王海瑞 胡俊茹 趙紅霞* 曹俊明* 陳 冰 陳曉瑛

(1.上海海洋大學(xué)水產(chǎn)科學(xué)國家級(jí)實(shí)驗(yàn)教學(xué)示范中心，上海 201306；2.廣東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院動(dòng)物科學(xué)研究所，農(nóng)業(yè)農(nóng)村部華南動(dòng)物營養(yǎng)與飼料重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，廣東省畜禽育種與營養(yǎng)研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，廣州 510640；3.廣州飛禧特生物科技有限公司，廣州 510640)

有機(jī)酸是指一些具有酸性的有機(jī)化合物，包括檸檬酸、甲酸、丁酸、乳酸、丙酸和乙酸及其鹽類。飼料中添加有機(jī)酸能夠顯著改善水產(chǎn)動(dòng)物的生長性能、提高礦物質(zhì)的生物利用率、改善機(jī)體健康和增強(qiáng)免疫、抗氧化功能[1-2]。丁酸被認(rèn)為是厭氧細(xì)菌發(fā)酵碳水化合物的衍生物之一，因其對(duì)腸道有益而受到越來越多的關(guān)注[3]。對(duì)奧尼羅非魚(Oreochromisniloticus)和虹鱒(Oncorhynchusmykiss)的研究發(fā)現(xiàn)，腸道魚類微生物對(duì)碳水化合物的發(fā)酵導(dǎo)致了包括丁酸在內(nèi)的短鏈脂肪酸分泌，這一潛在的丁酸來源可能有助于保護(hù)魚類免受病原菌的入侵[4-5]。丁酸鈉是丁酸與礦物質(zhì)螯合形成的丁酸鹽，分子式為C4H7O2Na。丁酸鹽更加穩(wěn)定，且氣味沒有丁酸強(qiáng)烈，因此更常用于魚類和畜禽飼料中。在歐洲鱸(Dicentrarchuslabrax)[6]、金頭鯛(Sparusaurata)[7]、金魚(Carassiusauratus)[8]、凡納濱對(duì)蝦(Litopenaeusvannamei)[9]、尖吻鱸(Latescalcarifer)[10]、鯉魚(Cyprinuscarpio)[11]、尼羅羅非魚(Oreochromisniloticus)[12]、草魚(Ctenopharyngodonidella)[13]上的研究均表明丁酸或丁酸鈉有顯著的促生長作用。

黃顙魚(Pelteobagrusfulvidraco)，鯰形目、鲿科、黃顙魚屬，雜食性溫水魚類。黃顙魚分布范圍廣，全國各水域均有分布。近年來，隨著我國黃顙魚規(guī)模化養(yǎng)殖不斷增加，有關(guān)其健康狀況和病害防治方面的研究也在不斷增加。本實(shí)驗(yàn)室前期研究表明，飼料中添加適宜水平的丁酸鈉能夠顯著提高黃顙魚的生長性能和營養(yǎng)物質(zhì)沉積[14]。但是，關(guān)于飼料中添加丁酸鈉對(duì)黃顙魚組織器官免疫功能和腸道健康的研究尚未見報(bào)道。本試驗(yàn)通過在飼料中添加不同水平的丁酸鈉，探討其對(duì)黃顙魚非特異性免疫、抗氧化指標(biāo)和腸道黏膜形態(tài)的影響，為丁酸鈉在水產(chǎn)配合飼料中的應(yīng)用提供參考。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)飼料

配制5種等氮等脂(42%的蛋白質(zhì)和9%的脂肪)的試驗(yàn)飼料，試驗(yàn)飼料中丁酸鈉(純度≥99%)添加量分別為0、250、500、1 000和2 000 mg/kg。試驗(yàn)飼料營養(yǎng)水平的設(shè)定等參照本實(shí)驗(yàn)室配方[15]，試驗(yàn)飼料組成及營養(yǎng)水平見表1。飼料原料粉碎后過60目篩，按照配方要求準(zhǔn)確稱量，并逐級(jí)混勻后，加入魚油、豆油和30%的水，再次混合均勻后，用雙螺桿制粒機(jī)(SLX-80，華南理工大學(xué)科技實(shí)業(yè)總廠)擠壓成粒徑為1.5 mm的顆粒飼料，55 ℃烘干，冷卻后置于-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

