汪貫習(xí) 周縝 王悅 梁鳳 李洪波 徐穎婕
[摘要] 目的 探討低分子量褐藻多糖硫酸酯(LMWF)對小鼠動脈粥樣硬化(AS)作用。方法 選擇ApoE(-/-)雄性小鼠40只,隨機分為對照組、模型組、陽性對照組和治療組,每組10只。模型組、陽性對照組和治療組應(yīng)用高脂飼料喂養(yǎng),對照組應(yīng)用普通飼料喂養(yǎng)。陽性對照組和治療組小鼠分別給予普羅布考和LMWF 0.5 mL灌胃干預(yù)治療,對照組和模型組小鼠同步給予體積分數(shù)0.02橄欖油0.5 mL灌胃。采用生物化學(xué)方法檢測小鼠血清三酰甘油(TG)、總膽固醇(TC)、低密度脂蛋白膽固醇(LDL-C)和高密度脂蛋白膽固醇(HDL-C)水平,酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)檢測血清氧化低密度脂蛋白(ox-LDL)水平,油紅O染色和蘇木精-伊紅染色方法檢測動脈內(nèi)膜粥樣硬化斑塊的面積和結(jié)構(gòu),TUNEL法檢測動脈內(nèi)膜細胞凋亡情況。結(jié)果 與對照組比較,模型組小鼠血清TG、TC、LDL-C和ox-LDL水平顯著升高,而HDL-C顯著降低(F=21.98~114.31,P<0.05);與模型組比較,陽性對照組和治療組小鼠血清TG、TC、LDL和ox-LDL水平顯著降低,HDL水平顯著升高(P<0.05);治療組小鼠TG、TC、LDL-C和ox-LDL水平明顯低于陽性對照組,而HDL-C水平明顯高于陽性對照組(P<0.05)。治療組小鼠動脈粥樣斑塊的面積較模型組顯著縮?。‵=595.39,P<0.01),動脈內(nèi)膜結(jié)構(gòu)顯著改善(F=122.16,P<0.05),動脈內(nèi)膜的細胞凋亡程度顯著降低(F=8 128.51,P<0.01)。結(jié)論 LMWF能調(diào)控ApoE(-/-)小鼠體內(nèi)脂質(zhì)代謝紊亂,抑制粥樣硬化斑塊的形成,減緩AS的發(fā)展。
[關(guān)鍵詞] 動脈粥樣硬化;褐藻多糖硫酸酯;膽固醇,LDL;細胞凋亡;小鼠
[中圖分類號] R282.72
[文獻標志碼] A
[文章編號] 2096-5532(2022)01-0068-05
doi:10.11712/jms.2096-5532.2022.58.028
動脈粥樣硬化(AS)是心腦血管疾病的病理學(xué)基礎(chǔ)[1],AS發(fā)生發(fā)展涉及大量炎性細胞和細胞因子[2],炎性細胞和細胞因子促進了斑塊的形成[3]。低密度脂蛋白(LDL)滯留在血管內(nèi)膜下是AS的主要病理機制,富含膽固醇的載脂蛋白聚糖上的糖胺聚糖能夠通過LDL激活免疫應(yīng)答啟動炎癥級聯(lián)反應(yīng)[4]。脂質(zhì)氧化作用可以導(dǎo)致具有生物活性的脂類釋放,其中的LDL顆粒可以被修飾成為氧化LDL(ox-LDL)[5],引起內(nèi)皮細胞功能紊亂、炎性因子的釋放,促進血管平滑肌細胞(VSMC)遷移和泡沫細胞的形成,最終形成AS斑塊[6]。研究證實,心血管疾病病人血漿ox-LDL水平明顯升高,活性氧(ROS)的產(chǎn)生能夠?qū)е翷DL的氧化,而ox-LDL又能促進內(nèi)皮細胞、VSMC和巨噬細胞中ROS的形成[7-8]。褐藻中提取的天然產(chǎn)物褐藻多糖硫酸酯,尤其是低分子量褐藻多糖硫酸酯(LMWF)具有眾多高效的生物活性[9],其對內(nèi)皮細胞和巨噬細胞有一定的調(diào)控作用[10]。本文研究LMWF對高脂飲食誘導(dǎo)的ApoE(-/-)小鼠[11]血脂代謝和AS斑塊形成的影響,探討LMWF是否有抗AS的作用。
1 材料與方法
1.1 實驗材料
