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RBMS3-AS3對宮頸癌細胞增殖、凋亡和侵襲的影響及作用機制

2020-12-04 09:59陳海麗
癌變·畸變·突變 2020年6期
關鍵詞:靶點陰性宮頸癌

蘭 莉,陳海麗,徐 蕾

(十堰市婦幼保健院產(chǎn)科,湖北 十堰 442008)

宮頸癌是女性生殖系統(tǒng)常見的惡性腫瘤,對女性生命健康造成極大的威脅。宮頸癌具有較高的致死率,近幾年來,其發(fā)病率呈增長和年輕化趨勢[1]。早期宮頸癌治療方法主要有手術、化療、放療等,但部分患者極易復發(fā)轉(zhuǎn)移,預后不佳[2]。目前,宮頸癌的發(fā)病機制尚不明確,并且缺乏有效的診斷和治療靶點,因此探討宮頸癌的致病機制、尋找宮頸癌的治療靶點具有重大意義。長鏈非編碼RNA(long noncoding RNA,lncRNA)是一類長度超過200個核苷酸的非編碼RNA,參與調(diào)控細胞增殖、分化和凋亡等生命活動,與腫瘤的發(fā)生發(fā)展密切相關[3]。RNA 結(jié)合基序單鏈相互作用蛋白3(RNA-binding motif,singlestranded-interacting protein 3,RBMS3)是一種RNA 結(jié)合蛋白,在人體內(nèi)廣泛表達。研究顯示,RBMS3參與胃癌、食管鱗狀細胞癌等腫瘤的發(fā)生發(fā)展[4-5],可作為腫瘤診治的生物學標記或分子靶點。RBMS3 反義鏈3(RBMS3 antisense 3,RBMS3-AS3)是一種lncRNA,且部分與RBMS3基因互補。有報道稱,RBMS3-AS3在宮頸癌組織中高表達,可能參與宮頸癌的發(fā)生發(fā)展[6]。本研究主要探討了RBMS3-AS3對宮頸癌細胞增殖、凋亡和侵襲的影響及其是否通過調(diào)控RBMS3表達發(fā)揮作用,以期為宮頸癌的治療提供新的靶點。

1 材料與方法

1.1 細胞和實驗試劑

人宮頸永生化細胞Ect1/E6E7 和宮頸癌細胞HeLa、Caski 和SiHa,購于中國科學院上海細胞庫;胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)和RPMI 1640 培養(yǎng)基, 購于美國Gibco 公司; 四甲基噻唑藍(methylthiazoletrazolium,MTT)和胰蛋白酶,購于美國Sigma 公 司;Trizol 試 劑 和LipofectamineTM2000 試 劑盒,購于美國Invitrogen公司;逆轉(zhuǎn)錄試劑盒和PCR試劑盒,購于深圳晶美公司;鼠抗人RBMS3 單克隆抗體,購于英國Abcam 公司;鼠抗人基質(zhì)金屬蛋白酶2(matrix metalloproteinase 2,MMP-2)、細胞周期蛋白D1(Cyclin D1)單克隆抗體和兔抗人B淋巴細胞瘤-2(Bcell lymphoma-2,Bcl-2)、B 淋巴細胞瘤-2 相關蛋白(Bcl-2-associated X protein,Bax)多克隆抗體,購于北京中山生物技術有限公司;PCR引物,購于上海生工生物工程有限公司;RBMS3-AS3 和RBMS3 的小干擾RNA,購于上海吉凱基因公司;BCA蛋白測定試劑盒,購于上海碧云天公司;Annexin V-FITC/PI 試劑盒,購于上海雅吉生物科技有限公司。

1.2 實驗方法

1.2.1 細胞培養(yǎng)人宮頸永生化細胞Ect1/E6E7 和宮頸癌細胞HeLa、Caski 和SiHa 均用含10% FBS 的RPMI 1640 培養(yǎng)基、置于37 ℃、CO2體積分數(shù)為5%、97%濕度的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。每2~3 d 更換1 次新鮮培養(yǎng)基。待細胞匯合度達80%~90%時,用0.25%胰蛋白酶消化,傳代培養(yǎng)。

