李皓洲,郝旭昇,郭嘉璐,郭 都,鄭曉營,王 碩,楊焯凱,石 超
(西北農(nóng)林科技大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,陜西 楊凌 712100)
阪崎克羅諾腸桿菌(Cronobacter sakazakii)是克羅諾桿菌屬中的一種具有鞭毛、兼性厭氧的革蘭氏陰性菌,廣泛存在于嬰幼兒奶粉、嬰幼兒米粉、水果、蔬菜等食品中[1],有極強(qiáng)的致病性。人體感染阪崎克羅諾腸桿菌后,會(huì)出現(xiàn)腦膜炎、菌血癥、壞死性小腸結(jié)腸炎等多種疾病,致死率最高可達(dá)80%[2]。同時(shí),阪崎克羅諾腸桿菌感染性疾病即使被治愈,近20%的感染病例都會(huì)伴有嚴(yán)重的神經(jīng)系統(tǒng)后遺癥,包括腦膿腫、神經(jīng)發(fā)育遲緩、腦積水和四肢癱瘓等[3]。國際食品微生物標(biāo)準(zhǔn)委員會(huì)把阪崎腸桿菌描述為“對(duì)特定人群造成嚴(yán)重危害,危及生命或引起長期慢性實(shí)質(zhì)性后遺癥的病原菌”[4]。
阪崎克羅諾腸桿菌的致病性與其運(yùn)動(dòng)能力、形成生物被膜、黏附及侵入腸上皮細(xì)胞等毒力因子密切相關(guān)[5]。阪崎克羅諾腸桿菌具有良好的運(yùn)動(dòng)能力,這有助于菌體感知外界環(huán)境刺激的變化而確定感染宿主細(xì)胞的位點(diǎn),從而增強(qiáng)菌體對(duì)宿主的侵染,并且阪崎腸桿菌的運(yùn)動(dòng)能力有助于菌體自身生物被膜的形成[6];阪崎克羅諾腸桿菌能在不銹鋼、塑料、玻璃、乳膠、硅膠等材料表面形成生物被膜[7-8],從而提高細(xì)菌對(duì)洗滌劑、生物抑殺劑、抗生素和宿主防御系統(tǒng)的耐受能力,增強(qiáng)菌體的致病風(fēng)險(xiǎn)[9-10];并且,阪崎克羅諾腸桿菌能夠黏附及侵入人體腸上皮細(xì)胞,這是菌體引發(fā)腦膜炎、菌血癥、敗血癥等感染性疾病的必要途徑[11]。
抗生素是治療細(xì)菌感染性疾病的傳統(tǒng)方法,其主要是通過干擾微生物生長過程中的關(guān)鍵步驟,如細(xì)胞壁合成、DNA復(fù)制和蛋白合成等[12],從而抑制微生物生長;雖然這種方式非常有效,但也給細(xì)菌帶來選擇性壓力,從而使耐藥菌株被篩選出并成為優(yōu)勢(shì)群體。而毒力因子不是細(xì)菌存活必需的因素,對(duì)細(xì)菌并不會(huì)構(gòu)成進(jìn)化上的壓力,因而不易產(chǎn)生耐藥現(xiàn)象。與抗生素相比,某些植物源活性物質(zhì)在不干擾細(xì)菌正常生長的情況下通過抑制細(xì)菌毒力因子進(jìn)而降低致病菌的致病能力成為一種新型而有效的抗感染方式[12-13]。原兒茶醛(C7H6O3,CAS:139-85-5)是一種從烏蕨中提取的,具有抗動(dòng)脈粥樣硬化[14]、保護(hù)神經(jīng)細(xì)胞[15]、防止肝纖維素化[16]、抗病毒[17]等多種生物活性的植物源活性物質(zhì)。已有研究表明,原兒茶醛能夠?qū)嫫榭肆_諾腸桿菌產(chǎn)生抑制作用,影響其正常生長,使細(xì)菌形態(tài)干癟皺縮,出現(xiàn)畸形,破壞菌體細(xì)胞膜完整性,降低細(xì)菌胞內(nèi)ATP濃度[18]。但目前原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌毒力因子的影響鮮有研究,作用機(jī)制也尚不明確。
本研究旨在探究原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌毒力因子的抑制作用及其可能的作用機(jī)制。首先測(cè)定原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌的最小抑菌濃度(minimal inhibitory concentrations,MIC)和最小殺菌濃度(minimal bactericidal concentrations,MBC),并確定亞抑制濃度(sub-inhibitory concentration,SIC);其次,使用SIC的原兒茶醛處理阪崎克羅諾腸桿菌,檢測(cè)原兒茶醛對(duì)菌體泳動(dòng)運(yùn)動(dòng)性、生物被膜形成能力和黏附及侵入Caco-2細(xì)胞能力的影響;最后,通過反轉(zhuǎn)錄實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(reverse transcription quantitative realtime polymerase chain reaction,RT-qPCR)技術(shù)檢測(cè)原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌毒力基因轉(zhuǎn)錄過程的影響。研究旨在為原兒茶醛能夠成為降低阪崎腸桿菌致病風(fēng)險(xiǎn)的抗感染物質(zhì)提供理論依據(jù)。