海藻提取物LMWF樣品由中國科學(xué)院海洋研究所張全斌研究員提供,主要成分為高度硫酸化的α-L-巖藻糖和D-半乳糖及少量D-甘露糖、D-木糖、D-鼠李糖、D-葡萄糖、D-阿拉伯糖和糖醛酸[9]。SPF級7周齡ApoE(-/-)雄性小鼠40只,體質(zhì)量為20~24 g,北京華阜康生物科技有限公司提供,飼養(yǎng)于青島大學(xué)動物實驗中心,室溫(22±2)℃、濕度(60±5)%,12 h /12 h明暗周期,自由飲食。標準高脂塊狀飼料,每100.00 g含脂肪21.00 g、膽固醇0.15 g。
1.2 實驗方法
ApoE(-/-)小鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后,隨機分為對照組(A組)、模型組(B組)、陽性對照組(C組)和治療組(D組),每組10只。對照組:小鼠普通飼料喂養(yǎng),0.5 mL橄欖油(體積分數(shù)0.02)灌胃給藥;治療組:高脂飼料喂養(yǎng),200 mg/kg LMWF(用體積分數(shù)0.02橄欖油溶解至0.5 mL)溶液灌胃;陽性對照組:高脂飼料喂養(yǎng),200 mg/kg普羅布考(Probucol,用體積分數(shù)0.02橄欖油溶解至0.5 mL)溶液灌胃給藥;模型組:高脂飼料喂養(yǎng),體積分數(shù)0.02橄欖油0.5 mL灌胃。各組給藥均隔日1次,連續(xù)16周。
1.3 檢測指標及方法
1.3.1 血脂檢測 給藥結(jié)束后第2天,100 g/L水合氯醛腹腔注射麻醉小鼠,經(jīng)心臟取血1 mL,生化采血管收集,靜置3 h,以4 000 r/min離心10 min,分離血清。全自動生化分析儀(AU 5800,貝克曼庫爾特有限公司)檢測血清三酰甘油(TG)、總膽固醇(TC)、低密度脂蛋白膽固醇(LDL-C)和高密度脂蛋白膽固醇(HDL-C)水平。
1.3.2 血清ox-LDL檢測 應(yīng)用ox-LDL ELISA試劑盒(Bio-Maide公司)檢測,按說明書操作。每個樣品孔先加40 μL樣品稀釋液,后加10 μL樣品。每孔加50 μL顯色劑A和50 μL顯色劑B,于37 ℃避光靜置15 min。終止顯色反應(yīng)。以空白孔調(diào)零,Spectramax M5多功能酶標儀測定450 nm波長處各孔吸光度,制作標準曲線,計算ox-LDL濃度。
1.3.3 AS粥樣斑塊面積檢測 用油紅O染色方法。經(jīng)心臟取血后,每組隨機取小鼠5只,分別切取主動脈1 cm,縱行剖開展平,置于40 g/L多聚甲醛固定2 h,流水沖洗,油紅O染色5 min,體積分數(shù)0.60異丙醇分化5 s,蘇木精復(fù)染2 min。甘油明膠封固。光鏡下觀察AS斑塊位置,計算斑塊面積。
1.3.4 AS粥樣斑塊病理結(jié)構(gòu)觀察 采用蘇木精-伊紅(HE)染色方法。經(jīng)心臟取血后,每組取剩余小鼠5只,分別切取主動脈1 cm,置40 g/L多聚甲醛固定2 h,流水沖洗后用OCT包埋,液氮速凍。冷凍切片機(HM 505E,德國美康有限公司)連續(xù)切片,厚度10 μm,貼于多聚賴氨酸處理的載玻片上。蘇木精染色5 min,鹽酸乙醇分化5 s,伊紅染色90 s。常規(guī)脫水、透明、封片。光鏡下觀察,粥樣斑塊呈紅褐色,觀察AS斑塊位置并計算斑塊面積。
1.3.5 細胞凋亡檢測 采用In Situ細胞凋亡試劑盒(羅氏有限公司)檢測,按說明書方法操作。熒光顯微鏡(Olympus BX53,Japan)下450~500 nm波長處觀察,凋亡細胞呈綠色熒光。隨機觀察5個視野,測定吸光度值,取均值,以其表示細胞凋亡情況。
1.4 統(tǒng)計學(xué)分析
