夏俊芳,鄭素慧,翟少華,張志東,蘇金花,艾賽提,武 運

(1.新疆農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與藥學(xué)學(xué)院,新疆烏魯木齊 830052;2.新疆農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品貯藏加工研究所,新疆烏魯木齊 830091;3.新疆農(nóng)業(yè)大學(xué)動物醫(yī)學(xué)院,新疆烏魯木齊 830052;4.新疆農(nóng)業(yè)科學(xué)院微生物應(yīng)用研究所,新疆烏魯木齊 830091)

葡萄灰霉病是危害葡萄果實的重要病害之一[1],其病原菌是灰葡萄孢(Botrytiscinerea,簡稱B.cinerea),無論葡萄處于生長期、開花期還是結(jié)果期,均可被該B.cinerea侵染和破壞,B.cinerea是一種壞死性病原體,能夠在感染期間分泌多種胞外酶和代謝產(chǎn)物殺死宿主細胞[2],該病原菌也能耐受低溫,保持較高的萌發(fā)率[3],即使在-0.5 ℃條件下,也可以迅速傳播并擴散至整串葡萄漿果,導(dǎo)致整個漿果的最終腐敗,在多個主要葡萄栽培種植地區(qū),灰霉病的危害非常嚴重[4-5],嚴重影響著葡萄與葡萄酒的生產(chǎn)[6-7]。目前對葡萄灰霉病的防治主要以化學(xué)防治為主,但長期大量使用化學(xué)殺菌劑,使得病原菌抗藥性增強并產(chǎn)生環(huán)境污染及農(nóng)藥殘留等問題[8-9]。葡萄酒是葡萄的發(fā)酵產(chǎn)品,葡萄酒的質(zhì)量主要取決于原料的質(zhì)量,而殘留在葡萄中的農(nóng)藥會隨著發(fā)酵過程遷移至葡萄酒中[10]。

消費者對食品中的農(nóng)藥殘留和環(huán)境安全日益關(guān)注,對開發(fā)病害控制的替代方法的需求也在不斷增加[11-12],生物防治是化學(xué)殺菌劑的一種潛在替代方法,目前已篩選出數(shù)種對葡萄B.cinerea具有拮抗作用的微生物,哈茨木霉(Trichodermaharzianum)[13-14]、綠色木霉(Trichodermaviride)[14]、長枝木霉(Trichodermalongibrachiatum)[14]、康氏木霉(Trichodermakoningii)[14]、假絲酵母(Candidaguilliermondii)A42[15]、假絲酵母(Candidasake)CPA-1[16]、假絲酵母(Candidadiversa)SW-W8[17]、畢赤酵母(Pichiapastoris)G5[18]、假單胞桿菌(Pseudomonas)BHG[19]、假單胞桿菌(Pseudomonas)BTZ[19]、枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis)BS2[20]、枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis)KS1[21]、枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis)Em7[22]、枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis)QST713[23]、枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis)B12[24]、解淀粉芽孢桿菌(Bacillusamyloquefaciens)D747[23]、解淀粉芽孢桿菌(Bacillusamyloquefaciens)B15[25]、洋蔥霍爾德氏菌(Burkholderiacontaminans)B-1[26]等。這些拮抗菌株是生物防治措施中的關(guān)鍵因素,但這些對葡萄灰霉病具有良好抑菌效果的生防菌株主要篩選于鮮食葡萄內(nèi)生菌或鮮食葡萄園根際微生物,而對釀酒葡萄及釀酒葡萄園根際微生物的研究較少。

天山北麓葡萄酒產(chǎn)區(qū)位于北緯43°～45°,屬中溫帶大陸性干旱氣候,土壤為多層結(jié)構(gòu)的沙壤土,特有的氣候、地域特色不僅賦予釀酒葡萄濃郁的香氣和極高的甜度,更有極具開發(fā)潛質(zhì)的地域特色微生物資源[27]。本研究將從新疆北麓葡萄酒產(chǎn)區(qū)釀酒葡萄根際土壤中分離出具有較強拮抗B.cinerea活性的細菌菌株,通過形態(tài)學(xué)、生理生化特性、16S rDNA基因序列確定拮抗菌的分類地位,并評價拮抗菌對B.cinerea的抑菌作用,以期為釀酒葡萄灰霉病的生物防治提供新的微生物資源。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