阪崎克羅諾腸桿菌標(biāo)準(zhǔn)菌株ATCC29544和ATCC29004購買于美國模式培養(yǎng)物寄存庫;阪崎克羅諾腸桿菌菌株6-16(1)、18-24(2)、11-18(2)和12-13(2)由Li Zhen等[19]從市面銷售的嬰幼兒配方奶粉及米粉中分離得到。Caco-2細(xì)胞(人克隆結(jié)腸腺癌上皮細(xì)胞)購于武漢大學(xué)細(xì)胞保藏中心。
原兒茶醛(高效液相色譜級(jí),純度99.88%) 成都曼思特生物技術(shù)有限公司;氯化鈉、氯化鉀、磷酸二氫鉀、二水合磷酸氫二鈉、結(jié)晶紫、二甲基亞砜(dimethyl sulfoxide,DMSO) 天津科密歐化學(xué)試劑有限公司;RNA提取試劑盒 北京天根生物科技有限公司;反轉(zhuǎn)錄試劑盒、SYBR?Premix Ex TaqTMII 寶日醫(yī)生物技術(shù)(北京)有限公司;細(xì)胞培養(yǎng)液DMEM 美國Gibco公司;青霉素、鏈霉素 上海碧云天生物技術(shù)公司;慶大霉素 美國Sigma公司;胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS) 美國HyClone公司。
表1 RT-qPCR所用的引物信息Table 1 Information on primers used for reverse transcription quantitative real-time polymerase chain reaction
選取ESA_04030作為內(nèi)參基因[20]及與阪崎克羅諾腸桿菌運(yùn)動(dòng)性、生物被膜及黏附與侵入腸上皮細(xì)胞有關(guān)的9 種毒力基因[20-21]進(jìn)行RT-qPCR,基因引物及功能見表1。
5840R高速冷凍離心機(jī) 德國Eppendorf公司;Model 680酶標(biāo)儀、iQ5 qPCR儀 美國Bio-Rad公司;GHX-9050B-2細(xì)菌培養(yǎng)箱 上海?,攲?shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;HF90細(xì)胞培養(yǎng)箱 上海力申科學(xué)儀器有限公司;JS680B凝膠成像系統(tǒng) 上海培清科技有限公司;Nano-200超微量核酸分析儀 杭州奧盛儀器有限公司;KB-900脫色搖床 海門市其林貝爾儀器制造有限公司;微生物全自動(dòng)生長曲線分析儀 芬蘭Bioscreen公司。
1.3.1 阪崎克羅諾腸桿菌菌懸液制備
將凍存于-80 ℃冰箱中的阪崎克羅諾腸桿菌于胰蛋白胨大豆瓊脂(tryptone soya agar,TSA)平板上活化(37 ℃、12 h),隨后挑取單菌落于胰蛋白胨大豆肉湯(tryptone soya broth,TSB)培養(yǎng)液中并置于恒溫?fù)u床中培養(yǎng)8 h(130 r/min),使菌體處于對(duì)數(shù)生長期。使用pH 7.2磷酸鹽緩沖溶液(phosphate buffered solution,PBS)清洗并懸浮菌體,最后使用TSB調(diào)整菌懸液,使菌體濃度約為108CFU/mL,備用。
1.3.2 原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌MIC和MBC的測(cè)定
