劉 治 覃文聘 高 鵬 譚 蕾 張樂(lè)琪
誘導(dǎo)多能干細(xì)胞(induced pluripotent stem,iPS)被認(rèn)為是實(shí)現(xiàn)牙齒再生的一種新的干細(xì)胞來(lái)源,其來(lái)源于患者自體成熟細(xì)胞,因此成功克服了細(xì)胞來(lái)源受限、倫理和免疫排斥上的障礙,具有良好的臨床應(yīng)用前景。研究顯示,iPS細(xì)胞可被誘導(dǎo)分化為神經(jīng)細(xì)胞、胰島素分泌細(xì)胞、心血管和造血細(xì)胞、肝臟、腎臟等細(xì)胞[1]。Liu等[2]近期研究表明,iPS細(xì)胞可在成釉細(xì)胞無(wú)血清條件培養(yǎng)基(ameloblast serum-free conditioned medium,ASF-CM)誘導(dǎo)下,分化為成釉細(xì)胞樣細(xì)胞,并表達(dá)成釉細(xì)胞標(biāo)志物成釉蛋白(ameloblastin,AMBN)及細(xì)胞角蛋白-14(cytokeratin-14,CK14);當(dāng)在ASF-CM中添加骨形態(tài)發(fā)生蛋白4 (morphogenetic protein 4,BMP4)可顯著促進(jìn)iPS細(xì)胞的成釉分化,而加入了BMP抑制劑noggin則可顯著抑制iPS細(xì)胞的成釉分化,表明BMP家族分子在iPS細(xì)胞成釉分化過(guò)程中發(fā)揮關(guān)鍵調(diào)控作用。然而,iPS細(xì)胞成釉分化過(guò)程中的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路目前仍不清楚。
骨形態(tài)發(fā)生蛋白(bone morphogenetic proteins,BMPs)屬于轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β(transforming growth factor β,TGF-β)家族成員,是一組能廣泛參與調(diào)節(jié)多種細(xì)胞的增生、遷移、分化和凋亡的生物學(xué)過(guò)程的功能蛋白,其在早期胚胎發(fā)生和隨后的器官形成中發(fā)揮關(guān)鍵調(diào)控作用。BMP信號(hào)通過(guò)激活其受體磷酸化smad1、5、8蛋白,從而啟動(dòng)細(xì)胞內(nèi)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),繼而直接或間接通過(guò) DNA 結(jié)合蛋白或重新合成蛋白質(zhì)來(lái)調(diào)節(jié)靶基因的轉(zhuǎn)錄。此外,有研究顯示BMPs也可直接激活絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinases,MAPKs)通路,其中,ERK1/2信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路主要調(diào)控細(xì)胞生長(zhǎng)與分化,JNK和 p38 MAPK 信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路參與炎癥、細(xì)胞凋亡等應(yīng)激反應(yīng)[3]。然而,smad與MAPKs信號(hào)通路在iPS細(xì)胞被誘導(dǎo)向成釉細(xì)胞分化過(guò)程中的調(diào)控作用,目前仍未見(jiàn)文獻(xiàn)報(bào)道。
本研究采用ASF-CM誘導(dǎo)iPS細(xì)胞成釉分化,檢測(cè)分化過(guò)程中smad1/5與MAPKs信號(hào)分子磷酸化水平,并觀察smad1/5或MAPKs通路抑制劑對(duì)iPS成釉分化的影響,從而探明smad1/5與MAPKs信號(hào)通路在iPS細(xì)胞成釉分化中的作用。