表1 試驗(yàn)飼料組成及營養(yǎng)水平(風(fēng)干基礎(chǔ))Table 1 Composition and nutrient levels of experimental diets (air-dry basis) ‰

續(xù)表1項(xiàng)目 Items丁酸鈉添加量 SB supplemental levels/(mg/kg)0 250 5001 000 2 000 微晶纖維素Microcrystalline cellulose2.00 1.75 1.50 1.00 0.00 丁酸鈉 SB 0.25 0.50 1.00 2.00 合計(jì) Total1 000.001 000.001 000.001 000.001 000.00營養(yǎng)水平 Nutrient levels3)粗蛋白質(zhì)CP426423 420 425422 粗脂肪 EE90.1 87.790.185.6 84.5粗灰分 Ash82.5 81.981.983.084.2 水分 Moisture77.9 86.9 85.780.781.8

1.2 試驗(yàn)魚與飼養(yǎng)管理

試驗(yàn)用黃顙魚幼魚購自廣州市錦龍漁業(yè)有限公司，試驗(yàn)地點(diǎn)為廣東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院動(dòng)物科學(xué)研究所水產(chǎn)研究室室內(nèi)循環(huán)水養(yǎng)殖系統(tǒng)。將采購的黃顙魚在室外水泥池中暫養(yǎng)2周，攝食未添加丁酸鈉的試驗(yàn)飼料，每天投喂2次。試驗(yàn)開始時(shí)，選取初始平均體重為(1.26±0.01) g黃顙魚幼魚600尾，隨機(jī)分為5組，每組3個(gè)重復(fù)，每個(gè)重復(fù)40尾魚，分別投喂5種試驗(yàn)飼料。試驗(yàn)飼料投喂量為黃顙魚體重的5%～6%，每天08:30和18:30各投喂1次，根據(jù)攝食情況調(diào)整投喂量，養(yǎng)殖試驗(yàn)為期56 d。養(yǎng)殖系統(tǒng)采取循環(huán)水過濾系統(tǒng)，試驗(yàn)魚飼養(yǎng)于圓柱形玻璃纖維桶(直徑80 cm，高70 cm)中，定期換水和測(cè)定水質(zhì)。試驗(yàn)期間水溫28～32 ℃，氨氮濃度<0.20 mg/L，亞硝酸鹽濃度<0.01 mg/L，溶氧濃度>6.0 mg/L，pH 7.4～7.9，自然光源。

1.3 樣品采集

養(yǎng)殖試驗(yàn)結(jié)束后停食24 h，從每個(gè)重復(fù)隨機(jī)選取16尾魚，放入120 mg/L的MS-222溶液中麻醉。選取其中8尾于尾靜脈取血，4 000 r/min離心10 min，取上清液分裝制備血清，-80 ℃冰箱保存，用于非特異性免疫和抗氧化指標(biāo)測(cè)定；5尾于冰上迅速解剖、剝離肝臟和腸道，-80 ℃冰箱保存，用于非特異性免疫和抗氧化指標(biāo)測(cè)定；3尾于冰上迅速解剖，分別取其前、中、后腸置于固定液中保存，用于腸道組織石蠟切片制作。

1.4 指標(biāo)測(cè)定

1.4.1 飼料營養(yǎng)成分分析

飼料中各營養(yǎng)成分含量參照AOAC(1984)[16]中方法進(jìn)行檢測(cè)，其中水分含量采用105 ℃烘干干燥恒重法測(cè)定，粗蛋白質(zhì)(氮×6.25)采用凱氏定氮法測(cè)定，粗脂肪含量采用索氏抽提法測(cè)定，粗灰分含量采用550 ℃高溫馬弗爐灰化法測(cè)定。

1.4.2 血清、肝臟、腸道中非特異性免疫和抗氧化指標(biāo)測(cè)定

血清、肝臟、腸道中免疫和抗氧化指標(biāo)均采用試劑盒檢測(cè)，試劑盒均購自南京建成生物工程研究所，具體測(cè)定方法參照試劑盒所附說明書，測(cè)定指標(biāo)包括：溶菌酶(LZM)、堿性磷酸酶(AKP)、一氧化氮合酶(NOS)、誘導(dǎo)型一氧化氮合酶(iNOS)、超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)、過氧化氫酶(CAT)活性與丙二醛(MDA)含量。

