王 榮,楊 寬,陳春妮,趙雪儒,袁啟恒,秦 蓓
(西安醫(yī)學(xué)院 藥學(xué)院,西安 710021)
亞麻是一種重要的油料作物[1]。亞麻木酚素(Flax lignan)是從亞麻籽中提取的一種生物活性成分,是亞麻籽進(jìn)行深加工和綜合利用的主要成分。亞麻木酚素在哺乳動物腸道微生物的作用下,生成腸二醇和腸內(nèi)酯,呈現(xiàn)出弱的雌激素和抗雌激素效應(yīng)[2]。此外,亞麻木酚素還具有與雌激素活性無關(guān)的藥理活性[3],如預(yù)防動脈粥樣硬化[4-5]、抗氧化[6]、抗癌[7]等。
近年研究顯示,氧化應(yīng)激參與了心血管疾病、腫瘤、炎癥等多種疾病的發(fā)生和發(fā)展過程,是此類疾病的發(fā)病機(jī)制之一[8-9]。自由基誘導(dǎo)了氧化應(yīng)激,而抗氧化劑能清除體內(nèi)產(chǎn)生的過多自由基,且一直是研究的熱點(diǎn)[10]。已有文獻(xiàn)報道,亞麻木酚素具有清除自由基的作用[11],能提高正常小鼠抗氧化酶的活性[6]。為進(jìn)一步探討亞麻木酚素的抗氧化作用,本文分別建立了紅細(xì)胞和肝組織氧化損傷模型,研究亞麻木酚素對紅細(xì)胞溶血率、血紅蛋白氧化率的影響,研究其對不同模型中MDA含量和主要抗氧化酶活性的影響,為亞麻木酚素作為抗氧化劑的深度應(yīng)用開發(fā)提供理論依據(jù)。
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動物
SD大鼠,雄性,體重200~300 g,由成都達(dá)碩實(shí)驗(yàn)動物有限公司提供,實(shí)驗(yàn)動物生產(chǎn)許可證號為SCXK(川)2015-030。實(shí)驗(yàn)動物常規(guī)飼養(yǎng),飼養(yǎng)條件為:室溫(18~20℃),濕度50%~70%,自然光照,動物顆粒飼料喂養(yǎng)并自由飲水。動物適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后開始實(shí)驗(yàn),本實(shí)驗(yàn)方案經(jīng)西安醫(yī)學(xué)院倫理委員會批準(zhǔn)。
1.1.2 藥品與試劑
亞麻木酚素(CAS No. 148244-82-0,含量98.2%),上海源葉生物科技有限公司。1,1-二苯基-2-苦肼基(DPPH),上海思域化工科技有限公司;2,2-偶氮二異丁基脒二鹽酸鹽(AAPH),薩恩化學(xué)技術(shù)(上海)有限公司;過氧化氫酶(CAT)試劑盒、丙二醛(MDA)試劑盒、超氧化物歧化酶(SOD)試劑盒、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)和蛋白質(zhì)定量試劑盒(BCA法),南京建成生物工程研究所;二甲基亞砜(DMSO)、乙醇等均為分析純。
1.1.3 儀器與設(shè)備
自動全波長酶標(biāo)儀、低溫保存冰箱和高速冷凍離心機(jī),賽默飛世爾科技有限公司;分析天平;恒溫水浴鍋。
1.2.1 亞麻木酚素對DPPH自由基清除率的測定
精密稱取適量亞麻木酚素加水溶解,采用半數(shù)稀釋法制備系列質(zhì)量濃度(5、2.5、1.25、0.625、0.312 5、0.078 125 mg/mL)的亞麻木酚素溶液。將100 μL 0.1 mmol/L DPPH乙醇溶液置于96孔板中,加入100 μL上述不同質(zhì)量濃度的待測樣品,振搖均勻,室溫避光反應(yīng)30 min,在517 nm處測定吸光度,每個樣品設(shè)置3個副孔,按下式計算樣品對DPPH自由基的清除率。
