劉婷玉 佟立濤 王麗麗 周素梅 劉麗婭
(中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工研究所,北京 100193)
燕麥屬禾本科植物[1],含有蛋白質(zhì)、脂肪、礦物質(zhì)、酚類化合物以及β-葡聚糖等多種營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),具備降血脂、調(diào)節(jié)脂質(zhì)代謝紊亂、防治動(dòng)脈粥樣硬化等多種生物活性[2-4]。同時(shí),燕麥中富含的β-葡聚糖,不僅有降低膽固醇,降血糖等功能[5,6],而且具備增稠和乳化效果,在制作代乳飲料方面具有突出優(yōu)勢(shì)。因此,以燕麥為原料開發(fā)植物基谷物飲料成為近年來(lái)的熱點(diǎn)研究領(lǐng)域,因其配方成分天然,未添加或少添加其他外源性成分而受到消費(fèi)者的青睞。
燕麥不僅脂肪含量豐富(3%~11%),且富含脂酶、脂肪氧化酶和其他水解酶[7,8],因此在加工過(guò)程中,燕麥中的脂肪易在內(nèi)源酶作用下發(fā)生分解,引起產(chǎn)品穩(wěn)定性變化甚至產(chǎn)生腐敗變質(zhì)現(xiàn)象。而對(duì)燕麥籽粒進(jìn)行滅酶,可避免其在加工過(guò)程中的快速酶促降解[9]。常見的滅酶方式包括微波、常壓蒸制、高溫炒制、烘烤、熱燙等,滅酶對(duì)燕麥籽粒中的淀粉、蛋白質(zhì)、多酚等營(yíng)養(yǎng)成分具有不同程度的影響[10,11]。顧軍強(qiáng)等[12]發(fā)現(xiàn)在微波1 000 W功率下(21%調(diào)節(jié)水分)40 s滅酶處理燕麥籽粒會(huì)使得加工后的燕麥片糊化黏度顯著下降,破損值降低52.63%,回生值降低9.77%,從而提升了燕麥片糊熱穩(wěn)定性,不易老化;郭麗娜等[13]發(fā)現(xiàn)蒸煮、烘干、微波烘烤滅酶處理未顯著影響燕麥蛋白、脂肪和β-葡聚糖含量,但蒸煮和烘干分別導(dǎo)致總酚質(zhì)量分?jǐn)?shù)降低5.11%和11.57%。然而,目前研究多關(guān)注滅酶對(duì)燕麥籽粒或燕麥片營(yíng)養(yǎng)品質(zhì)及穩(wěn)定性的影響,針對(duì)不同滅酶方式對(duì)燕麥乳飲料品質(zhì)及貨架期穩(wěn)定性影響的研究鮮有報(bào)道。本研究以壩莜1號(hào)燕麥為主要原料,在分析不同滅酶方式穩(wěn)定化的燕麥殘余脂肪酶活、總酚含量以及糊化特性差異的基礎(chǔ)上,采用穩(wěn)定性分析儀、流變儀等手段考察了不同滅酶方式對(duì)燕麥乳穩(wěn)定性的影響,并分析其營(yíng)養(yǎng)成分,以期獲得燕麥乳營(yíng)養(yǎng)價(jià)值和貯存穩(wěn)定性較好的燕麥籽粒滅酶方式。研究成果有望為具有“清潔標(biāo)簽”特征的植物基燕麥谷物飲料的研究和開發(fā)提供借鑒。
燕麥籽粒壩莜1號(hào),2019年河北省張家口市采收;葵花籽油;中溫α-淀粉酶Ban 480L (酶活480 KNU/g)、Protemax復(fù)合蛋白酶(酶活1.5 AU/g)、糖化酶AMG 300L (酶活300 AGU/mL);沒(méi)食子酸標(biāo)品、總糖含量檢測(cè)試劑盒、還原糖含量檢測(cè)試劑盒、Megazyme β-葡聚糖檢測(cè)試劑盒;無(wú)水乙醇、無(wú)水乙醚等化學(xué)試劑均為分析純。
XHF-DY高速分散器,SCIENTZ-150高壓均質(zhì)機(jī),DF-101S恒溫加熱磁力攪拌器,NN-GS597M型微波爐,SP-Max2300A酶標(biāo)儀,Mastersizer 2000激光粒度分析儀,Zetasizer Nano ZS90Zeta-電位分析儀,TECMASTER快速黏度測(cè)定儀,Physica MCR301流變儀,Turbiscan Lab?Expert apparatus穩(wěn)定性分析儀,PAL-1折光儀。