1.2.2 實時熒光定量PCR 檢測RBMS3-AS3 表達將對數(shù)生長期的Ect1/E6E7、HeLa、Caski和SiHa細胞均以每孔1×105個接種于6 孔板中,培養(yǎng)24 h 后,收集細胞,用Trizol 試劑提取細胞中總RNA,經(jīng)微量核酸儀檢測純度和濃度后,參照逆轉(zhuǎn)錄試劑盒,將RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA。然后以cDNA為模板,進行實時熒光定量PCR(real-time quantitative PCR,qPCR)擴增。擴增條件:95 ℃預變性6 min;95 ℃變性10 s,60 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,共進行35 個循環(huán)。引物序列:RBMS3-AS3 上游5′-CGGGCTTAGCCGTAGCG TTGC-3′,下 游5′-CAAATGGCCCGTGGTCATGCG-3′;GAPDH 上 游5′-CGCTCTCTGCTCCTCCTGTTC-3′,下游5′-ATCCGTTGACTCCGACCTTCAC-3′。以GAPDH為內(nèi)參,采用2-ΔΔCT法計算RBMS3-AS3相對表達水平。

1.2.3 Western blot 法檢測RBMS3 蛋白表達將對數(shù)生長期的Ect1/E6E7、HeLa、Caski和SiHa細胞均以每孔1×105個接種于6 孔板中,培養(yǎng)24 h 后,收集細胞,RIPA試劑提取細胞中總蛋白,BCA蛋白試劑盒檢測蛋白含量。取適量蛋白,100 ℃煮沸5 min。蛋白變性后,以每泳道30 μg 蛋白進行SDS-PAGE 電泳。電泳后,轉(zhuǎn)至聚偏乙烯二氟膜,將其置于5%脫脂牛奶中封閉2 h。分別加RBMS3(1∶500)、β-actin(1∶1 000)一抗,4 ℃孵育過夜。TBST緩沖液洗膜后,加辣根過氧化酶標記的山羊抗兔二抗(1∶2 000),室溫孵育1 h。TBST 緩沖液洗膜后,加入ECL 顯影液,避光顯影,凝膠成像系統(tǒng)曝光拍照,ImageJ軟件分析RBMS3蛋白相對表達水平。RBMS3蛋白相對表達水平以其蛋白條帶灰度值與β-actin蛋白條帶灰度值的比值表示。

1.2.4 HeLa細胞轉(zhuǎn)染和分組將宮頸癌細胞HeLa以1×105個/孔接種于6 孔板中,待細胞生長至匯合度為60%時,更換無FBS的培養(yǎng)基,并分為si-RBMS3-AS3組、陰性序列組、si-RBMS3-AS3+si-RBMS3 和si-RBMS3-AS3+陰性序列組。其中si-RBMS3-AS3 組轉(zhuǎn)染RBMS3-AS3 的小干擾RNA,陰性序列組轉(zhuǎn)染亂序無意義陰性序列,si-RBMS3-AS3+si-RBMS3 組共轉(zhuǎn)染RBMS3-AS3 的小干擾RNA 與RBMS3 的小干擾RNA,si-RBMS3-AS3+陰性序列組共轉(zhuǎn)染RBMS3-AS3 的小干擾RNA 與亂序無意義陰性序列。轉(zhuǎn)染6 h后,更換培養(yǎng)基。在培養(yǎng)24 h后收集細胞,用于后續(xù)實驗。同時設置對照組(對照組):不進行轉(zhuǎn)染操作,細胞正常培養(yǎng)相同時間。qPCR 法檢測各組HeLa 細胞中RBMS3-AS3 表達水平,方法同1.2.2;Western blot法檢測各組HeLa 細胞中RBMS3、Cyclin D1、Bcl-2、Bax 和MMP-2 蛋白表達,方法同1.2.3,其中RBMS3、Cyclin D1、Bcl-2、Bax 和MMP-2 一抗稀釋度分為1∶500、1∶500、1∶1 000、1∶1 000、1∶500。