式中:Di為待測樣品與DPPH反應(yīng)液在517 nm處的吸光度;D0為DPPH溶液在517 nm處的吸光度;Dj為待測樣品在517 nm處的吸光度。
1.2.2 大鼠紅細(xì)胞氧化損傷實(shí)驗(yàn)
1.2.2.1 AAPH氧化損傷大鼠紅細(xì)胞模型及分組
適應(yīng)性飼養(yǎng)1周的大鼠,腹主動脈采血,4℃下、抗凝全血3 500 r/min離心5 min分離紅細(xì)胞,取紅細(xì)胞沉淀,用pH 7.4的磷酸鹽緩沖液(PBS)反復(fù)清洗3次,離心,取紅細(xì)胞沉淀加適量PBS搖勻稀釋,制成體積分?jǐn)?shù)為10%的大鼠紅細(xì)胞懸浮液。在96孔板中,每孔加入100 μL紅細(xì)胞懸浮液,給藥組加入50 μL不同濃度的亞麻木酚素溶液,空白組和模型組分別加入50 μL PBS,各組37℃下預(yù)培養(yǎng)30 min,之后給藥組和模型組再加入100 μL 200 mmol/L的AAPH溶液,空白組加入同體積的PBS,繼續(xù)置于37℃下氧化損傷1~4 h,獲得正常組、模型組和給藥組的紅細(xì)胞反應(yīng)液。
1.2.2.2 溶血率的測定
取1.2.2.1制備的紅細(xì)胞反應(yīng)液,用1 mL PBS稀釋,4℃、3 500 r/min下離心5 min,上清液在540 nm處測定吸光度(APBS)。為使紅細(xì)胞完全裂解,取紅細(xì)胞反應(yīng)液,加入1 mL預(yù)冷的雙蒸水,離心,540 nm處測定吸光度(Awater),計算溶血率。溶血率=APBS/Awater×100%。
1.2.2.3 血紅蛋白氧化率的測定
取1.2.2.1制備大鼠紅細(xì)胞反應(yīng)液,每孔加入100 μL預(yù)冷的雙蒸水,4℃、3 500 r/min下離心5 min,取200 μL上清至96孔板中,分別在630 nm和700 nm處測定吸光度,記為A630和A700。之后各孔再加入10 μL 5%鐵氰化鉀溶液,分別在630 nm和700 nm處測定加入鐵氰化鉀后上清液的吸光度,記為AmetHB630和AmetHB700。計算血紅蛋白氧化率。血紅蛋白氧化率=(A630-A700)/(AmetHB630-AmetHB700)×100%。
1.2.2.4 紅細(xì)胞內(nèi)MDA含量及抗氧化酶(CAT、SOD和GSH-Px)酶活的測定
取1.2.2.1制備大鼠紅細(xì)胞反應(yīng)液,向反應(yīng)液中加入100 μL預(yù)冷的雙蒸水使紅細(xì)胞完全裂解,4℃、3 500 r/min下離心5 min,棄去上清液,沉淀用PBS清洗3次,每次清洗均在4℃、3 500 r/min下離心5 min,吸取最后一次離心分離的沉淀10 μL,加990 μL預(yù)冷的雙蒸水使總體積至1 mL,-80℃保存?zhèn)溆?。紅細(xì)胞內(nèi)MDA含量以及CAT、SOD、GSH-Px酶活按照試劑盒說明書進(jìn)行測定。
1.2.3 大鼠肝組織氧化損傷實(shí)驗(yàn)
取適應(yīng)性飼養(yǎng)1周的大鼠的肝臟,用冷生理鹽水沖洗,稱重,剪碎,加入9倍體積的生理鹽水,冰水浴中勻漿制成體積分?jǐn)?shù)10%的肝組織勻漿,2 500 r/min離心10 min,取上清,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>
