纖維素酶液態(tài)發(fā)酵多采用純纖維素及其衍生物(如結晶纖維素、羧甲基纖維素鈉或紙漿等)作為發(fā)酵培養(yǎng)基成分[8-9]。為降低生產(chǎn)成本，近年來逐步出現(xiàn)了利用天然原料替代高成本工業(yè)產(chǎn)品用作發(fā)酵培養(yǎng)基成分產(chǎn)纖維素酶的報道，如利用豆餅粉、麩皮、甘蔗渣、橡木或各種農(nóng)作物秸稈等進行發(fā)酵產(chǎn)酶，結果表明天然原料在纖維素酶生產(chǎn)上具有經(jīng)濟可行性[10-11]。

基于此，本文以天然原料(豆餅粉、麩皮等)為培養(yǎng)基主要營養(yǎng)成分，采用Plackett-Burman(PB)、最陡爬坡和Box-Behnken(BB)試驗設計及響應面(RSM)分析對纖維素酶發(fā)酵培養(yǎng)基進行系統(tǒng)優(yōu)化，并進行酶解驗證，擬篩選影響纖維素酶活力的顯著因素及其最適添加量，以期提高里氏木霉Rut-C30(TrichodermareeseiRut-C30)的發(fā)酵產(chǎn)酶水平，為纖維素酶的液態(tài)發(fā)酵生產(chǎn)提供技術支持。

1 材料與方法

1.1 供試菌種

里氏木霉Rut-C30，購于中國工業(yè)微生物菌種保藏管理中心(CICC)。

1.2 主要材料與試劑

蒸汽爆破玉米秸稈，河南天冠集團有限公司產(chǎn)；馬鈴薯、豆餅粉和麩皮，購于鄭州市某菜市場；葡萄糖、尿素、蛋白胨、結晶纖維素、KH2PO4、(NH4)2SO4、CaCl2、MgSO4、吐溫80、CoCl2·6H2O、FeSO4·7H2O、ZnSO4·7H2O、MnSO4·H2O，均為分析純，天津科密歐化學試劑有限公司產(chǎn)。

1.3 主要儀器與設備

LDZF-30KB-Ⅲ型高壓滅菌鍋，上海申安醫(yī)療器械廠產(chǎn)；THZ-100型搖床、TY2014003876型無菌操作臺，上海一恒科學儀器有限公司產(chǎn)；TDL-5-A型高速臺式離心機，上海安亭科學儀器廠產(chǎn)；Agilent 1260型高效液相色譜儀，美國安捷倫科技公司產(chǎn)；LIDA PHS-3C型pH計，上海理達儀器廠產(chǎn)；HH-S型恒溫水浴鍋，鄭州科華儀器設備有限公司產(chǎn)；UV-2012PC型紫外分光光度計，尤尼柯(上海)儀器有限公司產(chǎn)。

1.4 主要培養(yǎng)基及其培養(yǎng)條件

菌種保藏培養(yǎng)基：馬鈴薯提取液1.0 L，葡萄糖 20.0 g，瓊脂 15.0 g，pH值保持自然。馬鈴薯提取液：取去皮馬鈴薯200 g，切成小塊，加去離子水1.0 L煮沸30 min，濾去馬鈴薯塊，添加去離子水將濾液定容至1.0 L。

種子培養(yǎng)基：葡萄糖10 g，尿素0.3 g，蛋白胨0.75 g，(NH4)2SO41.4 g，KH2PO42.0 g，CaCl20.06 g，MgSO40.06 g，吐溫80 2 mL，微量元素溶液0.2 mL，添加去離子水定容至1 L，pH值調(diào)至5.50。微量元素溶液組成為：CoCl2·6H2O 0.003 7 g，F(xiàn)eSO4·7H2O 0.005 g，ZnSO4·7H2O 0.001 4 g，MnSO4·H2O 0.001 6 g，添加去離子水定容至1 L。

產(chǎn)酶培養(yǎng)基：將種子培養(yǎng)基中的葡萄糖換為結晶纖維素，其他成分保持不變，即得。

1.5 實驗方法

1.5.1 粗酶液的制備將里氏木霉Rut-C30菌株接種于菌種保藏培養(yǎng)基上，于28 ℃條件下培養(yǎng)96 h后，用接種環(huán)刮取表面孢子并接入100 mL種子培養(yǎng)基(250 mL三角瓶)中，于28 ℃、175 r/min條件下培養(yǎng)46 h，即得種子液；將種子液以5%的接種量接入液體產(chǎn)酶培養(yǎng)基(250 mL三角瓶)，于28 ℃、250 r/min條件下發(fā)酵168 h后，將發(fā)酵液于4 ℃、10 000 r/min條件下離心10 min，上清液即為纖維素酶粗酶液。

