馬布平,李朝東,聞紹峰,曹 瑤,陳孟迪,羅祥英
(云南菌視界生物科技有限公司,云南 昆明 650200)
裂褶菌(Schizophyllum communeFr.),俗稱白參,屬于傘菌目(Agaricales) 裂褶菌科(Schizophyllaceae) 裂褶菌屬 (Schizophyllum)[1]。野生資源分布廣,食用價值高,但隨著生活水平提高,野生裂褶菌的口感已不符合市場需求,人工栽培的裂褶菌在口感上得到很大的改善,且克服了子實體單生、細小的缺點。
國內裂褶菌相關研究始于20世紀80年代,歷經二十多年。2006年,在福建省古田縣實現(xiàn)了裂褶菌商業(yè)化栽培,發(fā)展速度慢[2]。2017年,本課題組進行了裂褶菌工廠化栽培技術研究,并取得一定成果,但相對于金針菇、杏鮑菇等成熟的工廠化栽培品種來看,裂褶菌工廠化栽培需要探索的內容還很多,首要急需解決的是液體菌種的生產。
近年來,裂褶菌多糖成為研究熱點,在抗腫瘤、護膚等方面有所進展,也有相應的產品出現(xiàn),比如抗腫瘤藥物“Sizofiran”及護膚產品“IOPE”[3]。裂褶菌多糖主要是從發(fā)酵液中獲得菌絲,利用熱水法、超聲波法實現(xiàn)多糖提取[4],而關于裂褶菌液體發(fā)酵的相關研究較少,無系統(tǒng)的介紹。通過本試驗,希望可以為裂褶菌深層發(fā)酵提供一定的參考。
試驗材料:麥麩、黃豆粉、馬鈴薯、蛋白胨、磷酸二氫鉀、硫酸鎂、棉籽殼、麥麩、木屑、玉米粉、石灰;裂褶菌母種由云南菌視界生物科技有限公司保存。
主要儀器設備:發(fā)酵罐、pH計、搖床、滅菌鍋、烘箱、游標卡尺、電子天平、錐形瓶等。
1.2.1 裂褶菌種子液培養(yǎng)條件優(yōu)化
1) 培養(yǎng)基篩選
種子液是液體菌種制備的關鍵,其菌絲活性及菌絲量直接關系到液體菌種質量。從前期不斷試驗得到的以下4個配方中篩選出適合裂褶菌菌絲生長的種子液,培養(yǎng)溫度23℃,培養(yǎng)時間為4 d,接種時接種塊大小統(tǒng)一為直徑3.8 mm,接種量為10個。
馬鈴薯培養(yǎng)基:馬鈴薯 3%、葡萄糖 1.5%、KH2PO40.2%、MgSO40.15%;麥麩培養(yǎng)基:麥麩3%、葡萄糖 1.5%、KH2PO40.2%、MgSO40.15%;玉米粉培養(yǎng)基:玉米粉 3%、葡萄糖1.5%、KH2PO40.2%、MgSO40.15%;黃豆粉培養(yǎng)基:黃豆粉3%、葡萄糖 1.5%、KH2PO40.2%、MgSO40.15%。
干重測定:將培養(yǎng)好的液體菌液300 mL過濾,清水沖洗菌絲球,在烘箱中80℃烘干至恒重,精確稱量,每個處理3次重復,計算菌絲干重的平均值。
菌球直徑測定:每一種培養(yǎng)液中選取15個菌球排成一長列,測量總長度,計算平均值。
菌落數(shù)測定:移液槍吸取液體菌種1 mL,加入9 mL無菌水稀釋,再取1 mL稀釋的液體菌種涂布在PDA培養(yǎng)基上,25℃條件培養(yǎng),記錄萌發(fā)時間及培養(yǎng)36 h的菌落萌發(fā)數(shù)。
2) 培養(yǎng)條件優(yōu)化
結合種子液培養(yǎng)基篩選情況,選擇一種培養(yǎng)基作為基準培養(yǎng)基,單因素篩選 pH (4.5、5.0、5.5、6.0、6.5、7.0、7.5)、溫度 (20℃、22℃、24℃、26℃、28℃)、轉速 (110 r·min-1、130 r·min-1、150 r·min-1、170 r·min-1、190 r·min-1)以及通氣量(搖瓶使用1層、2層及不透氣封口膜封口),測定指標同 1)。
1.2.2 深層發(fā)酵優(yōu)化
