張文娟,澹臺(tái)瑋,李敏康,蔡露陽(yáng),徐秦峰
(陜西科技大學(xué) 食品與生物工程學(xué)院,國(guó)家羊乳制品加工技術(shù)研發(fā)專業(yè)中心,陜西 西安,710021)
乳是兒童和成年人健康生長(zhǎng)所需的各種營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的來源之一[1]。由于乳制品需求的增加和供應(yīng)鏈的全球化,某些供應(yīng)商為追求經(jīng)濟(jì)利益,常在乳制品中摻入一些不易區(qū)分、同源性更高的動(dòng)物源性產(chǎn)品和原料來降低成本,其中最常見的摻假形式是在高值羊乳中摻入低值牛乳[2-3]。這種摻假行為不僅會(huì)影響行業(yè)健康發(fā)展,也更容易增加過敏的風(fēng)險(xiǎn)[4-7]。因此,檢測(cè)此類產(chǎn)品的摻假情況對(duì)核實(shí)食品標(biāo)簽成分,保護(hù)消費(fèi)者的合法權(quán)益等具有重要意義。
鑒別牛、羊乳品質(zhì)有蛋白水平、脂肪水平和核酸水平上的方法[8],相比而言,核酸分子水平上的檢測(cè)穩(wěn)定性更高[9],且DNA具有很強(qiáng)的種屬特異性,使其被越來越多地用于乳制品的檢測(cè)中。已有的核酸水平上的檢測(cè)方法有聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)[10-11]、聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)-高分辨率熔解曲線(PCR-high resolution melting,PCR-HRM)[12-14]、單重實(shí)時(shí)環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增(loop-mediated isothermal amplification,LAMP)技術(shù)[15]等。常規(guī)的PCR技術(shù),依賴于昂貴的熱循環(huán)儀器,而LAMP技術(shù)只需恒溫水浴鍋,但單重LAMP技術(shù)在檢測(cè)多個(gè)靶標(biāo)時(shí)需要進(jìn)行大量繁瑣、重復(fù)性的工作,難以滿足當(dāng)今用戶需求。隨著核酸分子技術(shù)的快速發(fā)展,在食品及乳制品的檢測(cè)中多重檢測(cè)可滿足一次反應(yīng)多靶標(biāo)擴(kuò)增,快速對(duì)現(xiàn)場(chǎng)大量的復(fù)雜樣品及未知樣品做出驗(yàn)證。KIM等[16]基于熒光探針法建立了雙重實(shí)時(shí)LAMP技術(shù)對(duì)牛奶和羊奶進(jìn)行檢測(cè),但是不同的靶標(biāo)需要合成不同的熒光標(biāo)記探針,使得成本增高。
HRM是基于飽和熒光染料發(fā)展起來的一種新型PCR檢測(cè)技術(shù),在普通熔解曲線的基礎(chǔ)上依據(jù)更小的熔解溫度差異鑒別不同的目的基因,并依靠特殊儀器獲得更高密度數(shù)據(jù)值。GANOPOULOS[17]使用PCR-HRM技術(shù)檢測(cè)出羊乳奶酪中的牛乳成分,為該技術(shù)在乳及乳制品的摻假檢測(cè)應(yīng)用中奠定了基礎(chǔ)。本研究針對(duì)奶牛和奶山羊線粒體DNA設(shè)計(jì)LAMP特異性引物,通過對(duì)不同引物比例及反應(yīng)溫度的優(yōu)化,利用HRM技術(shù)對(duì)Tm值差異較小的牛羊乳擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行準(zhǔn)確有效區(qū)分,實(shí)現(xiàn)了羊乳中摻入牛乳成分的檢測(cè)。
新鮮牛乳樣品采集于陜西省西安市未央?yún)^(qū)某奶牛場(chǎng),新鮮羊乳樣品采集于未央?yún)^(qū)某市場(chǎng)農(nóng)戶處,樣品存于-20 ℃冰箱備用;其他用于驗(yàn)證引物特異性DNA(雞、豬、馬、兔、鴨、狗和貓)樣本購(gòu)買于四川華漢三創(chuàng)有限公司;其他不同類型全脂羊奶產(chǎn)品、低脂羊奶產(chǎn)品、羊奶片等實(shí)際樣品隨機(jī)購(gòu)買于大型商場(chǎng)。
1.2.1 試劑
