魯 鐵，李 登，謝文凱，余傳東，陳懷中，3，尚浩樂，楊柳杰，劉 宇，謝朝暉*

（1.河南城建學(xué)院生命科學(xué)與工程學(xué)院，河南 平頂山 467036；2.魯東大學(xué)農(nóng)學(xué)院，山東 煙臺(tái) 264025；3.暨南大學(xué)生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院，廣東 廣州 510632）

白蠟多年臥孔菌（Perenniporia fraxinea）隸屬于擔(dān)子菌門（Basidiomycets），蘑菇綱（Agaricomycetes），多孔菌目（Polyporales），多孔菌科（Polyporaceae），多年臥孔菌屬（Perenniporia）[1-3]。其菌絲體是由絲狀真菌菌絲連結(jié)在一起組成的營養(yǎng)體類型；子實(shí)體是其產(chǎn)孢構(gòu)造，由已組織化的菌絲體組成。目前主要分布于我國安徽、北京、福建、廣東、江蘇、江西、四川、云南、浙江等地。白蠟多年臥孔菌作為一種常見的白色真菌，是重要的生物資源，其多糖提取物可通過激活機(jī)體的免疫系統(tǒng)達(dá)到抑制腫瘤、抗氧化活性的目的[4-5]。

真菌多糖提取的常用方法有復(fù)合酶解法[6]、酸堿提取法[7]、超聲提取法[8-9]。目前對(duì)于多糖的提取方法研究較為成熟，但是不同的原料對(duì)提取方法有所要求，原料的結(jié)構(gòu)與來源均會(huì)導(dǎo)致多糖的水溶性和極性不同。傳統(tǒng)的熱水浸提法用時(shí)長，復(fù)合酶解法必須嚴(yán)格控制提取條件，操作難度大，酸堿提取法容易破壞多糖結(jié)構(gòu)。而超聲波輔助水提醇沉法可在保證多糖結(jié)構(gòu)不被破壞的同時(shí)加快提取的速度，且操作簡單，提取率高。目前白蠟多年臥孔菌活性物質(zhì)在國內(nèi)外研究較少，研究表明，白蠟多年臥孔菌的其粗多糖提取物有一定的體外抗氧化活性。子實(shí)體的乙醇提取物具有較強(qiáng)的抑制宮頸癌Hela細(xì)胞株的能力[10]。目前，未對(duì)白蠟多年臥孔菌多糖的提取物進(jìn)行系統(tǒng)化工藝優(yōu)化以及抗氧化評(píng)估。

本研究以多糖提取率為評(píng)價(jià)指標(biāo)，采用超聲輔助水提醇沉法提取白蠟多年臥孔菌子實(shí)體及菌絲體多糖，在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上，通過Box-Behnken響應(yīng)面法優(yōu)化白蠟多年臥孔菌子實(shí)體、菌絲體的粗多糖提取工藝，并測定其對(duì)1,1-二苯基-2-三硝基苯肼（1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl，DPPH）自由基、2,2'聯(lián)氮-雙（3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸）二胺鹽（2,2'-azino-bis（3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid），ABTS）自由基的清除能力，以及對(duì)油脂的抗氧化能力。以期為白蠟多年臥孔菌多糖的開發(fā)利用提供數(shù)據(jù)支持。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

1.1.1 菌株

白蠟多年臥孔菌（Perenniporia fraxinea）990715經(jīng)野外采集，組織分離保存于平頂山健康食品協(xié)同創(chuàng)新中心菌種庫。

1.1.2 試劑

葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品（純度≥98%）：天津市優(yōu)譜化學(xué)試劑有限公司；DPPH：北京索萊寶科技有限公司；ABTS（純度≥98%）、水楊酸（純度≥98%）：宜興市申光醫(yī)藥化工有限公司；金龍魚菜籽油：益海嘉里公司；其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

1.2 儀器與設(shè)備

SW-CJ-2F型水浴鍋：蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司；KQ-50B型超聲儀：昆山市超聲波儀器有限公司；PE Eenspire型酶標(biāo)儀：美國PE公司；KDC-1044型低速離心機(jī)：科大創(chuàng)新股份有限公司；GFL-125型電熱鼓風(fēng)干燥箱：天津萊玻特瑞儀器有限公司；MJ-78A型高壓蒸汽滅菌鍋：上海施都凱儀器設(shè)備有限公司；JP-100A-2型紫外分光光度計(jì)：北京普析通用儀器有限責(zé)任公司。