1.3.1 燕麥籽粒滅酶處理
燕麥滅酶方法參考申瑞玲[14]、Dewanto等[15]并稍作修改。每批次燕麥籽粒處理量為100 g,經(jīng)除雜清洗后,按不同方法作滅酶處理。熱燙組:料液比1∶10,熱燙溫度100 ℃,熱燙時(shí)間3 min;炒制組:潤(rùn)麥12 h(水分調(diào)至20%[14])保鮮膜密封,溫度180 ℃,炒制時(shí)間3 min;微波組:潤(rùn)麥12 h(含水量調(diào)至20%[14])保鮮膜密封,功率900 W,微波時(shí)間3 min;對(duì)照組:未做任何滅酶處理。
1.3.2 燕麥殘余脂肪酶活性測(cè)定
不同滅酶處理的燕麥籽粒經(jīng)冷凍干燥后,進(jìn)行全籽粒粉碎,于4 ℃條件下保存?zhèn)溆谩⒄誈B/T 5523—2008方法進(jìn)行其殘余脂肪酶活性測(cè)定。
1.3.3 燕麥總酚含量測(cè)定
參照Tong[16]、路威等[17]的方法并稍做修改。稱取1.3.2中燕麥全粉2 g,加入30 mL,50%乙醇,200 W超聲提取30 min,5 000 r/min離心10 min,轉(zhuǎn)移上清液,沉淀重復(fù)上述醇洗、離心步驟,合并兩次離心后的上清液,并于-20 ℃條件下冷凍保存。采用福林酚法測(cè)定燕麥總酚含量,結(jié)果以沒(méi)食子酸當(dāng)量(mg GAE/100 g DW)表示。
1.3.4 燕麥全粉糊化特性測(cè)定
參照Qian等[18]的方法,采用快速黏度測(cè)定儀(RVA)對(duì)1.3.2樣品進(jìn)行糊化黏度測(cè)定。取3.5 g燕麥全粉樣品(按14%濕基矯正)于RVA樣品缽中,加入25 mL去離子水,攪拌均勻后上機(jī)測(cè)試。設(shè)定程序?yàn)椋撼跏紲囟?0 ℃,以0.28 ℃/s的速度加熱至90 ℃并攪拌390 s,然后冷卻至40 ℃,以0.19 ℃/s的速度保持300 s。
1.3.5 燕麥乳樣品制備
參考已有燕麥乳制備方法[19]。具體步驟為將經(jīng)1.3.1處理后的燕麥籽粒按照料液比1∶4打漿,打漿結(jié)束后于95 ℃水浴中液化20 min(α-淀粉酶添加量0.2%,以底物總質(zhì)量計(jì),下同);酶解結(jié)束后將物料快速冷卻,并于55 ℃水浴中進(jìn)行復(fù)合酶解2 h(添加復(fù)合蛋白酶0.2%;糖化酶0.1%);酶解結(jié)束后將料液過(guò)200目篩;取過(guò)篩后的上清液加入1.5%葵花籽油,在30 MPa條件下均質(zhì)2次,并于沸水浴中殺菌30 min,即制得燕麥乳樣品。
1.3.6 燕麥乳穩(wěn)定性測(cè)定
采用Turbiscan穩(wěn)定性分析儀測(cè)定。取20 mL新鮮乳液置于穩(wěn)定性分析瓶中,參數(shù)設(shè)置為:每間隔1 h掃描1次,測(cè)定時(shí)長(zhǎng)24 h,測(cè)定溫度4 ℃。采用軟件Turbiscan EasySoft對(duì)所得數(shù)據(jù)進(jìn)行處理,結(jié)果記錄為穩(wěn)定性指數(shù)(TSI)。
1.3.7 燕麥乳離心沉淀率測(cè)定
離心沉淀率測(cè)定方法為:取15 mL離心管,稱取空管質(zhì)量m0,然后移取10 mL燕麥乳樣品于離心管中,稱量離心管與樣品總質(zhì)量m1,2 000 r/min離心20 min,棄去上清液,稱取帶有沉淀離心管質(zhì)量m2。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,取平均值。計(jì)算公式為:
