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非洲菊GjPAL的克隆及表達(dá)分析

2021-08-11 02:45郝向陽(yáng)劉范武歡王斌孫雪麗項(xiàng)蕾蕾王天池賴鐘雄程春振
生物技術(shù)通報(bào) 2021年6期
關(guān)鍵詞:逆境結(jié)構(gòu)域克隆

郝向陽(yáng) 劉范 武歡 王斌 孫雪麗 項(xiàng)蕾蕾 王天池 賴鐘雄 程春振,2

(1. 福建農(nóng)林大學(xué)園藝學(xué)院,福州 350002;2. 山西農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院,太谷 030801)

苯丙氨酸解氨酶(phenylalanine ammonia lyase,PAL)是連接植物初生和次生代謝、催化苯丙烷類代謝第一步反應(yīng)的關(guān)鍵限速酶[1-2],在植物生長(zhǎng)發(fā)育過程中扮演著重要角色[3-5]。此外,PAL與次生代謝產(chǎn)物(如木質(zhì)素、植保素、類黃酮等物質(zhì))的含量密切相關(guān),在植物響應(yīng)生物和非生物脅迫過程中也發(fā)揮著重要作用[6-7]。

植物PAL基因多以小的多基因家族形式存在,擬南芥[8]、水稻[9]、柳樹[6]和楊樹[10]分別有4、9、5和5個(gè)PAL成員。PAL基因的表達(dá)受多種非生物逆境影響顯著,如:水稻OsPALs(除OsPAL8外)的表達(dá)至少受干旱、低溫、NaCl和ABA等4種脅迫中的一種影響顯著[9,11]。PAL基因在植物生物脅迫應(yīng)答過程中也發(fā)揮著重要作用??莶菅挎邨U菌CBR05(Bacillus subtilis CBR05)可以通過誘導(dǎo)番茄PAL基因的表達(dá)進(jìn)而提高番茄對(duì)野油菜黃單孢 菌(Xanthomonas campestris pv. vesicatoria)的 抗性[12];茶樹PAL基因的表達(dá)受炭疽菌(Colletotrichum camelliae)、擬 盤 多 毛 孢 菌(Pseudopestalotiopsis camelliae-sinensis)和 茶 尺 蠖(Ectropis oblique)顯著誘導(dǎo),可能在茶樹抵御真菌和昆蟲病害中發(fā)揮作用[13]。陸地棉GhPAL1和GhPAL8的表達(dá)受黃萎菌誘導(dǎo),且在抗病品種中的表達(dá)量約為感病品種的8倍,說明它們的表達(dá)水平可能與陸地棉黃萎病抗性息息相關(guān)[14]。此外,還有研究指出PAL參與水楊酸(SA)的合成調(diào)控[15-18],說明它廣泛參與植物的抗逆防御反應(yīng)。

非洲菊是世界重要的鮮切花,被認(rèn)為是研究花色的理想模式植物,經(jīng)濟(jì)、觀賞和科學(xué)研究?jī)r(jià)值極高[19-21]。近些年來,我國(guó)非洲菊產(chǎn)業(yè)發(fā)展勢(shì)頭良好,栽培面積逐步增大,但溫度、水分、土壤等環(huán)境因子以及病蟲害等對(duì)該產(chǎn)業(yè)的影響也日益凸顯[22-24]。利用轉(zhuǎn)基因育種手段提高非洲菊抗逆性是非洲菊育種的重要研究方向。

鑒于PAL基因在植物抗逆防御過程中的作用,本研究將實(shí)驗(yàn)室前期獲得的非洲菊轉(zhuǎn)錄組中的21個(gè)PAL基因片段[25]進(jìn)行了序列拼接,經(jīng)RACE-PCR和RT-PCR克隆獲得4個(gè)包含完整CDS的非洲菊PAL基因,利用生物信息學(xué)方法分析它們及其編碼蛋白的序列特征,同時(shí)利用qRT-PCR技術(shù)研究它們?cè)诓煌{迫處理下的表達(dá)模式。