釀酒葡萄根際土樣 新疆天山北麓葡萄酒產(chǎn)區(qū)部分釀酒葡萄園植株根部大田土樣,采樣后24 h內(nèi)送至實驗室用于拮抗菌的分離篩選;灰葡萄孢(Botrytiscinerea,B.cinerea) 新疆農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品貯藏加工研究所;馬鈴薯葡萄糖瓊脂(PDA)培養(yǎng)基、營養(yǎng)瓊脂(NA)培養(yǎng)基、腦心浸液肉湯(BHI)培養(yǎng)基、生化試劑 北京陸橋生物技術(shù)有限公司;酵母浸出粉胨葡萄糖培養(yǎng)基(YPD)液體培養(yǎng)基(葡萄糖20 g/L、酵母膏10 g/L、蛋白胨20 g/L) 北京奧博星責(zé)任有限公司;牛津杯(內(nèi)徑6 mm,外徑8 mm,高10 mm) 上海兢翀電子科技發(fā)展有限公司;其他試劑 均為國產(chǎn)分析純。

LDZX-40SCI型高壓滅菌鍋 上海早安醫(yī)療器械廠產(chǎn)品;HR40-IIAI生物安全柜 青島海爾特種電器有限公司;THZ-98AB恒溫培養(yǎng)振蕩箱 上海一恒科學(xué)儀器有限公司;LRH-280型生化培養(yǎng)箱 上海森信試驗儀器有限公司;HSY2-SP電熱恒溫水浴鍋 北京市永光明醫(yī)療儀器廠;Quanta FEG250場發(fā)射環(huán)境掃描電鏡 美國FEI公司;722可見分光光度計 上海欣茂儀器有限公司;FE20 PLUS pH計 上海梅特勒托利多儀器有限公司;DJ100-3型電子分析天平 上海恒平科學(xué)儀器有限公司;血球計數(shù)板 上海求精生化試劑儀器有限公司。

1.2 實驗方法

1.2.1 拮抗菌的篩選

1.2.1.1B.cinerea培養(yǎng)及孢子懸浮液制備 將保存的B.cinerea進行活化,25 ℃下在PDA斜面培養(yǎng)基上培養(yǎng)5～7 d,用接種針在斜面上刮取適量孢子,放入裝有玻璃珠的250 mL三角瓶中,加入無菌生理鹽水,振蕩搖勻,用定性濾紙過濾,去掉菌絲獲得孢子懸浮液,用血球計數(shù)板計數(shù)將孢子懸浮液的濃度調(diào)整為2.33×109個/mL,4 ℃保存、待用。

1.2.1.2 拮抗菌的分離純化 采集新疆天山北麓三個釀酒葡萄園(天山冰湖葡萄酒莊葡萄園、中信國安瑪納斯葡萄酒廠葡萄園、新疆伊珠葡萄酒廠葡萄園)植株根部大田土樣,每處地方選擇3個采集點,除去根際表層5 cm左右的浮土,取5～10 cm處的土壤,帶回實驗室風(fēng)干、過篩、混勻,每份土樣稱取10 g,溶解于90 mL無菌水中,加入小玻璃珠在150 r/min的搖床上振蕩30 min,制成6個(10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6)稀釋梯度的土壤懸浮液,均勻涂布在營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基上,37 ℃培養(yǎng)2～3 d。挑取形態(tài)不同的菌落劃線培養(yǎng)至單菌落,純化保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2.1.3 拮抗菌發(fā)酵液制備 分離純化的形態(tài)不同的細菌菌落接種于10 mL的BHI液體培養(yǎng)基,37 ℃、120 r/min條件下,培養(yǎng)48 h后,通過平板稀釋法確定梯度菌懸液結(jié)果分別為3.6×109～3.6×102CFU/mL,于4 ℃冰箱中貯存?zhèn)溆谩?/p>