1.5.2 酶活力的測定方法酶活力依據(jù)QB 2583—2003[12]進行測定。

1.5.3 酶解實驗方法為了考查纖維素酶對木質(zhì)纖維素原料的酶解效果，對蒸汽爆破玉米秸稈進行酶解實驗。稱取一定量的原料置于三角瓶中，加入pH值為4.8的檸檬酸緩沖液和適量纖維素酶，將三角瓶置于50 ℃恒溫振蕩水浴中，于200 r/min條件下振蕩酶解48 h后，將酶解液加熱至100 ℃進行滅活處理，于5000 r/min條件下離心10 min，取上清液用濾膜過濾，通過液相色譜分析酶解產(chǎn)物。

1.5.4 酶解液單糖組成測定酶解液中葡萄糖、木糖、阿拉伯糖、纖維二糖等物質(zhì)采用高效液相色譜進行測定，具體方法為：液體樣品經(jīng)0.22 μm濾膜過濾；分析柱為Biorad Aminex HPX-87H柱(300 mm×7.8 mm)；流動相為0.05 mol/L H2SO4溶液，流速為0.5 mL/min；柱溫為65 ℃。

1.5.5PB試驗設計分別選取豆餅粉添加量、麩皮添加量、結晶纖維素添加量、蛋白胨添加量、KH2PO4添加量、(NH4)2SO4添加量、CaCl2添加量和MgSO4添加量(依次記為X1—X8)這8個因素的高低2個水平，選用Factors=8，Runs=12進行PB試驗設計，其因素和水平見表1。以纖維素酶活力為響應值(記為Y1)，通過比較各因素的顯著性水平，篩選對酶活力影響較顯著的因素。

表1 PB試驗設計因素和水平表Table 1 The factors and levels of PB test design %

1.5.6 最陡爬坡試驗設計根據(jù)PB試驗及其分析結果設計最陡爬坡試驗，對顯著因素進行梯度設計，其余不顯著的因素，在PB分析結果中是正效應的取高水平，是負效應的取低水平。

1.5.7BB試驗設計采用 SAS V9.2軟件中的BB試驗設計模擬RSM模型，以最陡爬坡試驗最優(yōu)結果為中心點，以纖維素酶活力為響應值(記為Y2)。根據(jù) BB試驗設計原理設計三因素三水平RSM分析試驗，共12個試驗點，3個中心點重復試驗。

2 結果與分析

2.1 發(fā)酵培養(yǎng)基條件優(yōu)化結果分析

2.1.1PB試驗結果分析PB試驗設計方案與結果見表2，PB試驗結果對纖維素酶活力影響的統(tǒng)計分析見表3。由表3可知，豆餅粉添加量、麩皮添加量和蛋白胨添加量均對纖維素酶活力呈負效應且影響顯著(P<0.1)，可作為主要影響因素進行最陡爬坡試驗設計和BB試驗設計。其他不顯著因素，KH2PO4添加量、(NH4)2SO4添加量、CaCl2添加量和MgSO4添加量對纖維素酶活力呈正效應，取高水平；結晶纖維素添加量對纖維素酶活力呈負效應，取低水平[13]。

表2 PB試驗設計方案與結果Table 2 PB test design and results

表3 PB試驗結果對纖維素酶活力影響的統(tǒng)計分析Table 3 Statistical analysis of the PB test results on cellulase activity

2.1.2 最陡爬坡試驗結果分析因PB試驗結果中豆餅粉添加量、麩皮添加量和蛋白胨添加量均呈顯著負效應，故最陡爬坡試驗設計中三者水平都應減小。最陡爬坡試驗設計方案與結果見表4。由表4可知，纖維素酶活力在第3組達到最大值21.42 U/mL，故以第3組作為響應面試驗的中心點。

表4 最陡爬坡試驗設計方案與結果Table 4 Steepest climbing test design and results

2.1.3BB試驗結果分析BB試驗設計的因素和水平見表5，BB-RSM矩陣與實驗結果見表6。

表5 BB試驗設計的因素和水平表Table 5 The factors and levels of BB test design %

表6 BB-RSM矩陣與實驗結果Table 6 The BB-RSM program and test results

通過SAS V9.2軟件對BB試驗數(shù)據(jù)及模擬的RSM模型進行分析，該模型的相關系數(shù)R2為0.961 6，表明模型的擬合程度較好。一般認為Radj2至少要大于0.850 0[14]，而本試驗校正系數(shù)Radj2為0.892 6，表明89.26%試驗數(shù)據(jù)的變異性能夠用此模型解釋，試驗誤差小，應用RSM法優(yōu)化發(fā)酵培養(yǎng)基工藝條件是可行的，具有參考性。