1 材料與方法

1.1 材料

試驗(yàn)所用非洲菊品種“玲瓏”由福建農(nóng)林大學(xué)園藝植物生物工程研究所提供。取生長(zhǎng)狀態(tài)良好、長(zhǎng)勢(shì)一致、株高約為30 cm植株的葉、葉柄和根,用于RNA提取。SA、干旱、鹽脅迫和低溫等非生物脅迫分別使用100 μmol/L SA、30% PEG、200 mmol/L NaCl和4℃低溫處理,使用浸根法進(jìn)行隱地疫霉接種處理,具體步驟參照郝向陽(yáng)等[26]方法。所有處理均重復(fù)3次,取樣后立即置于液氮中速凍,-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2 方法

1.2.1 基因篩選及克隆 從非洲菊轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)中篩選命名為PAL的unigene序列,將這些序列進(jìn)行進(jìn)一步拼接后選擇了4個(gè)長(zhǎng)度較長(zhǎng)的PAL基因,其中,1個(gè)缺少5′端和3′端序列(GjPAL1),2個(gè)具有完整的開放閱讀框(GjPAL2和GjPAL3),另外1個(gè)缺失3′端序列(GjPAL4)。

采用Trizol RNA提取試劑盒(TaKaRa)提取非洲菊葉片總RNA;采用SMARTerTMRACE cDNA Amplification Kit分 別 合 成5′及3′RACE cDNA,用于上述不具有完整CDS的GjPAL基因3′端和5′端的克?。徊捎肨hermo Scientific RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit合成cDNA,用于PAL基因的全長(zhǎng)驗(yàn)證,25 μL PCR反應(yīng)體系包含:Dream TaqTMGreen PCR Master Mix(2×)12.5 μL、ddH2O 9.5 μL、cDNA 1 μL和上下游引物各1 μL。PCR擴(kuò)增程序?yàn)椋?4℃ 3 min;94℃ 30 s,55-59℃ 30 s,72℃ 2 min,35個(gè)循環(huán);72℃ 10 min。采用1%瓊脂糖凝膠檢測(cè)PCR產(chǎn)物,回收純化后進(jìn)行TA克隆,經(jīng)菌液PCR鑒定后選取陽(yáng)性克隆送至北京六合華大基因科技有限公司進(jìn)行測(cè)序驗(yàn)證。所用引物序列見表1。

表1 基因克隆和定量引物信息Table 1 Information of the primers used for gene cloning and qRT-PCR

1.2.2 生物信息學(xué)分析 參照郝向陽(yáng)等[26]的方法分析和預(yù)測(cè)GjPALs蛋白理化性質(zhì)、保守結(jié)構(gòu)域、二級(jí)結(jié)構(gòu)、跨膜結(jié)構(gòu)、磷酸化位點(diǎn)、信號(hào)肽和亞細(xì)胞定位情況。分別使用在線網(wǎng)站MEME(http://meme-suite.org/tools/meme)、COILS(http://www.ch.embnet.org/software/COILS_form. html) 和SWISS-MODEL(https://swissmodel.expasy.org/)分析GjPALs保守基序、卷曲螺旋結(jié)構(gòu)和三維結(jié)構(gòu)。從NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中檢索并下載其他物種PAL氨基酸序列,采用MEGA6.0鄰接法(neighbor-joining method)在默認(rèn)參數(shù)下構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹。

1.2.3 實(shí)時(shí)熒光定量PCR分析 采用TransScript All-in-One First-Strand cDNA Synthesis SuperMix for qPCR(One-Step gDNA Removel)試劑盒(全式金)合成cDNA。以稀釋50倍的cDNA為模板,以非洲菊18S rRNA為內(nèi)參基因進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量。qRTPCR反應(yīng)體系為SYBR Premix Ex TaqTM(TaKaRa)熒光染料10 μL、ddH2O 7.4 μL、上下游引物各0.8 μL和模板1 μL。使用Excel 2003和SPSS 17.0進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)和顯著性分析。