采用SPSS 13.0 軟件進行統(tǒng)計學(xué)處理。計量資料結(jié)果以[AKx-D]±s表示,多組均數(shù)間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用SNK(Students-Newman-Keuls)法。以P<0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2 結(jié) 果
2.1 各組小鼠血脂水平比較
各組小鼠血清TG、TC、LDL-C、HDL-C水平比較,差異有顯著性(F=21.98~114.31,P<0.05),其中模型組TG、TC、LDL-C水平較對照組顯著升高,而HDL-C顯著降低(P<0.05);陽性對照組和治療組TG、TC和LDL-C水平較模型組均明顯降低,而HDL-C水平升高(P<0.05);治療組小鼠TG、TC、LDL-C水平明顯低于陽性對照組,而HDL-C水平明顯高于陽性對照組(P<0.05)。各組小鼠血清ox-LDL水平比較差異有顯著性(F=111.79,P<0.05),其中模型組ox-LDL水平較對照組顯著升高(P<0.05),而治療組與陽性對照組血清ox-LDL水平較模型組均顯著降低,且治療組下降更為顯著(P<0.05)。見表1。
2.2 各組主動脈AS斑塊面積比較
油紅O染色顯示,對照組小鼠主動脈可見散在的橘紅色AS斑點,面積為(53±5)mm2;模型組出現(xiàn)明顯的大片狀A(yù)S斑塊,面積為(230±16)mm2;陽性對照組的AS斑塊呈現(xiàn)條紋狀,面積為(116±10)mm2;治療組小鼠的AS斑塊呈散點狀,面積為(75±6)mm2。各組AS斑塊面積比較,差異有顯著性(F=595.39,P<0.01),其中治療組與陽性對照組小鼠斑塊面積均較模型組減?。≒<0.05),且治療組減小更為顯著(P<0.05)。見圖1。
2.3 各組主動脈病理結(jié)構(gòu)比較
HE染色顯示,對照組小鼠主動脈內(nèi)膜光滑,未見明顯的病理改變;模型組小鼠主動脈內(nèi)膜增厚、粗糙,出現(xiàn)明顯的紅褐色AS斑塊,斑塊面積為(165±25)μm2;治療組主動脈內(nèi)膜變薄,斑塊面積為(68±5)μm2;陽性對照組主動脈內(nèi)膜斑塊面積為(93±11)μm2。治療組、陽性對照組主動脈內(nèi)膜粥樣斑塊面積與模型組比較均顯著性減?。‵=122.16,P<0.05),尤其是治療組動脈內(nèi)膜相對光滑,粥樣硬化斑塊面積顯著低于陽性對照組(P<0.01)。見圖2。
2.4 各組主動脈內(nèi)膜細胞凋亡比較
熒光顯微鏡下觀察,對照組小鼠主動脈內(nèi)膜光滑;模型組小鼠主動脈內(nèi)膜凹凸不平,出現(xiàn)凋亡細胞,血管壁內(nèi)膜處細胞凋亡尤為明顯;治療組與陽性對照組小鼠動脈壁的細胞凋亡熒光強度顯著減弱。對照組吸光度值為105±7,模型組為760±85,治療組為150±12,陽性對照組為170±16,4組吸光度值比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=8 128.51,P<0.01),其中任意兩組比較差異均具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見圖3。
3 討 論
