江莉莎 郭述良

[摘要] 目的 研究噬菌體Guo1、Leo對(duì)不同模型休眠期結(jié)核分枝桿菌的裂解作用。 方法 利用ClustalX軟件作多重序列對(duì)比，尋找噬菌體Guo1、Leo的motif3基序。分別用缺氧模型及缺鉀模型建模方法構(gòu)建休眠期結(jié)核分枝桿菌模型。取缺氧及缺鉀模型誘導(dǎo)的休眠期結(jié)核菌菌液，將其分別隨機(jī)分成5組，每組設(shè)3個(gè)復(fù)管，每支試管裝2 mL菌液。再向各組試管中分別加入100 μL的異煙肼（終濃度5 μg/mL，異煙肼組）、利福平（終濃度5 μg/mL，利福平組）、噬菌體Leo（滴度2.6×108 PFU/mL，Leo組）、噬菌體Guo1（滴度3.26×108 PFU/mL，Guo1組），對(duì)照組加入等量ddH2O。利用最大可能數(shù)法，分別檢測休眠期結(jié)核菌對(duì)異煙肼、利福平的耐藥性及噬菌體對(duì)休眠期結(jié)核菌的裂解作用。 結(jié)果 噬菌體Guo1、Leo的卷尺蛋白中均含有motif3基序，且其motif3基序含6個(gè)高度保守的氨基酸殘基、1個(gè)高度保守的異亮氨酸-色氨酸位點(diǎn)。當(dāng)作用于缺氧模型休眠期結(jié)核菌時(shí)，與利福平組、異煙肼組較較，Guo1組菌量明顯減少（P < 0.05）;當(dāng)作用于缺鉀模型休眠期結(jié)核菌時(shí)，與利福平組比較，Leo組菌量明顯減少（P < 0.05）。缺鉀模型對(duì)異煙肼、利福平的耐藥率明顯高于缺氧模型。結(jié)論 相較于缺氧模型，缺鉀模型能誘導(dǎo)結(jié)核菌進(jìn)入更深的休眠狀態(tài)。噬菌體Guo1對(duì)缺氧模型誘導(dǎo)的休眠期結(jié)核菌有裂解作用，噬菌體Leo對(duì)缺鉀模型誘導(dǎo)的休眠期結(jié)核菌有裂解作用。

[關(guān)鍵詞] 噬菌體;休眠期結(jié)核菌;缺氧模型;缺鉀模型;裂解作用

[中圖分類號(hào)] R52 ? ? ? ? ?[文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼] A ? ? ? ? ?[文章編號(hào)] 1673-7210（2019）12（c）-0004-05

Lysis effect of phage Guo1 and Leo on Mycobacterium tuberculosis in the dormant stage of different models

JIANG Lisha1，2 ? GUO Shuliang1

1.Department of Respiratory and Critical Care Medicine， the First Affiliated Hospital of Chongqing Medical University， Chongqing ? 400016， China; 2.Department of Respiratory Medicine， the First Branch， the First Affiliated Hospital of Chongqing Medical University， Chongqing ? 400016， China

[Abstract] Objective To investigate the lysis effect of phage Guo1 and Leo on Mycobacterium tuberculosis in dormant stage. Methods ClustalX software was used for multiple sequence comparison. Motif3 motifs of phage Guo1 and Leo were searched. The model of Mycobacterium tuberculosis in dormant stage was constructed by hypoxia model and potassium deficiency model respectively. Hypoxic and potassium deficiency mode induce domant TB bacterial fluid， they were respectively randomly divided into 5 groups， each group was set with 3 duplicate tubes， and each tube was filled with 2 mL bacterial liquid. Then 100 liters of Isoniazid （final concentration： 5 g/mL， Isoniazid group）， Rifampicin （final concentration： 5 g/mL， Rifampicin group）， phage Leo （titer： 2.6×108 PFU/mL， Leo group）， and phage Guo1 （titer： 3.26×108 PFU/mL， Guo1 group） were added to the test tubes of each group， and the control group was added with the same amount of ddH2O. The drug resistance to Isoniazid and Rifampicin in dormant tuberculosis bacteria and the lysis of phage in dormant Tuberculosis bacteria were detected by most probable number method. Results The motif3 motif was found in the tape rule proteins of phages Guo1 and Leo， and the motif3 motif contained 6 highly conserved amino acid residues and 1 highly conserved isoleucine-tryptophan site. When used as hypoxia model for dormant Tuberculosis bacteria， compared with Rifampin group and Isoniazid group， the bacteria quantity of Guo1 group decreased significantly （P < 0.05）. Compared with Rifampicin group， the amount of bacteria in Leo group decreased significantly （P < 0.05）. The drug resistance rate of potassium deficiency model to Isoniazid and Rifampicin was significantly higher than that of hypoxia model. Conclusion Compared with hypoxia model， potassium deficiency model can induce Tuberculosis bacterium to enter deeper dormant state. Phage Guo1 has cleavage effect on dormant tuberculosis bacteria induced by hypoxia model， and phage Leo has cleavage effect on dormant Tuberculosis bacteria induced by potassium deficiency model.