1.2.5 MTT 檢測細胞增殖各組HeLa 細胞以1×103個/孔接種于96 孔板中,分別培養(yǎng)24、48、72 h 后,加20 μL濃度為5 g/L的MTT,繼續(xù)孵育4 h。棄培養(yǎng)基,加150 μL 二甲基亞砜,振蕩混勻,酶標儀測定光密度D(490)值。

1.2.6 Transwell 實驗檢測細胞侵襲將Matrigel 基質(zhì)膠用RPMI 1640 培養(yǎng)基以1∶8 的比例稀釋,鋪于Transwell小室的上室,自然晾干。調(diào)整各組HeLa細胞密度為5×104個/mL。取100 μL 細胞懸液,加入Transwell 上室。下室加500 μL 含F(xiàn)BS 的RPMI 1640培養(yǎng)基。培養(yǎng)48 h 后,4%多聚甲醛固定30 min,0.4%結(jié)晶紫染色15 min,置于倒置顯微鏡下觀察,隨機選取5個視野,對侵襲細胞進行計數(shù)。

1.2.7 流式細胞術檢測細胞凋亡率各組HeLa 細胞以1×104個/孔接種于24 孔板,培養(yǎng)48 h 后,胰酶消化,適量磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)清洗細胞2 次。取含1.0×106個細胞的細胞懸液,吸棄PBS,加入400 μL結(jié)合緩沖液,用移液器輕輕吹打,混懸細胞。加入10 μL Annexin V-FITC,室溫避光孵育10 min 后,加入5 μL 碘化丙啶(propidium iodide,PI),室溫避光反應5 min。最后再加入100 μL 結(jié)合緩沖液,混勻后,流式細胞儀檢測細胞凋亡情況。

細胞凋亡率/%=(早期凋亡細胞數(shù)+晚期凋亡細胞數(shù))/總細胞數(shù)×100%

1.3 統(tǒng)計學方法

利用SPSS 22.0 軟件分析實驗數(shù)據(jù)。計量資料以±s 表示,多組間比較采用單因素方差分析,進一步兩兩比較采用SNK-q檢驗。以α=0.05為檢驗水準。

2 結(jié) 果

2.1 RBMS3-AS3和RBMS3在宮頸癌細胞系中的表達水平

Western blot和qPCR檢測結(jié)果見圖1和表1,宮頸癌細胞系HeLa、Caski和SiHa中RBMS3-AS3的表達水平均高于Ect1/E6E7細胞(P<0.05),而RBMS3蛋白表達均低于Ect1/E6E7細胞(P<0.05)。由于宮頸癌細胞HeLa中RBMS3-AS3、RBMS3 蛋白的表達水平較Ect1/E6E7細胞差異更顯著,因此,選擇HeLa 細胞進行后續(xù)實驗。

圖1 Western blot檢測宮頸癌細胞株中RBMS3蛋白表達的條帶圖

表1 qPCR 和Western blot 檢測宮頸癌細胞株中RBMS3-AS3 和RBMS3蛋白的表達±s,n=9)

表1 qPCR 和Western blot 檢測宮頸癌細胞株中RBMS3-AS3 和RBMS3蛋白的表達±s,n=9)

與正常宮頸細胞株Ect1/E6E7比較,*P<0.05.

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2.2 HeLa細胞中RBMS3-AS3的表達

qPCR檢測結(jié)果見表2,與對照組或陰性序列組比較,si-RBMS3-AS3 組HeLa 細胞RBMS3-AS3 相對表達水平降低(P<0.05),而對照組與陰性序列組HeLa 細胞RBMS3-AS3 相對表達水平比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。

表2 qPCR檢測各組HeLa細胞中RBMS3-AS3表達(x±s,n=9)