1.實(shí)驗(yàn)材料:小鼠C5系iPS細(xì)胞購(gòu)自中國(guó)科學(xué)院廣州生物醫(yī)藥與健康研究院。成品上皮細(xì)胞培養(yǎng)液購(gòu)自美國(guó)Sciencell公司,smad1/5通路抑制劑LDN-193189購(gòu)自美國(guó)Selleck公司,p38 MAPK通路抑制劑SB203580及ERK1/2通路抑制劑U0126,以及phospho-smad1/5、phospho-p38、total-p38、phospho-ERK1/2、total-ERK1/2、phospho-JNK、total-JNK及GAPDH抗體均購(gòu)自美國(guó)Cell Signaling Technology公司。RIPA細(xì)胞裂解液及BCA蛋白定量試劑盒購(gòu)自上海碧云天生物科技有限公司,RNeasy Mini kit試劑盒購(gòu)自美國(guó)Invitrogen公司,反轉(zhuǎn)錄試劑盒(DRR037A)及SYBR法實(shí)時(shí)定量PCR試劑盒購(gòu)自日本TaKaRa公司,Oct-4、SSEA-4、SSEA-1、AMBN、ENAM和CK14抗體均購(gòu)自美國(guó)Santa Cruz 生物技術(shù)公司,MTT檢測(cè)試劑盒(C0009)購(gòu)自上海碧云天生物技術(shù)公司。
2.實(shí)驗(yàn)方法:分離培養(yǎng)小鼠胚胎成纖維細(xì)胞:將懷孕12.5~14.5天 C56孕鼠斷頸處死,無(wú)菌條件下取出胎鼠,小心分離其軀干并置于盛有PBS的平皿內(nèi),充分洗滌棄除紅細(xì)胞。用無(wú)菌眼科剪剪碎鼠胚軀干,加適量胰酶37℃消化30min后終止消化,常規(guī)離心棄上清,加適量含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液,反復(fù)吹打后接種置細(xì)胞培養(yǎng)瓶中,37℃、5%CO2、飽和濕度培養(yǎng),培養(yǎng)6天后傳代。
3.制備iPS細(xì)胞滋養(yǎng)層:將絲裂霉素(10μg/ml)加入到上述長(zhǎng)滿胚胎成纖維細(xì)胞的培養(yǎng)瓶中孵育3h,吸棄廢液PBS充分洗滌后,加入0.25%胰酶消化。在顯微鏡下觀察,當(dāng)貼壁細(xì)胞層出現(xiàn)裂隙且有少量細(xì)胞漂浮時(shí),用移液管反復(fù)吹打瓶底,加含血清培養(yǎng)液終止消化,常規(guī)離心后棄上清,以3.0×104/cm2密度鋪在經(jīng)0.1%明膠溶液預(yù)處理的培養(yǎng)瓶中,于培養(yǎng)箱中靜置過(guò)夜,使細(xì)胞貼壁。鋪好的飼養(yǎng)層在7 天內(nèi)可有效支持iPS細(xì)胞的生長(zhǎng)并維持其全能性。
4.培養(yǎng)小鼠iPS細(xì)胞:于37℃水浴中迅速解凍iPS細(xì)胞,將細(xì)胞懸液吸至加有少量PBS的離心管中,常規(guī)離心棄上清,加入6ml含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液,吹打混勻?yàn)閱渭?xì)胞懸液,并移至已鋪好飼養(yǎng)層細(xì)胞的培養(yǎng)瓶中,37℃、5%CO2、飽和濕度培養(yǎng),每天換液,觀察克隆的大小和密度,一般在培養(yǎng)后的第3 天可進(jìn)行傳代。
5.成釉細(xì)胞無(wú)血清條件培養(yǎng)基(ASF-CM)的制備:斷頸處死出生7天的C57 仔鼠20只,無(wú)菌分離仔鼠下頜骨, PBS沖洗干凈后分離其下頜切牙牙胚,在體視學(xué)顯微鏡下用顯微鑷剝離成釉上皮,浸泡于含 10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液中。剪碎組織后加入2ml Ⅰ型膠原酶,于37℃消化1h,終止消化后常規(guī)離心,棄上清,加入無(wú)血清的上皮細(xì)胞培養(yǎng)液,以1×105/ml密度接種于培養(yǎng)瓶?jī)?nèi),37℃、5%CO2、飽和濕度培養(yǎng)。