顧文燕,李麗,吳敏
恩施土家族苗族自治州中心醫(yī)院,湖北 恩施 445000
結腸癌(colon cancer)屬于消化道最常見的惡性腫瘤之一,其死亡率位于所有惡性癌癥的第3位[1]。結腸癌的治療主要依靠手術,然而化療整個過程易產生藥物的耐藥性,成為結腸癌患者復發(fā)或死亡的主要原因[2]。于是,解決結腸癌多藥耐藥問題已成為當前研究的熱點。研究已證實,中藥在輔助治療腫瘤中有著較好的效果,并且其引發(fā)的不良反應較少,患者可耐受藥物應用[3]。蘿卜硫素(sulforaphane,SFN)又稱1-異硫氰酸-4-甲磺酰基丁烷,分子式為:C6H11S2NO,其結構式見圖1,是一種來源于十字花科植物的異硫氰酸酯類化合物,已發(fā)現SFN在抗乳腺癌、前列腺癌及克隆癌等多種腫瘤細胞方面均表現出較強的生物活性[4-6]。還發(fā)現SFN在一定劑量下對白血病細胞增殖具有抑制作用,還能增強化療藥物的敏感性[7]。然而SFN是否影響5-氟尿嘧啶(5-FU)對結腸癌細胞的敏感性還有待研究。5-FU為臨床上廣泛使用的基礎藥物,然而95%的結直腸癌患者出現了5-FU的抗性,極大降低了患者的治愈率。腫瘤細胞獲得耐藥性的機制是很復雜的,如藥物靶點發(fā)生變化、藥物失活、細胞內藥物的流入與流出,藥物引起的損傷及逃避凋亡等[8]。Bax信號通路對結腸癌在內的多種腫瘤發(fā)生發(fā)展均表現出調控作用[9]。早期研究發(fā)現,人結腸癌細胞SW-480對5-FU能夠產生耐藥性[10],穿心蓮內酯能夠通過上調Bax表達逆轉人結直腸癌對5-FU的耐藥性[11]。因此,本文研究了SFN能否增強5-FU對結腸癌細胞化療耐受的能力,及其對結腸癌SW-480細胞凋亡的影響。
圖1 蘿卜硫素結構式
BBS-DDC超凈工作臺(山東博科科學儀器有限公司);LRH-150 BOD CO2細胞培養(yǎng)箱(美國Thermo公司);Victor3 1420 Multilable Counter酶標儀(DX540,美國);DYCZ-24DN凝膠電泳儀(北京六一儀器廠);成像系統(BIO-RAD,美國);CytoFLEX LX流式細胞儀、Bio-Rad iQ5實時熒光定量PCR儀(貝克曼,中國)。
結腸癌SW-480細胞株由武漢巴菲爾公司提供(來自美國ATCC細胞庫);蘿卜硫素(杭州林格貝科技有限公司,含量≥99%);DMEM高糖培養(yǎng)基、胎牛血清(美國Gibco公司);胰蛋白酶(Thermo Scientific公司);5-氟尿嘧啶(上海吉至公司,CAS66-22-8,0.25 g·(10 mL)-1;CCK8試劑盒(日本同仁公司,批號:WST-78);RIPA裂解液(上海吉諾公司);BCA試劑盒(北京百奧公司);RNA提取試劑盒及superRreal PreMix Plus(SYBR Green)(TIANGEN公司);Annexin V-FITC/PI試劑盒(碧云天公司);β-actin、Bax抗體(英國Abcam公司);HRP標記羊抗兔IgG(上海谷歌公司);Lipo2000轉染試劑盒(上海博耀生物科技有限公司,批號:11668-027)。
結腸癌SW-480細胞采用DMEM完全培養(yǎng)基培養(yǎng),包含10%胎牛血清、1%雙抗(100 U·mL-1青霉素+100 U·mL-1鏈霉素),培養(yǎng)箱條件設置:溫度37為℃、5%CO2濃度、恒濕。細胞生長融合至80%~90%,采用0.25%胰酶-0.125%EDTA溶液消化,顯微鏡下觀察細胞變圓后立即加入培養(yǎng)基終止消化,并以1∶3比例傳代培養(yǎng)。
