蘇富琴 王玉春 齊占朋 孫 超 李淑艷

(齊齊哈爾醫(yī)學院生物化學教研室，黑龍江 齊齊哈爾 161006)

PTPMeg2的PTP結構域對磷酸化STAT3入核的抑制作用

蘇富琴1王玉春2齊占朋2孫 超2李淑艷

(齊齊哈爾醫(yī)學院生物化學教研室，黑龍江 齊齊哈爾 161006)

目的 探討PTPMeg2結構域對磷酸化STAT3核轉位的影響。方法 采用免疫共沉淀技術研究PTPMeg2與STAT3不同結構域的相互作用，采用GST pull down實驗研究STAT3與PTPMeg2不同結構域的相互作用，用激光共聚焦顯微鏡直接觀察PTPMeg2對磷酸化STAT3細胞定位的影響。結果 STAT3與PTPMeg2的所有結構域均有相互作用，PTPMeg2的PTP結構域和△SEC結構域(PTP結構域+LK結構域)可以抑制磷酸化STAT3入核。結論 PTPMeg2的PTP結構域對磷酸化STAT3的入核具有抑制作用。

PTPMeg2;磷酸化STAT3;核轉位

STAT為一類存在于細胞質中的信號轉導和轉錄激活因子。STAT3信號通路能被多種因子所激活，如白細胞介素(IL)-6家族因子、表皮生長因子(EGF)、血小板源樣生長因子(PDGF)、胰島素樣生長因子(IGF)等生長因子〔1〕，以及 v-Src、v-Sis、v-Fps、v-Ros、IGF-IR、c-Eyk/v-Eyk 等原癌蛋白〔2〕。在許多腫瘤中都檢測到了持續(xù)激活或者高水平磷酸化的STAT3〔3〕。PTPMeg2是存在于細胞質中的蛋白酶，已經(jīng)證實STAT3是PTPMeg2的直接底物，PTPMeg2對磷酸化的STAT3具有直接去磷酸化作用〔4〕，Yuan等〔5〕發(fā)現(xiàn) PTPMeg2 還可以通過抑制磷酸化EGF受體(EGFR)水平和磷酸化ErBb2水平間接降低磷酸化STAT3水平。目前，磷酸化STAT3負調控的研究熱點集中在幾個層面:激酶水平的負調控，磷酸化STAT3核轉位的負調控，STAT3結合DNA的負調控，STAT3的蛋白降解。本研究通過乳腺癌MCF7細胞轉染外源性基因后，通過激光共聚焦顯微鏡直接觀察PTPMeg2的不同結構域對IL-6激活的磷酸化STAT3核轉位的影響。

1 材料與方法

1.1 質粒和抗體 PTPMeg2 WT由美國Oklahoma健康科學中心趙志壯教授惠贈。Myc-PTPMeg2 SEC、Myc-PTPMeg2△SEC、Myc-PTPMeg2 PTP、Myc-PTPMeg2 △PTP、Myc-PTPMeg2 LK 由清華大學醫(yī)學院常智杰教授惠贈。pXJ40/Flag-STAT3、pXJ40/Flag-STAT3-NTO、pXJ40/Flag-STAT3-M1、 pXJ40/Flag-STAT3-SH2+CT以及pXJ40/GST、pXJ40/GST-STAT3由新加坡國立大學曹新民博士惠贈。轉染試劑vigofect購自威格拉斯試劑公司?？故?Myc、抗兔-FITC、抗鼠-TRITC、抗兔-HRP、抗鼠-HRP均為Santa Cruz公司產(chǎn)品。

1.2 細胞培養(yǎng)及細胞轉染 HEK293T細胞及乳腺癌細胞MCF7于含5%CO2的37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，培養(yǎng)基為含10%胎牛血清及 100 U/ml青霉素、100 mg/L鏈霉素的DMEM培養(yǎng)基。所用細胞均為對數(shù)增長期細胞。取對數(shù)生長期細胞，更換新鮮完全培養(yǎng)基2.5 h后進行轉染。按照vigofect轉染說明書，在一個轉染管中將100 μl 0.9%NaCl與需要轉入的質粒DNA混和，在另一轉染管中將0.9%NaCl與的vigofect等體積混和，室溫放置5 min。然后將含有vigofect的混合液滴加到質粒DNA的混合液中，混勻，在室溫放置15 min后滴入細胞培養(yǎng)基中。轉染后3 h更換新鮮的完全培養(yǎng)基。