2 結(jié)果

2.1 GjPALs基因克隆結(jié)果

利用RACE-PCR成功克隆獲得GjPAL1 cDNA 3′端(899 bp)和5′端(540 bp)序列及GjPAL4 cDNA 3′端序列(682 bp)(圖1)。利用RT-PCR對(duì)4個(gè)GjPALs進(jìn)行克隆驗(yàn)證,均獲得預(yù)期長(zhǎng)度的片段(圖1),說明成功克隆獲得這4個(gè)基因。GjPAL1-GjPAL4(GenBank登 錄 號(hào) 分 別 為MH708524、MH708525、MH708526和MH708527)CDS長(zhǎng)度分別為2 127、2 115、2 136和2 127 bp,預(yù)測(cè)可分別編碼包含708、704、711和708個(gè)氨基酸的蛋白。

圖1 PCR產(chǎn)物電泳圖Fig. 1 Electrophoresis result of PCR products

2.2 GjPALs生物信息學(xué)分析結(jié)果

蛋白基本理化性質(zhì)分析結(jié)果顯示,4個(gè)GjPAL均屬于穩(wěn)定的酸性親水蛋白(表2)。結(jié)構(gòu)域預(yù)測(cè)結(jié)果顯示,4個(gè)GjPALs都包含保守的PLN02457、phe_am_lyase、Lyase_aromatic和PAL-HAL結(jié)構(gòu)域,均屬于Lyase_I_Like超家族。其中,GjPAL1、GjPAL2和GjPAL4還含有特異性HutH結(jié)構(gòu)域,GjPAL3含有非特異性HutH結(jié)構(gòu)域(圖2)。保守基序預(yù)測(cè)結(jié)果顯示,在可信范圍(e-value≤e-5)內(nèi),4個(gè)GjPAL蛋白均 含有16個(gè)Motif(圖2)。多重序列比對(duì)結(jié)果顯示:4個(gè)GjPALs間的相似性較高(均大于89%)且與其他物種PALs同源性較高(圖3)。除GjPAL2外,所有GjPALs均含有GTITASGDLVPLSYIAG酶活性中心序列和植物PAL最典型的保守區(qū)域ASG(圖3)。

圖2 GjPAL1-GjPAL4(A-D)蛋白保守結(jié)構(gòu)域和motif(E)分析Fig. 2 Conserved domains (A-D) and motifs (E) of GjPAL1-4

圖3 不同植物PAL氨基酸序列的多重序列比對(duì)Fig. 3 Multiple alignment result of PALs from different plant species

表2 4個(gè)GjPALs蛋白基本理化性質(zhì)分析結(jié)果Table 2 Physicochemical properties of the four GjPALs

蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)結(jié)果(圖4)顯示,GjPALs均主要由α-螺旋和無規(guī)則卷曲組成。SWISS-MODEL同源建模結(jié)果顯示,它們與歐芹(Petroselinum crispum)PAL1三級(jí)結(jié)構(gòu)相似性分別達(dá)86.63%、82.78%、82.12%和86.34%。COILS預(yù) 測(cè) 結(jié) 果 顯示,僅GjPAL2和GjPAL3能形成卷曲螺旋結(jié)構(gòu)。TMPRED分析結(jié)果顯示,所有GjPALs均含有由內(nèi)向外和由外向內(nèi)的跨膜螺旋結(jié)構(gòu)。磷酸化位點(diǎn)預(yù)測(cè)結(jié)果(表3)顯示:GjPAL1-GjPAL4分別含有61、61、62和63個(gè)磷酸化位點(diǎn)。此外,信號(hào)肽和亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè)結(jié)果表明,4個(gè)GjPALs均不含信號(hào)肽,且主要定位在細(xì)胞質(zhì)。

表3 GjPAL跨膜結(jié)構(gòu)域及磷酸化修飾位點(diǎn)分析結(jié)果Table 3 Result of transmembrane structure and phospho-rylation sites in GjPALs

圖4 4個(gè)GjPALs三維結(jié)構(gòu)的預(yù)測(cè)Fig. 4 Predicted four-dimensional structures of the four GjPALs

