叢雯雯, 馮曄囡 , 王帥星, 胡國民, 肖 晗, 司軍強 ,4△, 張幼怡△
(石河子大學醫(yī)學院 1新疆地方與民族高發(fā)病教育部重點實驗室,2生理學教研室,新疆石河子832000;3北京大學第三醫(yī)院心內科,血管醫(yī)學研究所,國家衛(wèi)生健康委心血管分子生物學與調節(jié)肽重點實驗室,分子心血管學教育部重點實驗室,心血管受體研究北京市重點實驗室,北京100191;4華中科技大學同濟醫(yī)學院基礎醫(yī)學教研室,湖北武漢430030)
心肌纖維化是冠心病、高血壓、心肌病等多種心血管疾病發(fā)生心力衰竭、惡性心律失常甚至心源性猝死等嚴重并發(fā)癥的重要病理改變。心臟成纖維細胞(cardiac fibroblasts,CFs)是參與心肌纖維化的主要細胞類型。在心肌損傷等刺激時,CFs 遷移、增殖并轉化為肌成纖維細胞,分泌大量細胞外基質(extracellular matrix,ECM)蛋白,最終導致室壁順應性降低,心臟舒張功能障礙[1-3]。因此,深入研究CFs 轉分化的機制及其干預靶點具有重要意義。本課題組前期研究已經證實轉錄因子配對盒因子6(paired box 6,PAX6)在纖維化心臟組織中表達下調,且抑制CFs 中 PAX6 的表達能夠引起 CFs 的轉分化[4]。這一結果提示,內源性PAX6 的表達對于維持CFs 的表型至關重要。然而,增加PAX6的表達是否能夠作為有效的干預方式抑制病理刺激下CFs轉分化仍不清楚。鑒于此,本研究擬通過腺病毒載體過表達PAX6的方式增加CFs 中PAX6 的表達,利用血管緊張素II(angiotensin II,Ang II)誘導CFs的轉分化,觀察PAX6對Ang II誘導的CFs轉分化的作用并探究其機制。
8 周齡雄性C57BL/6 小鼠購自北京大學醫(yī)學部實驗動物中心[許可證號為SCXK(京)2016-0010],用于分離成年小鼠CFs。動物飼養(yǎng)和使用均完全遵照北京大學醫(yī)學部實驗相關倫理標準,批準號為LA2016-018。
過表達PAX6的腺病毒(Ad-PAX6)和對照腺病毒(Ad-GFP)購自上海漢恒生物科技有限公司;Ang II購自Sigma-Aldrich;膠原酶II 和DMEM 培養(yǎng)液購自Gibco;胎牛血清購自Ausbian;逆轉錄試劑盒購自Promega;TRIzol、Hoechst 33342 和 Alexa Fluor?568 偶聯的熒光II抗購自Invitrogen;抗PAX6抗體、抗α-平滑肌肌動蛋白(α-smooth muscle actin,α-SMA)抗體、抗轉化生長因子β1(transforming growth factor β1,TGFβ1)抗體和抗纖連蛋白(fibronectin,FN)抗體購自Abcam;抗 I 型膠原(collagen type I,Col I)抗體購自MD Bioproducts;抗 GAPDH 抗體購自 Cell Signaling Technology;山羊抗兔IgG(H+L)II抗購自中杉金橋公司。
3.1 成年小鼠CFs 的分離與培養(yǎng) 取8 周齡雄性C57BL/6小鼠,斷頸后用乙醇消毒,立即取出心臟,修剪心耳和主動脈。去除血塊后剪碎,加入酶液(0.1%膠原酶II)置于恒溫磁力攪拌器中,整個消化過程在37℃恒溫下進行。8 min 后吸取上清液,加入等體積含10%胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)液,混合均勻。重復8~10 次,直至心臟消化完全。細胞懸液以室溫1 000 r/min 離心 5 min,用 DMEM 培養(yǎng)液再洗滌 1 次,繼而用DMEM 培養(yǎng)液將細胞重懸,種于10 cm 的細胞培養(yǎng)皿中(3~4 只心臟),于37℃、5%CO2培養(yǎng)。差速貼壁2 h 后,去除未貼壁細胞,剩余已貼壁的細胞主要為成纖維細胞。通過免疫熒光標染波形蛋白(vimentin)對分離培養(yǎng)的 CFs 進行鑒定,vimentin 陽性的細胞比率大于92%。24 h 后更換新鮮的培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng),此時培養(yǎng)皿中貼壁的CFs 為P0。傳代至第2代(P2)時進行病毒感染。
3.2 實驗分組 實驗分為Ad-GFP+Ctrl組(感染Ad-GFP)、Ad-GFP+Ang II 組(感染Ad-GFP 24 h 后,加入10-6mol/L Ang II 繼續(xù)處理 24 h 或 48 h)、Ad-PAX6+Ctrl 組(感染 Ad-PAX6)和 Ad-PAX6+Ang II 組(感染Ad-PAX6 24 h 后,加入 10-6mol/L Ang II 繼續(xù)處理 24 h或48 h)。