1.3 方法

1.3.1 白蠟多年臥孔菌子實(shí)體和菌絲體的粗多糖提取工藝

流程及操作要點(diǎn)

操作要點(diǎn)：

白蠟多年臥孔菌原料預(yù)處理：子實(shí)體按照文獻(xiàn)[3]的方法栽培獲得，菌絲體按照文獻(xiàn)[11]的方法培養(yǎng)獲得，菌絲體和子實(shí)體經(jīng)過65 ℃鼓風(fēng)干燥箱干燥處理，粉碎機(jī)粉碎過40目篩，-20 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

加水?dāng)嚢瑁悍Q取0.1 g白蠟多年臥孔菌子實(shí)體（菌絲體），按照一定的液料比（1∶20、1∶30、1∶40、1∶50、1∶60、1∶70（g∶mL））加水。

超聲提?。涸诔暪β?00 W、提取溫度70 ℃條件下，超聲提?。? min、10 min、15 min、20 min、25 min）。

水浸提、離心：水浸提溫度為80 ℃，提取（40 min、60 min、80 min、100 min、120 min）后，于4 500 r/min離心10 min，取其上清液。

濃縮：在101 kPa，50 ℃條件下旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮，濃縮至原體積的四分之一左右。

除蛋白：采用Sevage法除蛋白，加入等體積Sevage溶液，振蕩10 min，4 000 r/min離心10 min，得上清液[12]。

醇沉：粗子實(shí)體和菌絲體上清液按照1∶3的比例加入體積分?jǐn)?shù)為95%的乙醇于4 ℃醇沉過夜，上清液在4 000 r/min室溫（25 ℃）下離心5 min，將沉淀用無水乙醇洗滌3次，將沉淀溶于1 mL蒸餾水中，得到白蠟多年臥孔菌子實(shí)體和菌絲體粗多糖溶液。

1.3.2 白蠟多年臥孔菌子實(shí)體（菌絲體）粗多糖提取工藝優(yōu)化

單因素試驗(yàn)：分別考察不同的料液比（1∶20、1∶30、1∶40、1∶50、1∶60、1∶70（g∶mL））、超聲時(shí)間（5 min、10 min、15 min、20 min、25 min）和提取時(shí)間（40 min、60 min、80 min、100 min、120 min）對(duì)白蠟多年臥孔菌多糖提取率的影響。

響應(yīng)面試驗(yàn)：根據(jù)單因素試驗(yàn)的結(jié)果，利用Box-Benhnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)[13-14]，選取料液比（A）、提取時(shí)間（B）和超聲時(shí)間（C）3個(gè)因素為自變量，分別以白蠟多年臥孔菌子實(shí)體多糖提取率（Y1）、菌絲體多糖提取率（Y2）為響應(yīng)值，每個(gè)因素設(shè)置3個(gè)水平，分別以-1、0、1進(jìn)行編碼，采用Box-Benhnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)3因素3水平的響應(yīng)面試驗(yàn)，試驗(yàn)因素與水平見表1。

表1 子實(shí)體和菌絲體多糖提取工藝優(yōu)化Box-Benhnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素及水平Table 1 Factors and levels of Box-Benhnken experiments design for extraction process optimization of fruiting bodies and mycelium polysaccharides

1.3.3 分析檢測

（1）白蠟多年臥孔菌子實(shí)體和菌絲體多糖體外抗氧化活性的測定

以同質(zhì)量濃度維生素C（vitamin C，VC）溶液為陽性對(duì)照，采用二倍稀釋法配制成質(zhì)量濃度分別為0.5 mg/mL、1.0 mg/mL、1.5 mg/mL、2.0 mg/mL、2.5 mg/mL的白蠟多年臥孔菌子實(shí)體和菌絲體多糖溶液。DPPH·清除率的測定參考文獻(xiàn)[15-17]；ABTS+·清除率的測定參考文獻(xiàn)[18]。