離心沉淀率=(m2-m0)/(m1-m0)×100%
1.3.8 燕麥乳黏度測(cè)定
采用Physica MCR301流變儀測(cè)定乳液的黏度隨剪切速率的變化。測(cè)定選用不銹鋼平板轉(zhuǎn)子(pp50Ti) ,吸取新鮮乳液2.3 mL于平板中央。設(shè)置參數(shù):間距0.5 mm,測(cè)定溫度25 ℃,平衡時(shí)間3 min,剪切速率從0.1~100 s-1,結(jié)果以Pa·s表示。
1.3.9 燕麥乳粒徑分布測(cè)定
采用Mastersizer 2000激光粒度儀測(cè)定乳液液滴粒徑分布情況及大小,實(shí)驗(yàn)采用體積平均直徑d43表征液滴粒度大小。設(shè)置參數(shù)為分散劑:去離子水;分散劑折射率:1.330;顆粒折射率:1.520;測(cè)定溫度:25 ℃。
1.3.10 燕麥乳營(yíng)養(yǎng)成分分析
采用恒重法測(cè)定乳液中總固形物含量,即稱取恒重后鋁盒質(zhì)量m4,吸取10 mL樣品加入鋁盒中,稱取總質(zhì)量m5,于130 ℃烘箱中恒重3~5 h,稱取恒重后鋁盒和樣品總質(zhì)量m3,得到總固形物含量(g/100 mL)。計(jì)算公式為:
總固形物含量(g/100 mL)=(m3-m4)/(m5-m4)×100
采用GB/T 5009.5—2010進(jìn)行蛋白含量測(cè)定;采用總糖含量試劑盒(DNS法)測(cè)定燕麥乳中總糖含量(mg/mL);用還原糖檢測(cè)試劑盒(DNS法)測(cè)定乳液中還原糖含量(mg/mL)。
每組實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,實(shí)驗(yàn)結(jié)果采用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差的形式表示。采用Microsoft Excel進(jìn)行數(shù)據(jù)整理,用Origin 2018軟件進(jìn)行制圖及相關(guān)性分析,用SPSS 17.0 軟件Duncan檢驗(yàn)法進(jìn)行差異性顯著分析(P<0.05)。
通過(guò)測(cè)定燕麥籽粒滅酶后的殘余脂肪酶活性,可以直觀地反映其滅酶程度。不同滅酶方式對(duì)燕麥殘余脂肪酶活性的影響結(jié)果如圖1所示。結(jié)果表明,經(jīng)滅酶處理后燕麥的殘余脂肪酶活性顯著降低(P<0.05)。在本研究設(shè)定的滅酶條件下,經(jīng)熱燙、炒制、微波處理后,燕麥脂肪酶活分別降低了49.34%、67.76%、87.57%,其中以微波處理后的燕麥殘余脂肪酶活最低。研究表明,微波加熱45 s可以使含水量11.1%的裸燕麥籽粒滅活98%~99%的脂肪酶[20];與熱風(fēng)焙烤、紅外烘烤、高壓蒸煮、常壓蒸煮相比,微波處理可明顯降低燕麥脂肪酶活,但感官品質(zhì)較差[21]。
圖1 滅酶方式對(duì)燕麥殘余脂肪酶活性的影響
酚類物質(zhì)易與蛋白乳狀液液滴發(fā)生橋連,使蛋白質(zhì)聚集,進(jìn)而加速乳狀液失穩(wěn)[22]。圖2結(jié)果表明,燕麥總酚含量為135.80 mg GAE/100g DW,3種滅酶方式均導(dǎo)致燕麥中總酚含量的顯著降低(P<0.05),說(shuō)明3種滅酶處理對(duì)燕麥中的酚類物質(zhì)均具有一定的破壞作用,與顧軍強(qiáng)等[12]的研究結(jié)果一致。這可能是由于高溫?zé)崽幚碥浕浣M織結(jié)構(gòu),促使游離態(tài)酚類物質(zhì)釋放,而游離酚通過(guò)氧化、聚合等反應(yīng)進(jìn)一步轉(zhuǎn)化為其他物質(zhì),從而導(dǎo)致總酚含量降低[23]。同時(shí),在熱燙條件下燕麥中可溶性酚存在流失的情況。熱燙處理后燕麥的總酚含量高于炒制處理和微波處理,可能與干熱處理溫度過(guò)高導(dǎo)致其酚類物質(zhì)的氧化損耗有關(guān)[24]。