1.2.1.4 拮抗菌的篩選 采用牛津杯法進行抑菌效價,具體操作方法為:將PDA培養(yǎng)基15 mL倒入直徑9 cm的平皿中,將培養(yǎng)基凝固后,吸取200 μL 2.33×109個/mLB.cinerea懸浮液,均勻地涂布于PDA培養(yǎng)基上,再將牛津杯置于平皿中央,往杯中加入處理后樣品,對照樣品或無菌水200 μL,嚴格按照無菌操作進行。接種后的培養(yǎng)皿置25 ℃培養(yǎng)箱連續(xù)培養(yǎng)5 d,采用十字交叉法測量牛津杯周圍的抑菌圈直徑,每個處理重復(fù)3次,抑菌效價最高的拮抗菌分離純化、保存、備用。根據(jù)公式計算拮抗菌發(fā)酵液的抑菌效價:

抑菌直徑(mm)=抑菌圈直徑(mm)-牛津杯直徑(mm)

抑菌效價(mm/mL)=抑菌直徑(mm)/發(fā)酵液體積(μL)×1000。

1.2.2 拮抗菌株的鑒定

1.2.2.1 拮抗菌株形態(tài)觀察 經(jīng)純化的拮抗菌株劃線接種在營養(yǎng)瓊脂平板培養(yǎng)基上,于37 ℃恒溫箱中培養(yǎng)48 h后,觀察菌落特征,革蘭氏染色、芽孢染色后光學(xué)顯微鏡觀察。

1.2.2.2 菌株生理生化鑒定 按照《伯杰細菌鑒定手冊》[28]和《常見細菌系統(tǒng)鑒定手冊》[29]對拮抗菌進行相關(guān)生理生化指標的測定。VP測定、MR測定、動力培養(yǎng)、明膠反應(yīng)、硝酸鹽還原反應(yīng)、西蒙式檸檬酸鹽、枸櫞酸鹽、丙二酸鹽的利用試驗、葡萄糖、阿拉伯糖、蔗糖、甘露醇、木糖、乳糖、棉子糖發(fā)酵試驗、淀粉水解反應(yīng)、酪素、溶菌酶試驗。

1.2.2.3 16S rDNA分子生物學(xué)鑒定 利用細菌16S rDNA,對篩選到的菌株進行分子生物學(xué)鑒定,這部分測序試驗由鼎國昌盛生物科技有限公司完成。細菌16S rDNA通用引物27F:5 ′-AGAGTTTGATCC TGGCTCAG-3′;1492R:5′-CGGTTACCTTGTTACG ACTTC-3′,采用單菌落為模板進行PCR擴增。PCR反應(yīng)體系總體積50 μL:預(yù)混液25 μL、正反向引物(10 μmol/L)各1 μL、菌樣模板1 μL、ddH2O 22 μL。PCR擴增程序為,94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性30 s,54 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min 30 s,35個循環(huán),72 ℃ 10 min。擴增后,產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖電泳分離后將亮度好、純度高的特異性條帶(1500 bp左右)的PCR產(chǎn)物用鼎國昌盛(NEP025-1)試劑盒切膠回收純化,將對應(yīng)目的片段置于-20 ℃下保存雙向引物測序,基因測序結(jié)果在NCBI通過BLAST進行序列比對分析,采用MEGA 7.0.14軟件,構(gòu)建菌株的系統(tǒng)發(fā)育樹。

1.2.3 拮抗菌生長特性分析

1.2.3.1 拮抗菌生長曲線繪制 參考文獻[30],吸取3.6×108CFU/mL的拮抗菌菌液1 mL于100 mL BHI培養(yǎng)基中,37 ℃培養(yǎng),搖床轉(zhuǎn)速120 r/min,每4 h開始用分光光度計在600 nm波長下測OD值,將測定的光密度值與其對應(yīng)的培養(yǎng)時間作圖,以不接菌培養(yǎng)液為空白對照。