待細(xì)胞貼壁后,采用差別消化法純化上皮細(xì)胞,首先加入0.25%胰酶消化細(xì)胞5min,倒置顯微鏡下觀察到成纖維樣細(xì)胞完全脫壁,此時(shí)加入含血清培養(yǎng)基終止消化,PBS反復(fù)沖洗后加入無(wú)血清的上皮細(xì)胞培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)。可重復(fù)此法,直至貼壁的完全是上皮細(xì)胞而沒(méi)有成纖維細(xì)胞。當(dāng)成纖維樣細(xì)胞全部去除后,開(kāi)始收集成釉細(xì)胞無(wú)血清條件培養(yǎng)液(ASF-CM),避光條件下用無(wú)血清上皮細(xì)胞培養(yǎng)液每天換液1次,置換出來(lái)的ASF-CM用小濾器過(guò)濾后-80℃冷藏備用。為確保實(shí)驗(yàn)的可重復(fù)性,將所有ASF-CM混勻后分裝,用于下述實(shí)驗(yàn)。
6.iPS細(xì)胞誘導(dǎo)分化及通路阻斷:以1∶1體積比配制ASF-CM與iPS常規(guī)培養(yǎng)液混合液(ASF-CM),分別在上述混合液中加入200nmol/L LDN-193189(smad1/5通路抑制劑),或10μmol/L SB203580 (p38 通路抑制劑) 或 10μmol/L U0126 (ERK1/2通路抑制劑),采用ASF-CM或加入上述通路抑制劑的ASF-CM培養(yǎng)iPS細(xì)胞,2天換液1次,以常規(guī)iPS培養(yǎng)液培養(yǎng)作為陰性對(duì)照,培養(yǎng)14天后收集細(xì)胞,進(jìn)行下述蛋白及基因檢測(cè)。
7.Western blot法檢測(cè)蛋白表達(dá)量:RIPA裂解細(xì)胞30min,4℃高速離心取上清,BCA蛋白定量法測(cè)定樣品總蛋白濃度;取各組蛋白樣品40μg用體積分?jǐn)?shù)為10%的十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠進(jìn)行凝膠電泳后,再以半干法轉(zhuǎn)印到PVDF膜上,5.0%脫脂牛奶封閉 1h,然后分別加兔抗小鼠phospho-smad1/5、GAPDH、phospho-p38、total-p38、phospho-ERK1/2、total-ERK1/2、phospho-JNK及total-JNK一抗(1∶1000,美國(guó)Cell Signaling Technology公司),4℃孵育過(guò)夜;TBST洗膜后,滴加辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的羊抗兔二抗(1∶5000,北京中杉金橋生物技術(shù)公司)室溫孵育1h;TBST再次洗膜后,ECL化學(xué)發(fā)光試劑顯影,化學(xué)發(fā)光凝膠成像系統(tǒng)檢測(cè)蛋白條帶,并計(jì)算蛋白的相對(duì)表達(dá)水平。
8.實(shí)時(shí)定量PCR:RNeasy Mini kit試劑盒提取樣品總RNA,反轉(zhuǎn)錄試劑盒反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,再以cDNA為模板,以GAPDH為內(nèi)參照,采用SYBRⅡ試劑盒檢測(cè)各組細(xì)胞Ambn、ENAM及Ck14 mRNA的表達(dá)水平,反應(yīng)條件嚴(yán)格按產(chǎn)品說(shuō)明書(shū)進(jìn)行;所用引物均由日本TaKaRa公司合成,具體引物序列見(jiàn)表1。最后以目的基因與 GAPDH 的起始拷貝數(shù)的比值表示目的基因的相對(duì)表達(dá)量。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
9.免疫熒光染色:4%多聚甲醛固定細(xì)胞15min,PBS洗后滴加0.25% Triton X-100,37℃孵育15min,PBS洗后加入4%山羊血清孵育30min,不沖洗,甩干后直接加入相應(yīng)一抗 (1∶100),4℃孵育過(guò)夜;PBS洗3次, 滴加FITC或Rhodamine標(biāo)記的二抗(1∶200),37℃避光孵育30min;5μg/ml DAPI襯染細(xì)胞核2min,Olympus 熒光顯微鏡觀察及DP Manager軟件處理圖。