目前研究普遍認為,AS是由遺傳和環(huán)境等多種危險因素共同作用引起的疾病,高脂血癥、高血壓、肥胖、吸煙、年齡和糖尿病等是AS的傳統(tǒng)危險因素[12]。起初人們對AS的認識只限于AS是脂質(zhì)堆積造成的動脈管壁堵塞而已,但近年實驗研究和臨床試驗證明,炎癥反應(yīng)在AS及其并發(fā)癥中發(fā)揮重要作用。目前有多種學(xué)說從不同角度探討了AS的發(fā)生機制和病理過程,例如炎癥學(xué)說、氧化應(yīng)激學(xué)說、脂質(zhì)滲入學(xué)說、平滑肌突變學(xué)說和內(nèi)皮損傷學(xué)說等[13-15]。AS發(fā)生的起始階段,主動脈、冠狀動脈和腦動脈等大動脈部位脂質(zhì)堆積并持續(xù)增加,其分支點和彎曲區(qū)極易形成AS斑塊,循環(huán)的脂蛋白顆粒浸潤至這些區(qū)域的動脈管壁,干擾局部內(nèi)皮細胞正常功能,導(dǎo)致脂質(zhì)及炎癥因子在動脈內(nèi)膜堆積,促進了AS斑塊的產(chǎn)生[16]。AS斑塊一旦破裂,會引起一系列急性臨床疾病的發(fā)生,如腦卒中和急性心肌梗死等,導(dǎo)致病人癱瘓或者死亡。
AS是心腦血管疾病的病理學(xué)基礎(chǔ),其發(fā)生發(fā)展涉及大量炎性細胞和細胞因子。在AS早期,內(nèi)皮功能障礙和脂質(zhì)代謝紊亂會導(dǎo)致內(nèi)皮細胞活化和細胞通透性的改變[4]。TG、TC、LDL-C和HDL-C是AS主要的臨床生化評價指標,在AS的發(fā)生發(fā)展過程中具有關(guān)鍵作用[7]。ApoE(-/-)純合子小鼠是被公認的一種AS血管損傷模型,具有形成AS的基礎(chǔ),經(jīng)高脂飼料喂養(yǎng)一定時間后,就會出現(xiàn)典型的AS癥狀體征、血生化及血管病理改變[17]。本研究應(yīng)用高脂飼料喂養(yǎng)ApoE(-/-)小鼠,結(jié)果顯示,模型組小鼠血清TG、TC和LDL-C水平較對照組均顯著升高,而HDL-C水平則顯著降低,說明AS動物模型構(gòu)建是成功的;治療組TG、TC和LDL-C水平較模型組均明顯降低,而HDL-C水平升高;治療組小鼠TG、TC、LDL-C水平明顯低于陽性對照組,而HDL-C水平明顯高于陽性對照組,說明LMWF具有與普羅布考同樣的降脂作用,且LMWF的降脂作用更為明顯。
在AS的發(fā)生發(fā)展過程中,內(nèi)皮細胞通透性改變,ox-LDL積累在內(nèi)皮細胞下,刺激單核細胞分化為巨噬細胞,進而導(dǎo)致平滑肌細胞增生和遷移、血小板聚集、白細胞黏附和炎癥細胞因子的釋放等變化,促進了AS發(fā)生發(fā)展過程[18]。其中,巨噬細胞吞噬過量產(chǎn)生的ox-LDL形成泡沫細胞,泡沫細胞以壞死核為中心沉積在壞死核周圍形成脂紋,最終發(fā)展為AS斑塊[19]。LMWF具有多種生物學(xué)活性如抗氧化、抗炎性、抗血栓以及保護內(nèi)皮細胞功能等[20]。本研究油紅O染色和HE染色結(jié)果均表明,模型組小鼠形成了明顯的AS斑塊;與模型組比較,治療組AS斑塊面積減少,說明LMWF對AS小鼠主動脈的損傷有明顯的抑制和改善作用,以此減緩AS的發(fā)生發(fā)展。提示LMWF可能通過抗氧化作用抑制AS的發(fā)生和發(fā)展。
游離的TG、TC、LDL-C和ox-LDL是強促炎性刺激因子,可引起更多巨噬細胞的聚集,脂質(zhì)(TG和TC)、巨噬細胞、平滑肌細胞、細胞外基質(zhì)、鈣和壞死碎片構(gòu)成了AS斑塊的主要成分[21]。LMWF能夠調(diào)節(jié)脂質(zhì)代謝過程,抑制血管平滑肌細胞的遷移和內(nèi)膜增生,減弱內(nèi)皮細胞介導(dǎo)的血管生成過程而防治AS斑塊的形成[22]。本文的研究結(jié)果顯示,LMWF與傳統(tǒng)降脂藥物普羅布考的作用相似,能夠降低血清TG、TC、LDL-C和ox-LDL水平,提高HDL-C的水平,而且治療組小鼠TG、TC、LDL-C水平顯著低于陽性對照組,HDL-C水平顯著高于陽性對照組,提示LMWF可作為潛在的降脂藥物。細胞凋亡可導(dǎo)致內(nèi)皮細胞死亡和巨噬細胞浸潤,凋亡的巨噬細胞會促進脂紋的產(chǎn)生,最后形成AS斑塊[23-24]。本研究結(jié)果顯示,LMWF還能明顯抑制ApoE(-/-)小鼠動脈壁內(nèi)膜的細胞凋亡,減少巨噬細胞的浸潤,減緩AS的發(fā)展。