3.3 病毒感染 待P2 的CFs 融合度達到50%~60%時,更換為無血清培養(yǎng)液,分別加入Ad-GFP 和Ad-PAX6,以感染復數(multiplicity of infection,MOI)為2 感染6~8 h,再更換為完全培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)至24 h和48 h。采用倒置熒光顯微鏡觀察細胞綠色熒光強度;采用qPCR和Western blot檢測PAX6表達情況。
3.4 Western blot 收集各組細胞,用BCA法檢測蛋白濃度,取等質量蛋白進行SDS-PAGE,轉移蛋白至PVDF 膜,用TBST 配制的5%脫脂奶粉封閉1 h,分別加入1∶2 000 稀釋的兔抗PAX6、Col I、FN、α-SMA 和TGFβ1 抗體,4℃搖床孵育過夜。次日TBST 洗膜后加入辣根過氧化物酶標記的II 抗,室溫孵育1 h,使用GeneSys 機器ECL 發(fā)光成像。用ImageJ 圖像分析軟件對每個條帶的灰度值進行定量分析。
3.5 固定細胞免疫熒光技術 用4%多聚甲醛室溫固定細胞 20 min,PBS 洗 3 次后,Triton X-100 室溫破膜20 min,再用PBS洗3次;加入1%牛血清白蛋白室溫封閉30 min;加入Ⅰ抗于4℃孵育過夜;次日PBS洗 3 次后,加入 Alexa Fluor?568 偶聯的熒光 II 抗 4℃孵育 1 h,PBS 洗 3 次;Hoechst 33342 染細胞核 6 min。之后利用高內涵顯微鏡觀察制備好的樣品。利用高內涵顯微鏡Array Scan 系統采集各通道熒光,根據細胞核計數并圈畫熒光統計面積。結果表示為平均熒光強度,即為單個細胞單位面積的熒光強度。
3.6 qPCR 用Trizol 試劑提取細胞樣品總RNA,逆轉錄后進行qPCR 檢測。以GAPDH 為內參照,通過2-ΔΔCt法比較目的基因的表達差異。引物由北京睿博興科生物技術有限公司合成,序列見表1。
表1 qPCR引物序列Table 1.Sequences of the primers for qPCR
采用Prism 8.0 軟件進行統計分析。計量資料以均數±標準誤(mean±SEM)表示。多組間均數比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA)或雙因素方差分析(two-way ANOVA),多重比較采用 Tukey 檢驗。以P<0.05為差異有統計學意義。
過表達小鼠PAX6 腺病毒的結構示意圖見圖1A。感染48 h 后,倒置熒光顯微鏡下觀察,在感染Ad-GFP 和Ad-PAX6 的大部分細胞內均可見綠色熒光,且兩組細胞的形態(tài)無明顯異常,見圖1B。qPCR和Western blot 檢測結果顯示,與未感染的對照組和感染對照病毒的Ad-GFP 組相比,感染過表達PAX6腺病毒的 Ad-PAX6 組 CFs 中 PAX6 的 mRNA 和蛋白表達水平均顯著升高(P<0.01),見圖1C、D。
Western blot 結果顯示,在感染Ad-GFP 的CFs中,Ang II 處理能夠增加肌成纖維細胞標志物α-SMA的表達(P<0.01);而在感染Ad-PAX6的CFs中,Ang II 處理組與對照組相比,α-SMA 的表達無顯著變化(P>0.05);與 Ad-GFP+Ang II 組相比,Ad-PAX6+Ang II 組α-SMA 表達顯著降低(P<0.01),見圖2A。細胞免疫熒光結果同樣顯示,對感染Ad-GFP的CFs 給予Ang II 刺激,α-SMA 的平均熒光強度顯著增加(P<0.01);而對感染 Ad-PAX6 的 CFs 給予Ang II刺激,α-SMA 的平均熒光強度無顯著變化(P>0.05);與 Ad-GFP+Ang II 組相比,Ad-PAX6+Ang II組α-SMA 的平均熒光強度顯著降低(P<0.05),見圖2B。
Western blot 結果顯示,在感染對照病毒Ad-GFP的CFs 中,Ang II 處理能夠顯著增加ECM 蛋白Col I(P<0.01)和 FN(P<0.05)的表達;而在感染 Ad-PAX6 的CFs 中,Ang II 處理組與對照組相比,Col I和FN 的表達無顯著變化;Ad-PAX6+Ang II 組細胞中Col I(P<0.01)和FN(P<0.05)的表達較Ad-GFP+Ang II 組顯著降低,見圖3A、B。細胞免疫熒光結果同樣顯示,對感染Ad-GFP 的CFs 給予Ang II 刺激,Col I和FN的平均熒光強度均顯著增加(P<0.01);而對感染 Ad-PAX6 的 CFs 給予 Ang II 刺激,Col I 和 FN平均熒光強度無顯著變化(P>0.05);Ad-PAX6+Ang II組 Col I 和 FN 平均熒光強度較 Ad-GFP+Ang II 組顯著降低(P<0.01),見圖3C、D。