1.2.3.2 拮抗菌最適培養(yǎng)溫度測定 參考文獻[30],吸取3.6×108CFU/mL的拮抗菌菌液1 mL于100 mL BHI培養(yǎng)基中,分別于25、28、30、37、40、45 ℃,120 r/min搖床培養(yǎng)至穩(wěn)定期,用分光光度計在600 nm波長下測OD值,以不接菌培養(yǎng)液為空白對照。

1.2.3.3 拮抗菌最適pH測定 參考文獻[30],用1% NaOH或1% HCl,將BHI液體培養(yǎng)基pH分別調(diào)節(jié)為3.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0、11.0。吸取3.6×108CFU/mL的拮抗菌菌液1 mL于上述不同pH的100 mL BHI培養(yǎng)基中,37 ℃、120 r/min培養(yǎng)至穩(wěn)定期,用分光光度計在600 nm波長下測OD值,以不接菌培養(yǎng)液為空白對照。

1.2.4B.cinerea拮抗菌抑菌作用初探

1.2.4.1 拮抗菌對B.cinerea抑菌作用隨時間變化趨勢 采用1.2.1.4牛津杯法以PDA平板中接種200 μLB.Cinerea孢子懸液,涂布均勻后,接種100 μL 3.6×108CFU/mL菌懸液于牛津杯中,以無菌水蒸餾水作對照,連續(xù)120 h培養(yǎng)觀察拮抗菌對B.cinerea的抑菌效果。

1.2.4.2 拮抗菌對B.cinereaMIC和MBC的測定 將制備的2.33×109個/mLB.cinerea孢子懸液吸取0.1 mL,分別加入到10 mL不同濃度的拮抗菌發(fā)酵液中搖勻,于600 nm波長下用分光光度計測定稀釋液初始吸光值,然后在水浴振蕩器中進行振蕩培養(yǎng),振蕩頻率50 r/min,于37 ℃培養(yǎng)48 h,取出后再在600 nm分光光度計下讀數(shù),吸光值與初始吸光值相同的試管濃度為稀釋液的最低抑菌濃度MIC。把測定完的MIC試管繼續(xù)在相同條件下培養(yǎng)12 h時間,再在600 nm波長下測定吸光值,吸光值與初始吸光值仍相同的試管濃度為MBC。

1.2.4.3 不同濃度的拮抗菌株對B.cinerea抑制作用 采用1.2.1.4法測定抑菌效果,以PDA平板中接種200 μLB.Cinerea懸液,涂布均勻后備用,分別取100 μL各濃度菌懸液稀釋液(3.6×105～3.6×109CFU/mL)注入牛津杯中,25 ℃培養(yǎng)120 h,觀察抑菌效果并計算抑菌效價。

1.2.4.4 掃描電鏡觀察拮抗菌株對B.cinerea菌絲生長的影響 取1 mL 3.6×108CFU/mL拮抗菌懸液加入到冷卻到45 ℃熔化的25 mL PDA培養(yǎng)基中,混勻后制平板,以不加拮抗測試液的PDA培養(yǎng)基為對照。同步接種B.cinerea菌絲塊,25 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)120 h,挑取拮抗菌處理及對照平板上的邊緣菌絲,將菌絲滴加于粘有碳導(dǎo)電膠帶的樣品臺上,自然晾干掃描電鏡下觀察菌絲形態(tài)變化情況。

1.3 數(shù)據(jù)處理

實驗中每個處理重復(fù)三次,數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析采用Statistix 8.1(分析軟件,St Paul,MN)軟件包中Linear Models程序,差異顯著性采用Duncan檢驗進行多重比較,應(yīng)用Excel 2016和MEGA 7.0.14制作圖表。

