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魚腥草提取物對(duì)慢性阻塞性肺疾病急性加重期大鼠肺功能的影響及對(duì)TLR4/NF-κB信號(hào)通路的調(diào)控作用*

2021-04-20 01:15:20李慧邢學(xué)勇王一新楊爽趙麗郭俊華
中醫(yī)學(xué)報(bào) 2021年4期
關(guān)鍵詞:魚腥草低劑量提取物

李慧,邢學(xué)勇,王一新,楊爽,趙麗,郭俊華

1.新鄉(xiāng)醫(yī)學(xué)院第三附屬醫(yī)院,河南 新鄉(xiāng)453000;2.河南大學(xué),河南 開(kāi)封475000

慢性阻塞性肺疾?。╟hronic obstructive pulmonary disease,COPD)是一種氣流受限、伴有氣道高反應(yīng)性的呼吸道疾病,表現(xiàn)為肺功能下降,對(duì)患者生存質(zhì)量造成嚴(yán)重影響[1]。COPD發(fā)病過(guò)程復(fù)雜,易受環(huán)境有害氣體或顆粒影響而急性發(fā)作,氣道、肺實(shí)質(zhì)等發(fā)生炎癥病變,若不及時(shí)有效干預(yù)則可能造成肺功能持續(xù)下降,導(dǎo)致患者呼吸衰竭而死亡[2-3]。尋找有效治療手段對(duì)COPD急性發(fā)作期的治療有重要意義。COPD中醫(yī)治療日漸受到關(guān)注[4-5]。研究表明,魚腥草具有多種潛在藥用價(jià)值,其提取物中含有多種活性成分且均具有顯著的抗炎作用,與地塞米松抗炎能力相近[6]。目前,魚腥草多用于輔助治療支原體肺炎、支氣管哮喘等肺部炎癥性疾病[7],但關(guān)于其對(duì)COPD急性加重期炎癥抑制作用及呼吸功能的影響報(bào)道較少。本研究觀察魚腥草提取物對(duì)COPD急性加重期大鼠模型肺功能的影響,并探討其抗炎機(jī)制,以期指導(dǎo)臨床用藥。

1 材料

1.1 動(dòng)物SPF級(jí)雄性健康Wistar大鼠50只,6周齡,體質(zhì)量180~220 g,購(gòu)自北京華阜康生物科技股份有限公司,許可證號(hào):SCXK(京)2017-0007,飼養(yǎng)于12 h/12 h明暗交替,23~25℃,40%~50%濕度下,所有動(dòng)物實(shí)驗(yàn)操作符合動(dòng)物倫理學(xué)要求。

1.2 藥物與試劑魚腥草(北京同仁堂股份有限公司),100 g魚腥草加入3倍體積蒸餾水煎煮兩次,合并兩次煎煮液,蒸發(fā)濃縮至100 mL,有效含量為1 000 g·L-1,使用前用蒸餾水稀釋至相應(yīng)濃度。腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、白細(xì)胞介素-6(interleukin-6,IL-6)、白細(xì)胞介素-1β(interleukin-1β,IL-1β)ELISA試劑盒(美國(guó) R&D Systems公 司,批 號(hào) 分 別 為:ML1421、M6000B、MLB00C);兔抗大鼠Toll樣受體4(toll-like receptor 4,TLR4)、核轉(zhuǎn)錄因子κB(nuclear factorκB,NF-κB)多抗、山羊抗兔單抗(美國(guó)Invitrogen公司,貨號(hào)分別為:48-2300、46-2725、41-3850);

1.3 儀器AniRes2005型實(shí)驗(yàn)用小動(dòng)物肺功能測(cè)定儀(北京貝蘭博科技有限公司);QuantStudio 3型實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀(美國(guó)ABI公司);CheniDoc XRS型化學(xué)發(fā)光成像分析儀(美國(guó)Bio-rad公司)。