2.3 系統(tǒng)進(jìn)化分析結(jié)果

將GjPALs與其他植物PAL蛋白構(gòu)建進(jìn)化樹,發(fā)現(xiàn)植物PAL大致可分為雙子葉植物、單子葉植物、裸子植物和蕨類植物四類(圖5)。除少數(shù)特例外(白樺是雙子葉植物,但其PAL與蕨類植物聚為一類),PALs聚類結(jié)果基本與植物分類結(jié)果相符[27]。GjPAL1、GjPAL3和GjPAL4與菊科的萵苣PAL聚在一起,GjPAL2和其他雙子葉植物PALs聚為一類。

圖5 GjPALs和其他植物PALs系統(tǒng)發(fā)育樹Fig. 5 Phylogenetic tree for GjPALs and PALs from some other plant species

2.4 實(shí)時(shí)熒光定量PCR分析

2.4.1 GjPALs在不同組織部位的表達(dá)分析 qRTPCR結(jié)果顯示和GjPALs在葉柄中的表達(dá)量最低,除GjPAL1在葉中表達(dá)量最高外,其余3個(gè)GjPALs均在根中表達(dá)量最高(圖6-A)。其中,GjPAL2和GjPAL3在根中表達(dá)量極高,分別約為葉中的70倍和130倍。

2.4.2 GjPALs在不同逆境條件下的表達(dá)分析 SA處理后,GjPAL1和GjPAL2的表達(dá)受到極顯著抑制(P<0.01),而GjPAL3和GjPAL4的表達(dá)則呈先升后降的趨勢(shì)。GjPAL3在SA處理4和8 h的表達(dá)水平極顯著高于對(duì)照(P<0.01),分別約為未處理對(duì)照的3.8倍和2.3倍,SA處理12 h時(shí)顯著低于對(duì)照(P<0.05),24 h時(shí)極顯著低于對(duì)照(P<0.01)。GjPAL4在SA處理4 h時(shí)的表達(dá)量極顯著高于對(duì)照(P<0.01),約為未處理對(duì)照的2.9倍,之后均極顯著低于對(duì)照(P<0.01)(圖6-B)。

鹽脅迫處理?xiàng)l件下,GjPAL1、GjPAL2和GjPAL4的表達(dá)受到極顯著抑制(P<0.01)。而GjPAL3的表達(dá)受到極顯著誘導(dǎo)(P<0.01),在NaCl處理4、8、12、24和48 h的表達(dá)量分別約為對(duì)照的3.3倍、3.2倍、2.7倍、2.6倍和3.7倍(圖6-C)。

PEG處理?xiàng)l件下,4個(gè)GjPALs的表達(dá)模式差異較大。GjPAL1和GjPAL2在PEG處理后均表現(xiàn)出降-升-降-升的表達(dá)模式,GjPAL1在處理后3 h的表達(dá)量有所回升,但依然極顯著低于對(duì)照(P<0.01),而GjPAL2在處理后12 h的表達(dá)量達(dá)到最高值,且極顯著高于對(duì)照(P<0.01);GjPAL3在處理后呈現(xiàn)先升后降的趨勢(shì),且均高于對(duì)照,在處理0.5 h時(shí)表達(dá)量略高于對(duì)照,約為對(duì)照的1.2倍,1 h顯著高于對(duì)照(P<0.05),約為對(duì)照的1.3倍,之后均極顯著高于對(duì)照(P<0.01),分別約為對(duì)照的1.7倍、1.9倍、2.2倍和1.5倍;GjPAL4在PEG處理后表現(xiàn)出先降后升的趨勢(shì),但均極顯著低于對(duì)照(P<0.01)(圖6-D)。

4℃低溫處理后,GjPAL1、GjPAL3與GjPAL4的表達(dá)均呈現(xiàn)先降后升的趨勢(shì),且均極顯著低于對(duì)照;GjPAL2則表現(xiàn)出降-升-降的表達(dá)模式,在低溫處理在4和24 h的表達(dá)量顯著低于對(duì)照(P<0.05),8和12 h的表達(dá)量與對(duì)照相差不大(圖6-E)。