磁珠法血液基因組DNA提取試劑盒,天根有限公司;甜菜堿,Sigma公司;dNTP混合液、Bst 2.0 Warm Star DNA聚合酶和MgSO4等,NEB公司。
1.2.2 儀器
熒光定量PCR儀(MyGo Pro),IT-IS Life Science Ltd;實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀(Qtower 2.2),德國(guó)耶拿公司;電熱恒溫水槽(DK-8D),上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;高速冷凍離心機(jī)(5424R),Eppendorf 有限公司;超微量分光光度計(jì)(Q6000),美國(guó)Quawell。
按照磁珠法血液基因組DNA提取試劑盒說明書對(duì)上述新鮮乳品或羊乳制品中的DNA進(jìn)行提取。使用超微量核酸定量?jī)x測(cè)定鮮牛乳、鮮羊乳DNA質(zhì)量濃度,將溶液稀釋到7 ng/μL,-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
2.科學(xué)制定實(shí)施方案。2017年,山西農(nóng)墾依據(jù)中央政策,結(jié)合調(diào)查摸底情況和我省實(shí)際,多次征求各市農(nóng)墾主管部門及26個(gè)農(nóng)場(chǎng)和省編辦的意見,由省農(nóng)業(yè)廳、財(cái)政廳、教育廳、衛(wèi)生和計(jì)劃委員會(huì)、民政廳、中國(guó)人民銀行太原中心支行共同研究起草了《山西省農(nóng)墾國(guó)有農(nóng)場(chǎng)辦社會(huì)職能改革實(shí)施方案》,進(jìn)一步明確了工作原則、改革內(nèi)容、實(shí)施步驟及責(zé)任分工。之后,有改革任務(wù)的各市縣也分別制定了符合自身實(shí)際的辦社會(huì)職能改革實(shí)施方案。
參考SN/T 4419.21—2016[18]標(biāo)準(zhǔn)及文獻(xiàn)報(bào)道的引物序列[19],以牛、羊線粒體保守序列為靶基因,并在PrimerExplorer 5網(wǎng)站進(jìn)行多次篩選比對(duì)來合成LAMP特異性引物,如表1所示。LAMP引物由生工生物(上海)有限公司合成并經(jīng)高效液相色譜純化。
表1 實(shí)驗(yàn)中所用的LAMP引物序列Table 1 Primers pairs used in LAMP for goat and bo ine
LAMP反應(yīng)體系的組成及濃度如下:1×Thermol Pol緩沖液、1.4 mmol/L dNTPs、0.8 mol/L甜菜堿、4 mmol/L MgSO4、外引物F3和B3各0.2 μmol/L、內(nèi)引物FIP和BIP各1.6 μmol/L、8 U DNA聚合酶0.4 μL、20×E a Green熒光染料0.25 μL和DNA模板7 ng,總反應(yīng)體系為10 μL。將混合體系置于實(shí)時(shí)熒光PCR儀中64 ℃反應(yīng)45 min,65~97 ℃進(jìn)行熔解分析。
根據(jù)上述LAMP反應(yīng)的實(shí)驗(yàn)結(jié)果,通過改變反應(yīng)溫度及引物比例對(duì)LAMP反應(yīng)條件進(jìn)行優(yōu)化,以確定最佳的反應(yīng)條件。LAMP擴(kuò)增所用的酶最適反應(yīng)溫度為60~68 ℃,當(dāng)反應(yīng)溫度降到60 ℃以下時(shí),聚合酶的酶活力減弱,擴(kuò)增效率降低,因此選擇60、61、62、63、64和65 ℃ 6個(gè)溫度對(duì)反應(yīng)體系進(jìn)行優(yōu)化。改變奶牛和奶山羊的引物用量體積比例,即0.1∶0.2、0.15∶0.2、0.2∶0.2、0.1∶0.3、0.1∶0.4,以挑選出最適引物濃度比。
按照LAMP體系配制反應(yīng)液,加入質(zhì)量濃度均為7 ng/μL的不同模板DNA,在最適反應(yīng)溫度下進(jìn)行擴(kuò)增,分析鑒定擴(kuò)增曲線及熔解曲線,以驗(yàn)證LAMP引物的特異性。
將牛乳和羊乳提取的DNA原液等比例混合,再進(jìn)行10倍質(zhì)量濃度梯度稀釋,即反應(yīng)體系中DNA質(zhì)量濃度分別為7、0.7、0.07、0.007和0.000 7 ng/μL,每個(gè)質(zhì)量濃度梯度均取1.2 μL為反應(yīng)模板,進(jìn)行LAMP檢測(cè)。通過對(duì)熔解曲線的Tm值進(jìn)行分析來檢測(cè)方法的靈敏度。