Figure 1.Verification of PAX6 overexpression in CFs.A:the structure schematic of the adenovirus engineered to overexpress mouse PAX6;B:fluorescence observation for the adenovirus infection efficiency after 48 h(scale bar=200 μm);C:the mRNA expression of PAX6 detected by qPCR;D:the protein expression of PAX6 detected by Western blot.Mean±SEM. n=5~6.**P<0.01 vs control(Ctrl)group and Ad-GFP group.圖1 腺病毒Ad-PAX6轉染CFs后PAX6過表達效果驗證
Figure 2.Overexpression of PAX6 inhibited Ang II-induced α-SMA expression in CFs.A:the protein level of α-SMA detected by Western blot;B:representative images of immunofluorescence staining(scale bar =150 μm)and average fluorescence intensity of α-SMA.Mean±SEM. n=6.**P<0.01 vs Ad-GFP+Ctrl group;#P<0.05,##P<0.01 vs Ad-GFP+Ang II group.圖2 過表達PAX6抑制CFs中Ang II誘導的α-SMA表達
qPCR和Western blot結果顯示,在感染對照病毒Ad-GFP 后給予 Ang II 刺激,CFs 中 TGFβ1 的 mRNA(P<0.01)及蛋白(P<0.05)水平顯著升高;而在感染Ad-PAX6 后給予 Ang II 刺激,TGFβ1 的 mRNA 及蛋白水平無顯著變化(P>0.05);同時,Ad-PAX6+Ang II組TGFβ1 的mRNA(P<0.01)及蛋白(P<0.05)水平較Ad-GFP+Ang II組顯著降低,見圖4。
Figure 3 Overexpression of PAX6 inhibited Ang II-induced collagen type I(Col I)and fibronectin(FN)synthesis in CFs.A,B:the protein expression of Col I and FN detected by Western blot;C,D:representative images of immunofluorescence staining(scale bar =150 μm)and average fluorescence intensity of Col I and FN.Mean±SEM. n=6.*P<0.05,**P<0.01 vs Ad-GFP+Ctrl group;#P<0.05,##P<0.01 vs Ad-GFP+Ang II group.圖3 過表達PAX6抑制CFs中Ang II誘導的Ⅰ型膠原和纖連蛋白的合成
本研究結果表明,過表達PAX6 可以抑制Ang II誘導的CFs 轉分化及ECM 蛋白的表達與分泌,這一作用可能是通過抑制TGFβ1 表達而實現的(圖5)。因此本研究結果提示,增加PAX6表達可以發(fā)揮抗心肌纖維化的作用。
PAX6 是配對盒因子家族中的一員,在視網膜形成及其他眼組織發(fā)育與疾病中發(fā)揮關鍵的轉錄調節(jié)作用[5]。除此之外,PAX6 在腦神經系統、胰腺及多種腫瘤中均已有深入研究。PAX6 基因突變將導致前腦、鼻結構以及胰島的發(fā)育與形態(tài)異常[6-7]。PAX6啟動子區(qū)的甲基化與膀胱癌、非小細胞肺癌等癌癥的復發(fā)與低生存率正相關[8-9]。然而目前PAX6 在心臟疾病中的相關研究較少,有研究利用轉錄因子結合位點分析和蛋白質/DNA 陣列分析的方法,發(fā)現PAX6 的DNA 結合活性在病理性心肌肥厚中顯著高于生理性心肌肥厚[10],提示PAX6可能參與調控病理性心肌肥厚過程。我們之前的研究表明抑制內源性PAX6的表達能夠促進CFs轉分化[4]。但是一些研究表明,過高或過低的PAX6表達水平均可產生病理效應。例如,視網膜母細胞瘤細胞中PAX6表達水平的增加和降低均抑制腫瘤細胞的凋亡,促進腫瘤細胞的增殖[11-12]。因此有必要進一步明確過表達PAX6對心臟CFs 轉分化的調控作用。在本研究中,我們利用腺病毒載體過表達PAX6以增加CFs中PAX6的表達,發(fā)現過表達PAX6 并不引起正常CFs 的轉分化,而是抑制病理刺激(Ang II)引起的CFs 轉分化。因此,我們的研究表明維持CFs 中PAX6 的高表達對抑制心肌纖維化具有重要意義。