[Key words] Mycobacteriophage; Mycobacterium tuberculosis; Oxygen-deficient model; Potassium-deficient model; Lysis effect

結(jié)核病病程遷延，易復(fù)發(fā)，其中內(nèi)源性復(fù)發(fā)占絕大部分，而導(dǎo)致內(nèi)源性復(fù)發(fā)的關(guān)鍵因素是休眠期結(jié)核分枝桿菌。結(jié)核分枝桿菌在不利環(huán)境下會(huì)進(jìn)入休眠狀態(tài)，休眠期結(jié)核分枝桿菌能長期潛伏，逃避機(jī)體的免疫殺傷，對(duì)經(jīng)典抗結(jié)核藥物耐藥。當(dāng)機(jī)體免疫力下降時(shí)，休眠期結(jié)核菌又重新復(fù)蘇，發(fā)展成為活動(dòng)性結(jié)核病，所以休眠期結(jié)核菌是結(jié)核病復(fù)發(fā)的根源。相關(guān)學(xué)者[1-2]發(fā)現(xiàn)卷尺蛋白中含有motif3基序的噬菌體能夠識(shí)別、感染休眠期結(jié)核菌。因此有望找到能裂解休眠期結(jié)核菌的噬菌體，為結(jié)核病治療提供新思路。

休眠期結(jié)核菌的建模方法各異，現(xiàn)已報(bào)道了缺氧模型[3]、饑餓模型[4]、酸化模型[5]、多因素模型[6]、維生素C誘導(dǎo)模型[7]、結(jié)核肉芽腫模型[8]、缺鉀模型[9]等多種休眠期結(jié)核菌體外模型，卻各有優(yōu)缺點(diǎn)。其中，缺氧模型由Wayne等[3]于1996年建立，是目前研究最透徹、應(yīng)用最廣泛的模型。缺鉀模型由Salina等[9]于2014年建立，它能誘導(dǎo)出對(duì)超高濃度（10、50 μg/mL）利福平表型耐藥的結(jié)核菌。但目前國內(nèi)尚無利用兩種模型同時(shí)構(gòu)建休眠期結(jié)核菌，并對(duì)其誘導(dǎo)表型耐藥作對(duì)比研究的報(bào)道。本研究擬尋找候選噬菌體，并驗(yàn)證其對(duì)缺氧模型及缺鉀模型兩種不同模型誘導(dǎo)的休眠期結(jié)核菌的裂解作用。

1 材料與方法

1.1 菌種

結(jié)核分枝桿菌標(biāo)準(zhǔn)株H37Rv（CMCC93004）由重慶市胸科醫(yī)院惠贈(zèng)，將其接種于中性羅氏培養(yǎng)基（珠海貝索）中培養(yǎng)4～6周后用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。分枝桿菌噬菌體Leo由加拿大拉瓦爾大學(xué)Félix d′Hérelle噬菌體中心惠贈(zèng)，分枝桿菌噬菌體Guo1由重慶醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院傳染病病原學(xué)實(shí)驗(yàn)室自行分離。

1.2 motif3基序生物信息學(xué)分析

利用ClustalX軟件，比較TM4 motif3基序及Guo1、Leo的卷尺蛋白，并進(jìn)行多重序列對(duì)比，搜索Guo1、Leo的motif3基序。