MIC的測(cè)定參照Wiegand等[22]采用的液體稀釋法,并略有修改。具體如下:利用等倍稀釋法配制原兒茶醛質(zhì)量濃度分別為0、0.125、0.25、0.5、1、2、4 mg/mL的TSB溶液,并將其按照質(zhì)量濃度梯度從高到低的順序加入至96 孔板中(每孔100 μL)。將1.3.1節(jié)中菌懸液稀釋400 倍至菌體濃度為5×105CFU/mL,隨后加入100 μL至各小孔中混勻(最終菌體濃度為2.5×105CFU/mL),實(shí)驗(yàn)設(shè)置TSB含質(zhì)量分?jǐn)?shù)1%,DMSO作為空白對(duì)照組用以校正溶劑光密度。隨即將96 孔板放入酶標(biāo)儀中測(cè)定630 nm波長處光密度,于37 ℃培養(yǎng)24 h后取出再次測(cè)定。經(jīng)過24 h培養(yǎng)后,光密度變化小于0.05所對(duì)應(yīng)的原兒茶醛的最小質(zhì)量濃度即為MIC。將高于或等于MIC且能夠使菌體濃度降低3 個(gè)對(duì)數(shù)值的原兒茶醛的最小質(zhì)量濃度定為MBC[23]。
1.3.3 原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌SIC的測(cè)定
實(shí)驗(yàn)選用阪崎克羅諾腸桿菌ATCC29544進(jìn)行后續(xù)研究。參照Li Guanghui等[24]的方法,將1.3.1節(jié)中制備的菌懸液加入至百孔蜂窩板中(每孔125 μL)。隨后,每孔加入125 μL使用TSB(含質(zhì)量分?jǐn)?shù)1% DMSO)溶解的原兒茶醛溶液,使原兒茶醛質(zhì)量濃度分別為MIC、1/2、1/4、1/5、1/10、1/20、1/40、1/50、1/100 MIC和1/200 MIC。實(shí)驗(yàn)設(shè)置不含原兒茶醛的菌懸液(含質(zhì)量分?jǐn)?shù)1% DMSO)作為陰性對(duì)照組,設(shè)置TSB肉湯(含質(zhì)量分?jǐn)?shù)1% DMSO)作為空白對(duì)照組,每組設(shè)置4 個(gè)平行。同時(shí),于百孔蜂窩板周圍加入無菌水以保證樣品濕度。最后,將樣品置于全自動(dòng)生長曲線分析儀,于37 ℃條件下每隔1 h測(cè)定24 h內(nèi)各孔光密度值并繪制生長曲線,最終選擇低于MIC且對(duì)細(xì)菌生長無明顯抑制作用的原兒茶醛質(zhì)量濃度為SIC。
1.3.4 原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌泳動(dòng)運(yùn)動(dòng)能力的影響
泳動(dòng)實(shí)驗(yàn)參照Di Bonaventura等[25]采用的軟瓊脂平板法。首先,按照營養(yǎng)配方制備泳動(dòng)營養(yǎng)平板,具體如下:質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.3%瓊脂、25 g/L的LB肉湯加水溶解后于121 ℃下高壓蒸汽滅菌。待培養(yǎng)基溫度降至50 ℃左右時(shí)加入原兒茶醛使其質(zhì)量濃度分別為1/50、1/100 MIC和1/200 MIC,同時(shí)設(shè)置不含原兒茶醛組進(jìn)行對(duì)照。泳動(dòng)營養(yǎng)平板冷卻30 min后,取5 μL 1.3.1節(jié)中制備的菌液于平板中央,37 ℃培養(yǎng)10 h后取出平板。使用凝膠成像系統(tǒng)進(jìn)行拍照,并計(jì)算泳動(dòng)圈直徑。
1.3.5 原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌生物被膜形成能力的影響
原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌生物被膜形成能力影響的測(cè)定參照Du Wenfang等[26]的方法,具體方法如下:按照前述1.3.1節(jié)中方法制備菌懸液并調(diào)整OD600nm=1(菌懸液濃度約為109CFU/mL)。隨后,配制質(zhì)量濃度分別為0、1/50、1/100、1/200 MIC的原兒茶醛-菌液混合液,設(shè)置不含菌液和原兒茶醛的TSB為空白對(duì)照組(每孔250 μL),并于12 ℃和25 ℃下分別培養(yǎng)24、48、72 h。在24、48、72 h后測(cè)定各孔在630 nm波長處的光密度,吸出菌液后使用無菌水漂洗一次,烘干后依次使用1 g/100 mL結(jié)晶紫溶液染色、無菌水漂洗及體積分?jǐn)?shù)33%冰乙酸溶解生物被膜-結(jié)晶紫復(fù)合體。最后,測(cè)定每孔在570 nm波長處光密度,使用生物被膜形成指數(shù)(specific biofilm formation,SBF)表征不同質(zhì)量濃度原兒茶醛作用下的生物被膜形成能力,SBF按下式計(jì)算。