表1 PCR引物序列
10.MTT實(shí)驗(yàn):分別在上述阻斷實(shí)驗(yàn)進(jìn)行1、7、14天時(shí),在細(xì)胞培養(yǎng)孔中加入MTT 溶液(5mg/ml)20μl,繼續(xù)孵育4h,每孔加入100μl Formazan溶解液并混勻,繼續(xù)孵育使結(jié)晶物充分融解,選擇 570nm 波長(zhǎng),在酶標(biāo)儀上測(cè)定各孔吸光度值,記錄結(jié)果。
11.統(tǒng)計(jì)學(xué)方法:采用SPSS 11.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行方差分析,采取盲法獲取及計(jì)算以上數(shù)據(jù),即由兩個(gè)對(duì)實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)不了解的實(shí)驗(yàn)員各計(jì)數(shù)2次,并間隔1周。經(jīng)標(biāo)準(zhǔn)一致性檢驗(yàn)顯示,兩人所得數(shù)據(jù)高度吻合(r>0.9),因此兩人計(jì)數(shù)的平均值被用于統(tǒng)計(jì)分析。采用SNK-q檢驗(yàn)進(jìn)行兩兩亞組間比較,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
1.Western blot法檢測(cè):用于實(shí)驗(yàn)的ips細(xì)胞表達(dá)胚胎干細(xì)胞特異性標(biāo)記分子SSEA-4及Oct-4,陽(yáng)性細(xì)胞百分比均高于95%,但不表達(dá)分化的胚胎干細(xì)胞標(biāo)志物SSEA-1(圖1),表明其具有胚胎干細(xì)胞樣特性。本實(shí)驗(yàn)采用Western blot法檢測(cè)磷酸化的smad1/5及MAPKs通路分子的表達(dá)。結(jié)果顯示,經(jīng)ASF-CM處理的iPS細(xì)胞p-smad1/5 (6.1±1.3)、p-P38 (3.2±0.6)以及p-ERK1/2 (4.1±0.8)的表達(dá)較對(duì)照組顯著升高(圖2、圖3),但其p-JNK表達(dá)水平與對(duì)照組比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=0.67,P=0.61)。
圖1 iPS細(xì)胞免疫熒光染色及陽(yáng)性細(xì)胞定量(×40)Oct-4與SSEA-4為胚胎干細(xì)胞特異標(biāo)記分子,SSEA-1為分化的胚胎干細(xì)胞標(biāo)志物
圖2 Western blot法檢測(cè)及定量對(duì)照培養(yǎng)基或ASF-CM培養(yǎng)iPS細(xì)胞后p-smad1/5蛋白表達(dá)水平與對(duì)照組比較,*P<0.01
2.實(shí)時(shí)定量PCR結(jié)果:分別將smad1/5、P38以及ERK1/2信號(hào)通路抑制劑加入到ASF-CM中培養(yǎng)iPS細(xì)胞14天,并以對(duì)照培養(yǎng)基或ASF-CM培養(yǎng)的iPS細(xì)胞作對(duì)照,檢測(cè)iPS細(xì)胞成釉細(xì)胞特異性標(biāo)志物(Ambn、ENAM和Ck14)基因的表達(dá)。對(duì)照組、ASF-CM組、ASF-CM+LDN-193189組、ASF-CM+SB203580組及ASF-CM+U0126組iPS細(xì)胞Ambn(F=4.290,P<0.05)、ENAM(F=3.620,P<0.05)和Ck14(F=3.110,P<0.05)的表達(dá)比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,其中ASF-CM組iPS細(xì)胞Ambn(6.6±1.3)、ENAM(5.4±0.9)和Ck14 mRNA(5.9±1.1)的表達(dá)較對(duì)照組顯著增高(P<0.05),smad1/5抑制劑LDN-193189可顯著反轉(zhuǎn)ASF-CM的上述促iPS細(xì)胞成釉分化的效應(yīng),表現(xiàn)為ASF-CM+LDN-193189組iPS細(xì)胞Ambn(2.4±0.5)、ENAM(1.9±0.6)和Ck14 mRNA(1.4±0.4)的表達(dá)較單純ASF-CM組顯著降低(P<0.05,圖4),但仍舊高于對(duì)照組(P<0.05)。