圖2 滅酶方式對(duì)燕麥總酚含量的影響
糊化特性是燕麥熱穩(wěn)定性的一個(gè)重要指標(biāo),與其加工品質(zhì)密切相關(guān)。表1所示為采用快速黏度測(cè)定儀RVA 測(cè)定的燕麥全粉糊化特性參數(shù)值。結(jié)果表明,不同滅酶方式處理的燕麥全粉樣品糊化溫度未見差異。籽粒的炒制和微波處理,導(dǎo)致燕麥全粉黏度增加,這與魏益民等[25]研究結(jié)果相一致。Parker 等[26]也進(jìn)一步指出,高溫處理的燕麥籽粒顆粒膨脹,體積增大,淀粉黏度增加。燕麥籽粒較其他谷物相對(duì)特殊,燕麥脂肪含量高,過(guò)高溫度處理會(huì)引起燕麥籽粒中淀粉-脂質(zhì)復(fù)合物增加,疏水性增強(qiáng)或形成淀粉熱損傷,不利于淀粉的進(jìn)一步水解[25]。熱燙處理對(duì)燕麥全粉黏度影響較小,顯著低于炒制和微波處理。較低的體系黏度,可能對(duì)降低燕麥乳液化過(guò)程中的流體阻力,提高酶解效率具有一定的積極作用。
表1 滅酶方式對(duì)燕麥全粉RVA參數(shù)值的影響
圖3為不同滅酶方式對(duì)燕麥乳在4 ℃條件下儲(chǔ)藏24 h過(guò)程中TSI指數(shù)的影響。TSI數(shù)值越小,樣品的穩(wěn)定性越高。結(jié)果表明,炒制和微波組燕麥乳樣品TSI值在儲(chǔ)存過(guò)程中增幅較快,顯著高于對(duì)照組,穩(wěn)定性不佳。尤其是微波組,TSI值在整個(gè)儲(chǔ)存期持續(xù)增加,樣品失穩(wěn)嚴(yán)重。這可能與微波滅酶條件下,燕麥蛋白溫度更接近于其變性溫度(102 ℃[27]),引起燕麥蛋白熱變性程度增加從而加劇乳液液滴絮凝有關(guān)。而熱燙組雖然在儲(chǔ)存前期TSI值高于對(duì)照組,但在儲(chǔ)存后期,TSI值增幅減緩,穩(wěn)定性優(yōu)于對(duì)照組。
圖3 滅酶方式對(duì)燕麥乳液TSI指數(shù)的影響
離心沉淀率可以直觀地反映乳液的穩(wěn)定程度,一般離心沉淀率越小,乳液的穩(wěn)定性越好。實(shí)驗(yàn)考察了不同滅酶方式對(duì)燕麥乳離心沉淀率的影響,結(jié)果如圖4所示。未滅酶燕麥乳離心沉淀率為7.28%;炒制處理和微波處理后燕麥乳離心沉淀率沒(méi)有顯著變化(P>0.05)。而經(jīng)熱燙處理后燕麥乳離心沉淀率顯著下降(P<0.05),乳液穩(wěn)定性得到了提高,這與TSI測(cè)定的結(jié)果相一致。
圖4 滅酶方式對(duì)燕麥乳離心沉淀率影響
圖5為不同的滅酶方式對(duì)燕麥乳剪切黏度的影響。結(jié)果表明,燕麥乳黏度隨剪切速率的增加而逐漸減小,屬于假塑性流體。不同燕麥乳樣品的黏度存在一定差異(P<0.05),其中炒制處理和微波處理后的燕麥乳黏度低于對(duì)照組,而熱燙組燕麥乳樣品黏度高于對(duì)照組。斯托克斯定律表明,較高的體系黏度有助于抑制或者減緩液滴之間相互聚集,阻止液滴發(fā)生絮凝,有利于體系的穩(wěn)定性[28]。這也在一定程度說(shuō)明了熱燙組樣品穩(wěn)定性優(yōu)于其他組別的原因。
圖5 滅酶方式對(duì)燕麥乳黏度的影響
粒徑分布表示乳液中不同粒徑范圍顆粒數(shù)量占總顆粒數(shù)的比例,反映了乳液的狀態(tài)及穩(wěn)定性。圖6為不同滅酶處理對(duì)燕麥乳粒徑分布和平均粒徑的影響。對(duì)照組乳液液滴粒徑分布主要集中于2~12 μm,其液滴粒徑較小且分布均勻;熱燙組乳液液滴粒徑分布峰向左偏移,粒徑偏小且均一穩(wěn)定,平均粒徑為5.23 μm;然而炒制組和微波組的乳液液滴小粒徑和大粒徑占比同時(shí)增加,尤其是微波組,50~100 μm的較大粒徑的液滴所占比增加顯著,表明可能體系發(fā)生嚴(yán)重的液滴絮凝或者聚并現(xiàn)象。