發(fā)酵罐培養(yǎng)目的是菌絲擴大培養(yǎng),滿足生產需要。以種子液最佳培養(yǎng)基作為發(fā)酵培養(yǎng)基,培養(yǎng)條件參照1.2.1中培養(yǎng)條件優(yōu)化。
以發(fā)酵罐中培養(yǎng)基體積的2%、3%、4%、5%提前制備種子液,接種后,每天測量發(fā)酵液的pH,以推測菌絲生長過程中分泌酸性物質的情況,指標測定同1.2.1中培養(yǎng)基篩選外,還需測定液體菌種在培養(yǎng)料中的生長情況,包括生長勢及生長速度。指標測定時間為接種后的第3天、第4天,旨在得到適合的種子液接入量以及培養(yǎng)時間。
根據(jù)1.2.1試驗得到的結果,在發(fā)酵罐中擴大培養(yǎng),發(fā)酵罐內蒸汽壓力達到121℃、0.105 MPa,保持時間30 min~40 min,以達到徹底滅菌的效果。培養(yǎng)條件,冷卻至室溫接種,并調節(jié)罐壓保持在0.02 MPa~0.04 MPa,通氣量在 1 ∶(0.5~1.2)(料液體積 ∶空氣體積)。記錄數(shù)據(jù),測定指標。
1.2.3 出菇驗證
根據(jù)本試驗中優(yōu)化的培養(yǎng)條件培養(yǎng)的液體菌種,按照一定接種量接種到栽培袋(15 cm×55 cm)中,記錄吃料情況、子實體個數(shù)、出菇周期、出菇整齊度、生物學效率及鮮菇農藝性狀等指標,以評價液體菌種質量。
在4種種子液培養(yǎng)基中,其菌絲干重、萌發(fā)情況、菌絲球直徑均有所差異,詳見表1。
表1 菌絲在不同配方中的生長情況Tab.1 Growth of mycelium in different formula
從表1可以看出,馬鈴薯、麥麩、玉米粉及黃豆粉均能為裂褶菌菌絲生長提供一定的營養(yǎng),相對于常見的以馬鈴薯汁液為主要培養(yǎng)基添加物外,使用麥麩、玉米粉、黃豆粉更為簡便,用時較短,利用這些汁液作為培養(yǎng)基添加物是較好的選擇。根據(jù)液體菌種指標檢測結果可以看出,菌絲在配方2中生長相對較好,其干重達0.17 g·300-1mL-1,且菌絲活力好,萌發(fā)快,在PDA培養(yǎng)基中僅18 h即可萌發(fā),菌絲球直徑相對適中,不會造成管道堵塞。此外,由于裂褶菌菌絲發(fā)酵過程中會產生一定量的酸,而黃豆粉遇酸會凝結成豆腐塊,不適宜作為培養(yǎng)裂褶菌的液體培養(yǎng)基添加物。
在發(fā)酵過程中,發(fā)現(xiàn)發(fā)酵液氣味各異,在配方1和配方2中,酸味較配方3和配方4輕,可能與菌絲在不同配方中產酸能力有關,總體來說,發(fā)酵液酸味小的培養(yǎng)基培養(yǎng)的菌絲優(yōu)于酸味大的培養(yǎng)基。綜上,適宜裂褶菌菌絲生長的液體培養(yǎng)基為配方2。
2.2.1 pH
不同pH對種子液的影響情況見表2。
表2 不同pH對種子液的影響Tab.2 Effect of different pH values on spawn liquid
從表2可知,總體看弱酸條件更適宜裂褶菌菌絲生長,pH在5.0~6.5,菌絲干重、活力均優(yōu)于強酸及弱堿條件培養(yǎng)的菌絲。隨著pH逐漸增大,菌絲干重變化明顯,呈現(xiàn)出“少-多-少”的規(guī)律,在pH 4.70 時,干重僅 0.053 g·300-1mL-1,此時的菌絲活力較弱,萌發(fā)時間不低于24 h,菌落數(shù)僅5個;pH達到 5.50 時,菌絲干重也到達最大 0.270 g·300-1mL-1,菌絲活力旺盛,萌發(fā)時間僅為18 h,生長勢好。其后,菌絲干重逐漸下降,到pH 7.50時,菌絲干重低于 0.073 g·300-1mL-1,菌絲量極少。