2 結(jié)果與分析

2.1 拮抗菌的篩選結(jié)果

注:同行不同字母表示差異顯著(P<0.05),相同字母表示差異不顯著(P>0.05)。表3、表5同。

從釀酒葡萄根際土壤共分離到15株細菌,經(jīng)過挑取形狀、大小、顏色等不同菌落分別劃線接種于營養(yǎng)瓊脂,直至無雜菌落純化培養(yǎng)后分離到T1、T3、M1、M2、Y1 5株菌,拮抗菌牛津杯法篩選結(jié)果如圖1,其中T3出現(xiàn)明顯的抑菌圈,由表1可知,T3菌對B.cinerea抑菌直徑為31.5±0.2 mm(P<0.05),抑菌效價為157.5±1.0 mm/mL(P<0.05),其它菌株幾乎對B.cinerea無抑菌效果,T3菌株分離于新疆天山冰湖葡萄酒莊釀酒葡萄園。

圖1 拮抗菌株分離信息

2.2 拮抗菌的鑒定結(jié)果

2.2.1 拮抗菌形態(tài)學(xué)鑒定結(jié)果 如圖2,在營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基上,T3菌株菌落圓形、光滑、濕潤、乳白色、隆起、邊緣不整齊,菌落直徑大小2 mm;在靜置BHI液體培養(yǎng)基中,培養(yǎng)液出現(xiàn)輕微渾濁,液面呈現(xiàn)褶皺完整的膜,光學(xué)顯微鏡(100×10)觀察菌體呈細桿狀,革蘭氏染色為藍紫色,孔雀綠染色中生橢圓芽孢,T3為革蘭氏陽性芽孢桿菌。

表1 不同細菌對灰葡萄孢抑菌效價

圖2 T3菌形態(tài)學(xué)結(jié)果

2.2.2 拮抗菌生理生化鑒定結(jié)果 菌株T3的生理生化特性情況如表2所示。T3菌株VP反應(yīng)陽性,MR反應(yīng)陰性,動力培養(yǎng)陽性,明膠液化、硝酸鹽還原陽性,無法利用西蒙氏檸檬酸鹽、枸櫞酸鹽,丙二酸鹽利用陽性,能發(fā)酵葡萄糖、阿拉伯糖、蔗糖、甘露醇、木糖、乳糖,不能發(fā)酵棉子糖,能水解淀粉,分解酪素,溶菌酶反應(yīng)陰性。參考《伯杰氏細菌鑒定手冊》[28]和《常見細菌系統(tǒng)鑒定手冊》[29],初步鑒定T3菌株為枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis)。

表2 T3菌株生理生化特性

2.2.3 拮抗菌16S rDNA序列分析 通過PCR擴增產(chǎn)生的DNA片段為單一條帶,大小長度約為1500 bp,擴增產(chǎn)物無明顯非特異擴增現(xiàn)象,結(jié)果見圖3。菌株16S rDNA序列經(jīng)測序后經(jīng)NCBI網(wǎng)站進行比對分析,選擇較為相似的序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,如圖4,T3菌株與BacillussubtilisstrainASS4B(JQ905096.1)的同源性最高,達到100%。故T3菌株為枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis),這與形態(tài)學(xué)、生理生化特征的鑒定結(jié)果一致。

圖3 T3菌株的16S rDNA擴增電泳結(jié)果

圖4 T3菌株的系統(tǒng)發(fā)育樹

2.3 拮抗菌生長特性結(jié)果

2.3.1 拮抗菌生長曲線結(jié)果 T3的生長曲線如圖5所示,0～4 h屬于延滯期,4～24 h屬于對數(shù)生長期,菌體快速生長,24 h時菌體數(shù)量達到最高值,達到OD600=0.89,此時菌體生長旺盛代謝活性高,24～48 h屬于穩(wěn)定期,此時期菌體分泌次級代謝產(chǎn)物,48 h后進入衰亡期,體系代謝產(chǎn)物積累,活性逐漸降低,由圖5知T3菌能較長時間保持穩(wěn)定,發(fā)揮生物活性。