（2）白蠟多年臥孔菌多糖抗植物油脂氧化能力的測定

采用Schaal烘箱法[19]，分別稱取50 mg的白蠟多年臥孔菌子實(shí)體和菌絲體多糖，添加至100 mL菜籽油中，攪拌均勻后，將其放置于60 ℃烘箱中，每隔12 h對(duì)油脂樣品利用玻璃棒攪拌1次，分別在第0、2、4、6和8天測定過氧化值（peroxide value，POV），同時(shí)以未添加白蠟多年臥孔菌子實(shí)體和菌絲體多糖的植物油為對(duì)照組。參考國家標(biāo)準(zhǔn)GB 5009.227—2016《食品中過氧化值的測定》，測定其過氧化值（POV），以評(píng)價(jià)白蠟多年臥孔菌子實(shí)體和菌絲體多糖抗油脂氧化效果。

（3）多糖含量的測定

多糖含量的測定采用苯酚-硫酸法[20-22]，在波長490 nm處測定吸光度值[23]。以葡萄糖質(zhì)量濃度（x）為橫坐標(biāo)，吸光度值（y）為縱坐標(biāo)繪制葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線，得葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程y=0.059 7x+0.024 7，相關(guān)系數(shù)R2=0.999 1。按照葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程計(jì)算樣品中多糖含量。

多糖提取率的計(jì)算：將樣品溶液稀釋10倍后得到待測液。取100 μL待測液于5 mL的試管中。多糖提取率（Y）計(jì)算公式如下：

式中：C為粗多糖的含量，g/mL；V為白蠟多年臥孔菌溶液的體積，mL；N為稀釋的倍數(shù)；M為樣品的質(zhì)量，g。

1.3.4 數(shù)據(jù)處理

采用軟件Design Expert11.0進(jìn)行響應(yīng)面分析，使用軟件Origin 9.0制圖。

2 結(jié)果與分析

2.1 白蠟多年臥孔菌子實(shí)體和菌絲體多糖提取工藝優(yōu)化單因素試驗(yàn)

2.1.1 料液比的確定

料液比對(duì)白蠟多年臥孔菌子實(shí)體、菌絲體多糖提取率的影響見圖1。

圖1 料液比對(duì)子實(shí)體及菌絲體多糖提取率的影響Fig. 1 Effect of solid and liquid ratio on extraction rates of fruiting bodies and mycelium polysaccharides

由圖1可知，當(dāng)料液比為1∶20、1∶30、1∶40、1∶50、1∶60（g∶mL）時(shí)，子實(shí)體多糖提取率隨著液體比例的增加而逐漸提高；當(dāng)料液比為1∶60（g∶mL）時(shí)，子實(shí)體多糖提取率最高，為3.38%；當(dāng)料液比在1∶70（g∶mL）時(shí)，子實(shí)體多糖提取率下降。當(dāng)料液比為1∶20、1∶30（g∶mL）時(shí)，菌絲體多糖的提取率逐漸增加；當(dāng)料液比為1∶30（g∶mL）時(shí)，菌絲體多糖提取率最高，為5.25%，隨著液體占比繼續(xù)增加，菌絲體多糖提取率逐漸下降。原因可能是，溶劑越多，多糖更易溶出，從而多糖提取率提高，當(dāng)多糖溶解達(dá)到平衡時(shí)，再增加溶劑的量時(shí)，使得水溶性物質(zhì)析出量增加，從而導(dǎo)致多糖提取率相對(duì)減少[13，24]。因此，最佳提取子實(shí)體多糖和菌絲體多糖的料液比分別為1∶60（g∶mL）和1∶30（g∶mL）。

2.1.2 提取時(shí)間的確定

提取時(shí)間對(duì)白蠟多年臥孔菌子實(shí)體和菌絲體多糖提取率的影響見圖2。

圖2 提取時(shí)間對(duì)子實(shí)體及菌絲體多糖提取率的影響Fig. 2 Effect of extraction time on extraction rates of fruiting bodies and mycelium polysaccharides