將對數生長期細胞接種于96孔板進行實驗,培養(yǎng)過夜后,加入不同濃度(0、10、20、40 μmol·L-1)的SFN,聯合不同劑量的5-FU(0、5、10、20、50、100 μmol·L-1)對SW-480細胞進行干預24 h后,吸干舊培養(yǎng)液,每孔加入10 μLCCK8試劑,將96孔板繼續(xù)放入培養(yǎng)箱中培養(yǎng)2 h后,用酶標儀測定450 nm處的吸光度值,計算細胞活力。
細胞活力(%)=A藥物組/A對照組×100
(1)
將對數生長期細胞接種于6孔板進行實驗,分為對照組(Control)、蘿卜硫素組(SFN組,20 μmol·L-1)、5-氟尿嘧啶組(5-FU組,5 μmol·L-1)、SFN+5-FU聯合組,待藥物干預24 h后,將收集的細胞重懸于Binding Buffer中,依次加入Annexin V-FITC 5 μL和PI 5 μL,室溫避光孵育,流式細胞儀檢測細胞凋亡率;圖3中右下限代表早期凋亡細胞數、右上限代表中晚期凋亡細胞數。
將對數生長期細胞接種于6孔板進行實驗,藥物干預方法及實驗分組按照2.3項進行。待藥物干預細胞結束后,收集細胞加入TRIzol提取細胞總RNA,并對核酸進行濃度及純度法測定。吸去1 μg總RNA逆轉錄cDNA,程序設定為30 ℃(10 min)→42 ℃(50 min)→85 ℃(10 min)→4 ℃(5 min)。根據試劑說明書,RT-PCR體系為20 μL,cDNA 2 μL,引物4 μL,2×FastFire qPCR PreMix 10 μL,dd H2O 4 μL。擴增條件設置為:94 ℃(10 min);94 ℃(15 s);60 ℃(1 min);循環(huán)40次。以β-actin作為內參,基因引物序列見表1。mRNA表達水平以2-ΔΔCt計算相對表達量,以β-actin作為內參。
表1 引物序列
將細胞分為4組:對照組、SFN組、5-FU組及SFN+5-FU聯合組,帶藥物處理24 h后,收集藥物處理完的細胞,裂解細胞離心制備成勻漿后,采用BCA法測定總蛋白濃度,每孔上樣50 μg蛋白進行凝膠電泳,待蛋白分離完成后進行轉膜實驗。之后采用5%脫脂牛奶對條帶進行封閉1 h,然后加入β-actin、Bax抗體(稀釋比1∶1000)4 ℃孵育過夜,洗膜后HRP標記羊抗兔IgG,室溫孵育1 h后,洗膜3次后,ECL顯色曝光,采用Image J軟件分析蛋白含量。
低表達質粒pcDNA-Bax siRNA由武漢巴菲爾生物有限公司合成,引物序列為:F 5′-ATGTTGGGGATCCATGAGCTTCCTGAGCCGA-3′;R 5′-GGTTGGCTCGAGTCAGTATATAGTAAGGCT-3′。具體步驟如下:單鏈目的片段Bax-siRNA與線性質粒載體連接;取5 μL過夜連接產物轉化感受態(tài)細胞,涂布與含Kanar抗性的LB平板上選擇培養(yǎng);用試劑盒小量提取質粒,用EcoRI做酶切鑒定,挑選酶切鑒定正確的質粒轉化菌液Bax-siRNA測序。NC序列為GCCTGCATCATCAAATCCA,Bax-siRNA序列為CAGTCTGAAGCACTTATAA。采用Lipo 2000轉染試劑盒進行轉染,操作按照說明書進行。