肖 珊,馬郁文,李 婧,張彥紅,何 泓,方春香,王萬銘
1華中科技大學同濟醫(yī)學院附屬武漢市中心醫(yī)院藥學部,湖北 武漢430014;2廣州中醫(yī)藥大學中藥學院,廣東廣州511400;3廣州市第一人民醫(yī)院中醫(yī)科,廣東 廣州511400;4廣州醫(yī)科大學第三附屬醫(yī)院婦產科,廣東 廣州511400;5長江航運總醫(yī)院,湖北 武漢430000;6武漢腦科醫(yī)院,湖北 武漢430000
心血管疾病在全球范圍內有著很高的致死率,其發(fā)病機制是一個非常復雜的過程,包括了炎癥的發(fā)生以及血管的病變等[1-2]。血管緊張素II(Ang II)是RAAS的血管活性肽,具有強效收縮血管作用,與心血管疾病的發(fā)生發(fā)展密切相關,在高血壓調節(jié)中起重要作用[3-4]。Ang II通過與特定受體結合來調節(jié)自身作用從而調節(jié)心血管穩(wěn)態(tài),AT1受體參與血管緊張素的主要病理生理作用[5-6]。在低血壓狀態(tài)下,Ang II通過AT1激活RAS系統(tǒng)后,通過促進Ca2+流入增加引起的血管收縮,減少NO 產生并且刺激醛固酮的產生,同時增加炎癥因子的表達,從而能促進自身免疫功能障礙的發(fā)展[7-8]。單磷酸腺苷活化蛋白激酶AMPK是一種應激活的蛋白酶,是細胞ATP水平的代謝傳感器,是關鍵調節(jié)因子也是一種氧化還原敏感酶[9]。SIRT1是一種NAD+依賴的去乙?;福谘装Y反應和免疫中發(fā)揮多種作用[10]。研究發(fā)現AMPK 的激活可提高細胞內NAD+濃度,從而激活SIRT1的表達。AMPK和SIRT1對機體的能量代謝敏感,兩者發(fā)揮著協(xié)調作用共同維持著機體能量穩(wěn)態(tài)[11]。近年來有文獻報道,Ang II通過抑制AMPK/SIRT1通路促進心血管疾病的發(fā)生發(fā)展[12-13],但是具體的機制尚未闡明。本研究通過構建Ang II抑制巨噬細胞AMPK/SIRT1通路的活化的細胞模型進一步探討其具體機制。
Ang II(SIGMA,SML0142),Lipofec-tamine 3000轉 染 試 劑 盒(Invitrogen,L3000075),DMED-F12(Gibco,C11875500BT);胎牛血清(Gibco,10091148);0.25%EDTA 胰酶(Gibco,25100-056);青霉素/鏈霉素(Gibco,15140-122);活性氧ROS 試劑盒(南京建成,E004);SOD試劑盒(南京建成,A001-3);MDA試劑盒(南京建成,A003-1);AT1 抗體(Affinity,DF4910)PAMPK 抗體(Abcam,ab18528);AMPK 抗體(CST,5832S);SIRT1 抗體(Santa,SC-515045);β-actin 抗體(Boster,BM0627);Anti-Rabbi(CST,7074S);Anti-Mouse(CST,7076S)。
Western blot 電泳儀(型號:PowerPacTM HC,BIO-RAD);化學發(fā)光成像儀(型號:TANON 5200,TANON)。激光共聚焦熒光顯微鏡(型號:LSM800,ZEISS)。
1.3.1 細胞培養(yǎng) 小鼠巨噬細胞(RAW264.7)購于ATCC。RAW264.7 細胞的培養(yǎng)用含10%胎牛血清和1%青霉素-鏈霉素的DMEM-F12 完全培養(yǎng)基,37 ℃的5%CO2細胞培養(yǎng)箱。將細胞接種到6 孔板,待細胞融合度達60%時,給予不同濃度的Ang II(0、0.5、1、3、10、20 μmol/L)刺激,24 h后進行試驗。