1.3 GST pull down實驗 用表達GST或者GST-STAT3的真核表達質粒和pcDNA3.1/PTPMeg2、Myc-PTPMeg2 SEC、Myc-PTPMeg2△SEC、共轉染HEK-293T細胞后，培養(yǎng)48 h，收獲細胞并用細胞裂解液〔80 mmol/L KCl，10 mmol/L Na2HPO4，1 mmol/L EDTA(pH8.0)，0.5%NP-40，10%Glycerol，1 mmol/L DTT，1 mmol/L PMSF，1 μg/ml Aprotinin，1 μg/ml Leupeptin，1 μg/ml Pepstatin，0.1 mmol/L Na3VO4〕裂解細胞;在細胞裂解液中加入30 μl處理好的GST Sepharose-4B beads懸旋液，在4℃旋轉過夜;1 500 r/min，4℃離心后棄上清，用細胞裂解緩沖液漂洗，離心，在沉淀中加入30 μl 2×十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠(SDS-PAGE)上樣液，SDS-PAGE分離蛋白復合物;Western雜交檢測相應的結合蛋白。

1.4 免疫共沉淀試驗(Co-IP)及Western印跡 HEK293T細胞單獨轉染 pcDNA3/Myc-PTPMeg2，共同轉染 pcDNA3/Myc-PTPMeg2 及 pXJ40/Flag-STAT3、 pXJ40/Flag-STAT3-NTO、pXJ40/Flag-STAT3-M1、pXJ40/Flag-STAT3-SH2+CT。收獲轉染24 h的細胞，用細胞裂解液冰上裂解細胞30 min，4℃高速離心15 min。取細胞裂解上清加等容的2×SDS-PAGE上樣液變性10 min，－20℃保存?zhèn)溆?。其余的細胞裂解物，加? μg Flag抗體，4℃混合4 h。然后在上述混合物中加入30 μl G蛋白耦聯(lián)的葡聚糖顆粒懸浮液，4℃旋轉混合過夜。洗滌葡聚糖顆粒4次，在沉淀中加入 30 μl 2×SDS-PAGE 上樣液煮 10 min。Western印跡雜交分析蛋白表達。使用10%的SDS-PAGE電泳，轉膜后用Western印跡檢測相應的結合蛋白。

1.5 細胞免疫熒光染色 將對數(shù)生長期的乳腺癌MCF7細胞種植于鋪有載玻片的6孔板中，待細胞貼壁后進行轉染。轉染24 h用IL-6刺激細胞30 min，洗滌后用4%多聚甲醛/磷酸鹽緩沖液(PBS)固定，PBS洗滌，加入穿透液(0.3%Triton-X 100/PBS)，洗滌，封閉液室溫封閉1 h。加一抗(抗兔Flag抗體1∶100稀釋;抗小鼠myc抗體1∶100稀釋)4℃過夜。相應的二抗1∶200稀釋液避光孵育，37℃ 1 h，PBST浸泡洗滌，除鹽后用防熒光淬滅的封片劑(甘油)封片。激光共聚焦顯微鏡觀察并拍照。

2 結果

2.1 PTPMeg2與STAT3的所有結構域均存在相互作用 為了確定PTPMeg2與STAT3結合結構域，將STAT3的六個功能結構域(N-端功能域、螺旋結構域、DNA結合結構域、連接結構域，SH2結構域以及轉錄激活結構域)分成了3個部分，即Flag-NTO結構域、Flag-M1結構域、Flag-SH2+CT結構域。PTPMeg2全長和STAT3的功能結構域分別進行共同表達，通過免疫共沉淀的方法分析PTPMeg2與STAT3相互作用結構域，結果PTPMeg2與STAT3所有結構域均有相互作用。見圖1，圖2。

圖1 STAT3結構域示意圖

圖2 STAT3不同結構域與PTPMeg2全長的相互作用

2.2 STAT3與PTPMeg2的所有結構域均存在相互作用 采用真核細胞GST pull down實驗，在HEK293T細胞中同時共轉染了GST-STAT3和PTPMeg2各個結構域的質粒，用GST beads進行pull down實驗。Western印跡檢測結果表明，PTPMeg2全長和其所有的結構域與STAT3通過pull down沉淀得到的復合物中檢測到了明顯的PTPMeg2相應的特異性條帶。而對照組用GST所作的pull down沉淀中沒有檢測到相互作用。見圖3，圖4。

圖3 PTPMeg2結構域示意圖

圖4 PTPMeg2不同結構域與STAT3全長的相互作用

2.3 PTPMeg2的PTP結構域可抑制磷酸化STAT3入核 PTPMeg2的結構域與STAT3均有相互作用，這些結構域知否對活化的STAT3的細胞定位有影響，我們同樣在乳腺癌MCF7細胞中共表達了PTPMeg2的不同結構域以及STAT3，在IL-6激活30 min后檢測STAT3的細胞定位變化。結果顯示，PTPMeg2的SEC結構域仍然在胞質中呈均勻分布，對STAT3的入核也沒有抑制作用(見圖5b1～圖5b3)，SEC結構域的缺失突變體則在胞質中呈點狀分布，并且可以抑制活化的STAT3入核(見圖5d1～圖5d3)。SEC結構域的缺失突變體含有連接結構域和PTP結構域，是否是PTP結構域引起的變化，在PTP結構域的共轉染細胞中，同樣觀察到了PTPMeg2蛋白呈明顯的點狀分布，并且也同樣抑制活化的STAT3入核(見圖5f1～圖5f3)。對于PTP結構域的缺失突變體在胞漿中呈現(xiàn)均勻分布，與SEC結構域相同，也不能阻止活化的STAT3入核(見圖5h1～圖5h3)。說明PTP結構域是PTPMeg2的功能結構域。