將細胞接種于6孔板,待細胞融合至80%左右開始轉染;將4 μg質粒DNA加入到250 μL DMEM培養(yǎng)液中混勻,取10 μL Lipo 2000加入到另外250 μL DMEM培養(yǎng)液中混勻,室溫下靜置5 min;然后將上述兩種DMEM培養(yǎng)液混合,總體積500 μL,輕輕混勻后室溫下靜置20 min,最后將混勻溶液輕輕加入到6孔板中,轉染4~6 h后更換為新鮮培養(yǎng)液,轉染24 h后檢測Bax蛋白表達。
為了探討SFN是否增強5-FU對結腸癌SW-480細胞增殖能力的抑制效應,采用不同濃度的SFN聯合不同劑量的5-FU對SW-480細胞進行干預。見圖2。在相同劑量SFN處理前提下,聯合5-FU處理,隨著5-FU劑量的升高,SW-480細胞增殖能力明顯減弱;在相同劑量5-FU干預基礎之上,較高SFN的干預濃度可使SW-480細胞增殖活性降低。提示5-FU可抑制SW-480細胞的增殖能力,并表現出劑量依賴性;SFN還可增強5-FU對SW-480細胞增殖的抑制效應。
圖2 SFN增強5-FU對SW-480細胞增殖的抑制效應
流式細胞儀分析了SFN+5-FU聯合對SW-480細胞凋亡的影響,結果見圖3~4。表明SFN+5-FU聯合組細胞凋亡率(51.10±6.34)%顯著高于5-FU組細胞凋亡率(36.76±4.29)%,差異有統計學意義(P<0.05)。還發(fā)現5-FU組、SFN+5-FU聯合組細胞凋亡率均顯著高于對照組(9.21±3.26)%,差異有統計學意義(P<0.05)。
圖3 SFN對5-FU誘導SW-480細胞凋亡的影響
注:與Control組比較,*P<0.05;與5-FU組比較,#P<0.05。圖4 SW-480細胞凋亡率比較
SFN、5-FU及其聯合干預SW-480細胞后,細胞中凋亡相關的Bax、Suvivin、Bcl-2、p53及caspase-3基因表達結果見圖5。提示SFN+5-FU聯合組Bax基因表達量顯著高于5-FU組,差異有統計學意義(P<0.05),說明SFN能增強5-FU對SW-480細胞中促凋亡基因Bax表達的誘導作用;然而SFN+5-FU聯合組與5-FU組中Suvivin、Bcl-2、p53及caspase-3基因表達水平比較差異沒有統計學意義(P>0.05)。
注:與5-FU組比較,*P<0.05。圖5 SFN對SW-480細胞凋亡基因表達的影響
SFN、5-FU及其聯合干預SW-480細胞后,Bax表達水平見圖6,提示SFN+5-FU聯合組Bax表達量顯著高于5-FU組,差異有統計學意義(P<0.05)。說明SFN能增強5-FU對SW-480細胞中促凋亡蛋白Bax表達的誘導作用。
注:與5-FU組比較,*P<0.05。圖6 SFN對SW-480細胞Bax蛋白表達的影響
采用Bax低表達質粒轉染結腸癌SW-480細胞,應用Western Blot分析Bax蛋白表達量,結果見圖7,提示篩選的pcDNA-Bax質粒可顯著降低細胞中Bax蛋白表達。
注:與Control組比較,*P<0.05。圖7 pcDNA-Bax質粒下調SW-480細胞中Bax的表達
為了探討低表達Bax是否影響SFN對5-FU的敏感性,采用pcDNA-Bax質粒轉染SW-480細胞,同時應用5 μmol·L-15-FU及20 μmol·L-1SFN對細胞進行孵育24 h后,檢測細胞活力,見圖8。提示與對照組比較,SFN+5-FU組細胞活力顯著降低(P<0.05),而Bax低表達能明顯減弱SFN和5-FU聯合對SW-480細胞的抑制作用(P<0.05)。