利用SAS V9.2軟件中的RSM分析得到最優(yōu)發(fā)酵培養(yǎng)基條件為：豆餅粉添加量2.140%，麩皮添加量1.88%，蛋白胨添加量0.30%，該條件下預測里氏木霉發(fā)酵液中纖維素酶活力為41.75 U/mL。在最優(yōu)發(fā)酵培養(yǎng)基條件下進行3次驗證實驗，里氏木霉發(fā)酵液中纖維素酶活力為(42.62±1.30)U/mL。

2.2 發(fā)酵過程中里氏木霉的形態(tài)變化分析

里氏木霉液態(tài)發(fā)酵過程中的形態(tài)變化見圖1。由圖1可以看出，發(fā)酵初期(3 d)，里氏木霉菌絲為初級菌絲，形態(tài)呈細絲狀，孢子囊很少，且該時期纖維素酶活力上升很慢；發(fā)酵后期(5 d)，里氏木霉菌絲為次級菌絲，大量的分支和孢子囊開始出現(xiàn)，纖維素酶活力增長迅速。纖維素酶的產(chǎn)生與次級菌絲密切相關，一般認為絲狀真菌蛋白的分泌主要發(fā)生在菌絲頂點處[15]。S.Velkovska等[16]在研究里氏木霉 RUT-C30初級菌絲與次級菌絲形態(tài)特征的變化時指出，只有次級菌絲才能生產(chǎn)纖維素酶。因此，在液態(tài)發(fā)酵過程中，需要控制好發(fā)酵條件以維持里氏木霉的蛋白分泌能力。

圖1 里氏木霉液態(tài)發(fā)酵過程中的形態(tài)變化Fig.1 The morphology changes of Trichoderma ressei during liquid-state fermentation

2.3 酶解實驗結果分析

在纖維素降解過程中，首先是纖維素酶分子吸附到纖維素表面，由內(nèi)切葡聚糖酶在葡聚糖鏈的隨機位點水解底物，產(chǎn)生短鏈纖維素和纖維低聚糖；然后由外切葡聚糖酶從短鏈纖維素和纖維低聚糖的非還原性端進行水解，主要產(chǎn)物為纖維二糖；最后由β-葡萄糖苷酶將纖維二糖水解成葡萄糖[17-18]。里氏木霉發(fā)酵液中的纖維素酶組成常存在β-葡萄糖苷酶活力較低的情況，導致酶解過程中纖維二糖積累，降低酶解效率[19]。纖維素酶酶解玉米秸稈的高效液相色譜圖如圖2所示。由圖2可以看出，在最優(yōu)產(chǎn)酶培養(yǎng)基條件下，纖維素酶的酶解液中含少量纖維二糖，表明里氏木霉發(fā)酵液中纖維素酶體系的β-葡萄糖苷酶含量不足，這在一定程度上成為整個纖維素酶系有效降解纖維素底物從而生成葡萄糖的瓶頸[20-21]。由于玉米秸稈中含有一定量的半纖維素，在纖維素酶解作用下，也會降解產(chǎn)生少量木糖、阿拉伯糖等單糖。

圖2 纖維素酶酶解玉米秸稈的高效液相色譜圖Fig.2 High performance liquid chromatogram of corn stover hydrolyzed by crude cellulase solution

3 結論

本文選取豆餅粉添加量、麩皮添加量、結晶纖維素添加量、蛋白胨添加量、KH2PO4添加量、(NH4)2SO4添加量、CaCl2添加量和MgSO4添加量8個因素，通過PB試驗、最陡爬坡試驗和BB試驗優(yōu)化得到里氏木霉最優(yōu)發(fā)酵培養(yǎng)基條件為豆餅粉添加量2.140%，麩皮添加量1.88%，蛋白胨添加量0.30%，在此條件下，里氏木霉發(fā)酵液中的纖維素酶活力可達(42.62±1.30)U/mL。里氏木霉發(fā)酵過程中需要控制好發(fā)酵條件以產(chǎn)生大量分支和孢子囊，維持里氏木霉的纖維素酶蛋白分泌能力。以該優(yōu)化培養(yǎng)基發(fā)酵制備的纖維素粗酶液水解玉米秸稈中的纖維素和半纖維素可得游離葡萄糖、木糖、阿拉伯糖、纖維二糖等可發(fā)酵性糖。后續(xù)研究需要利用分子生物學等技術手段將不同來源的高效β-葡萄糖苷酶基因在里氏木霉中表達，以提高β-葡萄糖苷酶活力，增強里氏木霉產(chǎn)纖維素酶降解天然纖維素底物的能力。