在離心管中加入100 μL 10%肝組織勻漿液,給藥組加入50 μL不同濃度的亞麻木酚素溶液,正常組和模型組各加入50 μL PBS,37℃預(yù)培養(yǎng)30 min,給藥組和模型組再加入100 μL 200 mmol/L的AAPH溶液,正常組加入50 μL PBS,繼續(xù)于37℃下孵育不同時間(1~4 h)。然后按照試劑盒說明書分別測定正常組、模型組和給藥組的肝組織勻漿液中MDA含量和CAT、SOD、GSH-Px酶活。
1.2.4 數(shù)據(jù)處理
采用SPSS 22.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計分析,數(shù)據(jù)以“均值±標(biāo)準(zhǔn)差”表示,多組間比較采用Oneway-ANOVA 中的Dunnett雙側(cè)t檢驗(yàn),P<0.05差異顯著,P<0.01差異極顯著。
由圖1可見,亞麻木酚素對DPPH自由基有一定清除作用,且在一定范圍內(nèi)呈濃度依賴性。隨著亞麻木酚素質(zhì)量濃度的增大,DPPH自由基的清除率逐漸提高,當(dāng)其質(zhì)量濃度為0.312 5 mg/mL時,對DPPH自由基的清除率約為48.6%,亞麻木酚素對DPPH自由基的清除能力低于陽性對照VC。
圖1 亞麻木酚素對DPPH自由基的清除率
紅細(xì)胞是進(jìn)行抗氧化損傷研究的最佳細(xì)胞模型。AAPH作為自由基引發(fā)劑,可在37℃下降解生成過氧自由基,該自由基與氧發(fā)生反應(yīng),引發(fā)自由基鏈?zhǔn)椒磻?yīng)生成更多種類的自由基,引起細(xì)胞損傷[12]。AAPH誘導(dǎo)氧化應(yīng)激造成的過多活性氧(ROS),導(dǎo)致細(xì)胞膜上不飽和脂肪酸發(fā)生脂質(zhì)過氧化反應(yīng),使細(xì)胞的結(jié)構(gòu)遭到破壞。紅細(xì)胞氧化損傷可引起細(xì)胞中血紅蛋白氧化生成高鐵血紅蛋白,高鐵血紅蛋白可反映細(xì)胞中蛋白氧化的程度。以溶血率和血紅蛋白氧化率為指標(biāo),研究了亞麻木酚素對氧化損傷紅細(xì)胞的保護(hù)作用,結(jié)果如圖2所示。
注:#表示模型組與正常組相比P<0.05,##表示模型組與正常組相比P<0.01;*表示與模型組相比P<0.05,**表示與模型組相比P<0.01。下同。
圖2 亞麻木酚素對氧化損傷紅細(xì)胞的保護(hù)作用
由圖2可見,正常組紅細(xì)胞溶血率基本恒定,紅細(xì)胞經(jīng)AAPH損傷后,紅細(xì)胞溶血率逐漸增大,4 h模型組紅細(xì)胞溶血率達(dá)到75.39%,與正常組比較具有極顯著差異(P<0.01)。200 mmol/L AAPH孵育4 h時,不同濃度的亞麻木酚素保護(hù)下AAPH誘導(dǎo)的氧化溶血受到不同程度的抑制,且藥物濃度與溶血抑制程度呈現(xiàn)正相關(guān)。另外,與正常組相比,紅細(xì)胞經(jīng)AAPH氧化損傷后,紅細(xì)胞內(nèi)高鐵血紅蛋白增多,4 h時血紅蛋白氧化率為42.9%,隨著亞麻木酚素濃度的增加,血紅蛋白氧化率逐漸降低,特別是亞麻木酚素濃度分別為50、100 μmol/L時對紅細(xì)胞氧化損傷4 h所致的血紅蛋白氧化的保護(hù)作用顯著(P<0.05,P<0.01)。