在菌絲發(fā)酵過程中,液體氣味跟pH有關,pH越小,發(fā)酵液酸味越小,反之越大,指標測定結果表明,裂褶菌菌絲在偏弱酸性培養(yǎng)基中生長勢好,活力強。在弱堿性環(huán)境中菌絲活性降低,生長勢差,實際生產過程中,可根據(jù)發(fā)酵液酸味輕重程度作為裂褶菌菌絲生長情況的一個重要指標。
2.2.2 通氣
為驗證通氣量對種子液培養(yǎng)的影響,設計了3個不同的處理,結果見表3。
表3 通氣對種子液的影響Tab.3 Effect of ventilation on spawn liquid
由表3可知,1層封口膜培養(yǎng)的菌絲干重比2層封口膜和不透氣封口膜培養(yǎng)的菌絲干重多出0.019 g·300-1mL-1、0.023 g·300-1mL-1,且菌絲活力好,萌發(fā)時間均為18 h,菌落數(shù)差異不大。此外,3個處理的pH均有所下降,但變化幅度小。綜上,培養(yǎng)4 d的種子液對于通氣量需求不大,因此,在制備種子液時通氣無需特別處理。
2.2.3 溫度
不同溫度對種子液的影響情況見表4。
表4 溫度對種子液的影響Tab.4 Effect of temperature on spawn liquid
由表4可知,總體來看,隨著溫度升高,菌絲干重及菌落數(shù)均呈現(xiàn)出先上升后下降的趨勢,而pH保持逐漸降低趨勢。在溫度為20℃、22℃時,菌絲量極少,菌絲干重量分別為 0.097 g·300-1mL-1、0.153 g·300-1mL-1,分別不到 26℃時菌絲干重的 1/3、1/2,菌落數(shù)相對較少。溫度升高到24℃時,菌絲干重為0.247 g·300-1mL-1,此時的菌絲萌發(fā)情況較好,菌落數(shù)最多,表明此時的菌絲活性強,隨著溫度繼續(xù)增加至26℃和28℃時,菌絲干重達到最大為0.35 g·300-1mL-1并保持恒定,但菌落數(shù)逐漸減少,這與溫度高、菌絲老化嚴重有關。因此,適合裂褶菌種子液培養(yǎng)的最適溫度為24℃~26℃。
2.2.4 轉速
不同轉速對種子液的影響情況見表5。
表5 轉速對種子液的影響Tab.5 Effect of rotation speed on spawn liquid
由表5可知,隨著轉速增加,菌絲干重及菌落數(shù)先增加后減少,在轉速為150 r·min-1時,菌絲球直徑大,菌絲干重相對最重,菌絲活力強,萌發(fā)快,菌落數(shù)最多,且菌絲形態(tài)多呈鵝毛狀,菌絲球占少部分,發(fā)酵液中菌絲均勻;而轉速在110 r·min-1時,恰好相反。當轉速達到 170 r·min-1、190 r·min-1時,菌絲球直徑大,在搖瓶中菌絲數(shù)量少,不宜作為種子液。作為種子液來源,選擇菌絲數(shù)量多的接入發(fā)酵罐更容易增加萌發(fā)點,且培養(yǎng)的菌絲球相對均勻。綜上,適合裂褶菌種子液培養(yǎng)的轉速為150 r·min-1。
2.3.1 發(fā)酵罐接種量
在篩選出種子液配方后,按照上述條件進行種子液的制備,參照上述培養(yǎng)條件,使用發(fā)酵罐對菌絲進行擴大培養(yǎng),并且對種子液接種量進行了試驗,以保證菌絲活力旺盛同時縮短培養(yǎng)周期。根據(jù)食用菌液體菌種生產技術規(guī)程標準(DB21/T 1693-2008)中規(guī)定的食用菌液體菌種量(濕重>8 g·100-1mL-1),即可作為生產菌種。試驗驗證,35 g濕重可烘干得到1 g干重。根據(jù)實際情況,菌絲球直徑大小無具體標準,在菌絲球均勻、濃度正常、活力好的情況下,保證菌絲球不會造成管道堵塞均可。