1.3.2 Western blot 檢測 AT1,AMPK,P-AMPK,SIRT1的表達,RIPA 細胞裂解液(Themor Scientific,Rockford,USA)提取各分組的總蛋白,用BCA(碧云天)試劑盒測定濃度,加入5×蛋白上樣緩沖液,然后金屬浴100 ℃蛋白變性5 min,于-20 ℃保存。配制12%分離膠和5%濃縮膠進行凝膠電泳,電泳結束后將蛋白轉移到0.22 μmol/L PVDF膜上,5%脫脂牛奶封閉1 h,分別用AT1,AMPK,P-AMPK,SIRT1,β-actin 抗體孵育,先室溫孵育1 h,然后4 ℃過夜,TBST洗3次后,二抗孵育2 h,TBST 洗3 次,再使用ECL 法曝光顯影。采用Image J 軟件進行對蛋白條帶灰度值的計算。
1.3.3 檢測SOD 和MDA 的表達 96 孔板接種細胞,待RAW264.7細胞融合度達60%時給予Ang II 刺激,24 h后吸取細胞上清液,用來檢測SOD活性和MDA表達量。
1.3.4 實時細胞檢測儀檢測細胞ROS 96孔板接種細胞,1萬/孔巨噬細胞,5~6 h后給予不同濃度的Ang II干預,刺激24 h后,吸出細胞培養(yǎng)基,用含DCFH-DA探針20 μmol/L的PBS避光37 ℃孵育細胞30 min,然后用PBS清洗細胞2遍,最后加入150 μL/孔PBS,放入實時細胞檢測儀里,用其熒光顯微鏡拍照記錄。
1.3.5 shRNA細胞轉染 巨噬細胞內AT1R 受體的沉默運用shRNA 技術,利用CRISPR 設計工(gttp://crispr.mit.edu/)編輯CRISPR/Cas9 系統(tǒng)的AT1R受體的基因序列,shRNA 序列合成后,由BBSl酶切導入PX459質粒中。AT1R 受體shRNA 的序列為:5'-CTTTCTTCT AAATCTCGCCC-3'。采用Lipofectamine 3000轉染試劑盒轉染細胞。
1.3.6 ROS 抑制劑干預 將細胞接種到六孔板中,分組為Ang II刺激組和Apocynin抑制組,貼壁后用20 μmol/L Ang II以及100 μmol/L Apocynin刺激細胞24 h,提取蛋白。
用SPSS17.0 對數據進行統(tǒng)計學分析,所有數據均以均數±標準差表示,多組間采用單因素方差分析進行統(tǒng)計,兩組間采用獨立樣本t檢驗,P<0.05 為差異具有統(tǒng)計學意義。
分別給予RAW264.7不同濃度的Ang II(0、0.5、1、3、10、20 μmol/L),刺激24 h后檢測P-AMPK、AMPK、SIRT-1 蛋白的表達量。與對照組相比,0.5~10 μmol/L的Ang II 的干擾對細胞蛋白的表達無明顯變化,但20 μmol/L的Ang II的刺激能顯著抑制蛋白AMPK的磷酸化(圖1A、B),同時抑制SIRT1 的表達(圖1C、D)。
分別不同濃度劑量的Ang II(0、0.5、1、3、10、20 μmol/L)刺激巨噬細胞,刺激24 h后用實時細胞檢測儀顯微鏡拍照細胞內ROS 的熒光強度。結果顯示,與對照組相比,0.5~10 μmol/L Ang II 處理后細胞的ROS 的釋放沒有明顯增加,而20 μmol/L 的Ang II刺激明顯增加了細胞ROS的釋放(圖2A、B)。在檢測SOD活性和MDA表達量時,0.5~10 μmol/L的Ang II對細胞無明顯改變,20 μmol/L的AngII明顯抑制SOD 活性(圖2C),能顯著增加MDA的產生(圖2D)。
圖1 Angiotensin II 對巨噬細胞AMPK/SIRT1 信號通路的影響Fig.1 Effect of angiotensin II on AMPK/SIRT1 signaling pathway in macrophages. A, B: Western blotting of AMPK and p-AMPK in angiotensin II-treated macrophages(n=3).*P<0.05 vs 0 μmol/L.C,D:Western blotting of SIRT1 in angiotensin II-treated macrophages(n=3).*P<0.05 vs 0 μmol/L.