1.3 構(gòu)建休眠期結(jié)核菌模型

1.3.1 缺氧模型構(gòu)建 ?參考文獻(xiàn)[3]，略有改動(dòng)，取結(jié)核分枝桿菌于7H9液體培養(yǎng)基（BD，美國，含0.2%甘油、10% ADC及0.05% Tween80）中37℃震蕩培養(yǎng)10～15 d。取15 mL試管，向內(nèi)加入10 mL 7H9液體培養(yǎng)基;再取對(duì)數(shù)生長期的結(jié)核分枝桿菌菌液（OD595 0.4～0.6），研磨均勻，按1∶100的比例加入7H9液體培養(yǎng)基中，然后加入亞甲藍(lán)溶液（終濃度1.5 μg/mL），用橡膠塞及密封膜封閉試管口，置于37℃恒溫箱中靜止培養(yǎng)。結(jié)核分枝桿菌密閉培養(yǎng)15 d后，亞甲藍(lán)變?yōu)闊o色，亞甲藍(lán)作為無氧指示劑，變?yōu)闊o色時(shí)提示試管內(nèi)進(jìn)入完全缺氧狀態(tài)。將結(jié)核分枝桿菌密閉培養(yǎng)1年以上。一般來說，缺氧環(huán)境下培養(yǎng)超過1年的結(jié)核分枝桿菌可看作進(jìn)入休眠狀態(tài)[10]。

1.3.2 缺鉀模型構(gòu)建 ?參考文獻(xiàn)[9]，取結(jié)核分枝桿菌菌落，轉(zhuǎn)種于蘇通培養(yǎng)基（含10% ADC和0.05% Tween 80）內(nèi)，37℃震蕩培養(yǎng)10～15 d。將菌液離心（10 000 r/min），棄上清液，保留沉淀，按上述步驟，用ddH2O重復(fù)洗滌2次、保留沉淀，再用缺鉀蘇通培養(yǎng)基（含10% ADC和0.05% Tween 80）重懸所得細(xì)菌沉淀，37℃震蕩培養(yǎng)35 d。蘇通培養(yǎng)基成分（1 L，調(diào)節(jié)pH 7.0）：KH2PO4 0.5 g，MgSO4·7H2O 1.4 g，L-asparagine 4 g，甘油60 mL，枸櫞酸鐵銨0.05 g，檸檬酸鈉2 g，1% ZnSO4·7H2O液0.1 mL。缺鉀蘇通培養(yǎng)基成分（1 L，調(diào)節(jié)pH 7.0）：Na2HPO4·12H2O 8.9 g，MgSO4·7H2O 1.4 g，L-asparagine 4 g，甘油60 mL，枸櫞酸鐵銨0.05 g，檸檬酸鈉2 g，1% ZnSO4·7H2O液0.1 mL。

1.4 休眠菌模型耐藥性檢測及噬菌體對(duì)休眠菌殺菌作用

1.4.1 缺氧模型 ?參考文獻(xiàn)[9]，取缺氧模型誘導(dǎo)的休眠期結(jié)核菌菌液，研磨均勻，隨機(jī)分成5個(gè)組，每組設(shè)3個(gè)復(fù)管，每支試管裝2 mL菌液。再向各組試管中分別加入100 μL的異煙肼（終濃度5 μg/mL）、利福平（終濃度5 μg/mL）、噬菌體Leo（滴度2.6×108 PFU/mL）、噬菌體Guo1（滴度3.26×108 PFU/mL），對(duì)照組加入等量ddH2O。將所有試管置于恒溫振蕩器（37℃ 160 r/min）中振蕩培養(yǎng)7 d。隨后，取各試管中菌懸液，研磨均勻，用全營養(yǎng)的蘇通培養(yǎng)基10倍梯度稀釋，加入48孔板中行最大可能數(shù)（MPN）法計(jì)數(shù)（每個(gè)稀釋度有3個(gè)復(fù)孔）測細(xì)菌濃度，將48孔板置于37℃恒溫箱內(nèi)靜止培養(yǎng)15 d。再按3∶20的比例，向48孔板的各孔內(nèi)加入0.02%刃天青溶液進(jìn)行顯色，7 d后觀察顯色結(jié)果。刃天青顯色原理：藍(lán)色提示無活菌生長，變?yōu)榧t色提示有活菌生長。根據(jù)觀察結(jié)果，利用MPN法計(jì)數(shù)原理計(jì)算MPN值，從而推算出細(xì)菌濃度，MPN值的計(jì)算采用標(biāo)準(zhǔn)的統(tǒng)計(jì)方法[11]。