注:與Control組比較,*P<0.05;與SFN+5-FU組比較,#P<0.05。圖8 低表達Bax減弱SFN協同5-FU的腫瘤抑制效應
系統性化療已是結腸癌規(guī)范化治療必不可少的環(huán)節(jié),術前、術后均可采用藥物進行輔助化療,提高晚期腫瘤患者獲得手術治療的機會。正是由于采用各種化療藥物對結腸癌患者進行干預,才能夠促使晚期結腸癌患者的總生存率得以提升。然而,惡性腫瘤細胞對化療藥物的多藥耐藥是治療失敗的關鍵因素,不僅降低了患者的生存質量,還導致大量醫(yī)療資源的浪費。腫瘤細胞產生的多藥耐藥機制非常復雜,研究已證實,P-gp糖蛋白跨膜轉運能力的變化、細胞解毒活力的提升、DNA損傷修復系統紊亂及凋亡通路的異常等方面均與多藥耐藥現象有關[12]。然而無論體外研究還是臨床治療應用中,對上述耐藥因素進行干預進行耐藥逆轉,仍然存在較多問題。
SFN是一種藥理活性較強的天然活性物質,在抗腫瘤方面也具有較好的作用效果,并且還提出其具有增強白血病細胞對化療藥物的敏感性[7]。SFN通過對細胞癌變起始期的調控,誘導腫瘤細胞走向凋亡,還能夠阻滯腫瘤血管形成及降低腫瘤細胞侵襲轉移[13]。研究還發(fā)現,SFN可通過誘導促凋亡蛋白Bax表達抑制肝癌細胞增殖、誘導其凋亡及降低其侵襲轉移能力[14]。本研究發(fā)現,SFN能夠增強5-FU對結腸癌SW-480細胞增殖的抑制效應,說明SFN可誘導SW-480細胞對5-FU的敏感性;并且研究還發(fā)現,SFN+5-FU聯合處理組中SW-480細胞凋亡率比單獨5-FU組的凋亡率明顯升高,提示SFN能增強5-FU誘導的SW-480細胞凋亡。
通過流式細胞儀發(fā)現,SFN能增強5-FU誘導的SW-480細胞凋亡,于是筆者從細胞凋亡角度考察介導SFN逆轉化療耐藥可能的分子機制,對可能的凋亡相關基因(Bax、Suvivin、Bcl-2、p53及caspase-3)進行了檢測分析。結果證實,SFN+5-FU聯合組中Bax mRNA表達顯著高于其他3組。于是設想Bax可能介導了SFN逆轉結腸癌細胞耐藥的過程,但具體機制尚不清楚。Bax基因家族是目前研究較多的與凋亡相關的基因,也是最受關注的促凋亡發(fā)生的基因家族[15]。研究已發(fā)現,Bax的表達在結腸癌的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮重要的作用,Bax蛋白家族與其他家族成員構成復雜的相互作用網絡,共同調控細胞凋亡[16]。除此之外,研究已證實,Bax與腫瘤細胞的耐藥發(fā)生機制密切相關[17-18]。本文實驗結果進一步證實,SFN+5-FU聯合處理組SW-480細胞中Bax蛋白表達水平明顯高于5-FU單獨處理組。為了進一步驗證SFN通過調節(jié)Bax表達逆轉結腸癌細胞對5-FU化療的耐藥作用,采用pcDNA-Bax低表達質粒抑制結腸癌細胞中Bax表達,發(fā)現Bax低表達降低了SFN+5-FU聯合作用對SW-480細胞活力的抑制作用??傊?,SFN可增強5-FU對結腸癌細胞增殖活力的抑制效應,并且還對Bax表達具有較強的誘導作用,提示SFN可通過增加Bax表達誘導結腸癌細胞對5-FU的敏感性。