1.3.6 原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌黏附及侵入Caco-2細(xì)胞影響的測(cè)定
本實(shí)驗(yàn)參照Shi Chao等[27]方法,并略有修改。首先,將濃度為1×105cells/mL并處于對(duì)數(shù)生長期的Caco-2細(xì)胞接種于24 孔細(xì)胞培養(yǎng)板中恒溫培養(yǎng)18 h,使用無菌PBS輕柔清洗3 次。取1.3.1節(jié)中菌懸液,并添加原兒茶醛溶液,使原兒茶醛的質(zhì)量濃度分別為0、1/50、1/100、1/200 MIC,將樣品置于37 ℃恒溫?fù)u床(100 r/min)培養(yǎng)6 h。取出樣品進(jìn)行離心(5 000×g、5 min、4 ℃),使用10% FBS的DMEM培養(yǎng)液稀釋菌體濃度至106CFU/mL。向預(yù)先培養(yǎng)的細(xì)胞中每孔分別加入1 mL菌懸液后離心(600×g、5 min),隨后將樣品放入37 ℃、5% CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱中恒溫培養(yǎng)1 h。
在黏附實(shí)驗(yàn)中,于1 h后取出樣品并吸取孔板內(nèi)液體,使用無菌PBS清洗細(xì)胞3 次。向每孔中加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.1% Triton X-100,置于4 ℃下處理20 min后使細(xì)胞裂解,使用無菌PBS以10 倍梯度稀釋后進(jìn)行涂布,于37 ℃培養(yǎng)24 h后計(jì)算黏附Caco-2細(xì)胞的菌體數(shù)量,以各質(zhì)量濃度原兒茶醛作用菌體黏附細(xì)胞的細(xì)菌總數(shù)/對(duì)照組細(xì)菌總數(shù)進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。
在侵入實(shí)驗(yàn)中,于1 h后取出樣品并吸取孔內(nèi)液體,使用無菌PBS清洗細(xì)胞一次。向每孔中加入1 mL含有100 μL/mL慶大霉素的1% FBS的DMEM培養(yǎng)液,于37 ℃、5% CO2環(huán)境下培養(yǎng)30 min。隨后吸取孔中液體使用無菌PBS清洗3 次,向每孔中加入0.1% Triton X-100并置于4 ℃下作用20 min以裂解細(xì)胞。最后,使用無菌PBS以10 倍梯度稀釋進(jìn)行涂布,37 ℃下培養(yǎng)24 h后計(jì)算侵入Caco-2細(xì)胞的菌體數(shù)量,以各質(zhì)量濃度原兒茶醛作用菌體侵入細(xì)胞的細(xì)菌總數(shù)/對(duì)照組細(xì)菌總數(shù)進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。
1.3.7 原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌毒力基因轉(zhuǎn)錄的影響
本實(shí)驗(yàn)參照韓淇安等[28]方法,并略有修改。按照前述1.3.1節(jié)中方法制備菌懸液。相同體積菌懸液中分別加入不同質(zhì)量濃度的原兒茶醛溶液使原兒茶醛終質(zhì)量濃度為1/50 MIC和1/100 MIC,將樣品于37 ℃下?lián)u床(130 r/min)培養(yǎng)8 h后進(jìn)行細(xì)菌RNA的提取。分別取1 mL原兒茶醛作用后的菌懸液于1.5 mL無酶離心管中離心(12 000 r/min、2 min),重復(fù)兩次,棄上清液,依據(jù)細(xì)菌RNA提取試劑盒Bacteria Kit RNAprep Pure說明書操作進(jìn)行細(xì)菌RNA的提取。使用PrimeScriptTMRT Master Mix(Perfect Real Time)反轉(zhuǎn)錄試劑盒將菌體RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA并于-20 ℃下保存?zhèn)溆?。按照熒光定量試劑盒配制PCR體系,反應(yīng)總體積為25 μL:SYBR?Premix Ex TaqTMII 12.5 μL、cDNA 2.0 μL、滅菌水8.5 μL,上、下游引物(10 μmol)各1.0 μL。擴(kuò)增條件為95 ℃ 30 s,1 個(gè)循環(huán);95 ℃ 5 s,60 ℃ 30 s,40 個(gè)循環(huán);95 ℃ 15 s,60 ℃ 30 s,71 個(gè)循環(huán)。采用2-ΔΔCt法進(jìn)行數(shù)據(jù)處理[29],評(píng)估相關(guān)毒力基因的轉(zhuǎn)錄量。