然而,p38 MAPK通路抑制劑SB203580及ERK1/2通路抑制劑U0126則對(duì)ASF-CM促iPS細(xì)胞成釉分化的效應(yīng)無(wú)顯著影響,表現(xiàn)為ASF-CM+SB203580組及ASF-CM+U0126組iPS細(xì)胞Ambn(SB203580組:6.1±1.1;U0126組:5.9±0.8)、ENAM(SB203580組:4.8±0.9;U0126組:5.1±0.5)和Ck14 mRNA(SB203580組:5.3±1.2;U0126組:4.9±0.6)的表達(dá)與單純ASF-CM組比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,表2)。
圖3 Western blot法檢測(cè)及定量對(duì)照培養(yǎng)基或ASF-CM培養(yǎng)iPS細(xì)胞后MAPKs通路分子蛋白表達(dá)水平與對(duì)照組比較,*P<0.01
3.免疫熒光染色結(jié)果:采用對(duì)照培養(yǎng)基培養(yǎng)的iPS細(xì)胞基本不表達(dá)成釉細(xì)胞特異性標(biāo)志物Ambn、ENAM及Ck14,ASF-CM組及ASF-CM+抑制劑組iPS細(xì)胞均可表達(dá)Ambn、ENAM及Ck14蛋白,主要表達(dá)在胞核及胞質(zhì)(圖4)。定量研究結(jié)果顯示對(duì)照組、ASF-CM組、ASF-CM+LDN-193189組、ASF-CM+SB203580組及ASF-CM+U0126組iPS細(xì)胞Ambn(F=44.190,P<0.05)、ENAM(F=52.160,P<0.05)和Ck14(F=40.680,P<0.05)陽(yáng)性細(xì)胞百分比組間比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,其中ASF-CM組iPS細(xì)胞Ambn(46.6±11.3)、ENAM(51.4±10.9)及Ck14(41.9±8.1)陽(yáng)性細(xì)胞百分比均較對(duì)照組顯著增高(P<0.05),smad1/5抑制劑LDN-193189可顯著逆轉(zhuǎn)ASF-CM誘導(dǎo)iPS細(xì)胞成釉分化的作用,表現(xiàn)為ASF-CM+LDN-193189組iPS細(xì)胞Ambn(8.4±0.5)、ENAM(6.9±0.6)和Ck14 (4.4±0.4)陽(yáng)性細(xì)胞百分比均較單純ASF-CM組顯著降低(P<0.05),但仍高于對(duì)照組(P<0.05)。ASF-CM+SB203580組及ASF-CM+U0126組iPS細(xì)胞Ambn(SB203580組:44.1±8.1;U0126組:45.9±8.8)、ENAM(SB203580組:49.8±10.9;U0126組:50.1±7.5)和Ck14(SB203580組:38.3±9.2;U0126組:40.9±10.6)陽(yáng)性細(xì)胞百分?jǐn)?shù)與單純ASF-CM組比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,表3)。
表2 實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè)
圖4 免疫熒光染色觀察(×40)
表3 免疫組化半定量比較