2.3 HeLa 細胞中RBMS3、Cyclin D1、Bax、Bcl-2、MMP-2蛋白的表達

Western blot 檢測結(jié)果見圖2 和表3,與對照組或陰性序列組比較,si-RBMS3-AS3 組HeLa 細胞中RBMS3、Bax 的 蛋 白 表 達 水 平 升 高(P<0.05),Cyclin D1、Bcl-2 和MMP-2 的蛋白表達水平降低(P<0.05),而對照組與陰性序列組HeLa 細胞中RBMS3、Cyclin D1、Bax、Bcl-2 和MMP-2 蛋白表達水平比較均無顯著差異(P>0.05)。與si-RBMS3-AS3+陰性序列組比較, si-RBMS3-AS3 + si-RBMS3 組HeLa 細 胞 中RBMS3、Bax 的蛋 白 表達 水 平降低(P<0.05),Cyclin D1、Bcl-2和MMP-2的蛋白表達水平升高(P<0.05)。

圖2 Western blot檢測各組細胞中RBMS3、Cyclin D1、Bax、Bcl-2、MMP-2蛋白表達

表3 Western blot檢測各組HeLa細胞中RBMS3、Cyclin D1、Bax、Bcl-2、MMP-2蛋白表達水平±s,n=9)

表3 Western blot檢測各組HeLa細胞中RBMS3、Cyclin D1、Bax、Bcl-2、MMP-2蛋白表達水平±s,n=9)

與對照組比較,*P<0.05;與陰性序列組比較,#P<0.05;與si-RBMS3-AS3+陰性序列組比較,&P<0.05.

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2.4 HeLa細胞的增殖情況

MTT 法檢測各組HeLa 細胞的增殖情況結(jié)果見表4,可見與對照組或陰性序列組比較,si-RBMS3-AS3組HeLa 細胞D(490)值降低(P<0.05),而對照組與陰性序列組HeLa 細胞D(490)值比較無顯著差異(P>0.05)。與si-RBMS3-AS3+陰性序列組比較,si-RBMS3-AS3+si-RBMS3組HeLa細胞D(490)值升高(P<0.05)。

表4 MTT法檢測各組HeLa細胞的增殖情況[D(490)值,s,n=9]

表4 MTT法檢測各組HeLa細胞的增殖情況[D(490)值,s,n=9]

與對照組比較,*P<0.05;與陰性序列組比較,#P<0.05;與si-RBMS3-AS3+陰性序列組比較,&P<0.05.

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2.5 HeLa細胞的侵襲情況

Transwell實驗檢測各組HeLa細胞侵襲情況結(jié)果見表5 和圖3,可見與對照組或陰性序列組比較,si-RBMS3-AS3組HeLa細胞侵襲數(shù)降低(P<0.05),而對照組與陰性序列組HeLa 細胞侵襲數(shù)比較無顯著差異(P>0.05)。與si-RBMS3-AS3+陰性序列組比較,si-RBMS3-AS3+si-RBMS3 組HeLa 細胞侵襲數(shù)顯著升高(P<0.05)。

表5 Transwell實驗檢測各組HeLa細胞的侵襲數(shù)目s,n=9)

表5 Transwell實驗檢測各組HeLa細胞的侵襲數(shù)目s,n=9)

與對照組比較,*P<0.05;與陰性序列組比較,#P<0.05;與si-RBMS3-AS3+陰性序列組比較,&P<0.05.

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2.6 HeLa細胞的凋亡情況

流式細胞術檢測各組HeLa細胞凋亡率結(jié)果見表6和圖4,可見與對照組或陰性序列組比較,si-RBMS3-AS3組HeLa細胞凋亡率升高(P<0.05),而對照組與陰性序列組HeLa 細胞凋亡率比較無顯著差異(P>0.05)。與si-RBMS3-AS3+陰性序列組比較,si-RBMS3-AS3+si-RBMS3 組HeLa 細胞凋亡率降低(P<0.05)。

表6 流式細胞術檢測各組HeLa細胞凋亡率s,n=9)

表6 流式細胞術檢測各組HeLa細胞凋亡率s,n=9)

與對照組比較,*P<0.05;與陰性序列組比較,#P<0.05;與si-RBMS3-AS3+陰性序列組比較,&P<0.05.