由圖2可知，當(dāng)提取時(shí)間為40～80 min時(shí)，子實(shí)體多糖逐漸增加；提取時(shí)間為80 min時(shí)，子實(shí)體多糖提取率達(dá)到最大值3.42%；提取時(shí)間從80 min增加至120 min時(shí)，多糖提取率逐漸下降。隨著提取時(shí)間在40～100 min范圍內(nèi)的增加，菌絲體多糖提取率逐漸增加，提取時(shí)間為100 min時(shí)；菌絲體多糖提取率值最大，為5.65%；提取時(shí)間＞100 min之后，菌絲體多糖提取率下降。其原因可能是，在提取物與提取料液未達(dá)到擴(kuò)散平衡前，提取時(shí)間越長意味提取物與提取液相互作用時(shí)間越長，因此提取率越高[25]。但提取時(shí)間太長會(huì)導(dǎo)致多糖的提取率下降，可能是由于多糖在水中浸提時(shí)間過長，結(jié)構(gòu)破壞，導(dǎo)致多糖含量減少[26]。因此，最佳的子實(shí)體、菌絲體多糖提取時(shí)間分別為80 min、100 min。

2.1.3 超聲時(shí)間的確定

超聲時(shí)間對(duì)白蠟多年臥孔菌子實(shí)體和菌絲體多糖提取率的影響見圖3。

由圖3可知，隨著超聲時(shí)間在5～15 min范圍內(nèi)的增加，子實(shí)體多糖和菌絲體多糖的提取率均逐漸增加；超聲時(shí)間為15 min時(shí)，多糖提取率均達(dá)到最大值，子實(shí)體多糖提取率為2.56%，菌絲體多糖提取率為5.06%；當(dāng)提取時(shí)間＞15 min之后，子實(shí)體多糖和菌絲體多糖的提取率均逐漸下降。其原因可能為較短的超聲時(shí)間不能使多糖完全溶出。當(dāng)超過最佳超聲時(shí)間時(shí)，雜質(zhì)溶出會(huì)抑制多糖溶出，同時(shí)由于機(jī)械波和熱效應(yīng)作用會(huì)破壞多糖結(jié)構(gòu)，使多糖提取率降低[27-28]。因此，最佳子實(shí)體多糖與菌絲體多糖超聲時(shí)間均為15 min。

圖3 超聲時(shí)間對(duì)子實(shí)體及菌絲體多糖提取率的影響Fig. 3 Effect of ultrasonic time on extraction rates of fruiting bodies and mycelium polysaccharides

2.2 白蠟多年臥孔菌子實(shí)體和菌絲體多糖提取工藝優(yōu)化響應(yīng)面試驗(yàn)

根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果，以料液比（A）、提取時(shí)間（B）和超聲時(shí)間（C）為主要影響因素，以白蠟多年臥孔菌子實(shí)體（Y1）和菌絲體多糖提取率（Y2）為響應(yīng)值進(jìn)行3因素3水平的響應(yīng)面試驗(yàn)。子實(shí)體和菌絲體多糖提取工藝優(yōu)化Box-Benhnken響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)[29-30]結(jié)果見表2，方差分析結(jié)果見表3。

表2 子實(shí)體和菌絲體多糖提取工藝優(yōu)化Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 2 Design and results of Box-Behnken experiments design for extraction process optimization of fruiting bodies and mycelium polysaccharides

表3 回歸模型的方差分析Table 3 Variance analysis of regression model

利用統(tǒng)計(jì)軟件Design-Expert V8.0.6對(duì)試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析并進(jìn)行多元擬合，得到白蠟多年臥孔菌子實(shí)體（Y1）、菌絲體多糖提取率（Y2）的二次多項(xiàng)回歸方程：

由表3可知，子實(shí)體多糖提取工藝優(yōu)化模型回歸極顯著（P＜0.01），失擬項(xiàng)不顯著（P=0.055 0＞0.05），說明構(gòu)建的模型合理。模型決定系數(shù)R2為0.981 9、調(diào)整決定系數(shù)R2adj為0.958 7，在該模型中，一次項(xiàng)A、B、C對(duì)結(jié)果影響顯著（P＜0.05），二次項(xiàng)A2、B2、C2對(duì)結(jié)果影響極顯著（P＜0.01），其他項(xiàng)對(duì)結(jié)果影響不顯著（P＞0.05）。由F值可知，根據(jù)影響子實(shí)體多糖提取率的程度，對(duì)因素排序?yàn)椋禾崛r(shí)間（B）＞料液比（A）＞超聲時(shí)間（C）。