隱地疫霉處理下,4個(gè)GjPALs的表達(dá)模式各不相同。GjPAL1的表達(dá)呈現(xiàn)升-降-升的趨勢(shì),且均極顯著高于對(duì)照(P<0.01),接種隱地疫霉2、4和6 d后,表達(dá)量分別約為對(duì)照的3.5倍、2.4倍和4.0倍;與PjPAL1表達(dá)趨勢(shì)相反,PjPAL2在接種隱地疫 霉后呈“降-升-降”的表達(dá)趨勢(shì),且均低于對(duì)照, 在2和6 d時(shí)的表達(dá)量極顯著低于對(duì)照(P<0.01),分別僅為對(duì)照的59.6%和31.3%;GjPAL3在接種隱地疫霉后呈先降后升的表達(dá)趨勢(shì),在2 d時(shí)的表達(dá)量?jī)H約為對(duì)照的39.0%,在4和6 d時(shí)的表達(dá)量分別約為對(duì)照的2.4倍和2.6倍;GjPAL4的表達(dá)受隱地疫霉接種誘導(dǎo),在2 d時(shí)略高于對(duì)照,約為對(duì)照的1.2倍,4 d和6 d時(shí)極顯著高于對(duì)照,分別約為對(duì)照的2.0倍和1.9倍(圖6-F)。

圖6 GjPAL基因在不同組織部位和不同逆境處理下的表達(dá)情況Fig.6 Relative expression of GjPAL genes in different tissues and organs and under different stress treatments

3 討論

3.1 4個(gè)GjPALs序列相似度較高,但蛋白結(jié)構(gòu)域、典型保守區(qū)域和結(jié)構(gòu)存在一定差異

本研究基于前期非洲菊轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)[25],利用RACE和RT-PCR技術(shù)成功克隆獲得4個(gè)非洲菊PAL基因(GjPAL1-GjPAL4)。生物信息學(xué)分析結(jié)果顯示,4個(gè)GjPALs編碼的蛋白均屬于Lyase_I_Like超家族,它們與其他植物PAL相似度較高,說明植物PAL在進(jìn)化上相對(duì)保守[28]。4個(gè)GjPALs在結(jié)構(gòu)域和保守區(qū)域上存在差異:GjPAL3含有非特異性HutH結(jié)構(gòu)域外,而其他3個(gè)成員均含有特異性HutH結(jié)構(gòu)域,而GjPAL2上不存在植物PAL最典型的保守區(qū)域ASG[7]。此外,4個(gè)GjPALs成員編碼的蛋白中僅GjPAL2和GjPAL3能形成卷曲螺旋結(jié)構(gòu)。以上結(jié)果暗示GjPAL2和GjPAL3與另外2個(gè)成員的功能可能差異較大。

3.2 不同GjPALs成員在不同組織部位和不同逆境處理下的表達(dá)特性差異較大

植物PAL基因在不同組織部位中的表達(dá)水平差異較大,且大多數(shù)植物PAL基因在根部表達(dá)量較高,莖中表達(dá)水平中等,在成熟的葉片中幾乎不表達(dá)[7]。本研究發(fā)現(xiàn)GjPAL2-GjPAL4均在根中的表達(dá)量最高,推測(cè)它們可能在根系木質(zhì)素合成調(diào)控中發(fā)揮重要作用[29-30]。丹參PAL1在葉中的表達(dá)量最高,而在莖和根中的表達(dá)量較低,且其表達(dá)受ABA、傷害和脫水等逆境處理誘導(dǎo)顯著[31]。本研究卻發(fā)現(xiàn):在葉中表達(dá)量最高的GjPAL1,其表達(dá)量受SA、鹽、干旱和低溫的顯著抑制,但其在根中的表達(dá)卻受隱地疫霉顯著誘導(dǎo),說明不同植物的PAL基因功能不同。