取7 ng/μL的羊乳DNA為原液,分別摻入不同體積比例的牛乳DNA,體積比例依次為100%、80%、50%、10%、5%、1%、0.1%和0%,取1.2 μL上述混合DNA作為模板進(jìn)行LAMP擴(kuò)增,分析此方式的檢測(cè)限。在羊乳實(shí)際樣品中混合不同體積比例的牛乳,混合體積比例為100%、50%、15%、5%、1%、0.5%和0%,再進(jìn)行DNA提取,確定此種混合方式的檢測(cè)限。
對(duì)市售的8種乳制品進(jìn)行鑒定,通過對(duì)熔解曲線進(jìn)行分析來評(píng)價(jià)LAMP-HRM方法的實(shí)際應(yīng)用能力,與已建立的實(shí)時(shí)PCR方法進(jìn)行比較,驗(yàn)證其方法的準(zhǔn)確性。
a-傳統(tǒng)熔解峰; b-高分辨熔解峰1-牛;2-牛+羊;3-羊;4-NTC圖1 LAMP-HRM可行性的驗(yàn)證Fig.1 erification of LAMP-HRM feasibility注:動(dòng)物名稱代表各自DNA;NTC代表on template control,無DNA陰性性對(duì)照(下同)
3.2.1 反應(yīng)溫度優(yōu)化
為了消除由于溫度影響而產(chǎn)生的競(jìng)爭(zhēng)性擴(kuò)增,選取牛羊DNA擴(kuò)增子熔解峰面積相近時(shí)的反應(yīng)溫度作為最佳擴(kuò)增溫度,此時(shí)2種擴(kuò)增子含量接近,擴(kuò)增效率相當(dāng)[21]。結(jié)果如圖2-a所示,在60~65 ℃溫度范圍內(nèi),即使1 ℃的溫度變化,牛、羊源性DNA成分的熔解峰也有較大差距,說明溫度對(duì)雙重?cái)U(kuò)增影響較大。觀察到在63 ℃時(shí),2種熔解峰面積接近,因此選擇63 ℃作為后續(xù)檢測(cè)的最佳反應(yīng)溫度。
a-反應(yīng)溫度優(yōu)化; b-引物濃度比優(yōu)化圖2 LAMP-HRM反應(yīng)體系的優(yōu)化Fig.2 Optimization of LAMP-HRM reaction system
3.2.2 引物濃度比優(yōu)化
在多重LAMP反應(yīng)中,由于不同靶標(biāo)的引物對(duì)之間存在競(jìng)爭(zhēng)關(guān)系而產(chǎn)生優(yōu)勢(shì)擴(kuò)增,容易導(dǎo)致其靶目標(biāo)序列擴(kuò)增效率的不同[22]。為了使擴(kuò)增效率一致,減少不同引物對(duì)之間的相互競(jìng)爭(zhēng),從而更清楚地區(qū)分2種DNA。如圖2-b所示,選擇引物濃度比為0.15∶0.2的一組,該比例條件下等溫?cái)U(kuò)增效率相對(duì)較高,更適合對(duì)乳制品中牛、羊源性成分同時(shí)進(jìn)行檢測(cè)。
3.3.1 特異性檢測(cè)
利用建立的雙重LAMP-HRM方法對(duì)牛、羊及其他7種動(dòng)物進(jìn)行LAMP擴(kuò)增并進(jìn)行熔解分析。由圖3-a可知,含有奶牛、奶山羊的反應(yīng)體系均有單峰出現(xiàn),奶牛和奶山羊的混合物也出現(xiàn)雙峰,而其他動(dòng)物DNA模板均未出現(xiàn)熔解現(xiàn)象,表明建立的雙重LAMP-HRM方法具有較好的特異性,且設(shè)計(jì)的引物特異性也較好。
3.3.2 靈敏度檢測(cè)
將提取出的牛奶和羊乳線粒體 DNA混合物經(jīng)逐級(jí)稀釋后,如圖3-b結(jié)果所示,建立的LAMP-HRM方法能夠檢測(cè)到0.7 pg/μL的牛和羊DNA混合物,表明該方法具有較高的檢測(cè)靈敏度。
a-特異性; b-靈敏度圖3 LAMP-HRM反應(yīng)體系的特異性和靈敏度Fig.3 Specificity and sensiti ity for LAMP-HRM reaction system
3.3.3 牛羊乳不同混合比例檢測(cè)