圖5 PTPMeg2結構域對STAT3的細胞定位變化

3 討論

STAT3在細胞生長、分化、存活甚至凋亡等都起到重要作用的蛋白，是 STAT信號通路中的一個重要的結點蛋白〔6〕。STAT3功能發(fā)揮的關鍵在于能夠特異性地并且以不同的親和力與其他各類分子(包括蛋白質)結合，甚至形成大的復雜的復合物。病理情況下，STAT3在腫瘤中呈現(xiàn)持續(xù)活化或者高磷酸化狀態(tài)，這種持續(xù)活化的狀態(tài)可能是由于激酶的持續(xù)激活或者磷酸酶的失活引起的。PTPMeg2是與STAT3存在相互作用的磷酸酶，是 STAT3 的負性調控因子〔4，5〕。

STAT3信號通路的負調控主要從以下幾個層次得到了研究:(1)激酶水平上的負調控。有研究〔7〕表明，SHP2通過和gp130受體Y759位點的結合，從而起到對STAT3信號通路的抑制作用。苯氨基嘧啶類(STI751)和第一種對AG490能抑制JAK激酶，從而抑制白血病增殖而對正常造血無影響〔8〕。第三種吡哆(2、3 d)吡拉明酪氨酶激酶能選擇性抑制C-Src激酶，對通過C-Src激酶途徑的腫瘤細胞具有明顯的抗增殖作用〔9〕。JAB、CIS及SOCS3蛋白通過和JAK2激酶的酪氨酸激酶功能域結合，從而阻止JAK2對STAT3的激活作用〔10〕。(2)STAT3的核轉位負調控。對于STAT3的核轉位的負調控包括對其入核的抑制和對其出核的協(xié)助。兩個不同的研究小組分別采用酵母雙雜交的方法，得到與STAT3相互作用的蛋白GRIM。GRIM可以通過抑制STAT3的入核對STAT3的信號通路達到負調控的目的〔11〕。(3)STAT3結合DNA的負調控。PIAS3可以特異的和磷酸化的STAT3進行結合，從而影響STAT3結合DNA的能力〔12〕。(4)STAT3 的蛋白降解。2000 年，Daino等〔13〕發(fā)現(xiàn)，STAT3可以通過泛素化方式降解，從而抑制HL60等白血病細胞的增殖。Tanaka等〔14〕發(fā)現(xiàn)PDZ-LIM 結構蛋白PDLIM2可以作為E3酶介導STAT3的蛋白酶體降解，從而抑制TH17細胞的形成，阻斷其在肉芽腫中發(fā)揮的病理作用。(5)STAT3的小分子抑制劑。小分子物質直接抑制STAT3與DNA結合。LLL12和FLLL32作為小分子抑制劑，直接靶向STAT3，抑制其與DNA的結合，從而引起腫瘤的增殖抑制作用〔15～17〕。另外直接靶向STAT3的microRNA let-7也可以直接抑制STAT3發(fā)揮作用〔18〕。

PTP結構域是磷酸酶去磷酸化作用的功能結構域〔6〕。本實驗結果可見STAT3與PTPMeg兩種蛋白的所有結構域之間都有相互作用，具體機制不是特別清楚。內源性的蛋白之間相互作用仍然是蛋白的全長在起作用，PTPMeg2的全長蛋白就對磷酸化的STAT3起到直接和間接的去磷酸化作用，而PTPMeg2的PTP結構域也是其發(fā)揮去磷酸化作用的功能結構域〔4〕。本研究發(fā)現(xiàn)含有PTP結構域的片段都可以對磷酸化STAT3起到抑制作用，這種抑制是否是與親核蛋白形成的大的復核體而阻止其入核，還是封閉了STAT3的核定位信號蛋白的功能，還需要進一步深入研究。

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R-33

A

1005-9202(2015)09-2355-04;

10.3969/j.issn.1005-9202.2015.09.020

黑龍江省自然科學基金(No.D201084)

1 清華大學醫(yī)學院 2 齊齊哈爾醫(yī)學院藥理教研室

李淑艷(1968-)，女，教授，博士，主要從事腫瘤生物治療研究。

蘇富琴(1971-)，女，副教授，博士，主要從事蛋白修飾與腫瘤發(fā)生發(fā)展關系及抗腫瘤藥物研究。

〔2014-03-11修回〕

(編輯 袁左鳴/滕欣航)