從接種量來看,當接種量為2%、3%、4%、5%時,培養(yǎng)3 d和4 d的菌絲,平均干重分別是0.578 g·300-1mL-1、1.137 g·300-1mL-1、1.488 g·300-1mL-1、1.428 g·300-1mL-1,具體見圖 1。
圖1 菌絲干重情況Fig.1 The dry weight of mycelial
由圖1可知,接種量為2%時,菌絲量少(濕重<8 g·100-1mL-1);接種量增至3%時,菌絲量增加了近2倍;隨后,接種量增加,菌絲量變化幅度?。?%接種量時,菌絲量達到最大,隨后呈現(xiàn)下降趨勢。從培養(yǎng)天數(shù)來看,培養(yǎng)時間越長,菌絲量越大。菌絲生長速率情況見圖2。
圖2 菌絲生長速度情況Fig.2 The growth rate of mycelial
由圖2可知,液體菌種接入培養(yǎng)料中的生長速度與培養(yǎng)天數(shù)、接種量均有關。在菌絲培養(yǎng)3 d時,隨接種量增大,菌絲生長速度先增大,后逐漸降低,在接種量3%時達到最大,為0.761 cm·d-1。在菌絲培養(yǎng)4 d時,隨接種量增大,菌絲生長速度也呈現(xiàn)出相同規(guī)律,在接種量4%時達到最大,為0.741 cm·d-1,但仍小于培養(yǎng)3 d時的最大生長速度。菌絲萌發(fā)情況見圖3。
圖3 菌絲萌發(fā)情況Fig.3 Mycelial germination situation
計算菌落萌發(fā)時間均為涂平板后的第24小時,由圖3可以看出,對接種量而言,接種量增大,菌落數(shù)呈現(xiàn)出先增加后減少的趨勢。在接種量4%時,菌落數(shù)最多,表明此時的菌絲活力好,相同時間條件下菌落萌發(fā)數(shù)多。接種量2%、3%時,由于菌絲量較少,菌落萌發(fā)數(shù)少于接種量4%時,但在PDA培養(yǎng)基上培養(yǎng)超過48 h后,菌落數(shù)均呈指數(shù)級上升;在接種量5%時,菌絲量多,可能由于菌絲活性下降,多數(shù)菌絲萌發(fā)時間稍有滯后,只有部分菌絲萌發(fā)。從培養(yǎng)時間來看,培養(yǎng)時間越長,菌落數(shù)增多,但相差不明顯。綜上,4%的接種量培養(yǎng)3 d或者4 d對于菌絲生長最合適。菌絲擴大培養(yǎng)情況見表6。
表6 菌絲擴大培養(yǎng)情況Tab.6 Mycelial expansion cultivation situation
由表6可知,接種量、培養(yǎng)天數(shù)不同,菌絲球直徑及菌絲形態(tài)有所差異,菌絲球直徑隨接種量、培養(yǎng)天數(shù)增加而增多,且鵝毛狀菌絲與菌絲球比例也相對增多。但在接種量為5%、培養(yǎng)天數(shù)為4 d時,菌絲球直徑達7.03 mm,使用時會造成管道堵塞且菌絲老化明顯。因此,接大接種量、延長培養(yǎng)時間并不是最好的處理。
綜上,發(fā)酵罐擴大培養(yǎng)裂褶菌菌絲的條件可設定為溫度24℃、接種量為3%或4%、培養(yǎng)3 d,按照此培養(yǎng)方法得到的液體菌種濕重分別為12.1 g·100-1mL-1、14.5 g·100-1mL-1,且活力好,菌絲球及菌絲大小均勻、生長速度快,可用于生產。
2.3.2 發(fā)酵終止pH變化趨勢分析
從種子液試驗結果來看,發(fā)酵終止pH呈弱酸性時菌絲生長好,為進一步了解pH與發(fā)酵過程中菌絲生長情況之間的聯(lián)系,對發(fā)酵液的pH進行檢測,結果見圖4。
圖4 pH變化趨勢Fig.4 pH change trend