4.MTT結(jié)果:不同培養(yǎng)基組在不同時(shí)間下A值差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(不同培養(yǎng)基因素F=2.12,P<0.05,時(shí)間因素F=5.33,P<0.05,交互效應(yīng)F=3.01,P<0.05)。采用對(duì)照培養(yǎng)基或ASF-CM培養(yǎng)iPS細(xì)胞1天(對(duì)照組:0.20±0.03;ASF-CM組:0.18±0.02)及7天(對(duì)照組:0.50±0.10;ASF-CM組:0.46±0.14),兩組間iPS細(xì)胞增生活動(dòng)在不同時(shí)間點(diǎn)比較差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),當(dāng)培養(yǎng)14天時(shí),ASF-CM組iPS細(xì)胞增殖活動(dòng)較對(duì)照組顯著降低(對(duì)照組:0.78±0.06;ASF-CM組:0.56±0.11;P<0.05)。然而,在ASF-CM組中加入smad1/5、P38或ERK1/2信號(hào)通路抑制劑組iPS細(xì)胞增殖活動(dòng)與單純ASF-CM組細(xì)胞在1、4、7天比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,圖5)。
圖5 MTT實(shí)驗(yàn)檢測(cè)
用于牙齒再生的干細(xì)胞主要包括牙源性干細(xì)胞和非牙源性干細(xì)胞,前者包括牙髓干細(xì)胞、牙周膜干細(xì)胞及脫落乳牙干細(xì)胞等,但由于患者特異性的牙源性干細(xì)胞的來(lái)源及細(xì)胞數(shù)量有限,限制了其在臨床上的廣泛應(yīng)用[4~6]。非牙源性干細(xì)胞包括骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞、胚胎干細(xì)胞及iPS細(xì)胞等,其中骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞仍存在來(lái)源有限的問(wèn)題[7];而胚胎干細(xì)胞長(zhǎng)期受著倫理上的爭(zhēng)議以及免疫排斥的缺陷,也不適合應(yīng)用于臨床治療[8,9]。
本實(shí)驗(yàn)所采用的iPS細(xì)胞來(lái)源于成熟體細(xì)胞,因此克服了細(xì)胞來(lái)源受限、倫理和免疫排斥上的障礙,具有良好的臨床應(yīng)用前景[1]。Arakaki等[10]通過(guò)分離小鼠下切牙根尖端頸環(huán)組織構(gòu)建了牙源性上皮細(xì)胞系,并將該上皮細(xì)胞與鼠源性iPS細(xì)胞共培養(yǎng),結(jié)果顯示上皮細(xì)胞可顯著誘導(dǎo)iPS細(xì)胞分化為成釉細(xì)胞樣形態(tài),并表達(dá)Ambn、ENAM及Ck14等多種成釉細(xì)胞標(biāo)志物;然而,Yoshida等[11]研究發(fā)現(xiàn),相較于將Malassez上皮剩余細(xì)胞與iPS細(xì)胞共培養(yǎng),采用Malassez上皮剩余細(xì)胞的條件培養(yǎng)基培養(yǎng)iPS細(xì)胞能夠更有效地誘導(dǎo)其形成成釉細(xì)胞樣細(xì)胞。Liu等[2]證明了成釉細(xì)胞無(wú)血清條件培養(yǎng)液(ASF-CM)可高效誘導(dǎo)iPS細(xì)胞向成釉細(xì)胞方向分化,表達(dá)成釉細(xì)胞標(biāo)志物Ambn及Ck14。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示ASF-CM 培養(yǎng)iPS細(xì)胞14天后,其成釉細(xì)胞標(biāo)志物Ambn、ENAM和Ck14基因和蛋白表達(dá)水平均較對(duì)照組增高,這與Liu等[2]之前的結(jié)果一致。這些結(jié)果表明,利用成釉細(xì)胞條件培養(yǎng)基培養(yǎng)iPS細(xì)胞可誘導(dǎo)其分化為更接近成釉細(xì)胞的成熟細(xì)胞。