1.4.3 腸道黏膜形態(tài)觀察

腸道組織石蠟切片的制作和觀察在武漢谷歌生物科技有限公司完成。采用光學(xué)顯微鏡(100×)觀察前腸組織切片，并用成像系統(tǒng)進(jìn)行圖像采集。利用Image-Pro Plus 6軟件對(duì)腸道組織絨毛長度、絨毛寬度和肌層厚度分別進(jìn)行測(cè)定。

1.5 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析

試驗(yàn)數(shù)據(jù)用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示，采用SPSS 20.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。先對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)開展方差齊性檢驗(yàn)，滿足方差齊性條件則進(jìn)行單因素方差分析(one-way ANOVA)，若存在顯著差異，再用Tukey’s檢驗(yàn)方法進(jìn)行多重比較；若方差齊性條件不滿足，則用Dunnett’s T3檢驗(yàn)法進(jìn)行多重比較。差異顯著性水平為P<0.05。

2 結(jié)果與分析

2.1 飼料中添加丁酸鈉對(duì)黃顙魚幼魚非特異性免疫指標(biāo)的影響

從表2可以看出，黃顙魚血清LZM和NOS活性在1 000 mg/kg丁酸鈉組達(dá)到最高值，血清AKP活性在250 mg/kg丁酸鈉組達(dá)到最高值，均顯著高于未添加組(P<0.05)。黃顙魚肝臟LZM和AKP活性在1 000 mg/kg丁酸鈉組達(dá)到最高值，顯著高于未添加組(P<0.05)。黃顙魚腸道AKP和NOS活性在500 mg/kg丁酸鈉組達(dá)到最高值，顯著高于未添加組和2 000 mg/kg丁酸鈉組(P<0.05)。飼料中添加丁酸鈉對(duì)黃顙魚血清、肝臟和腸道iNOS以及肝臟NOS活性和腸道LZM活性無顯著影響(P>0.05)。利用二次回歸模型擬合血清NOS活性和飼料丁酸鈉添加量，通過分析表明黃顙魚幼魚飼料中丁酸鈉的適宜添加量為1 275 mg/kg(圖1)。

表2 飼料中添加丁酸鈉對(duì)黃顙魚幼魚非特異性免疫指標(biāo)的影響Table 2 Effects of dietary SB on non-specific immune indices of juvenile yellow catfish (n=3)

圖1 飼料中丁酸鈉添加量與黃顙魚幼魚血清NOS活性的關(guān)系Fig.1 Relationship between dietary SB supplemental level and serum NOS activity of juvenile yellow catfish

2.2 飼料中添加丁酸鈉對(duì)黃顙魚幼魚抗氧化指標(biāo)的影響

由表3可以看出，與未添加組相比，飼料中添加2 000 mg/kg丁酸鈉顯著提高了黃顙魚血清CAT和GSH-Px活性(P<0.05)。1 000 mg/kg丁酸鈉組黃顙魚血清SOD和肝臟GSH-Px活性顯著高于未添加組(P<0.05)。500 mg/kg丁酸鈉組黃顙魚腸道SOD和CAT活性顯著高于未添加組(P<0.05)，500、1 000和2 000 mg/kg丁酸鈉組黃顙魚腸道GSH-Px活性顯著高于未添加組(P<0.05)，250、500、1 000和2 000 mg/kg丁酸鈉組腸道MDA含量顯著低于未添加組(P<0.05)。飼料中添加丁酸鈉對(duì)黃顙魚血清和肝臟MDA含量、肝臟SOD和CAT活性無顯著影響(P>0.05)。利用二次回歸模型擬合血清SOD活性和飼料丁酸鈉添加量，通過分析表明黃顙魚幼魚飼料中丁酸鈉的適宜添加量為1 218 mg/kg(圖2)。

表3 飼料中添加丁酸鈉對(duì)黃顙魚幼魚抗氧化指標(biāo)的影響Table 3 Effects of dietary SB on antioxidant indices of juvenile yellow catfish (n=3)

圖2 飼料中丁酸鈉添加量與黃顙魚幼魚血清SOD活性的關(guān)系Fig.2 Relationship between dietary SB supplemental level and serum SOD activity of juvenile yellow catfish