2 方法

2.1 分組與模型建立取50只大鼠,按照體質(zhì)量排序法隨機(jī)分為5組:對(duì)照組、COPD組、魚腥草低劑量(1.25 g·kg-1)組、魚腥草中劑量(2.50 g·kg-1)組、魚腥草高劑量(5.00 g·kg-1)組,各10只。首先采用煙熏聯(lián)合氣道內(nèi)滴注內(nèi)毒素法建立COPD穩(wěn)定期模型,在此基礎(chǔ)上鼻腔內(nèi)滴菌法建立COPD急性加重期模型[8],具體操作方法為:分別于實(shí)驗(yàn)第7、14、28天氣管內(nèi)滴入濃度為1 g·L-1的內(nèi)毒素0.2 mL,于實(shí)驗(yàn)第1~28天(第7、14、28天除外)將大鼠放置于容積為72 L的有機(jī)玻璃倉(cāng)內(nèi),注入雄獅牌香煙煙霧,維持煙霧濃度5%(V/V),每次30 min,建立COPD穩(wěn)定期模型;于第29~32天,鼻腔內(nèi)滴注濃度為2.4×109CFU·mL-1的金黃色葡萄球菌溶液,每次0.3 mL,每天2次,連續(xù)4 d。大鼠表現(xiàn)為呼吸喘促,動(dòng)則加劇,鼻部潮濕,打噴嚏及體溫升高等體征則判定為COPD急性加重期模型建立成功。

2.2 給藥方法除對(duì)照組外,造模大鼠建立COPD急性加重期模型過(guò)程中因氣管插管、麻醉等原因分別死亡2、2、1、1只,其余均建模成功,參與后續(xù)實(shí)驗(yàn)研究。對(duì)照組大鼠氣逍和鼻腔內(nèi)每次滴注等體積生理鹽水。根據(jù)動(dòng)物與人體間的等效劑量換算[9],計(jì)算大鼠給藥劑量。所有大鼠每天灌胃1次,連續(xù)灌胃4周。

2.3 肺功能指標(biāo)測(cè)定末次灌胃后2 h,各組大鼠用12%的烏拉坦腹腔麻醉,仰臥位固定于實(shí)驗(yàn)小動(dòng)物肺功能測(cè)定儀的密閉體積掃描箱內(nèi),大鼠頸部備皮,縱向切開(kāi)皮膚暴露氣管,于第3~4氣管環(huán)中間切倒T型切口,插入氣管插管,插管連接三通開(kāi)關(guān),一端連接動(dòng)物呼吸機(jī),先描記一段平靜呼吸,然后由呼吸機(jī)輸入4~6倍潮氣量模擬用力吸氣過(guò)程,測(cè)定用力肺 活量(forced vital capacity,F(xiàn)VC),再 由25 cm H2O負(fù)壓系統(tǒng)模擬用力呼氣過(guò)程,記錄由胸廓起伏造成容積變化,通過(guò)壓力換能器和放大器信號(hào)處理系統(tǒng)計(jì)算肺功能各項(xiàng)指標(biāo),包括用力呼氣峰流速(peak expiratory flow rate,PEF)、第0.3秒用力呼氣容積(forced expiratory volume at 0.3 second,F(xiàn)EV0.3)/FVC、最大呼氣中期流速(maximum middle expiratory flow rate,MMEF)[10]。

2.4 肺泡灌洗液(alveolar lavage fluid,BALF)中炎癥因子水平檢測(cè)肺功能指標(biāo)測(cè)定結(jié)束后,處死各組大鼠,于氣管切口處插入氣管套管,用1 mL磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)反復(fù)灌洗3次,收集BALF,2 800 r·min-1離心10 min(離心半徑為10 cm),取上清液,采用酶聯(lián)免疫吸附法檢測(cè)BALF中TNF-α、IL-6、IL-1β水平,按照試劑盒說(shuō)明書執(zhí)行操作。

2.5 肺組織病理學(xué)觀察收集BALF完成后立即打開(kāi)大鼠胸腔,取部分右肺組織,置于4%中性甲醛中固定48 h,然后經(jīng)酒精脫水、石蠟包埋,修整后,采用切片機(jī)制備厚度為4μm的切片,切片進(jìn)行常規(guī)蘇木精-伊紅(hematoxylin-eosin,HE)染色,顯微鏡下觀察肺組織病理改變。

2.6 檢測(cè)肺組織中TLR4 mRNA、NF-κB mRNA表達(dá)取新鮮右肺組織70 mg,用組織剪剪碎,按照Trizol法提取肺組織中的總RNA,然后逆轉(zhuǎn)錄獲得互補(bǔ)鏈cDNA,以之為模板進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈反應(yīng),按照試劑盒設(shè)定反應(yīng)體系,反應(yīng)條件為95℃,5 min;94℃,30 s,56℃,30 s,72℃,60 s;重復(fù)40個(gè)循環(huán),72℃延伸5 min。用β-actin基因?yàn)閮?nèi)參對(duì)照,計(jì)算TLR4、NF-κB相對(duì)表達(dá)強(qiáng)度(2-△△CT)[11]。引物序列:TLR4:F:5′-ACGTGATGCTGTTAACCGT-3′,R:5′-TAGTCGTGAACGTGCGTAC-3′;NF-κB:F:5′-CATCAAGCGTACGTGCGTA-3′,R:5′-CTGATGCGTCTGAGATCTA-3′;β-actin:F:5′-TAACGCCGATGCAATGTCT-3′,R:5′-CATGTGGAACTCTGTGCTC-3′。