圖5 T3菌株的生長曲線

2.3.2 拮抗菌的最適生長溫度 T3菌株在不同溫度下的生長情況如圖6,T3菌株在25～45 ℃內(nèi)均能生長,表明該菌具有較強的耐溫性,當(dāng)溫度為25～37 ℃,隨著溫度的升高,菌株生長活力逐漸升高,當(dāng)溫度為37～45 ℃,隨著溫度的升高,菌株生長活力逐漸減小,可見T3菌株最適的生長溫度為37 ℃。

圖6 不同溫度下T3菌株的生長情況

2.3.3 拮抗菌的最適pH T3菌株在不同pH下的生長情況如圖7,在pH3.0～11.0范圍,T3菌株均能生長,pH在3.0～7.0時,菌株生長能力隨著pH的增大而增大,當(dāng)pH>7.0時培養(yǎng)液渾濁且形成菌膜,當(dāng)pH>7.0時,菌液OD值逐漸降低,可見,T3菌株最適培養(yǎng)pH=7.0。

圖7 不同pH下T3菌株的生長情況

2.4 拮抗菌對B. cinerea抑菌作用分析

2.4.1 拮抗菌對B.cinerea抑菌作用隨時間變化趨勢 由圖8和表3知,T3菌株對B.cinerea抑菌作用隨時間變化趨勢圖,培養(yǎng)48 h(圖8B),B.cinerea繞開添加T3菌液的牛津杯生長并出現(xiàn)白色菌絲,此時期為T3菌的穩(wěn)定期,抑菌物質(zhì)在此時期分泌,抑菌直徑為34.5±0.4 mm(P<0.05),抑菌效價為172.5±2.0 mm/mL(P<0.05);培養(yǎng)72 h(圖8C),B.cinerea孢子顏色變灰黑色,添加T3菌液的牛津杯周圍無B.cinerea生長;培養(yǎng)96 h(圖8D),B.cinerea孢子黑色加深,抑菌現(xiàn)象較明顯,但部分菌絲仍為灰白色;培養(yǎng)120 h(圖8E),B.cinerea孢子黑色,可觀察到明顯抑菌現(xiàn)象,抑菌直徑為31.4±0.2 mm(P<0.05),抑菌效價為157.0±1.0 mm/mL(P<0.05)。由圖8、表3知,T3菌對B.cinerea抑制作用在共培養(yǎng)48 h即可看到抑菌趨勢,即此時T3菌分泌抑菌物質(zhì),而B.cinerea孢子完全成熟需要120 h,可觀察到明顯抑菌現(xiàn)象,T3菌具有較長的抑菌物質(zhì)產(chǎn)生期,此抑菌活性物質(zhì)需后期進一步分析研究。

圖8 T3菌株抑菌效果隨時間變化趨勢

表3 不同培養(yǎng)時間的T3菌株對灰葡萄孢抑菌效價

2.4.2 拮抗菌對B.cinerea的MIC和MBC 由表4可知,T3菌株對B.cinerea最小抑菌濃度(MIC)為3.6×105CFU/mL,最小殺菌濃度(MBC)為3.6×106CFU/mL。

表4 T3菌株對灰葡萄孢的MIC和MBC(CFU/mL)

表5 不同濃度的T3菌懸液對灰葡萄孢抑菌效價

2.4.3 不同濃度的拮抗菌對B.cinerea抑制作用結(jié)果 不同濃度的T3菌對B.cinerea抑制作用如圖9所示,相對應(yīng)的抑菌效價如表5,當(dāng)T3菌濃度為3.6×105CFU/mL,幾乎無法觀察抑菌現(xiàn)象(P<0.05),T3菌懸液為3.6×109CFU/mL時抑菌直徑為31.6±0.2 mm(P<0.05),抑菌效價達到158.0±1.0 mm/mL(P<0.05),表明高濃度T3菌懸液對B.cinerea具有良好的抑制作用,且對B.cinerea抑菌效價隨著T3菌懸液濃度的升高而升高。