將細胞分為scramble組和shAT1R組,給予20μmol/L有效劑量Ang II的刺激,24 h后檢測P-AMPK、AMPK、SIRT1蛋白的表達量。Scramble 組與對照組相比,刺激組的AMPK 的磷酸化和SIRT1蛋白的表達量均減少;但shAT1R組中,與對照組相比較,Ang II 刺激后細胞的AMPK的磷酸化水平和SIRT1蛋白的表達量均沒有明顯改變(圖3)。
圖2 Angiotensin II 對巨噬細胞的氧化應激反應的影響Fig.2 Effect of angiotensin II on oxidative stress response in macrophages.A,B:Quantitative analysis of ROS expression stained with DCFH-DA by flow cytometry.C:SOD activity in RAW264.7 cells stimulated with 0,0.5,1,3,10,and 20 μmol/L angiotensin II.D:MDAlevels in RAW264.7 cells stimulated with 0,0.5,1,3,10,and 20 μmol/Langiotensin II.*P<0.05 vs 0 μmol/L.
將細胞分為scramble 組和shAT1R 組,給予20 μmol/L有效劑量Ang II的刺激,24 h后分別檢測細胞內ROS 的釋放量,以及SOD 活性和MDA 的表達量。單純對比Ang II刺激組,scramble組的ROS釋放量和MDA的表達量明顯高于shAT1R組,且scramble組的SOD活性低于shAT1R組(圖4)。
將細胞分為對照組、Ang II刺激組和APO 抑制劑組,Ang II刺激組給予20 μmol/L有效劑量Ang II的刺激,APO抑制劑組在給予20 μmol/L 有效劑量Ang II的刺激的同時,加入100 μmol/L的APO處理24 h。結果顯示,與Ang II刺激組相比,APO抑制劑組中AMPK的磷酸化和SIRT1蛋白的表達水平有所增加。
圖3 Angiotensin II 對shAT1R 巨噬細胞AMPK/SIRT1 信號通路的影響Fig.3 Effect of angiotensin II on AMPK/SIRT1 signaling pathway in macrophages with AT1R gene silencing.A, B: Western blotting showing the efficiency of AT1R gene silencing (*P<0.05). C, D: Western blotting showing the effects of Ang II and AT1R gene silencing on the expressions of AMPK and p-AMPK(n=3).**P<0.05;##P<0.01.E,F:Western blotting showing the effects of Ang II and AT1R gene silencing on the expression of SIRT1 (n=3).**P<0.05.##P<0.01.
本研究證明了在巨噬細胞中,過多的ROS合成可以抑制AMPK/SIRT1信號通路激活。結果證明,Ang II激活AT1受體會促進ROS的合成增加,從而抑制了磷酸化AMPK和SIRT1的表達,shRNA敲減AT1受體后會抑制巨噬細胞中ROS的生成以及促進AMPK磷酸化水平和SIRT1的表達。使用ROS抑制劑APO可以阻斷AT1受體激活后對AMPK磷酸化水平和SIRT1蛋白表達的抑制作用。
AMPK是一種絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶,在調節(jié)細胞代謝中充當能量傳感器[14]。SIRT1主要位于細胞核中,它參與了心臟中能量產生,氧化應激,細胞凋亡和細胞內信號傳導的生物學功能[15-16]。SIRT1是一種AMPK調控的NAD+依賴性蛋白去乙酰化酶,AMPK可以通過增加NAD+/NADPH比值來充當SIRT1激活劑,同時SIRT1也能調節(jié)AMPKα的活性[17-19]。文獻報道AMPK/SIRT1通路可以調節(jié)血管緊張素II在體內和體外誘導心臟肥大和損傷[20],使用基因突變小鼠模型的研究表明SIRT1 具有抗動脈粥樣硬化的作用,過表達SIRT1減輕了Ang II誘導的小鼠血管重構和高血壓[21]。炎癥與心血管疾病的發(fā)病機制和預后密切相關,巨噬細胞在心血管疾病中扮演著重要作用角色[22-23]。近年來有文獻報道,血管緊張素Ⅱ處理的小鼠體內巨噬細胞向M1型轉化,炎癥反應增加,出現血壓升高,血管功能障礙的現象。其機制可能與巨噬細胞的AMPK/SIRT1信號通路有關[24-25]。本研究數據表明,在20 μmol/LAng II的刺激下,巨噬細胞中磷酸化的AMPK的表達水平降低,SIRT1的蛋白表達下降,這說明Ang II在巨噬細胞中能抑制AMPK/SIRT信號通路的活化。
氧化應激反應代表細胞內存在過多的活性氧(ROS),可促進炎癥反應的發(fā)生并極大地促進心血管疾病的發(fā)展。細胞通過連續(xù)產生活性氧,以調節(jié)細胞的增殖,分化和凋亡等反應[20,26]。Ang II可以通過煙酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸氧化酶刺激ROS的產生并引起炎癥[27]。本研究實驗數據證明了Ang II能誘導巨噬細胞的ROS 的過度釋放,抑制超氧化物歧化酶(SOD)的活性,降低了細胞清除由于細胞新陳代謝產生廢物的能力,增加了氧化終產物丙二醛表達量。
圖4 Angiotensin II 對shAT1R 巨噬細胞氧化應激的影響Fig.4 Effect of angiotensin II on oxidative stress response in macrophages with AT1R gene silencing. A, B: Western blotting showing the efficiency of AT1R gene silencing (**P<0.01). C, D: Quantitative analysis of ROS expression in the macrophages stained with DCFH-DA by flow cytometry(*P<0.05;#P<0.05).E:Effect of 20 μmol/L angiotensin II stimulation on SOD activity in RAW264.7 cells transfected with in scramble and shAT1R constructs(*P<0.05;#P<0.05).F:Effect og 20 μmol/L angiotensin II on MDAlevel in RAW264.7 cells transfected with in scramble and shAT1R constructs(*P<0.05;#P<0.05).