Figure 4.Overexpression of PAX6 inhibited Ang II-induced TGFβ1 expression in CFs.A:the mRNA expression of TGFβ1 detected by qPCR;B:the protein expression of TGFβ1 detected by Western blot.Mean±SEM. n=5~6. *P<0.05,**P<0.01 vs Ad-GFP+Ctrl group;#P<0.05,##P<0.01 vs Ad-GFP+Ang II group.圖4 過表達PAX6抑制Ang II誘導的CFs中TGFβ1的表達
Figure 5.A schematic model describing how paired box 6(PAX6)inhibits angiotensin II(Ang II)-induced cardiac fibroblast(CF)transdifferentiation.Transforming growth factor β1(TGFβ1)induces CF transdifferentiation and extracellular matrix synthesis.Our study indicates that PAX6 inhibits Ang II-induced CF transdifferentiation by inhibiting TGFβ1 expression.圖5 PAX6抑制Ang II誘導CFs轉分化的模式圖
本研究利用Ang II 誘導CFs 轉分化,構建CFs 的轉分化模型,闡明了PAX6 對Ang II 誘導的CFs 轉分化發(fā)揮抑制作用。但值得注意的是,在肝星狀細胞中的一項最新研究表明,PAX6對肝臟纖維化起促進作用[11]。肝星狀細胞的激活是肝臟纖維化的關鍵環(huán)節(jié)。該研究發(fā)現,PAX6 促進GLI1的轉錄表達,介導肝星狀細胞的激活與增殖[13]。對于PAX6 在心臟和肝臟中功能的差異,我們認為可能是由于PAX6對多種病理過程的調控具有組織特異性。例如,在間腦和大腦皮層中,轉錄因子PAX6以相反的方向轉錄調控細胞增殖與分化的平衡。而造成這一差異的原因是大腦皮層存在另一轉錄因子Foxg1,敲除大腦皮層中Foxg1的表達則可逆轉PAX6 對腦皮層細胞增殖與分化的調控作用[14]。另外,在不同的腫瘤組織中,PAX6也會發(fā)揮不同的促癌或抑癌作用[15-17]。由此我們推斷,由于心臟和肝臟中存在不同轉錄因子與PAX6 相互作用,共同影響纖維化的進程,因而導致PAX6在肝臟中發(fā)揮促纖維化作用,而在心臟中則表現為抗纖維化作用。
TGFβ1 是調控心肌纖維化的關鍵細胞因子。TGFβ1 促進CFs 轉分化為肌成纖維細胞,其下游信號分子Smad3 進入細胞核發(fā)揮轉錄調控作用,介導Col I、Col III、FN 等多種 ECM 蛋白的轉錄表達[18]。我們前期研究和其他研究表明,Ang II 可以通過轉錄因子 AP-1 與 HNF-4α 直接促進 TGFβ1 的表達[19-20],還能夠通過調控microRNA 間接促進TGFβ1 的表達[21]。我們之前的研究發(fā)現 Ang II 可下調 CFs 中PAX6 的表達水平[4]。而在本研究中,通過外源性增強 PAX6 的表達能夠抑制 Ang II 誘導的 TGFβ1 的mRNA 和蛋白表達。因此,本研究提出了PAX6 過表達抑制心臟CFs 轉分化的機制可能是通過抑制AngII 引起的TGFβ1 表達增加。鑒于PAX6 能夠與Tgfb1內含子特定區(qū)域結合并發(fā)揮轉錄抑制作用[2],過表達PAX6 抑制TGFβ1 表達這一干預方式可能不僅局限于Ang II 模型,而是適用于所有TGFβ1 表達升高的心肌纖維化環(huán)境,為未來干預心肌纖維化提供了新思路。
綜上所述,本研究進一步證實PAX6對心肌纖維化起保護作用。外源性增加PAX6 的表達能夠作為有效的干預方式抑制TGFβ1 的轉錄表達,進而抑制Ang II誘導的CFs轉分化及ECM蛋白的表達與分泌。本研究為心肌纖維化的預防與治療提供了新的思路與實驗證據。