1.4.2 缺鉀模型 ?方法同前述缺氧模型實(shí)驗(yàn)。

1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

采用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。缺氧模型實(shí)驗(yàn)結(jié)果，取細(xì)菌濃度對(duì)數(shù)值，采用兩獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)。缺鉀模型實(shí)驗(yàn)結(jié)果，取細(xì)菌濃度值，采用秩和檢驗(yàn)，以P < 0.05表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。耐藥率計(jì)算方法[3，16]：耐藥率=藥物組菌濃度平均值/對(duì)照組菌濃度平均值×100%。

2結(jié)果

2.1 噬菌體motif3基序

在噬菌體Leo和Guo1的卷尺蛋白中分別找到其motif3基序（表1、圖1）。同時(shí)發(fā)現(xiàn)Leo和Guo1的motif3基序中含有6個(gè)高度保守的氨基酸殘基（甘氨酸、天門冬氨酸、脯氨酸、天門冬氨酸、2個(gè)組氨酸殘基）和1個(gè)高度保守的異亮氨酸-色氨酸位點(diǎn)（圖1）。

2.2 缺氧模型耐藥性檢測及噬菌體對(duì)休眠期結(jié)核菌的裂解作用

與對(duì)照組比較，異煙肼組和利福平組，結(jié)核分枝桿菌量減少了1～2個(gè)數(shù)量級(jí)，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P < 0.05），提示僅部分結(jié)核分枝桿菌出現(xiàn)表型耐藥。但異煙肼組和利福平組仍有105個(gè)結(jié)核分枝桿菌存活，該部分結(jié)核分枝桿菌已出現(xiàn)表型耐藥，進(jìn)入休眠狀態(tài)。噬菌體Leo組菌量大于異煙肼組和利福平組，則噬菌體Leo對(duì)缺氧模型誘導(dǎo)的休眠期結(jié)核菌無裂解作用。Guo1組相較于異煙肼和利福平組，細(xì)菌量減少了3個(gè)數(shù)量級(jí)以上，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P < 0.05），提示噬菌體Guo1對(duì)缺氧模型誘導(dǎo)的休眠期結(jié)核菌有明顯裂解作用。見圖2。

2.3 缺鉀模型耐藥性檢測及噬菌體對(duì)休眠期結(jié)核菌的裂解作用

利福平組、異煙肼組與對(duì)照組菌量比較，差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P > 0.05），顯示所有結(jié)核菌出現(xiàn)表型耐藥，進(jìn)入休眠狀態(tài)。Guo1組與異煙肼組及利福平組菌量比較，差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P > 0.05），則噬菌體Guo1對(duì)缺鉀模型誘導(dǎo)的休眠期結(jié)核菌無裂解作用。而Leo組菌量為零，與利福平組比較，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P < 0.05），則噬菌體Leo能完全殺滅缺鉀模型誘導(dǎo)的休眠期結(jié)核菌。見圖3。

2.4 結(jié)核休眠菌耐藥率結(jié)果

缺鉀模型誘導(dǎo)的休眠期結(jié)核菌，其對(duì)異煙肼及利福平的耐藥率明顯高于缺氧模型。見表2。

3 討論

世界上有23%的人口都有潛伏結(jié)核感染[12-13]，此時(shí)結(jié)核分枝桿菌在患者體內(nèi)處于休眠狀態(tài)，對(duì)經(jīng)典抗結(jié)核化療藥物耐藥，使結(jié)核病遷延不愈。因此亟需找到能殺滅休眠期結(jié)核菌的新藥物。