綜上所述,LMWF能調(diào)控ApoE(-/-)小鼠體內(nèi)脂質(zhì)代謝紊亂,通過抗氧化機制,抑制細胞凋亡和粥樣硬化斑塊的形成,減緩AS的發(fā)展。
[參考文獻]
[1]AFROZ R, CAO Y N, ROSTAM M A, et al. Signalling pathways regulating galactosaminoglycan synthesis and structure in vascular smooth muscle: implications for lipoprotein binding and atherosclerosis[J]. Pharmacology & Therapeutics, 2018,187:88-97.
[2]TOUSOULIS D, OIKONOMOU E, ECONOMOU E K, et al. Inflammatory cytokines in atherosclerosis: current therapeutic approaches[J]. European Heart Journal, 2016,37(22):1723-1732.
[3]LIANG W J, WANG Q, MA H, et al. Knockout of low molecular weight FGF2 attenuates atherosclerosis by reducing macrophage infiltration and oxidative stress in mice[J]. Cellular Physiology and Biochemistry, 2018,45(4):1434-1443.
[4]BORN J, WILLIAMS K J. The central role of arterial retention of cholesterol-rich apolipoprotein-B-containing lipoproteins in the pathogenesis of atherosclerosis: a triumph of simplicity[J]. Current Opinion in Lipidology, 2016,27(5):473-483.
[5]MOLLACE V, GLIOZZI M, MUSOLINO V, et al. Oxidized LDL attenuates protective autophagy and induces apoptotic cell death of endothelial cells: role of oxidative stress and LOX-1 receptor expression[J]. International Journal of Cardiology,2015,184:152-158.
[6]SUCIU C F, PRETE M, RUSCITTI P, et al. Oxidized low density lipoproteins: the bridge between atherosclerosis and autoimmunity. Possible implications in accelerated atherosclerosis and for immune intervention in autoimmune rheumatic disorders[J]. Autoimmunity Reviews, 2018,17(4):366-375.
