秦 瑞,吉世禹,劉俊寶,曹璐,冷維春*
(1.吉林大學(xué)中日聯(lián)誼醫(yī)院婦產(chǎn)科,長(zhǎng)春 130033;2.吉林大學(xué)中日聯(lián)誼醫(yī)院藥學(xué)部,長(zhǎng)春 130033)
參歸補(bǔ)血湯(參歸補(bǔ)血湯方)由當(dāng)歸10 g,人參5 g,熟地黃10 g,白芍10 g等4味中藥組成,方中阿魏酸及多糖成分被認(rèn)為是治療貧血類疾病的有效活性成分。因中藥復(fù)方中成分繁多、服用量大,因此以高效、減量、著重提取有效成分及部位為目的的提取工藝優(yōu)化是當(dāng)前研究的重中之重[1-2]。
本研究首先進(jìn)行參歸補(bǔ)血湯提取工藝優(yōu)化,基于小鼠缺鐵性貧血模型,考察其對(duì)缺鐵性貧血的有效性,并結(jié)合IL6誘導(dǎo)的HepG2細(xì)胞模型,探索參歸補(bǔ)血湯對(duì)缺鐵性貧血的改善作用機(jī)制。
雄性ICR(SPF級(jí))小鼠購(gòu)自長(zhǎng)春億斯動(dòng)物技術(shù)有限公司,60只,體質(zhì)量(19±3)g,室內(nèi)保持恒溫狀態(tài)(24±1)℃,普通飼料喂養(yǎng),不限制進(jìn)食和飲水,適應(yīng)性飼養(yǎng)1周。
1.2.1 儀器1)FA2004分析天平(常州市幸運(yùn)電子設(shè)備公司);2)高速離心機(jī)、RT-PCR儀(德國(guó)艾本德);3)低速控溫臺(tái)式離心機(jī)(上海安亭科學(xué)儀器廠);4)qRT-PCR、電泳儀、半干轉(zhuǎn)儀(美國(guó)BIO-RAD);紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)(上海元析儀器有限公司);高效液相色譜儀(日本島津);酶標(biāo)儀(奧地利TECAN)。
1.2.2 材料1)蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品、葡萄糖分析標(biāo)準(zhǔn)品(源葉公司);2)低鐵飼料(北京協(xié)同生物);3)甲醇、乙腈(色譜純,美國(guó)Fisher公司),其余試劑均為分析純;4)中藥飲片當(dāng)歸(批號(hào):190606)、熟地(批號(hào):10219027)、人參(批號(hào):180501)、白芍(批號(hào):07219029),均符合《中華人民共和國(guó)藥典》2020版一部藥用標(biāo)準(zhǔn);5)復(fù)方硫酸亞鐵片(吉林西點(diǎn)藥業(yè),批號(hào)189200);6)Elisa試劑盒(長(zhǎng)春晶美科技公司);7)RNA提取試劑盒(北京全式金生物公司);8)反轉(zhuǎn)錄試劑(TAKARA生物公司);9)抗體(美國(guó)CST公司)。
1.3.1 水提取正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)根據(jù)參歸補(bǔ)血湯方主要活性成分的理化特點(diǎn),采以水為提取媒介,進(jìn)行提取工藝研究。按生產(chǎn)化要求,以加水倍數(shù)(15、20、25倍)、提取時(shí)間(0.5 h、1.0 h、1.5 h)及提取次數(shù)(1、2、3次)為考察因素,以L9(34)進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì),確定最佳條件,因素水平見(jiàn)表1。
表1 參歸補(bǔ)血湯水提取因素水平
1.3.2 水提取工藝驗(yàn)證取5批處方量藥材樣品,按最優(yōu)工藝條件提取。測(cè)定各批提取液中阿魏酸及粗多糖的含量,計(jì)算RSD值。
1.3.3 有效成分含量測(cè)定1)阿魏酸含量測(cè)定。色譜柱:安捷倫C18(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動(dòng)相:0.1%磷酸和乙睛,比例從9:1梯度洗脫至7:3,梯度洗脫15 min,流速1 mL·min-1,進(jìn)樣量10 μL,檢測(cè)波長(zhǎng)230 nm;阿魏酸的線性回歸方程:Y= 6 503.1X-120.96,r2= 1,在 0.2~ 1.8 mg范圍內(nèi)與吸光度呈良好的線性關(guān)系。2)粗多糖含量測(cè)定。取湯劑樣品50 μL置比色管中,補(bǔ)水至2 mL,加5%苯酚1 mL,渦旋混勻后加10 mL濃硫酸,沸水浴2 min,485 nm測(cè)定吸光度??偠嗵堑木€性回歸方程:Y= 3.805 7X+ 0.0258,r2= 0.998 5,在 0~ 0.25 mg范圍內(nèi)與吸光度呈良好的線性關(guān)系。