圖6 滅酶方式對(duì)燕麥乳粒徑分布的影響
不同滅酶方式對(duì)燕麥乳營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)組成的影響見表2。結(jié)果表明,不同滅酶處理的燕麥乳蛋白含量介于2.48~2.55 g/100 mL,屬于蛋白含量較高的燕麥乳[29],且不同樣品間蛋白含量無(wú)顯著性差異(P>0.05),表明所采用的3種滅酶方式并未影響籽粒中蛋白的提取率。熱燙處理后燕麥乳中總固形物含量,總糖含量和還原糖含量增加,說(shuō)明燕麥籽粒的滅酶處理有利于燕麥乳加工過(guò)程中淀粉水解,小分子物質(zhì)溶出。Mwangwela等[30]也得出類似的結(jié)論,即將豇豆進(jìn)行熱處理后發(fā)現(xiàn)其理化性質(zhì)改變,對(duì)淀粉酶的敏感度增加。微波處理后乳液中總固形物含量,總糖含量和還原糖含量顯著增加(P<0.05);炒制處理后燕麥乳總固形物含量和還原糖含量升高,總糖含量降低,這可能是與炒制后燕麥籽粒中水分含量蒸發(fā),水分減少,高溫條件下部分羰基化合物發(fā)生美拉德反應(yīng)所導(dǎo)致的總糖含量降低有關(guān)。
表2 滅酶方式對(duì)燕麥乳營(yíng)養(yǎng)成分的影響
表3為不同指標(biāo)參數(shù)之間的相關(guān)系數(shù)。可見,燕麥乳TSI值與乳液平均粒徑d43值呈極顯著正相關(guān),相關(guān)系數(shù)為0.99;其離心沉淀率與乳液黏度呈顯著負(fù)相關(guān),相關(guān)系數(shù)為-0.98。燕麥乳TSI值與離心沉淀率是反映乳液穩(wěn)定性的直接因素,該結(jié)果表明乳液的黏度和液滴粒徑大小是影響其穩(wěn)定性的重要原因。不同滅酶方式燕麥的殘余脂肪酶活與燕麥總酚含量呈顯著正相關(guān),相關(guān)系數(shù)為0.96;與燕麥全粉的糊化最終黏度、回升黏度以及乳液的總固形物含量呈顯著負(fù)相關(guān),相關(guān)系數(shù)分別為-0.98、-0.97、-0.98。燕麥的殘余脂肪酶活直觀反映了不同處理燕麥的滅酶程度,表明不同滅酶方式會(huì)顯著影響燕麥全粉糊化特性以及燕麥乳營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的溶出,進(jìn)而影響了燕麥乳的品質(zhì)。
采用3種燕麥籽粒滅酶方式的效果由高到低依次是微波、炒制、熱燙;熱燙處理后燕麥籽??偡雍扛哂谄溆鄡煞N處理方式;炒制和微波處理顯著提高了燕麥粉的黏度,而熱燙處理對(duì)燕麥粉黏度影響較?。淮送?,熱燙顯著提高了燕麥乳的黏度,減緩體系中液滴的絮凝和/或聚并現(xiàn)象,可獲得粒徑較小且分布均一的乳液;炒制和微波處理,易引起液滴絮凝,乳液失穩(wěn)程度增加。3種滅酶方式對(duì)燕麥乳蛋白含量無(wú)顯著影響,但均可提高樣品中總固形物和還原糖含量。相關(guān)性分析結(jié)果表明,乳液的平均粒徑d43值和黏度是影響燕麥乳穩(wěn)定性的重要因素。不同滅酶方式引起的物料中酚類物質(zhì)含量的差別,未對(duì)燕麥乳的穩(wěn)定性產(chǎn)生顯著影響。相比較于炒制和微波滅酶,對(duì)燕麥籽粒進(jìn)行熱燙滅酶處理不僅可以提升燕麥乳穩(wěn)定性,還最大程度上保留了其營(yíng)養(yǎng)成分,在提升植物基燕麥乳飲料品質(zhì)基礎(chǔ)上具備積極意義。
表3 各指標(biāo)間相關(guān)性分析參數(shù)值