2.7 檢測(cè)肺組織中TLR4、NF-κB蛋白表達(dá)取新鮮右肺組織70 mg于EP管中,加入細(xì)胞裂解液500μL,置于冰上裂解20 min,4℃、12 000 r·min-1離心15 min(離心半徑10 cm),取上清液,BCA蛋白定量后,進(jìn)行十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰氨凝膠電泳,電泳后轉(zhuǎn)膜2.5 h,經(jīng)封閉液封閉,按比例稀釋一抗4℃搖床孵育過(guò)夜,按比例稀釋二抗常溫孵育2 h后進(jìn)行曝光和顯影,掃描拍照后,應(yīng)用BandScan軟件進(jìn)行灰度值分析,相對(duì)表達(dá)強(qiáng)度用TLR4、NF-κB與內(nèi)參β-actin灰度值的比值表示。

2.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法采用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件分析數(shù)據(jù),計(jì)量資料均用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,多樣本組間比較采用單因素方差分析,兩兩樣本比較采用SNK-q檢驗(yàn)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

3 結(jié)果

3.1 大鼠建模情況及一般體征觀察對(duì)照組大鼠營(yíng)養(yǎng)狀態(tài)、飲食、體溫等均正常,實(shí)驗(yàn)過(guò)程中均未死亡。各造模組大鼠COPD穩(wěn)定期出現(xiàn)皮毛暗淡、蜷縮少動(dòng)、呼吸喘促、動(dòng)則加劇現(xiàn)象,經(jīng)鼻反復(fù)滴注菌液期間上述現(xiàn)象更為嚴(yán)重,逐步出現(xiàn)鼻部潮濕、打噴嚏、體溫升高等現(xiàn)象,給藥后上述癥狀得以好轉(zhuǎn)。COPD組、魚腥草(低、中、高劑量)組模型制備成功分別有8、8、9、9只大鼠,參與后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

3.2 對(duì)肺功能指標(biāo)的影響與對(duì)照組比較,COPD組、魚腥草(低、中、高劑量)組上述肺功能指標(biāo)均降低(P<0.05);與COPD組比較,魚腥草(低、中、高劑量)組上述肺功能指標(biāo)均升高(P<0.05),其中魚腥草高劑量組高于魚腥草低、中劑量組(P<0.05),魚腥草低劑量組與魚腥草中劑量組比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見(jiàn)表1。

3.3 對(duì)BALF中TNF-α、IL-6、IL-1β水平的影響與對(duì)照組比較,COPD組、魚腥草(低、中、高劑量)組大鼠BALF中TNF-α、IL-6、IL-1β水平均升高(P<0.05);與COPD組比較,魚腥草(低、中、高劑量)組上述上述炎癥因子水平均降低(P<0.05),其中魚腥草高劑量組低于魚腥草低、中劑量組,魚腥草中劑量組低于低劑量組(P<0.05)。見(jiàn) 表2。

表1 肺功能指標(biāo)比較 (±s)

注:與對(duì)照組比較,a P<0.05;與COPD組比較,b P<0.05;與魚腥草低劑量組比較,c P<0.05;與魚腥草中劑量組比較,d P<0.05

組別n FVC(V/mL)PEF/mL·s-1 FEV0.3/FVC/%MMEF/mL·s-1.05±2.01 COPD組8 5.50±0.53a 29.82±3.02a 67.23±4.02a 16.64±1.12a魚腥草低劑量組8 6.08±0.51ab 36.30±4.37ab 73.65±4.19ab 18.32±1.43ab魚腥草中劑量組9 6.29±0.54ab 39.14±5.24ab 74.09±4.25ab 19.15±2.54ab魚腥草高劑量組9 7.18±0.59abcd 50.36±3.94abcd 78.11±5.07abcd 22.30±2.62abcd F值20.238 62.955 10.949 15.261 P值對(duì)照組10 7.71±0.72 57.61±4.45 80.45±5.24 23<0.001<0.001<0.001<0.001

表2 BALF中TNF-α、IL-6、IL-1β水平的影響 (±s,ng·L-1)

表2 BALF中TNF-α、IL-6、IL-1β水平的影響 (±s,ng·L-1)