將牛乳和羊乳DNA不同混合比例樣品按照最優(yōu)反應(yīng)體系進(jìn)行LAMP-HRM檢測(cè),檢測(cè)結(jié)果如圖4-a所示。當(dāng)摻入0.1%牛乳DNA時(shí),該反應(yīng)體系內(nèi)仍可觀察到清晰的熔解信號(hào)。盡管1%的牛乳熔解峰值高于5%,但更進(jìn)一步發(fā)現(xiàn),牛羊乳峰高比值與相應(yīng)的混合比例呈現(xiàn)一定的相關(guān)性。因此可以確定牛羊乳DNA混合的檢出限為0.1%。為了進(jìn)一步驗(yàn)證LAMP-HRM方法對(duì)實(shí)際樣品的檢測(cè)能力,在羊乳實(shí)際樣品中混合不同比例的牛乳,再進(jìn)行DNA提取,結(jié)果如圖4-b,最低檢出限為0.5%,這可能是因?yàn)槿楸旧眢w系的復(fù)雜性和乳中細(xì)胞分布的不均勻性,混合乳之后再進(jìn)行DNA提取可能會(huì)造成提取不完全等。這2種方式混合比例的檢測(cè)均表明LAMP-HRM方法靈敏度較高。
a-牛羊乳DNA混合比例; b-牛羊乳實(shí)際樣品混合比例圖4 牛羊乳不同混合比例的LAMP-HRM檢測(cè)Fig.4 LAMP-HRM detection of different cow’s milk adulterated in goat’s milk注:圖a和b中插圖為各混合比例牛羊乳峰高比值相關(guān)性
牛源性成分為羊乳品中最為常見的摻假成分。采用上述建立的雙重LAMP-HRM方法對(duì)超市里銷售的全脂奶產(chǎn)品、低脂奶產(chǎn)品、嬰幼兒配方奶粉等8個(gè)商業(yè)產(chǎn)品進(jìn)行了檢測(cè)分析,并與實(shí)時(shí)PCR技術(shù)檢測(cè)所得的數(shù)據(jù)進(jìn)行比較,2種方法的檢測(cè)結(jié)果見表2。結(jié)果表明,在分析的8種商業(yè)奶制品中,對(duì)于商品標(biāo)簽顯示含有100%的4個(gè)羊乳樣品,其中僅2個(gè)樣品(3、6)顯示與標(biāo)識(shí)符合,4、5號(hào)樣品則摻入了部分或全部的奶牛乳成分,與標(biāo)簽標(biāo)識(shí)不符;對(duì)于配方羊奶粉,國(guó)家允許添加牛乳清粉,樣品8、9、10均檢測(cè)出牛源性成分,與標(biāo)簽標(biāo)示相符。實(shí)時(shí)PCR技術(shù)檢測(cè)顯示,其檢測(cè)結(jié)果與LAMP-HRM反應(yīng)相比,結(jié)果完全一致,表明了LAMP-HRM檢測(cè)方法在實(shí)際樣品應(yīng)用中的高準(zhǔn)確性,可為大規(guī)模的牛羊乳樣品初篩提供一種技術(shù)支持。
表2 LAMP-HRM反應(yīng)體系對(duì)市售羊乳制品的應(yīng)用性檢測(cè)Table 2 Detection result of LAMP-HRM reaction system in goat milk products
本研究將雙重LAMP擴(kuò)增技術(shù)與HRM技術(shù)相結(jié)合,針對(duì)奶牛、山羊分別設(shè)計(jì)了4條特異性引物,通過優(yōu)化反應(yīng)條件,利用不同靶標(biāo)的Tm值差異對(duì)2種目標(biāo)基因進(jìn)行同時(shí)區(qū)分,建立了羊乳中牛乳成分的雙重實(shí)時(shí)LAMP-HRM技術(shù)。結(jié)果表明,所建立的方法特異性好,當(dāng)體系中存在其中一種或兩種目標(biāo)物時(shí)都可將其檢出,且對(duì)其他物種沒有交叉反應(yīng)及假陽(yáng)性現(xiàn)象的發(fā)生,對(duì)牛羊混合DNA的檢測(cè)靈敏度可達(dá)0.7 pg/μL,并可用于不同市售樣品的檢測(cè),適用于羊乳制品中摻入牛乳成分的快速檢測(cè)。與PCR-HRM技術(shù)相比,該方法不需要復(fù)雜的熱循環(huán)控溫儀器,而且不需要針對(duì)奶牛、奶山羊源性成分單獨(dú)進(jìn)行檢測(cè)、鑒別,在進(jìn)一步節(jié)省時(shí)間的同時(shí)也提高了檢測(cè)效率,降低了檢測(cè)成本,適用于大規(guī)模樣品的初篩。值得注意的是,多重LAMP-HRM檢測(cè)方法的建立與優(yōu)化,主要是在具有HRM檢測(cè)能力的實(shí)時(shí)PCR儀器上完成,近年來發(fā)展的便攜式恒溫LAMP檢測(cè)儀器已經(jīng)具備了很高的溫度分辨能力,也能夠滿足該方法應(yīng)用于現(xiàn)場(chǎng)快速檢測(cè)的需要。