菌絲體多糖提取工藝優(yōu)化模型回歸極顯著（P＜0.01），失擬項(xiàng)不顯著（P=0.503 8＞0.05），說明構(gòu)建的模型合理。模型決定系數(shù)R2為0.993 7、調(diào)整決定系數(shù)R2adj為0.985 6，在該模型中，二次項(xiàng)A2、B2、C2對(duì)結(jié)果影響極顯著（P＜0.01），其他項(xiàng)對(duì)結(jié)果影響不顯著（P＞0.05）。根據(jù)F值可知，根據(jù)影響菌絲體多糖提取率的程度，對(duì)因素排序?yàn)椋撼晻r(shí)間（C）＞提取時(shí)間（B）＞料液比（A）。各因素交互作用對(duì)子實(shí)體和菌絲體多糖提取率影響的響應(yīng)面及等高線圖見圖4。

圖4 各因素交互作用對(duì)子實(shí)體（a）和菌絲體（b）多糖提取率影響的響應(yīng)面及等高線Fig. 4 Response surface plots and contour lines of effects of interaction between each factor on extraction rates of fruiting bodies (a) and mycelium (b) polysaccharides

由圖4（a）可知，各因素交互作用對(duì)子實(shí)體多糖提取率影響的響應(yīng)面曲線呈現(xiàn)出拋物線狀，說明所擬合的回歸模型有極大值點(diǎn)。料液比與超聲時(shí)間的交互作用對(duì)子實(shí)體多糖提取率影響極顯著（P＜0.01），而其余兩兩因素的交互作用影響較小，與方差分析的結(jié)果一致。子實(shí)體粗多糖的最佳提取工藝條件為料液比1∶61.146（g∶mL）、提取時(shí)間76.151 min和超聲時(shí)間16.277 min。在此條件下，白蠟多年臥孔菌子實(shí)體粗多糖提取率的預(yù)測值為4.388%。考慮到實(shí)際操作情況，將最佳提取工藝條件設(shè)為料液比1∶60（g∶mL）、提取時(shí)間76 min和超聲時(shí)間16 min。為驗(yàn)證回歸模型的有效性，采用優(yōu)化后的提取工藝條件進(jìn)行3次驗(yàn)證試驗(yàn)，子實(shí)體多糖提取率平均實(shí)際值為4.38%，和預(yù)測值接近，表明該模型能較準(zhǔn)確反應(yīng)各因素對(duì)子實(shí)體多糖提取率的影響。

由圖4（b）可知，各因素交互作用對(duì)菌絲體多糖提取率影響的響應(yīng)面曲線呈拋物線狀，說明所擬合的回歸模型有極大值。提取時(shí)間與超聲時(shí)間的交互作用對(duì)菌絲體多糖提取率的影響較大，而其余兩兩因素的交互作用影響較小，這與方差分析的結(jié)果一致。菌絲體粗多糖的最佳提取工藝條件為料液比1∶29.832（g∶mL）、提取時(shí)間100.888 min和超聲時(shí)間15.997 min。在此優(yōu)化條件下，白蠟多年臥孔菌菌絲體多糖提取率的預(yù)測值為6.325%?？紤]到實(shí)際操作情況，將最佳提取工藝條件設(shè)為料液比1∶30（g∶mL）、提取時(shí)間101 min和超聲時(shí)間16 min。在此條件下進(jìn)行3次平行驗(yàn)證試驗(yàn)，所得菌絲體多糖提取率平均實(shí)際值為6.33%，與預(yù)測值接近，表明該模型能較準(zhǔn)確反應(yīng)各因素對(duì)菌絲體多糖提取率的影響。

2.3 白蠟多年臥孔菌多糖體外抗氧化能力

子實(shí)體和菌絲體多糖對(duì)DPPH·（a）、ABTS+·（b）清除率的影響見圖5。

圖5 子實(shí)體和菌絲體多糖對(duì)DPPH·（a）、ABTS+·（b）的清除率Fig. 5 Scavenging rates of fruiting bodies and mycelium polysaccharides on DPPH·(a) and ABTS+·(b)