2.3 飼料中添加丁酸鈉對(duì)黃顙魚幼魚腸道黏膜形態(tài)的影響

黃顙魚前腸、中腸和后腸的黏膜形態(tài)分別見圖3、圖4、圖5，黃顙魚腸道絨毛長度、絨毛寬度和肌層厚度見表4。與未添加組相比，飼料中添加500或1 000 mg/kg丁酸鈉顯著提高了黃顙魚前腸的絨毛長度、絨毛寬度和肌層厚度(P<0.05)。250、500和1 000 mg/kg丁酸鈉組黃顙魚后腸的絨毛長度和肌層厚度顯著高于未添加組(P<0.05)。飼料中添加丁酸鈉對(duì)黃顙魚中腸的絨毛長度、絨毛寬度、肌層厚度和后腸的絨毛寬度沒有顯著影響(P>0.05)。利用二次回歸模型擬合前腸絨毛長度和飼料丁酸鈉添加量，通過分析表明黃顙魚幼魚飼料中丁酸鈉的適宜添加量為1 489 mg/kg(圖6)。

圖6 飼料中丁酸鈉添加量與黃顙魚幼魚前腸絨毛長度的關(guān)系Fig.6 Relationship between dietary SB supplemental level and villus length of proximal intestine of juvenile yellow catfish

表4 飼料中添加丁酸鈉對(duì)黃顙魚幼魚腸道絨毛長度、絨毛寬度和肌層厚度的影響Table 4 Effects of dietary SB on intestinal villus length, villus width and muscular thickness of juvenile yellow catfish (n=3) μm

續(xù)表4項(xiàng)目 Items丁酸鈉添加量 SB supplemental levels/(mg/kg)0250500 1 0002 000后腸 Distal intestine絨毛長度Villus length251.72±30.27a303.91±19.29b321.35±30.46b327.42±27.99b281.77±21.63ab絨毛寬度Villus width 87.93±18.3294.99±17.3181.61±20.9899.85±17.6289.38±22.45肌層厚度Muscular thickness 54.75±6.20a75.77±12.03b70.36±7.53b72.81±6.95b62.94±6.68ab

圖4 黃顙魚幼魚中腸黏膜形態(tài)Fig.4 Mid intestine mucosal morphology of juvenile yellow catfish

圖5 黃顙魚幼魚后腸黏膜形態(tài)Fig.5 Distal intestine mucosal morphology of juvenile yellow catfish

3 討 論

有機(jī)酸(檸檬酸、甲酸、丁酸等及其鹽類)在促進(jìn)生長和增強(qiáng)抗病力等方面發(fā)揮的作用已受到廣泛關(guān)注。飼料中添加有機(jī)酸能夠顯著改善水產(chǎn)動(dòng)物的生長性能和提高礦物質(zhì)的生物利用率。本實(shí)驗(yàn)室前期研究發(fā)現(xiàn)，飼料中添加丁酸鈉能夠顯著促進(jìn)黃顙魚生長發(fā)育和提高飼料營養(yǎng)物質(zhì)利用效率，以增重率為評(píng)價(jià)指標(biāo)，丁酸鈉在飼料中的適宜添加量為1 150.50 mg/kg[14]。本試驗(yàn)以黃顙魚血清NOS、SOD活性和前腸絨毛長度為評(píng)價(jià)指標(biāo)，通過二次回歸分析得出黃顙魚飼料中丁酸鈉的適宜添加量分別為1 275、1 218和1 489 mg/kg。