通過研究GjPALs在不同逆境處理下的表達(dá)情況,發(fā)現(xiàn)GjPAL1和GjPAL4在不同逆境處理下的表達(dá)趨勢(shì)更為相似(均受鹽、干旱和低溫抑制,且均受隱地疫霉誘導(dǎo)),與GjPAL2和GjPAL3相差較大。Shang等[32]研究發(fā)現(xiàn)黃瓜CsPAL7的表達(dá)受干旱誘導(dǎo),整體呈現(xiàn)先升后降的變化趨勢(shì),與GjPAL3的表達(dá)趨勢(shì)類似。本研究還發(fā)現(xiàn)在干旱脅迫下,GjPAL1和GjPAL4的表達(dá)受到極顯著抑制;GjPAL2在PEG模擬干旱處理下表現(xiàn)為降-升-降-升的表達(dá)趨勢(shì),處理早期的表達(dá)也受到顯著抑制,但在PEG處理12 h時(shí)的表達(dá)量已顯著高于對(duì)照,說明GjPAL2和GjPAL3可能在非洲菊干旱脅迫應(yīng)答過程中發(fā)揮更為重要的作用。鹽脅迫處理下,GjPAL3的表達(dá)受顯著誘導(dǎo),而其他成員的表達(dá)受到顯著抑制,說明GjPAL3還在非洲菊抵御鹽脅迫過程中發(fā)揮重要作用。孫梓健等[33]研究指出紅葉芥PAL在低溫處理下整體呈現(xiàn)降-升-降的表達(dá)趨勢(shì),本研究發(fā)現(xiàn)GjPAL1、GjPAL3和GjPAL4在低溫處理下均呈先降后升的表達(dá)趨勢(shì),而低GjPAL2呈降-升-降的表達(dá)模式,在低溫處理8和12 h時(shí)的表達(dá)量已經(jīng)恢復(fù)到對(duì)照相近水平,說明GjPALs在非洲菊的低溫應(yīng)答過程均發(fā)揮作用,其中GjPAL2的響應(yīng)時(shí)間最早。

PAL在植物抗病防御反應(yīng)中發(fā)揮著重要作用,因此,常被用作評(píng)價(jià)植物抗病能力的重要生化指標(biāo)[28,34]。過表達(dá)PAL的轉(zhuǎn)基因煙草對(duì)煙草尾孢病原菌抗性顯著提高[35];過表達(dá)PAL的蓮藕轉(zhuǎn)基因植株根瘤菌侵染速度延緩,結(jié)節(jié)數(shù)減少[36];擬南芥PAL1/PAL2/PAL3/PAL4敲除突變體對(duì)細(xì)菌性病原菌(Pseudomonas syringae)的敏感性增加[2]。本研究除GjPAL2外,其余3個(gè)GjPALs接種隱地疫霉4和6 d的根系中的表達(dá)量均極顯著高于對(duì)照,說明它們參與非洲菊-隱地疫霉互作。

綜上所述,4個(gè)GjPALs均參與非洲菊對(duì)不同逆境的應(yīng)答過程,但各成員在不同組織部位和在不同逆境處理下的作用存在一定差異。其中,GjPAL1和GjPAL4雖然在不同組織部位中的表達(dá)情況相差較大,但在不同逆境下的表達(dá)模式更為相近。

4 結(jié)論

本研究成功克隆獲得4個(gè)非洲菊PAL基因(GjPAL1-GjPAL4),它們的CDS長(zhǎng)度為2 115-2 136 bp,編碼蛋白含704-711個(gè)氨基酸,為不含信號(hào)肽的穩(wěn)定酸性親水蛋白。GjPALs含有跨膜螺旋結(jié)構(gòu)且主要定位在細(xì)胞質(zhì)。

GjPAL1在葉中表達(dá)量最高,其他均在根中表達(dá)量最高;4個(gè)GjPALs的表達(dá)均受低溫處理顯著抑制;GjPAL1和GjPAL2的表達(dá)受SA、NaCl和PEG抑制顯著;GjPAL3受NaCl和PEG處理顯著誘導(dǎo);隱地疫霉處理?xiàng)l件下,GjPAL1和GjPAL4的表達(dá)顯著升高,GjPAL2顯著降低。GjPALs在非洲菊抵御逆境過程中發(fā)揮著重要作用。

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