實(shí)驗(yàn)均進(jìn)行3 次重復(fù),實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)處理使用SPSS軟件。數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(n=3),采用Duncan's ANOVA對(duì)結(jié)果間的顯著性進(jìn)行比較。平均值間差異若達(dá)到P≤0.05則認(rèn)為顯著,P≤0.01則認(rèn)為極顯著。
實(shí)驗(yàn)選取兩株標(biāo)準(zhǔn)菌株及4 株嬰幼兒配方米粉和奶粉中的分離菌用于測(cè)定原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌MIC和MBC。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明(表2),原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌有著良好的抑菌和殺菌效果,對(duì)6 株實(shí)驗(yàn)菌株的MIC和MBC均為2 mg/mL。
阪崎克羅諾腸桿菌ATCC29544常用于菌體毒力因子的研究,且具有本研究所探究的毒力因子表型和基因?qū)W特征[27],因此選擇ATCC29544作為后續(xù)研究對(duì)象。
表2 原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌的MIC和MBCTable 2 MIC and MBC of PA against C. sakazakii
本研究通過測(cè)定原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌生長曲線的影響確定SIC,結(jié)果如圖1所示,原兒茶醛質(zhì)量濃度為MIC時(shí),菌體生長完全受到抑制;原兒茶醛質(zhì)量濃度為1/2 MIC和1/4 MIC時(shí),細(xì)菌延滯期明顯增長,并呈現(xiàn)濃度依賴性;原兒茶醛質(zhì)量濃度為1/50 、1/100、1/200 MIC時(shí),菌體生長狀況與對(duì)照組幾乎無明顯差異,該質(zhì)量濃度下細(xì)菌可正常生長和繁殖。因此,選擇1/50、1/100 MIC和1/200 MIC為研究所用的SIC。
圖1 不同質(zhì)量濃度原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌ATCC29544生長曲線的影響Fig. 1 Effect of PA on the growth curve of C. sakazakii ATCC29544
由圖2可知,阪崎克羅諾腸桿菌具有較強(qiáng)的泳動(dòng)能力,但在泳動(dòng)瓊脂平板中添加1/100 MIC和1/50 MIC的原兒茶醛后,阪崎克羅諾腸桿菌的泳動(dòng)能力極顯著降低(P<0.01),泳動(dòng)圈直徑分別為對(duì)照組的88.2%和83.8%。對(duì)照組的泳動(dòng)圈面積為36.32 cm2,經(jīng)質(zhì)量濃度為1/100 MIC和1/50 MIC原兒茶醛處理的阪崎克羅諾腸桿菌的泳動(dòng)圈面積分別為28.27 cm2和25.52 cm2;而1/200 MIC原兒茶醛能顯著降低阪崎克羅諾腸桿菌的泳動(dòng)圈直徑至對(duì)照組的92.6%(P<0.05),其泳動(dòng)圈的面積為31.17 cm2。因此,綜合分析SIC的原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌ATCC29544的泳動(dòng)能力有明顯的抑制作用。