噬菌體對(duì)耐藥結(jié)核病的治療，已成功應(yīng)用于豚鼠模型[14]。但結(jié)核分枝桿菌進(jìn)入休眠狀態(tài)后，會(huì)出現(xiàn)細(xì)胞壁增厚、交聯(lián)增加（透光度降低）的現(xiàn)象[15-16]。細(xì)胞壁增厚會(huì)增加噬菌體感染結(jié)核分枝桿菌的難度，而motif3基序則賦予噬菌體感染休眠期結(jié)核菌的能力[1]。不含motif3基序的噬菌體D29、Che12對(duì)休眠期結(jié)核菌的感染能力明顯弱于含motif3基序的噬菌體TM4[2]。迄今發(fā)現(xiàn)含motif3基序的噬菌體，其卷尺蛋白氨基酸含量在1100～1900 aa之間[2]，而卷尺蛋白氨基酸含量與噬菌體尾部長度成正比關(guān)系[17]，推測含motif3基序的噬菌體為長尾噬菌體。噬菌體Guo1（未發(fā)表）和噬菌體Leo[18]均為長尾噬菌體。Dusthackeer等[2]發(fā)現(xiàn)在motif3基序中含有6個(gè)高度保守的氨基酸殘基（甘氨酸、天門冬氨酸、脯氨酸、天門冬氨酸、兩個(gè)組氨酸殘基）和1個(gè)高度保守的異亮氨酸-色氨酸位點(diǎn)。噬菌體TM4 motif3基序中異亮氨酸-色氨酸位點(diǎn)的突變，可導(dǎo)致其對(duì)休眠期恥垢分枝桿菌的感染能力下降50%[1]。經(jīng)軟件分析，噬菌體Leo、Guo1的卷尺蛋白中含motif3基序，且motif3基序中的6個(gè)高度保守氨基酸殘基和高度保守位點(diǎn)均未缺失，推測其對(duì)休眠期結(jié)核菌具有裂解作用。噬菌體Guo1為本實(shí)驗(yàn)室自主分離，對(duì)其研究有利于后續(xù)專利的申請(qǐng)。

休眠期結(jié)核菌具有對(duì)異煙肼、利福平耐藥的特點(diǎn)，這種耐藥變異是由于細(xì)菌停止生長引起的，并未出現(xiàn)基因水平的改變，稱為表型耐藥[19-20]。結(jié)核分枝桿菌根據(jù)生長狀態(tài)不同分為：活躍期、靜止期（休眠早期）、完全休眠期。異煙肼主要對(duì)活躍期結(jié)核菌有殺菌作用，而利福平對(duì)靜止期結(jié)核菌亦有殺菌作用。如果對(duì)利福平耐藥，提示結(jié)核菌進(jìn)入更深的休眠狀態(tài)[6]。實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)，缺鉀模型誘導(dǎo)的休眠期結(jié)核菌，耐藥率明顯高于缺氧模型，特別是對(duì)5 μg/mL利福平的耐藥率達(dá)100%，是缺氧模型的100倍，建模時(shí)間僅為缺氧模型的1/10。據(jù)報(bào)道，多因素模型建模18 d誘導(dǎo)出的休眠期結(jié)核菌，對(duì)5 μg/mL利福平的耐藥率僅11%[6];即使建模30 d，對(duì)1 μg/mL利福平耐藥率僅9.72%[16]。相較上述兩種模型，缺鉀模型能在短時(shí)間內(nèi)誘導(dǎo)結(jié)核分枝桿菌進(jìn)入更深的休眠狀態(tài)，具有明顯的優(yōu)勢。

本研究顯示，噬菌體Guo1對(duì)缺氧模型休眠期結(jié)核菌有明顯裂解作用，而對(duì)缺鉀模型休眠期結(jié)核菌無裂解作用;噬菌體Leo對(duì)缺鉀模型休眠期結(jié)核菌有裂解作用，而對(duì)缺氧模型休眠期結(jié)核菌無裂解作用。推測這種現(xiàn)象可能與兩種模型所誘導(dǎo)的休眠期結(jié)核菌所處生長狀態(tài)不同有關(guān)。缺氧模型誘導(dǎo)的休眠期結(jié)核菌中靜止期菌占絕大部分，而缺鉀模型可誘導(dǎo)出對(duì)超高濃度利福平（50 μg/mL）耐藥的休眠期結(jié)核菌[9]，則其中完全休眠期菌占絕大部分。分析本研究結(jié)果，則Leo對(duì)完全休眠期結(jié)核菌有殺滅作用，而對(duì)靜止期結(jié)核菌殺滅作用弱;Guo1對(duì)靜止期結(jié)核菌有殺滅作用，對(duì)完全休眠期結(jié)核菌殺滅作用弱。解決這一問題的最好方法就是將這兩種噬菌體混合制成“雞尾酒制劑”，優(yōu)勢互補(bǔ)，同時(shí)還能解決單一噬菌體長期應(yīng)用易誘發(fā)耐藥變異的問題[21]。

[參考文獻(xiàn)]

[1] ?Piuri M，Hatfull GF. A peptidoglycan hydrolase motif within themycobacteriophage TM4 tape measure proteinpromotes efficient infection of stationaryphase cells [J]. Mol Microbiol，2006，62（6）：1569-1585.