AAPH誘導(dǎo)的過氧化反應(yīng)產(chǎn)生ROS,ROS可引起細(xì)胞膜中不飽和脂肪酸發(fā)生脂質(zhì)過氧化,上調(diào)脂質(zhì)過氧化產(chǎn)物MDA的水平,MDA常被認(rèn)為細(xì)胞氧化損傷的標(biāo)志物。CAT、SOD和GSH-Px在細(xì)胞抗氧化的過程中發(fā)揮了重要作用。研究了亞麻木酚素對氧化損傷紅細(xì)胞內(nèi)MDA含量及CAT、SOD、GSH-Px酶活的影響,結(jié)果見圖3。
圖3 亞麻木酚素對氧化損傷紅細(xì)胞內(nèi)MDA含量及SOD、CAT、GSH-Px酶活的影響
由圖3可見,AAPH損傷后,紅細(xì)胞內(nèi)MDA含量約為12 nmol/mL,超過正常組20倍以上,100 μmol/L和150 μmol/L亞麻木酚素可顯著降低AAPH氧化損傷4 h的紅細(xì)胞中MDA含量。與正常組相比,模型組SOD、CAT和GSH-Px酶活隨著AAPH孵育時間的延長而降低,AAPH孵育4 h時模型組的酶活與正常組相比具有極顯著差異(P<0.01);與模型組相比,150 μmol/L亞麻木酚素在不同的孵育時間(2 h和4 h)均提高了SOD和CAT的酶活,100 μmol/L和150 μmol/L亞麻木酚素提高了AAPH氧化損傷4 h時的GSH-Px的酶活,其作用呈劑量依賴性。
MDA是過氧化脂質(zhì)分解的最終產(chǎn)物,被認(rèn)為是常見的氧化應(yīng)激標(biāo)志物[13]。機(jī)體內(nèi)的抗氧化系統(tǒng)由非酶系統(tǒng)和酶系統(tǒng)共同構(gòu)成,其抗氧化酶系統(tǒng)主要包括CAT、SOD、GSH-Px等[14]。研究了亞麻木酚素對AAPH誘導(dǎo)氧化損傷的肝組織中MDA含量及SOD、CAT、GSH-Px酶活的影響,結(jié)果見圖4。
圖4 亞麻木酚素對氧化損傷肝組織MDA含量及SOD、CAT和GSH-Px酶活的影響
由圖4可見,與正常組相比,AAPH增加了肝組織中MDA的含量,隨著孵育時間的延長,模型組MDA的含量逐漸降低。說明AAPH損傷后在短時間內(nèi)引起了脂質(zhì)過氧化,但隨作用時間延長,與抗氧化系統(tǒng)逐漸達(dá)到平衡,MDA含量降低。與模型組相比,150 μmol/L亞麻木酚素在不同孵育時間均能顯著降低肝組織中MDA的含量(P<0.05)。與正常組相比,且隨著孵育時間的延長,模型組SOD和CAT酶活逐漸降低,說明AAPH使肝組織中的抗氧化酶系失衡,隨著孵育時間的延長,酶活逐漸降低,也說明抗氧化酶系的變化是一個緩慢的過程。AAPH作用4 h時,SOD、CAT和GSH-Px酶活最低,而150 μmol/L亞麻木酚素在孵育時間為4 h時顯著提高了SOD的酶活。AAPH作用4 h時,亞麻木酚素3個劑量組均能顯著增強(qiáng)CAT的酶活。AAPH增加了大鼠肝組織中GSH-Px的酶活,但亞麻木酚素的加入并未影響AAPH增加的GSH-Px酶活。
本文建立了AAPH誘導(dǎo)的紅細(xì)胞和肝組織損傷模型,研究了亞麻木酚素的抗氧化作用。結(jié)果顯示:亞麻木酚素對DPPH自由基具有良好的清除作用,在一定范圍內(nèi)其作用呈現(xiàn)濃度依賴性;與AAPH模型組相比,在一定濃度范圍內(nèi)亞麻木酚素能夠顯著抑制AAPH誘導(dǎo)的紅細(xì)胞溶血和血紅蛋白氧化,其作用可能是通過保護(hù)紅細(xì)胞和肝組織內(nèi)抗氧化酶系(SOD、CAT和GSH-Px)和抑制脂質(zhì)過氧化實(shí)現(xiàn)的。