圖2 原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌ATCC29544泳動(dòng)能力的抑制作用Fig. 2 PA inhibited swimming motility of C. sakazakii ATCC29544
原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌ATCC29544在12 ℃和25 ℃下不同時(shí)間段(24、48 h和72 h)形成生物被膜能力的影響如圖3所示。結(jié)果表明,在25 ℃下培養(yǎng)24 h后阪崎克羅諾腸桿菌的生物被膜形成能力最強(qiáng)。與對(duì)照組相比,不同質(zhì)量濃度的原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌ATCC29544的生物被膜形成能力均有顯著的抑制作用(P<0.05),并且抑制效果呈現(xiàn)濃度依賴性:例如在72 h時(shí),未經(jīng)原兒茶醛作用的阪崎腸桿菌生物被膜SBF為0.87±0.05,經(jīng)1/200、1/100 MIC和1/50 MIC的原兒茶醛處理的阪崎腸桿菌生物被膜SBF分別降低至0.54±0.05、0.52±0.09和0.46±0.03。
2)阿卡狄亞式,即通過追溯藝術(shù)的黃金年代——古代與盛期文藝復(fù)興時(shí)期,往現(xiàn)代城市中添加歷史化的能喚起人烏托邦式想象的尺度。
12 ℃下阪崎腸桿菌生物被膜形成能力的最佳時(shí)間仍為24 h。原兒茶醛對(duì)阪崎腸桿菌的生物被膜形成能力有著顯著的抑制作用(P<0.05),并隨著質(zhì)量濃度的升高抑制效果增強(qiáng)。在72 h時(shí),未經(jīng)原兒茶醛作用的阪崎腸桿菌生物被膜SBF為1.18±0.06。而經(jīng)1/200、1/100 MIC和1/50 MIC的原兒茶醛處理后SBF分別降低至0.92±0.12、0.78±0.12和0.67±0.06。
圖3 原兒茶醛在12 ℃(A)和25 ℃(B)對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌ATCC29544生物被膜形成能力的影響Fig. 3 Inhibitory effect of PA on biofilm formation of C. sakazakii ATCC29544 at 12 (A) and 25 (B) ℃
圖4 原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌ATCC29544黏附(A)及侵入(B)Caco-2細(xì)胞的影響Fig. 4 Effect of PA on adhesion (A) and invasion (B) to Caco-2 cells of C. sakazakii ATCC29544
由圖4A可知,原兒茶醛能夠顯著降低細(xì)菌黏附率(P<0.05),并且呈現(xiàn)濃度依賴性。當(dāng)原兒茶醛質(zhì)量濃度為1/200 MIC時(shí),黏附阪崎腸桿菌總量相比對(duì)照組降低了1.9%;當(dāng)原兒茶醛質(zhì)量濃度為1/100 MIC及1/50 MIC時(shí),細(xì)菌黏附率分別下降了76.7%和88.9%,并與對(duì)照組呈現(xiàn)極顯著差異(P<0.01)。
由圖4B可知,原兒茶醛對(duì)細(xì)菌侵入Caco-2細(xì)胞的能力具有明顯的抑制作用,并隨著質(zhì)量濃度的增加抑制效果加強(qiáng)。與對(duì)照組相比,當(dāng)原兒茶醛質(zhì)量濃度為1/200 MIC和1/100 MIC時(shí),阪崎克羅諾腸桿菌侵入率分別降低至60.6%和50.0%,并與對(duì)照組呈現(xiàn)顯著差異(P<0.05);當(dāng)原兒茶醛濃度為1/50 MIC時(shí),細(xì)菌侵入率降低至27.3%,與對(duì)照組呈現(xiàn)極顯著差異(P<0.01)。
表3 原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌相關(guān)毒力基因表達(dá)的影響Table 3 Effect of PA on the expression of virulence genes in C. sakazakii