由圖5（a）可知，隨著多糖質(zhì)量濃度在0.5～2.0 mg/mL范圍內(nèi)的上升，子實(shí)體與菌絲體多糖對(duì)DPPH·的清除率逐漸增加，當(dāng)多糖質(zhì)量濃度達(dá)到2.0 mg/mL時(shí)，子實(shí)體和菌絲體多糖對(duì)DPPH·的清除率達(dá)到最大值，分別為45.67%和51.67%，當(dāng)多糖質(zhì)量濃度繼續(xù)增加，對(duì)DPPH·的清除率逐漸降低。子實(shí)體和菌絲體多糖對(duì)DPPH·有較高的抗氧化活性，前期的研究多糖的制備沒有經(jīng)過除蛋白處理，糖蛋白的形式相對(duì)于多糖表現(xiàn)出較好的清除DPPH·的能力[31]。

由圖5（b）可知，隨著多糖質(zhì)量濃度在0.5～2.0 mg/mL范圍內(nèi)增加，子實(shí)體與菌絲體多糖對(duì)ABTS+·清除作用逐漸增強(qiáng)，當(dāng)多糖質(zhì)量濃度達(dá)到2.0 mg/mL時(shí)，子實(shí)體和菌絲體多糖的清除率達(dá)到最大值，分別為72.89%和75.83%，當(dāng)多糖質(zhì)量濃度繼續(xù)增加，對(duì)ABTS+·的清除率逐漸降低。

2.4 白蠟多年臥孔菌多糖的油脂抗氧化能力

將白蠟多年臥孔菌多糖添加至植物菜籽油中，通過加速氧化方法研究隨著時(shí)間的延長白蠟多年臥孔菌多糖對(duì)于植物油抗氧化的效果，結(jié)果見圖6。由圖6可知，隨著時(shí)間的延長，陽性對(duì)照組的油脂POV幾乎隨著時(shí)間變化而成線性增加，而白蠟多年臥孔菌子實(shí)體和菌絲體多糖組POV僅僅隨著時(shí)間的延長緩慢增加。加熱至第8天，白蠟多年臥孔菌菌絲體多糖組POV僅為對(duì)照組的49%，與初始值相比較，POV增加了142%，而對(duì)照組POV增加量為211%。菌絲體的抗油脂氧化能力略大于子實(shí)體的抗油脂氧化能力，可能是因?yàn)榫z體的多糖純度較高。說明了提取的白蠟多年臥孔菌多糖具有明顯的抗油脂氧化效果，可嘗試用于開發(fā)天然的植物油脂抗氧化劑，但是白蠟多年臥孔菌多糖的得率較低，且在植物油中的溶解度比較小，尚不能大規(guī)模應(yīng)用于工業(yè)生產(chǎn)當(dāng)中。

圖6 子實(shí)體和菌絲體多糖抗油脂氧化能力Fig. 6 Anti-lipid oxidation ability of fruiting bodies and mycelium polysaccharides

3 結(jié)論與討論

白蠟多年臥孔菌子實(shí)體多糖最佳提取工藝條件為料液比1∶60（g∶mL）、提取時(shí)間76 min和超聲時(shí)間16 min。在此優(yōu)化條件下，子實(shí)體多糖提取率為4.39%。菌絲體多糖最佳提取工藝條件為料液比1∶30（g∶mL）、提取時(shí)間101 min和超聲時(shí)間16min，在此優(yōu)化條件下，菌絲體多糖提取率為6.33%?？寡趸囼?yàn)結(jié)果表明，當(dāng)多糖溶液的質(zhì)量濃度為2.0 mg/mL時(shí)，子實(shí)體多糖對(duì)DPPH·、ABTS+·的清除率分別為45.67%、72.89%；菌絲體多糖對(duì)DPPH·、ABTS+的清除率分別為51.67%、75.83%。子實(shí)體、菌絲體多糖均對(duì)ABTS+·有較好的清除能力，對(duì)DPPH·的清除能力次之。在白蠟多年臥孔菌多糖抗油脂氧化能力的實(shí)驗(yàn)中，白蠟多年臥孔菌菌絲體、子實(shí)體多糖能顯著降低植物油的POV，表明白蠟多年臥孔菌多糖具有一定的抗油脂氧化效果。本研究可為白蠟多年臥孔菌多糖作為天然的抗氧化劑的相關(guān)研究提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。后續(xù)可從多糖及其蛋白的結(jié)合機(jī)制上解析抗氧化活性的方向進(jìn)行研究。