血管緊張素Ⅱ1型受體(AT1受體)是腎素-血管緊張素-醛固酮系統(tǒng)的關鍵分子之一。AT1受體促進多種細胞內信號通路,導致高血壓、內皮功能障礙、血管重塑和終末器官損傷。通過激活AT1,血管緊張素(Ang)II驅動血流動力學損傷,隨后單核細胞和其他炎癥細胞在高血壓期間進入心臟、血管和腎臟[28]。目前文獻報道激活AT1受體對巨噬細胞的功能有影響。巨噬細胞中的AT1可以調控NF-kappaB的活性,AT1的激活會促進脂質的積累、遷移和細胞因子的產生,同時使動脈粥樣硬化病變內巨噬細胞群的分布向促炎性M1表型發(fā)展,減少M2巨噬細胞的表型,巨噬細胞中AT1受體敲除后,阻礙了UNX對M2巨噬細胞表型的轉化的影響[29]。有文獻報道,使用AT1 受體拮抗劑替米沙坦會增加AMPK 的磷酸化水平,促進AMPK信號通路的活化來抑制內質網應激[30]。為了驗證巨噬細胞中AT1受體和AMPK/SIRT1的關系,在本實驗中,成功沉默了巨噬細胞的AT1R受體后,發(fā)現Ang II的刺激對AMPK的磷酸化無影響,同時SIRT1蛋白的表達量也沒有變化,證明在巨噬細胞中Ang II是通過AT1 受體對AMPK/SIRT1通路進行調控的。在動脈粥樣硬化模型中,選擇性血管緊張素Ⅱ1型受體阻斷劑氯沙坦可抑制ROS的產生[31]。為了驗證巨噬細胞中AT1受體是否會影響ROS的合成,本研究在敲除AT1受體的巨噬細胞中,檢測ROS的水平。實驗結果證明沉默AT1 受體后,Ang II無法增加ROS的合成,以及抑制了抗氧化酶SOD的活性。
有文章報道ROS 可以作用于AMPKα 亞基上對氧化還原敏感的半胱氨酸殘基(Cys-299/Cys-304)來調控AMPK的活性[32],另外使用ROS抑制劑N-乙酰半胱氨酸可以降低SIRT1的磷酸化[33]。為了進一步驗證巨噬細胞中ROS跟AMPK/SIRT1的關系,本研究使用ROS的抑制劑APO后,Ang II的刺激不能減弱AMPK 磷酸化水平,也無法降低SIRT1 的蛋白表達量,這證明Ang II 通過AT1 受體促進ROS 氧化應激反應來調控AMPK/SIRT1信號通路。
圖5 抑制巨噬細胞氧化應激反應對AMPK/SIRT1 的影響Fig.5 Effect of inhibition of oxidative stress response on AMPK/SIRT1 signaling in macrophages.A, B: Western blotting for detecting the expression of p-AMPK (n=3). C, D: Western blotting for the expression of SIRT1(n=3).**P<0.01;#P<0.05.
綜上所述,本文確定了Ang II通過AT1受體可以調控巨噬細胞中的氧化應激反應,從而抑制AMPK/SIRT1信號通路的活化。揭示了AT1受體在Ang II誘導的氧化應激反應中的重要作用。