由表3可知,當(dāng)原兒茶醛質(zhì)量濃度為1/50 MIC和1/100 MIC時(shí)能夠下調(diào)與阪崎腸桿菌泳動(dòng)運(yùn)動(dòng)性(flhD、fliD、flgJ、motA、motB)、生物被膜(bcsA)、黏附及侵入宿主細(xì)胞能力(ompA、ompX)和內(nèi)毒素(lpxB)相關(guān)毒力基因的轉(zhuǎn)錄量。原兒茶醛質(zhì)量濃度在1/50 MIC時(shí)對(duì)相關(guān)毒力基因轉(zhuǎn)錄量的抑制作用比質(zhì)量濃度在1/100 MIC時(shí)更加明顯。編碼阪崎克羅諾腸桿菌內(nèi)毒素基因(lpxB)和生物被膜基因(bcsA),及部分鞭毛合成基因(flgJ、fliD)相比于實(shí)驗(yàn)中其他致病基因,轉(zhuǎn)錄過程受原兒茶醛影響更加明顯。
本研究首先通過測(cè)定MIC和MBC初步評(píng)價(jià)了原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌的抑殺效果,并選擇1/50、1/100 MIC和1/200 MIC為實(shí)驗(yàn)所用SIC。隨后選取了原兒茶醛處理后亞抑制態(tài)的菌體進(jìn)行毒力因子抑制機(jī)理的研究。結(jié)果表明,原兒茶醛對(duì)本研究中使用的阪崎腸桿菌的MIC和MBC均為2 mg/mL,可見該天然產(chǎn)物抑菌作用良好。已有學(xué)者探究了其他植物源活性物質(zhì)對(duì)阪崎腸桿菌的抑菌效果:馬蘭提取物丁香酸及烏蕨葉提取物質(zhì)原兒茶酸對(duì)阪崎腸桿菌ATCC29544的MIC為5 mg/mL[2,30],阿魏莖根提取物阿魏酸對(duì)阪崎腸桿菌ATCC29544的MIC為2.5 mg/mL[31]。因此,在諸多植物源化合物中原兒茶醛對(duì)阪崎腸桿菌的抑制效果良好。
細(xì)菌的運(yùn)動(dòng)能力有助于菌體生物被膜的形成及菌體與宿主的相互作用,從而增強(qiáng)菌體的致病能力[32]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,原兒茶醛能夠顯著或極顯著減小阪崎腸桿菌的泳動(dòng)圈直徑,能夠有效抑制其運(yùn)動(dòng)性,同時(shí),實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)與阪崎腸桿菌鞭毛合成或運(yùn)動(dòng)功能相關(guān)的基因(motA、motB、fliD、flgJ、flhD等)轉(zhuǎn)錄量顯著下調(diào)。類似地,Inamuco等[33]證明香芹酚能夠使沙門氏菌蛋白合成受阻從而降低致病菌的運(yùn)動(dòng)能力;Amalaradjou等[20]也證明肉桂醛能夠影響多種與運(yùn)動(dòng)相關(guān)基因的表達(dá)而使其運(yùn)動(dòng)區(qū)域面積顯著降低。本實(shí)驗(yàn)中下調(diào)基因motA和motB是鞭毛基本結(jié)構(gòu)——基體組成蛋白的必需基因,另外flhD操縱子的表達(dá)水平在細(xì)菌的運(yùn)動(dòng)速度控制中起著“樞紐”的作用[34-35]。因此,猜測(cè)原兒茶醛通過影響編碼鞭毛蛋白的基因表達(dá)或鞭毛功能從而降低阪崎腸桿菌的運(yùn)動(dòng)能力。
在生物被膜形成能力實(shí)驗(yàn)中,選取了對(duì)食品生產(chǎn)及生活具有指導(dǎo)意義的實(shí)驗(yàn)溫度:12 ℃是歐洲議會(huì)和理事會(huì)于2004年制定的食品衛(wèi)生規(guī)則條例中食品工業(yè)操作環(huán)境溫度,25 ℃即普通環(huán)境下的室溫。生物被膜在形成過程中會(huì)經(jīng)歷游離態(tài)、可逆黏附、不可逆黏附、被膜成熟及主動(dòng)分散5 個(gè)階段[36]。本研究結(jié)果表明,在實(shí)驗(yàn)溫度下生物被膜形成能力24 h時(shí)達(dá)到最大,隨后SBF顯著降低,推測(cè)該結(jié)果可能是由于生物被膜培養(yǎng)一段時(shí)間后進(jìn)入主動(dòng)分散階段。結(jié)果表明:在實(shí)驗(yàn)溫度(12 ℃及25 ℃)下,原兒茶醛能夠極顯著降低阪崎腸桿菌生物被膜形成能力。