牙齒的發(fā)育和形成是非常復(fù)雜生理過(guò)程,受到多種生長(zhǎng)因子的調(diào)控,而這種動(dòng)態(tài)過(guò)程不太可能僅由某種因子進(jìn)行控制[12~15]。因此,本研究采用ASF-CM誘導(dǎo)iPS細(xì)胞成釉分化,已有實(shí)驗(yàn)證實(shí)ASF-CM包含BMPs、TGF-βs、Notch 1、纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子等多種細(xì)胞因子[2,16~18]。然而,本研究并未鑒定本實(shí)驗(yàn)所采用的ASF-CM中的活性細(xì)胞因子成分,為了保證實(shí)驗(yàn)結(jié)果的重復(fù)性,實(shí)驗(yàn)中將所獲得的ASF-CM混合在一起用于后續(xù)實(shí)驗(yàn),從而確保實(shí)驗(yàn)的可重復(fù)性,后續(xù)實(shí)驗(yàn)可采用ELISA檢測(cè)法鑒定ASF-CM中的活性細(xì)胞因子成分。
研究顯示,BMPs是有效誘導(dǎo)iPS細(xì)胞分化的必要生長(zhǎng)因子[19]。盡管smad1/5的激活被認(rèn)為是BMPs經(jīng)典信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,但研究顯示BMPs亦可激活MAPKs信號(hào)通路,包括p38 MAPK、ERK1/2及JNK[20]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,成釉細(xì)胞條件培養(yǎng)基培養(yǎng)iPS細(xì)胞14天后,可顯著促進(jìn)磷酸化smad1/5、P38和ERK1/2分子的表達(dá),表明上述通路被激活。進(jìn)一步信號(hào)通路抑制劑阻斷實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,僅smad1/5抑制劑LDN-193189可顯著反轉(zhuǎn)ASF-CM促iPS細(xì)胞成釉分化的效應(yīng),而p38 MAPK及ERK1/2通路抑制劑對(duì)ASF-CM促iPS細(xì)胞成釉分化的效應(yīng)均無(wú)顯著影響。上述結(jié)果表明smad1/5信號(hào)通路在ASF-CM誘導(dǎo)的iPS細(xì)胞的成釉分化過(guò)程中發(fā)揮主要調(diào)控作用。后期實(shí)驗(yàn)中應(yīng)采用體內(nèi)功能驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步證實(shí)smad1/5信號(hào)通路在iPS細(xì)胞成釉分化過(guò)程中的作用。
P38 MAPK通路已被證實(shí)在BMP2及BMP7介導(dǎo)的牙齒發(fā)育中發(fā)揮重要調(diào)控作用[21,22]。例如調(diào)控胚胎期釉質(zhì)結(jié)節(jié)p21的表達(dá),以及成釉細(xì)胞成釉蛋白、釉質(zhì)素及整合素-4的表達(dá);外胚層P38敲除小鼠則表現(xiàn)出牙釉質(zhì)缺陷和牙尖缺失[23]。ERK 1/2通路被證實(shí)在TGF-β1介導(dǎo)的組織增長(zhǎng),膠原蛋白改建以及牙源性干細(xì)胞分化發(fā)揮關(guān)鍵調(diào)控作用。由于ASF-CM中含有BMP2、BMP7、TGF-β1等細(xì)胞因子,本實(shí)驗(yàn)在后續(xù)研究中將進(jìn)一步探明P38及ERK 1/2通路在ASF-CM誘導(dǎo)iPS細(xì)胞成釉分化中的作用。
綜上所述,本研究結(jié)果顯示smad1/5信號(hào)通路在ASF-CM誘導(dǎo)的iPS細(xì)胞成釉分化過(guò)程中發(fā)揮關(guān)鍵調(diào)控作用。后期需要體內(nèi)實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步證實(shí)smad1/5信號(hào)通路對(duì)iPS細(xì)胞成釉分化的影響及相關(guān)機(jī)制。