3.1 丁酸鈉對(duì)黃顙魚幼魚非特異性免疫指標(biāo)的影響

魚類和哺乳動(dòng)物相似，具有非特異性和特異性免疫功能，通過血液、黏膜屏障和組織中各種免疫細(xì)胞和因子協(xié)同抵御病原侵襲[17]。非特異性免疫是魚類免疫系統(tǒng)中的重要組成部分，主要由免疫酶和免疫因子構(gòu)成，包括LZM、酸性磷酸酶(ACP)、AKP、NOS、凝集素和溶血素等。研究顯示，飼料中添加0.2%和0.3%微囊化丁酸鈉顯著提高了歐洲鱸血清總免疫球蛋白含量、呼吸爆發(fā)活性、吞噬活性、吞噬指數(shù)、LZM活性和殺菌活性[6]。飼料中添加部分包膜丁酸鈉可顯著提高尼羅羅非魚血清中LZM活性、呼吸爆發(fā)活性、殺菌活性和凝集活性[18]。Aalamifar等[10]研究發(fā)現(xiàn)，添加丁酸的飼料顯著提高了卵形鯧鲹血清總蛋白、LZM、呼吸爆發(fā)活性和溶血活性。Mirghaed等[19]研究發(fā)現(xiàn)，飼料中添加1.5～5.0 g/kg丁酸鈉能夠顯著增強(qiáng)虹鱒的非特異性免疫功能，如激活腸道的LZM活性及殺菌活性。與上述研究結(jié)果一致，本試驗(yàn)中，飼料中添加一定量的丁酸鈉顯著提高了黃顙魚血清LZM、NOS、AKP活性，肝臟LZM、AKP活性及腸道AKP、NOS活性，表明飼料中添加適量丁酸鈉能夠增強(qiáng)黃顙魚的非特異性免疫功能。然而，在尼羅羅非魚飼料中添加丁酸鈉對(duì)血液紅細(xì)胞計(jì)數(shù)、紅細(xì)胞比容積、血紅蛋白濃度和白細(xì)胞計(jì)數(shù)均無顯著影響[20]。攝食含不同丁酸鈉水平的飼料后，巨骨舌魚的血液學(xué)參數(shù)如免疫球蛋白、總蛋白、甘油三酯、葡萄糖和膽固醇含量均沒有顯著差異[21]。本試驗(yàn)也發(fā)現(xiàn)，飼料中添加丁酸鈉對(duì)黃顙魚血清、肝臟和腸道iNOS以及肝臟NOS和腸道LZM活性均無顯著影響。丁酸鈉對(duì)魚體免疫功能的影響可能與養(yǎng)殖對(duì)象、組織器官、飼料組成、丁酸鈉添加量、養(yǎng)殖條件等有關(guān)。目前，關(guān)于丁酸鈉對(duì)水產(chǎn)動(dòng)物免疫功能影響的研究還比較少，其作用機(jī)制還有待于進(jìn)一步深入研究。

3.2 丁酸鈉對(duì)黃顙魚幼魚抗氧化指標(biāo)的影響

魚類細(xì)胞的氧化應(yīng)激是由于超氧陰離子、羥自由基等活性氧過量產(chǎn)生而引發(fā)的，其會(huì)引起脂質(zhì)、蛋白質(zhì)及暴露細(xì)胞DNA的嚴(yán)重氧化損傷，最終導(dǎo)致細(xì)胞凋亡[22]。魚類主要通過2種機(jī)制減輕氧化損傷：1)提高GSH-Px、CAT、SOD和過氧化物酶(POD)等抗氧化酶的活性；2)產(chǎn)生還原型谷胱甘肽等抗氧化物質(zhì)[23]。這些機(jī)制有助于減少活性氧的產(chǎn)量。魚類血清、肝臟及腸道等組織中的抗氧化酶和抗氧化物也被認(rèn)為是氧化應(yīng)激的指示因子。此外，MDA、巴比妥酸反應(yīng)物質(zhì)(TBARS)和蛋白羰基(PC)含量可用于評(píng)估魚類細(xì)胞內(nèi)脂質(zhì)和蛋白質(zhì)的氧化損傷程度[24]。本試驗(yàn)中，飼料中添加一定量的丁酸鈉顯著提高了黃顙魚血清和腸道CAT、SOD活性及血清、肝臟和腸道GSH-Px活性，并顯著降低了腸道MDA含量，表明飼料中添加適量的丁酸鈉能夠有效增強(qiáng)黃顙魚的抗氧自由基能力。與本研究結(jié)果相似，飼料中添加丁酸鈉可以顯著提高美洲鰻和黃鱔肝臟中總抗氧化能力(T-AOC)、SOD和CAT活性，降低MDA含量[25-26]。在草魚中的研究也表明，飼料添加丁酸鈉顯著增加了肝臟SOD和GSH-Px活性，但對(duì)T-AOC和MDA含量沒有顯著影響[27-28]。在石斑魚中的研究發(fā)現(xiàn)，飼料中添加1%的丁酸鈉顯著降低了石斑魚血清TBARS含量[29]。高植物蛋白質(zhì)飼料中添加0.3%的丁酸鈉顯著提高了大菱鲆幼魚肝臟T-AOC和CAT活性，降低了肝臟MDA含量[30]。強(qiáng)俊等[31]研究報(bào)道，魚類通過增加代謝來應(yīng)對(duì)環(huán)境脅迫，氧自由基的產(chǎn)生也隨之增加，SOD與CAT活性的增加可視為生物體對(duì)新陳代謝的適應(yīng)，以減輕脂質(zhì)過氧化損傷。因此，丁酸鈉可能通過增加體內(nèi)抗氧化酶活性，降低氧化應(yīng)激損傷，減少體內(nèi)自由基的產(chǎn)生。