類似地,Xu Yunfeng等[37]發(fā)現(xiàn)SIC 1/64、1/32 MIC下的安石榴苷能夠使金黃色葡萄球菌生物被膜形成指數(shù)由3.7分別下降至1.9和0.4;Du Wenfang等[26]研究認(rèn)為1/10 MIC濃度的表沒食子兒茶素沒食子酸酯可顯著降低單增李斯特菌ATCC19114在15、30、37 ℃下的生物被膜形成量。在本研究中,原兒茶醛能夠使與生物被膜形成的相關(guān)毒力基因下調(diào),包括鞭毛合成基因(如motA、motB、fliD、flgJ、flhD等)以及生物被膜結(jié)構(gòu)組成基因(如bcsA)。bcsA作為纖維素合酶催化亞基的編碼基因,在纖維素合成及促進(jìn)腸桿菌科胞外多糖生成中至關(guān)重要[38]。Amalaradjou等[20]實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示750 μmol/L的反式肉桂醛使阪崎腸桿菌與鞭毛相關(guān)的基因fliD、flgJ、flhD轉(zhuǎn)錄量極顯著下降。因此,推斷原兒茶醛能夠通過影響生物被膜形成相關(guān)基因的表達(dá)來實(shí)現(xiàn)對(duì)其毒力的調(diào)控。
黏附及侵入腸上皮細(xì)胞是阪崎克羅諾腸桿菌致病的關(guān)鍵步驟,由阪崎腸桿菌所引起的腦膜炎、菌血癥等癥狀均與該毒力密切相關(guān)。本研究結(jié)果表明,原兒茶醛能夠降低阪崎腸桿菌黏附及侵入Caco-2細(xì)胞的能力。多種天然物質(zhì)具有抑制致病菌黏附或/和侵入宿主細(xì)胞的功能:Li Guanghui等[24]的研究結(jié)果表明安石榴苷可有效降低沙門氏菌黏附Caco-2細(xì)胞的能力;Fan Qiuxia等[39]研究顯示1/32 MIC和1/16 MIC下的輔酶Q0使李斯特菌CMCC54004黏附及侵入Caco-2細(xì)胞能力下降,并且相關(guān)毒力基因actA、inlA、inlB、plcA、plcB轉(zhuǎn)錄水平也呈現(xiàn)下降趨勢(shì)。OmpA和OmpX是阪崎腸桿菌黏附及侵入宿主過程中的重要功能膜蛋白,OmpA作為細(xì)胞外膜極其重要的結(jié)構(gòu)蛋白質(zhì),通過維持細(xì)胞菌體形態(tài)和親水化合物的跨膜傳遞,從而影響菌體黏附宿主的過程[40],OmpX的生物學(xué)功能尚不清楚,但有研究者認(rèn)為它能與腸桿菌科細(xì)胞表面的外來蛋白結(jié)合,從而引起細(xì)胞的防御機(jī)制,這種結(jié)合親和力用于實(shí)現(xiàn)細(xì)胞黏附和侵襲[41]。研究顯示,原兒茶醛可下調(diào)ompA和ompX等相關(guān)毒力基因轉(zhuǎn)錄水平,因此,猜測(cè)原兒茶醛能夠通過影響ompA和ompX的轉(zhuǎn)錄量從而干擾阪崎腸桿菌對(duì)腸上皮細(xì)胞的黏附和侵入。
本研究以原兒茶醛為對(duì)象,以阪崎克羅諾腸桿菌為作用主體,探究了原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌多種毒力因子的抑制作用。首先測(cè)定原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌的MIC和MBC,并確定了SIC;隨后探究了原兒茶醛對(duì)菌體泳動(dòng)運(yùn)動(dòng)能力、生物被膜形成、黏附及侵入Caco-2細(xì)胞的影響;最后利用RT-qPCR技術(shù)檢測(cè)了原兒茶醛對(duì)菌體毒力相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄量的影響。結(jié)果表明原兒茶醛對(duì)本研究中6 株阪崎克羅諾腸桿菌的MIC和MBC均為2 mg/mL,SIC的原兒茶醛能夠顯著抑制菌體泳動(dòng)運(yùn)動(dòng)能力,減弱菌體在12 ℃和25 ℃下生物被膜的形成能力,并能夠降低菌體黏附及侵入Caco-2細(xì)胞的能力,同時(shí)能夠下調(diào)9 個(gè)相關(guān)毒力基因的轉(zhuǎn)錄量。本研究結(jié)果表明,原兒茶醛對(duì)阪崎克羅諾腸桿菌的毒力因子有著良好的抑制作用,有潛力作為抗生素補(bǔ)充劑或抗毒性物質(zhì),從而達(dá)到預(yù)防及控制阪崎克羅諾腸桿菌感染性疾病的目的。