1.4.1 動(dòng)物分組及給藥60只雌性小鼠分成空白、模型、陽(yáng)性、低劑量、中劑量及高劑量6組,每組10只??瞻捉M給予正常飼料;其余組給予低鐵飼料,飼養(yǎng)期間避免與鐵器接觸。造模40 d后持續(xù)給藥15 d,低劑量組 200 mg·kg-1·d-1、中劑量組 400 mg·kg-1·d-1、高劑量組800 mg·kg-1·d-1,陽(yáng)性對(duì)照組給予復(fù)方硫酸亞鐵片 13 mg·kg-1·d-1。
1.4.2 Hepcidin及缺鐵性貧血藥效學(xué)相關(guān)指標(biāo)檢測(cè)稱量各組小鼠體質(zhì)量后,眼球取血,置4℃冰箱備用。按Elisa試劑盒說(shuō)明書,測(cè)定血液中Hepcidin、Hb、FEP、Si、stfr和 TIBC 含量。
1.5.1 CCK8法檢測(cè)補(bǔ)血湯對(duì)HepG2細(xì)胞的抑制作用HepG2細(xì)胞鋪于96孔板中,密度每毫升5×103個(gè)。貼壁后空白組給予培養(yǎng)基100 μL;其余分別給予 50 μg·mL-1、100 μg·mL-1、150 μg·mL-1、200 μg·mL-1、400 μg·mL-1、600 μg·mL-1及800 μg·mL-1當(dāng)歸補(bǔ)血湯 100 μL,48 h 后加入 CCK8孵育50 min,于450 nm處檢測(cè)吸光度。
1.5.2 體外構(gòu)建IL-6誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞Hepcidin高表達(dá)的模型將HepG2細(xì)胞鋪于6孔板中,密度每毫升45×104個(gè)。貼壁后模型組給予50 ng·mL-1IL-6;給藥組造模后給予當(dāng)歸補(bǔ)血湯200 μg·mL-1,48 h后提取細(xì)胞總蛋白及總RNA。1)Hepcidin mRNA的檢測(cè):采用總RNA提取試劑盒提取HepG2細(xì)胞RNA,Takara反轉(zhuǎn)錄試劑盒轉(zhuǎn)錄,引物見(jiàn)表2,mRNA測(cè)定由PCR儀完成。2)JAK2/STAT3信號(hào)通路檢測(cè):取各組由RIPA裂解的蛋白樣品加Loading Buffe后沸水浴5 min,進(jìn)行SDS-PAGE。4 ℃過(guò)夜孵育一抗Betaactin(1:1 000)、JAK2(1:800)及 STAT3(1:200 0)后,孵育HRP標(biāo)記的二抗(1:300 0)1 h,ECL法顯色。
表2 引物序列
采用多指標(biāo)綜合加權(quán)評(píng)分法對(duì)參歸補(bǔ)血湯中當(dāng)歸阿魏酸及湯劑總多糖收率2項(xiàng)考察指標(biāo)進(jìn)行方差分析。設(shè)定滿分為100分,指標(biāo)成分的比重分?jǐn)?shù)為阿魏酸50、粗多糖50。在此基礎(chǔ)上進(jìn)行總加權(quán)評(píng)分,利用綜合評(píng)分值(Pi)對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行方差分析:以NXY表示第Y個(gè)指標(biāo)成分下第X個(gè)指標(biāo)成分的測(cè)定值,以各指標(biāo)的最大值作為參照對(duì)同一指標(biāo)各數(shù)據(jù)進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化處理;AXY表示第Y個(gè)指標(biāo)成分下的第X個(gè)測(cè)定值的標(biāo)準(zhǔn)化數(shù)據(jù)。BXY=NXY/(NY)max,其中 X=1-9,Y=1,2。綜合評(píng)分Pi=∑比重分?jǐn)?shù)×AXY。將總分結(jié)果帶入正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果中即得(見(jiàn)表3,表4)。
表3 參歸補(bǔ)血湯L9(3 4)水提取正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)表與結(jié)果分析
表4 參歸補(bǔ)血湯水提取工藝參數(shù)方差分析表
由綜合評(píng)分方差分析結(jié)果可知,各因素對(duì)提取效果影響均為顯著。確定最終提取工藝為:提取次數(shù)2次、提取1 h、加水量25倍。
精密量取第5組A2B2C3方案的復(fù)方提取液,進(jìn)行五次處方提取,測(cè)定吸光度。得5批次阿魏酸RSD = 1.35%,五批次多糖RSD = 2.83%,重復(fù)性均良好(見(jiàn)表5)。
表5 參歸補(bǔ)血湯水提取工藝重復(fù)性驗(yàn)證結(jié)果