[7]KATTOOR A J, POTHINENI N V K, PALAGIRI D, et al. Oxidative stress in atherosclerosis[J]. Current Atherosclerosis Reports, 2017,19(11):1-11.
[8]FRSTERMANN U, SESSA W C. Nitric oxide synthases: regulation and function[J]. European Heart Journal, 2012,33(7):829-837.
[9]WANG J, ZHANG Q B, ZHANG Z S, et al. Antioxidant activity of sulfated polysaccharide fractions extracted from Laminaria japonica[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2008,42(2):127-132.
[10]ZHAO X, DONG S Z, WANG J F, et al. A comparative stu-dy of antithrombotic and antiplatelet activities of different fucoidans from Laminaria japonica[J]. Thrombosis Research, 2012,129(6):771-778.
[11]OHTA H, WADA H, NIWA T, et al. Disruption of tumor necrosis factor-alpha gene diminishes the development ofatherosclerosis in ApoE-deficient mice[J]. Atherosclerosis, 2005,180(1):11-17.
[12]李靚,謝巍,姜志勝,等. 我國動脈粥樣硬化基礎(chǔ)研究近三年進展[J]. 中國動脈硬化雜志, 2015,23(11):1182-1188.
[13]張運. 關(guān)于動脈粥樣硬化(AS)的新治療靶點[J]. 醫(yī)學(xué)研究雜志, 2011,40(6):1-3.
[14]WONG B W, MEREDITH A, LIN D, et al. The biological role of inflammation in atherosclerosis[J]. Canadian Journal of Cardiology, 2012,28(6):631-641.
[15]HANSSON G K, HERMANSSON A. The immune system in atherosclerosis[J]. Nature Immunology, 2011,12(3):204-212.
[16]PANT S, DESHMUKH A, GURUMURTHY G S, et al. Inflammation and atherosclerosis—revisited[J]. Journal of Cardiovascular Pharmacology and Therapeutics, 2014,19(2):170-178.
[17]魯曉麗,楊文,徐璐,等. ApoE-/-小鼠的繁殖與鑒定[J]. 實驗動物科學(xué), 2016,33(1):29-32,37.
[18]FENG Z B, YANG X F, ZHANG L, et al. Ginkgolide B ameliorates oxidized low-density lipoprotein-induced endothelial dysfunction via modulating Lectin-like ox-LDL-receptor-1 and NADPH oxidase 4 expression and inflammatory cascades[J]. Phytotherapy Research: PTR, 2018,32(12):2417-2427.
[19]WANG M Y, MONTICONE R E, MCGRAW K R. Proinflammatory arterial stiffness syndrome: a signature of large arterial aging[J]. Journal of Vascular Research, 2018,55(4):210-223.
[20]YANG W Z, YU X F, ZHANG Q B, et al. Attenuation of streptozotocin-induced diabetic retinopathy with low molecular weight fucoidan via inhibition of vascular endothelial growth factor[J]. Experimental Eye Research, 2013,115:96-105.
[21]XU Y J, XU J, GE K L, et al. Anti-inflammatory effect of low molecular weight fucoidan from Saccharina japonica on atherosclerosis in apoE-knockout mice[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2018,118(Pt A):365-374.
[22]MATOU S, HELLEY D, CHABUT D, et al. Effect of fucoidan on fibroblast growth factor-2-induced angiogenesis in vitro[J]. Thrombosis Research, 2002,106(4-5):213-221.
[23]OSONOI Y, MITA T, AZUMA K, et al. Defective auto-phagy in vascular smooth muscle cells enhances cell death and atherosclerosis[J]. Autophagy, 2018,14(11):1991-2006.
[24]XU Y J, ZHU W L, WANG T T, et al. Low molecule weight fucoidan mitigates atherosclerosis in ApoE(-/-) mouse model through activating multiple signal pathway[J]. Carbohydrate Polymers, 2019,206:110-120.
(本文編輯 黃建鄉(xiāng))
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