[2] ?Dusthackeer A，Hassan VN，Kumar V. Tape measure protein having MT3 motif facilitates phage entry into stationary phase cells of Mycobacterium tuberculosis [J]. Comput Biol Chem，2008，32（5）：367-369.

[3] ?Wayne LG，Hayes LG. An in vitro model for sequential study of shiftdown of Mycobacterium tuberculosis through two stages of nonreplicating persistence [J]. Infect Immun，1996，64（6）：2062-2069.

[4] ?Betts JC，Lukey PT，Robb LC，et al. Evaluation of a nutrient starvation model of Mycobacterium tuberculosis persistence by gene and protein expression profiling [J]. Mol Microbiol，2002，43（3）：717-731.

[5] ?Shleeva MO，Kudykina YK，Vostroknutova GN，et al. Dormant ovoid cells of Mycobacterium tuberculosis are formed in response to gradual external acidication [J]. Tuberculosis，2011，91：146-154.

[6] ?Deb C，Lee CM，Dubey VS，et al. A novel in vitro multiple-stress dormancy model for mycobacterium tuberculosis generates a lipid-loaded，drug-tolerant，dormant pathogen [J]. PLoS One，2009，4（6）：e6077.

[7] ?Taneja NK，Dhingra S，Mittal A，et al. Mycobacterium tuberculosis transcriptional adaptation，growth arrest and dormancy phenotype development is triggered by vitamin C [J]. PLoS One，2010，5（5）：e10860.

[8] ?Kapoor N，Pawar S，Sirakova TD，et al. Human granuloma in vitro model for TB dormancy and resuscitation [J]. PLoS One，2013，8（1）：e53657.

[9] ?Salina E，Ryabova O，Kaprelyants A，et al. New 2-thiopyridines as potential candidates for killing both actively growing and dormant Mycobacterium tuberculosis cells [J]. Antimicrob Agents Chemother，2014，58（1）：55-60.

[10] ?Sun Z，Zhang Y. Spent culture supernatant of Mycobacterium tuberculosis H37Ra improves viability of aged cultures of this strain and allows small inocula to initiate growth [J]. J Bacteriol，1999，181（24）：7626-7628.

[11] ?de Man JC. The probability of most probable numbers [J]. J Appl Microbiol，1975，1：67-78.

[12] ?World Health Organization.Global tuberculosis report 2018 [C]. Geneva：World Health Organization，2018.

[13] ?董曉偉，劉玉琴，盧水華.結(jié)核分枝桿菌潛伏感染的治療：利大于弊還是弊大于利[J].中國實(shí)用內(nèi)科雜志，2019， 39（5），443-446.

[14] ?彭麗，陳保文，羅永艾，等.噬菌體D29對(duì)耐藥結(jié)核病豚鼠的治療作用[J].第四軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào)，2009，30（17）：1576-1579.

[15] ?Cunningham AF，Spredbury CL. Mycobacterial stationary phase induced by low oxygen tension：cell wall thickening and localization of the 16-kilodalton alpha-crystallin homolog [J]. J Bacteriol，1998，180（4）：801-808.

[16] ?江莉莎，姚義勇，張莉，等.缺氧模型和多因素模型構(gòu)建結(jié)核休眠菌模型比較研究[J].中國人獸共患病學(xué)報(bào)，2016， 32（4）：327-331.

[17] ?Pham TT，Jacobs-Sera D，Pedulla ML，et al. Comparative genomic analysis of mycobacteriophage Tweety：evolutionary insights and construction of compatible site-specific integration vectors for mycobacteria [J]. Microbiology，2007，153（Pt 8）：2711-2723.

[18] ?江莉莎，鄔亭亭，劉平，等.分支桿菌噬菌體Leo生物學(xué)特性及抗結(jié)核作用[J].中國人獸共患病學(xué)報(bào)，2015，31（3）：193-198.

[19] ?李瑜，曾威，徐群芳，等.益陽地區(qū)結(jié)核分枝桿菌耐藥狀況分析[J].中國醫(yī)藥導(dǎo)報(bào)，2017，14（26）：173-176.

[20] ?Zhang Y. Persistent and dormant tubercle bacilli and latent tuberculosis [J]. Front Biosci，2004，9：1136-1156.

[21] ?Goodridge LD. Designing phage therapeutics [J]. Curr Pharm Biotechnol，2010，11（1）：15-27.

（收稿日期：2019-09-12 ?本文編輯：封 ? 華）