與空白組相比,模型組小鼠的耳朵和爪子明顯蒼白,眼暗淡無(wú)色,毛發(fā)脫落,反應(yīng)遲緩,體質(zhì)量降低;Hepcidin、FEP顯著升高(P< 0.01),Hb、SI、stfr,TIBC和體質(zhì)量明顯降低(P<0.05或P<0.01),證明貧血模型建立成功[9]。給藥15 d后,與模型組相比,參歸補(bǔ)血湯高劑量組小鼠的血常規(guī)指標(biāo)和體質(zhì)量明顯改善(P<0.05或P<0.01),且改善效果與陽(yáng)性藥相當(dāng)(見(jiàn)表6)。
表6 參歸補(bǔ)血湯對(duì)小鼠的體質(zhì)量和血常規(guī)指標(biāo)的影響(n=70)
2.4.1 參歸補(bǔ)血湯對(duì)HepG2細(xì)胞的抑制作用CCK8結(jié)果可知 50 μg·mL-1、100 μg·mL-1和 150 μg·mL-1參歸補(bǔ)血湯對(duì)癌細(xì)胞無(wú)抑制效果,濃度200~800 μg·mL-1湯劑對(duì)HepG2細(xì)胞毒性抑制作用顯著增加(P<0.001),后續(xù)實(shí)驗(yàn)采用200 μg·mL-1進(jìn)行機(jī)制驗(yàn)證。
2.4.2 參歸補(bǔ)血湯對(duì)IL-6誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞Hepcidin mRNA及相關(guān)信號(hào)通路蛋白影響結(jié)果表明參歸補(bǔ)血湯顯著降低經(jīng)IL-6造模后的Hepcidin mRNA的表達(dá)(P<0.001)(見(jiàn)圖2);同時(shí),WB結(jié)果表明相關(guān)JAK2/STAT3信號(hào)通路蛋白表達(dá)量顯著減低(P<0.001)(見(jiàn)圖3)。
圖1 CCK8檢測(cè)參歸補(bǔ)血湯對(duì)HepG2細(xì)胞抑制率的影響(n = 8)
圖2 參歸補(bǔ)血湯對(duì)IL-6 誘導(dǎo)HepG2 細(xì)胞的Hepcidin mRNA表達(dá)的影響(n = 3)
圖3 參歸補(bǔ)血湯對(duì)IL-6誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞的相關(guān)通路蛋白表達(dá)的影響(n=3)
本實(shí)驗(yàn)表明參歸補(bǔ)血湯水提取工藝穩(wěn)定,提取效率佳;其對(duì)缺鐵性貧血小鼠貧血情況改善明顯,與模型組相比,小鼠血液中Hepcidin與FEP明顯下降,體質(zhì)量、Hb、Si、STfR及TIBC明顯增加,其高劑量組效果與陽(yáng)性藥組效果相似;其對(duì)IL6誘導(dǎo)的肝癌HepG2細(xì)胞共培養(yǎng)后Hepcidin mRNA表達(dá)顯著降低,相關(guān)p-JAK2及p-STAT3通路蛋白表達(dá)水平也顯著降低。結(jié)果表明參歸補(bǔ)血湯能通過(guò)抑制JAK2/STAT3通路下調(diào)Hepcidin的表達(dá),從而達(dá)到改善缺鐵性貧血的作用。
Hepcidin是組織中鐵吸收和釋放的關(guān)鍵調(diào)節(jié)劑,能維持對(duì)紅細(xì)胞和其他組織的穩(wěn)定鐵供應(yīng),同時(shí)避免高水平鐵對(duì)器官產(chǎn)生的有害作用[4]。實(shí)驗(yàn)表明,通過(guò)抑制Hepcidin表達(dá)能夠升高貧血模型中血清鐵水平,進(jìn)而糾正貧血癥狀[5],與本研究結(jié)論一致,說(shuō)明參歸補(bǔ)血湯具有改善缺鐵性貧血作用。另外,Hepcidin在腫瘤細(xì)胞中合成升高,增加胞內(nèi)鐵保留,從而促進(jìn)腫瘤存活[6-8]。提示我們,能夠通過(guò)降低Hepcidin表達(dá)進(jìn)而促使鐵排出,達(dá)到抑制腫瘤的目的[9]。本研究中,參歸補(bǔ)血湯能降低肝癌HepG2細(xì)胞中Hepcidin mRNA表達(dá),說(shuō)明其調(diào)控鐵代謝不僅可改善缺鐵性貧血,亦具有抗腫瘤潛力。
IL-6能通過(guò)STAT3信號(hào)傳導(dǎo)刺激鐵調(diào)素轉(zhuǎn)錄。在未受刺激細(xì)胞中,STAT3在細(xì)胞質(zhì)中保持無(wú)活性形式。IL-6/STAT3通路可將刺激信號(hào)從細(xì)胞表面?zhèn)鲗?dǎo)至細(xì)胞核,從而調(diào)控Hepcidin表達(dá)[10]。先前研究證明,JAK2/STAT3通路能夠通過(guò)調(diào)控Hepcidin,達(dá)到抑制胃癌細(xì)胞增殖和轉(zhuǎn)移的作用[11]。本研究發(fā)現(xiàn)參歸補(bǔ)血湯能夠通過(guò)抑制JAK2/STAT3通路表達(dá),而實(shí)現(xiàn)對(duì)Hepcidin的調(diào)控作用。