3.3 丁酸鈉對(duì)黃顙魚幼魚腸道黏膜形態(tài)的影響

魚類腸道健康與腸道絨毛形態(tài)結(jié)構(gòu)、細(xì)菌數(shù)量、消化酶活性等休戚相關(guān)。改善魚類腸道組織形態(tài)，如絨毛長度、絨毛寬度、肌層厚度等，有助于提高營養(yǎng)物質(zhì)的消化率，維護(hù)魚體健康[12]。丁酸鈉改善腸道物理屏障結(jié)構(gòu)，主要表現(xiàn)為腸道皺壁高度和肌層厚度的增加[32]。攝食添加丁酸鈉飼料的鞍帶石斑魚腸道黏膜上皮層排列有序，固有層致密[29]。鄭瑞耕[33]發(fā)現(xiàn)，飼料中添加丁酸鈉顯著提高了鯉魚中腸的絨毛長度、絨毛寬度和肌層厚度。飼料中添加0.2%的微囊丁酸鈉增加了歐洲鱸的腸道肌層厚度、杯狀細(xì)胞數(shù)量、絨毛長度和絨毛寬度[6]。飼料中添加丁酸鈉顯著增加了草魚腸道絨毛長度[34]。本試驗(yàn)測(cè)定了黃顙魚前腸、中腸和后腸的物理屏障結(jié)構(gòu)，發(fā)現(xiàn)飼料中添加500 mg/kg丁酸鈉顯著提高了黃顙魚前腸的絨毛長度、絨毛寬度、肌層厚度和后腸的絨毛長度、肌層厚度，表明丁酸鈉有助于促進(jìn)黃顙魚腸道發(fā)育和維護(hù)腸道健康。丁酸鹽已被證實(shí)能夠?yàn)閯?dòng)物提供能量來源，并作為調(diào)節(jié)機(jī)體能量代謝的信號(hào)分子發(fā)揮重要作用，丁酸鹽的高能量值可以為腸道上皮組織的恢復(fù)提供能量[35-36]。研究表明，飼料中添加微囊丁酸鈉后，飼喂氧化大豆油飼料對(duì)鯉魚腸道黏膜形態(tài)沒有負(fù)面影響[11]。低魚粉低魚油飼料中添加0.4%丁酸鈉飼養(yǎng)金頭鯛9周，發(fā)現(xiàn)丁酸鈉通過調(diào)節(jié)炎癥反應(yīng)、激活抗氧化系統(tǒng)、改變黏液分泌相關(guān)基因的表達(dá)、改變上皮細(xì)胞連接和減少跨膜電阻等促使腸道功能恢復(fù)至正常狀態(tài)[37]。飼料中添加丁酸鈉提高了黃鱔腸道絨毛高度與隱窩深度的比值，降低了隱窩深度，對(duì)腸道黏膜組織顯著修復(fù)[25]。此外，丁酸鈉還能夠緩解和恢復(fù)高豆粕飼料導(dǎo)致的歐洲鱸后腸炎癥反應(yīng)[38]。

4 結(jié) 論

① 飼料中添加適量丁酸鈉可顯著提高黃顙魚幼魚血清LZM、NOS和AKP活性，肝臟LZM和AKP活性以及腸道AKP和NOS活性。

② 飼料中添加適量丁酸鈉顯著提高黃顙魚幼魚血清和腸道CAT、SOD活性及血清、肝臟和腸道GSH-Px活性，并顯著降低腸道MDA含量。

③ 飼料中添加適量丁酸鈉可顯著提高黃顙魚幼魚前腸的絨毛長度、絨毛寬度、肌層厚度和后腸的絨毛長度、肌層厚度。

④ 以黃顙魚血清NOS、SOD活性和前腸絨毛長度為評(píng)價(jià)指標(biāo)，通過二次回歸分析得出黃顙魚幼魚飼料中丁酸鈉的適宜添加量分別為1 275、1 218和1 489 mg/kg。