注:與對(duì)照組比較,a P<0.05;與COPD組比較,b P<0.05;與魚腥草低劑量組比較,c P<0.05;與魚腥草中劑量組比較,d P<0.05

組別n TNF-αIL-6 IL-1 β 10 38.14±4.03 40.75±6.10 28.97±4.26 COPD組8 65.47±5.29a 131.88±12.23a 85.36±6.78a魚腥草低劑量組8 52.11±5.22ab 104.45±11.15ab 70.12±6.04ab魚腥草中劑量組9 46.80±4.08abc 81.11±10.10abc 61.47±6.15abc魚腥草高劑量組9 42.37±4.14abcd 70.92±9.13abcd 52.53±5.38abcd對(duì)照組F值46.664 109.600 122.141 P值<0.001<0.001<0.001

3.4 肺組織病理觀察HE染色結(jié)果顯示,對(duì)照組大鼠支氣管、支氣管黏膜、肺泡等結(jié)構(gòu)基本正常;模型組大量肺泡壁斷裂融合為氣腔、肺泡間質(zhì)大量炎性細(xì)胞浸潤(rùn),支氣管黏膜上皮可見(jiàn)大量杯狀細(xì)胞增生,支氣管管腔狹窄,氣道內(nèi)大量炎性細(xì)胞浸潤(rùn),肺小動(dòng)脈管壁增厚,周圍炎性細(xì)胞浸潤(rùn);魚腥草各劑量組大鼠上述病理改變較模型組均有所減輕,肺泡融合范圍減小,肺間質(zhì)、氣道及肺小動(dòng)脈周圍炎性細(xì)胞浸潤(rùn)程度減輕,其中魚腥草高劑量組改善最明顯,但仍存在少量炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)。見(jiàn)圖1。

圖1 肺組織病理切片(HE染色,×200)

3.5 對(duì)肺組織中TLR4 mRNA、NF-κB mRNA表達(dá)的影響與對(duì)照組比較,COPD組、魚腥草(低、中、高劑量)組肺組織中TLR4 mRNA、NF-κB mRNA相對(duì)表達(dá)量均明顯升高(P<0.05);與COPD組比較,魚腥草(低、中、高劑量)組肺組織中TLR4 mRNA、NF-κB mRNA相對(duì)表達(dá)量均降低(P<0.05),其中魚腥草高劑量組低于魚腥草低中劑量組,魚腥草中劑量組低于魚腥草低劑量組(P<0.05)。見(jiàn)表3。

3.6 對(duì)肺組織中TLR4、NF-κB蛋白表達(dá)的影響與對(duì)照組比較,COPD組、魚腥草(低、中、高劑量)組肺組織中TLR4、NF-κB蛋白相對(duì)表達(dá)量均升高(P<0.05);與COPD組比較,魚腥草(低、中、高劑量)組肺組織中TLR4、NF-κB蛋白相對(duì)表達(dá)量均降低(P<0.05),其中魚腥草高劑量組低于魚腥草低、中劑量組,魚腥草中劑量組低于魚腥草低劑量組(P<0.05)。見(jiàn)表4,圖2。

表3 對(duì)肺組織中TLR4 mRNA、NF-κB mRNA表達(dá)的影響 (±s)

表3 對(duì)肺組織中TLR4 mRNA、NF-κB mRNA表達(dá)的影響 (±s)

注:與對(duì)照組比較,a P<0.05;與COPD組比較,b P<0.05;與魚腥草低劑量組比較,c P<0.05;與魚腥草中劑量組比較,d P<0.05

組別n TLR4 NF-κ B對(duì)照組3 0.92±0.12 1.01±0.11 COPD組3 1.87±0.21a 2.15±0.16a魚腥草低劑量組3 1.54±0.23ab 1.87±0.14ab魚腥草中劑量組3 1.32±0.10abc 1.64±0.15abc魚腥草高劑量組3 1.10±0.11abcd 1.30±0.12abcd F值47.910 98.034 P值<0.001<0.001

表4 對(duì)肺組織中TLR4、NF-κB蛋白表達(dá)的影響 (±s)

表4 對(duì)肺組織中TLR4、NF-κB蛋白表達(dá)的影響 (±s)

注:與對(duì)照組比較,a P<0.05;與COPD組比較,b P<0.05;與魚腥草低劑量組比較,c P<0.05;與魚腥草中劑量組比較,d P<0.05

組別n TLR4 NF-κ B對(duì)照組3 0.21±0.04 0.30±0.04 COPD組3 1.20±0.10a 1.35±0.11a魚腥草低劑量組3 0.85±0.07ab 1.17±0.10ab魚腥草中劑量組3 0.77±0.06abc 1.05±0.08abc魚腥草高劑量組3 0.40±0.05abcd 0.64±0.07abcd F值312.227 247.215 P值<0.001<0.001