由圖4可知,在接種前培養(yǎng)基自然pH均維持在6.2~6.3,接種前2 d的pH變化趨勢不大,但接種量為5%時,培養(yǎng)第2天的pH呈直線下降。在培養(yǎng)3 d時,pH相差較大,這與菌絲量多少有關,此時5%接種量對應的pH已低于5.0,而2%接種量對應的pH仍維持在6.0以上。由 2.3.1分析結果來看,此階段不建議使用2%的液體菌種,而3%、4%接種量對應的pH均在5.5左右,這與種子液結果中表明的pH為5.5時,菌絲生長良好相一致,是合格的液體菌種。在培養(yǎng)4 d時,4個處理的pH接近,均在5.0~5.5,結合表6中的結果,此時的菌絲量較大,2%接種量的菌絲量與第3天相比高5倍。因此,培養(yǎng)條件相同,無論接種量多少,pH維持在5.0~5.5,表明菌絲量已達到濕重>8 g·100-1mL-1,可用于生產。
綜上,裂褶菌液體菌種培養(yǎng)過程中可以通過pH來監(jiān)測液體菌種生長情況。結合以上試驗結果,以配方2為液體培養(yǎng)基,在溫度24℃、培養(yǎng)基初始pH自然或者調節(jié)到6.0,在pH為5.5左右時完成培養(yǎng),此方法簡單,操作便捷。
依據(jù)上述試驗參數(shù)培養(yǎng)的液體菌種用于栽培出菇,菌種接入到培養(yǎng)料中,僅18 h就萌發(fā),時間短,且菌絲生長旺盛,生長勢好,養(yǎng)菌時間為9 d即可誘導出菇。由于工廠化栽培成本高,本次試驗選擇粗放的管理條件。在此情況下仍出菇整齊,朵型(菊花型)與工廠化栽培的一致,顏色灰白,從接種到采收整個周期為23 d~25 d,采收子實體60個,生物學效率達14.7%。出菇情況如圖5所示。
圖5 出菇情況Fig.5 Mushroom production
圖5試驗結果表明,液體菌種生長快,萌發(fā)點多,出菇時間比使用傳統(tǒng)的固體菌種縮短1 d~2 d;簡易廠房栽培裂褶菌,其產量雖不及工廠化栽培,但仍可行,一潮菇生物學效率達14.7%,已高于傳統(tǒng)栽培產量;除菇峰整齊度及出菇周期(長)不及工廠化栽培外,其余農藝性狀差異不大。
綜上,本試驗培養(yǎng)的液體菌種用于生產是可行的。隨后,繼續(xù)將液體菌種應用到工廠化栽培中,以完善裂褶菌工廠化栽培工藝。
近年來,液體菌種已成為重點研究對象,目前國內成熟的工廠化栽培品種,如杏鮑菇、海鮮菇、金針菇等,液體菌種的研究相對透徹,推進了食用菌工廠化栽培進程。液體菌種相對于固體菌種而言,有培養(yǎng)周期短、菌齡一致、萌發(fā)快、接種速度快等優(yōu)點,是食用菌栽培、優(yōu)選、必選模式[5]。
裂褶菌栽培起步較晚,在2012年時才有商業(yè)化栽培的報導,且栽培效果并不理想。在2017年時才進行工廠化初探,并取得一定成果[6]。在這之前,有學者對裂褶菌液體菌種進行研究,但研究多集中于多糖提取,很少或幾乎未應用到栽培中,因此,使用液體菌種進行裂褶菌人工栽培這一領域的研究是脫節(jié)的。本試驗在之前的液體菌種研究基礎上創(chuàng)新性地用麥麩代替了馬鈴薯作為液體培養(yǎng)基添加物,減少成本的同時操作更方便,培養(yǎng)的菌絲活力好、長勢好;發(fā)酵液的pH可作為初步判斷液體菌種是否達到培養(yǎng)完成度的重要指標,此方法簡捷,易檢測;本研究獲得了裂褶菌液體菌種培養(yǎng)的基本工藝條件,將此條件下培養(yǎng)的液體菌種用于出菇驗證,縮短了養(yǎng)菌時間,且出菇效果要優(yōu)于傳統(tǒng)使用固體菌種,因此可以認為使用液體菌種進行栽培是可行的。后續(xù)將裂褶菌液體種投入到工廠化生產中,形成一套標準的、成熟的工藝,是亟需研究的課題。