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圖3 Transwell實驗檢測各組HeLa細胞侵襲情況

圖4 流式細胞術檢測各組HeLa細胞凋亡情況

3 討 論

宮頸癌是嚴重威脅女性生命健康的惡性腫瘤,其發(fā)生發(fā)展是一個多因素和多階段的過程。宮頸癌的早期診斷和治療缺乏有效的生物學指標,因此,研究宮頸癌細胞增殖、侵襲和凋亡的分子機制,尋找有效的診斷和分子治療靶點,有助于宮頸癌患者的治療。LncRNA 可在轉(zhuǎn)錄,表觀遺傳等多個方面調(diào)控基因的表達,參與調(diào)控細胞的增殖、凋亡、遷移和侵襲等生物學行為[7-9]。LncRNA 的作用機制與相鄰基因的位置關系十分密切,根據(jù)其編碼蛋白基因的位置關系,可將lncRNA 分為正義(sense)、反義(antisense),雙向(bidirectional)、內(nèi)含子(intronic)和基因間(intergenic)lncRNA。其中反義鏈型lncRNA 對相應基因具有調(diào)控作用,參與腫瘤的發(fā)生發(fā)展[10]。

RBMS3-AS3 是RBMS3 反義鏈3,屬于lncRNA。Su等[11]研究顯示,RBMS3-AS3在主動脈瘤中表達有差異,可作為主動脈瘤的診斷標志物。目前RBMS3-AS3對宮頸癌細胞生物學行為的影響和作用機制還未見相關報道。本研究顯示,與人宮頸永生化細胞Ect1/E6E7 比 較,宮 頸 癌 細 胞HeLa、Caski 和SiHa 中RBMS3-AS3 表達降低,提示RBMS3-AS3 在宮頸癌發(fā)生發(fā)展中起重要作用。通過轉(zhuǎn)染RBMS3-AS3 的小干擾RNA 抑制宮頸癌HeLa 細胞中RBMS3-AS3 表達后,細胞增殖和侵襲受到抑制,凋亡加劇,Cyclin D1、Bcl-2 和MMP-2 蛋白表達降低,Bax 蛋白表達升高,說明抑制RBMS3-AS3 表達可抑制宮頸癌細胞增殖和侵襲,并促進細胞凋亡,提示RBMS3-AS3 可能是宮頸癌治療的潛在作用靶點。

RBMS3是C-myc基因單鏈結(jié)合蛋白家族成員,在腫瘤的發(fā)生發(fā)展中起重要作用。研究顯示,RBMS3在胃癌細胞中表達降低,過表達RBMS3可通過阻滯Wnt/β-catenin 信號通路,抑制胃癌細胞的侵襲和上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化[12];人乳腺癌組織和細胞系RBMS3的mRNA和蛋白質(zhì)表達下調(diào),RBMS3過表達可在體外顯著抑制乳腺癌細胞的增殖、遷移和侵襲及體內(nèi)腫瘤生長[13];膽囊癌組織中RBMS3 表達降低,過表達RBMS3 可抑制膽囊癌細胞增殖和克隆形成,并促進細胞凋亡[14]。本研究結(jié)果顯示,宮頸癌細胞中RBMS3 蛋白呈低表達,提示RBMS3參與宮頸癌的發(fā)生和發(fā)展。抑制宮頸癌細胞中RBMS3-AS3 表達后,RBMS3 蛋白表達升高,且抑制RBMS3 表達逆轉(zhuǎn)RBMS3-AS3 對宮頸癌細胞增殖和侵襲的抑制作用及凋亡的促進作用,并能夠逆轉(zhuǎn)RBMS3-AS3 對宮頸癌細胞Cyclin D1、Bcl-2、Bax 及MMP-2 蛋白表達的影響,提示RBMS3-AS3 可能通過上調(diào)RBMS3表達抑制宮頸癌細胞增殖和侵襲,并促進細胞凋亡。

綜上所述,RBMS3-AS3 在宮頸癌細胞中呈高表達,RBMS3 蛋白呈低表達;抑制RBMS3-AS3 表達可抑制宮頸癌細胞的增殖和侵襲,并促進宮頸癌細胞凋亡,其可能通過負調(diào)控RBMS3表達發(fā)揮作用,是宮頸癌靶向治療的潛在作用靶點。

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