圖2 肺組織中TLR4、NF-κB的蛋白表達(dá)

4 討論

COPD病程復(fù)雜,發(fā)病率和死亡率逐年升高,目前已位列世界疾病經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)第5位,且已成為全球性主要致死病因,亟須尋求有效治療手段改善疾病預(yù)后[12-14]。多種因素均可導(dǎo)致COPD患者氣道、肺實(shí)質(zhì)炎癥反應(yīng)進(jìn)行性加重,抑制肺呼吸功能[15-17]。吸煙、感染是導(dǎo)致COPD發(fā)作及加重的主要因素,煙熏聯(lián)合氣道內(nèi)滴注內(nèi)毒素法建立COPD大鼠模型已獲得廣泛認(rèn)可[18-19]。本研究在該方法基礎(chǔ)上經(jīng)鼻滴入金黃色葡萄球菌以獲得COPD急性加重期大鼠模型,大鼠一般體征觀察及肺組織病理改變與臨床表現(xiàn)一致[20],可用于實(shí)驗(yàn)研究。

肺功能檢查是COPD診療、預(yù)后評(píng)價(jià)的首要指標(biāo),反應(yīng)肺組織損傷程度。本研究發(fā)現(xiàn),不同濃度魚腥草干預(yù)后,大鼠FVC、PEF、FEV0.3/FVC、MMEF均較COPD組升高,且高劑量組最高,說(shuō)明魚腥草提取物可有效改善COPD急性加重期大鼠肺功能;干預(yù)后BALF中TNF-α、IL-6、IL-1β水平均降低,且呈劑量依賴性;病理觀察顯示肺泡融合范圍減小,肺間質(zhì)、氣道及肺小動(dòng)脈周圍炎性細(xì)胞浸潤(rùn)程度減輕,說(shuō)明魚腥草提取物可有效減輕COPD急性加重期大鼠肺病理?yè)p傷。藥理學(xué)研究表明,魚腥草水煎液具體顯著的體外抑菌作用,可能通過(guò)抑制細(xì)菌生物被膜發(fā)揮抗菌作用[21-22]。體內(nèi)實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)[23],魚腥草提取物可有效改善支原體肺炎小鼠肺組織病理變化,降低血清γ-干擾素、IL-6水平,與本研究結(jié)果相符,證實(shí)魚腥草有顯著抗炎作用,推測(cè)魚腥草提取物通過(guò)抑制氣道、肺實(shí)質(zhì)內(nèi)的炎癥反應(yīng),達(dá)到改善肺功能的作用。

TLR4屬于天然免疫受體Toll樣受體家族成員之一,可通過(guò)直接結(jié)合病原體或其產(chǎn)物的特定分子結(jié)構(gòu),引發(fā)一系列的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),促進(jìn)炎癥介質(zhì)釋放[24-27]。NF-κB是TLR4下游信號(hào)通路,TLR4可通過(guò)髓樣分化因子88依賴和非依賴兩種途徑激活NF-κB信號(hào)通路,從而發(fā)揮調(diào)節(jié)炎癥介質(zhì)合成和釋放的作用[28-31]。本研究發(fā)現(xiàn),應(yīng)用不同濃度魚腥草提取物干預(yù)后肺組織中TLR4 mRNA、NF-κB mRNA和蛋白相對(duì)表達(dá)量均較COPD組降低,其中魚腥草高劑量組降低最顯著,提示魚腥草提取物可能通過(guò)抑制TLR4/NF-κB信號(hào)通路,調(diào)節(jié)TNF-α、IL-6、IL-1β炎癥因子水平,從而發(fā)揮改善COPD急性加重期大鼠肺功能,減輕肺病理?yè)p傷的作用。

綜上所述,魚腥草提取物可有效改善COPD急性加重期大鼠肺功能,減輕肺病理?yè)p傷,推測(cè)與抑制TLR4/NF-κB信號(hào)通路有關(guān)。在進(jìn)一步的研究中,應(yīng)重點(diǎn)探討魚腥草提取物能否通過(guò)其他信號(hào)通路發(fā)揮相應(yīng)調(diào)控作用,為魚腥草相關(guān)藥物的研發(fā)和臨床應(yīng)用提供更全面、充分的理論支持。

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