圖9 不同濃度的T2菌懸液對灰葡萄孢(Botrytis cinerea)抑制作用

2.4.4 掃描電鏡觀察T3菌株對B.cinerea菌絲生長的影響 圖10A～C對照組,不同倍數(shù)(×400倍、×800倍、×1600倍)掃描電鏡圖,菌絲稠密粗細均勻,孢子繁密,原生質(zhì)分布均勻;圖10D～F T3菌處理組,不同倍數(shù)(×400倍、×800倍、×1600倍)掃描電鏡圖,菌絲稀疏粗細不均勻、菌絲扭曲、畸形,頂端膨大,孢子稀松,原生質(zhì)收縮,出現(xiàn)空洞。T3菌抑制B.cinerea菌絲生長及孢子萌發(fā)。

圖10 掃描電鏡下T3菌懸液對灰葡萄孢菌絲生長的影響

3 結(jié)論與討論

植物根際微生物具有重要的農(nóng)業(yè)意義,芽孢桿菌屬的細菌具有產(chǎn)孢子能力,能以芽孢形式存活下來,并在有利條件下恢復(fù)活性,這使得芽孢桿菌在開放和嚴酷的環(huán)境中能夠發(fā)揮作用,可開發(fā)成環(huán)保和可持續(xù)的生物菌劑[31]。迄今為止,利用芽孢桿菌對植物病害進行生物防治的研究相當(dāng)多,但多數(shù)研究多限于實驗室條件下,生產(chǎn)應(yīng)用較為成功的僅為少數(shù),其中以枯草芽孢桿菌作為生物載體的生物菌劑應(yīng)用最多,如美國Gustafson公司的Bacillussubtilisstrain GBO3、美國Agraquest公司Bacillussubtilisstrain QST 713、美國Becker Underwood公司BacillussubtilisMBI 600、德國Abitep GmbH公司B.subtilisvar.amyloliquefaciensstrain FZB24等[32]。同時有學(xué)者研究發(fā)現(xiàn)生物菌劑具有降解農(nóng)藥殘留作用,Salunkhe等[33-34]研究發(fā)現(xiàn)葡萄根際分離的枯草芽孢桿菌DR-39、CS-126、TL-171、TS-204在葡萄漿果上顯示出良好的降解農(nóng)藥殘留作用。由此可見,枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis)在植物病害生物防治及降解農(nóng)藥殘留方面展現(xiàn)出巨大的應(yīng)用潛力。

本研究從新疆天山北麓葡萄酒產(chǎn)區(qū)冰湖葡萄酒莊葡萄園釀酒葡萄植株根際土壤中分離到一株具有明顯拮抗B.cinerea作用的T3菌株,經(jīng)形態(tài)學(xué)、生理生化特征及16S rDNA測序鑒定及系統(tǒng)進化樹確定T3菌為枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis),培養(yǎng)24～48 h,T3菌株進入穩(wěn)定期,T3菌株最適的生長溫度為37 ℃,最適pH為7.0。T3菌株對B.cinerea抑制作用在共培養(yǎng)48 h可看到抑菌趨勢,即T3菌48 h分泌抑菌物質(zhì),共培養(yǎng)120 h,可觀察到明顯抑菌現(xiàn)象,T3菌株具有較長的抑菌物質(zhì)產(chǎn)生期。T3菌株對B.cinerea的MIC為3.6×105CFU/mL、MBC為3.6×106CFU/mL,抑菌效價隨著T3菌懸液濃度的升高而升高,3.6×109CFU/mL T3菌株對B.cinerea抑菌31.6±0.2 mm(P<0.05),抑菌效價達到158.0±1.0 mm/mL(P<0.05),掃描電鏡觀察T3菌液造成B.cinerea菌絲粗細不均勻、畸形、扭曲、頂端膨大、原生質(zhì)收縮、孢子稀松,抑制菌絲生長及孢子萌發(fā)。盡管本研究從新疆天山北麓葡萄酒產(chǎn)區(qū)釀酒葡萄地篩選的T3菌具有良好抑制B.cinerea效果,可作為釀酒葡萄灰霉病的潛在生防源,但其抑菌機理及實際大田防病效果尚未研究,后續(xù)試驗將對上述問題做進一步研究,使之成為有效的釀酒葡萄灰霉病生物控制劑。