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風(fēng)干牦牛肉中敵百蟲殘留量的LLE-GC-MS檢測方法研究

2019-02-16 03:25黃伊嘉唐善虎李思寧
食品研究與開發(fā) 2019年4期
關(guān)鍵詞:牦牛肉二甲酯敵百蟲

黃伊嘉,唐善虎,李思寧

(西南民族大學(xué)生命與科學(xué)技術(shù)學(xué)院,四川成都610041)

風(fēng)干牦牛肉是我國民族地區(qū)特色產(chǎn)品,因其天然原味,深受消費者喜愛。然而,由于制作工藝傳統(tǒng)、生產(chǎn)方法局限,我國大多數(shù)傳統(tǒng)的腌制肉類產(chǎn)品仍然處在緩慢發(fā)展的低層次階段。因而受經(jīng)濟利益的驅(qū)動,部分用于防腐、除蟲和滅鼠的農(nóng)藥被投入到生產(chǎn)過程中[1-2]。敵百蟲(C4H8O4Cl3P)是一種在漁業(yè)和畜牧業(yè)的生產(chǎn)中應(yīng)用比較廣泛的重要殺蟲劑,作為有機磷酯類化合物,它具備殘留低、毒性小和效率高等特點,對線蟲、吸蟲類等的殺滅收效良好[3-4]。但敵百蟲在哺乳動物的繁殖及其腦干神經(jīng)細胞存在明顯的毒副作用,這在最近幾年就有確切的證據(jù)顯示[5]。若食品中添加敵百蟲進入人體,會傷害器官功能,遺傳物質(zhì)會因此發(fā)生改變。衛(wèi)生部2011年發(fā)布了《食品中可能違法添加的非食用物質(zhì)名單》,明確規(guī)定在火腿、臘肉、咸魚等制品中禁止添加敵百蟲[6]。然而,我國現(xiàn)有食品安全標準并未針對風(fēng)干牦牛肉中敵百蟲的殘留量做出限量要求。因此,開展風(fēng)干牦牛肉中敵百蟲殘留量的檢測方法研究意義重大。

目前,檢測農(nóng)產(chǎn)品中敵百蟲殘留的方法有紅外光譜法[7]、分子印跡法[8-9]、電化學(xué)法[10-11]、生物傳感技術(shù)[12-14]和色譜法等。其中研究較多、應(yīng)用較廣泛的主要是色譜法,檢測樣本包括水樣、植物、水產(chǎn)品和動物制品等[15]。動物源性食品的國家標準中對敵百蟲的檢測提出了液相色譜-質(zhì)譜/質(zhì)譜法[16],該方法具有靈敏度高、適用性廣、選擇性好等優(yōu)點,但對儀器和操作人員的水平要求較高,不具有普遍推廣性。對于動物源性樣品的凈化,主要是采用凝膠滲透色譜法(gel permeation chromatography、GPC)和液液萃取法(liquid-liquid extraction、LLE)兩種凈化方式[17]。雖然GPC技術(shù)先進,但溶劑消耗量大,儀器昂貴且運行成本高,一般試驗室不具備配備條件。因此,本研究將參考已有相關(guān)方法,通過一系列試驗篩選確定最佳前處理方法和儀器分析條件,建立一種使用液液萃取-氣相色譜質(zhì)譜聯(lián)用法測定風(fēng)干牦牛肉中敵百蟲殘留量的新檢測方法,達到準確、便捷、高效的分析要求。

1 材料與方法

1.1 試劑

敵百蟲標準物質(zhì):純度>98%,德國DR.E公司;無水硫酸鈉(分析純):在650℃灼燒4 h后貯于干燥器備用,天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司;乙酸鋅(分析純):西隴化工股份有限公司;乙酸乙酯(色譜純):成都市科隆化學(xué)品有限公司;乙腈(色譜純):美國TEDIA公司;試驗用水為超純水。

1.2 儀器設(shè)備

7890A-5975C氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀:美國Agilent公司;FJ-200可調(diào)高速均質(zhì)機:常州市金壇大地自動化儀器廠;R-215旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀:瑞士BUCHI公司;5804高速離心機:德國Eppendorf公司;ML204電子分析天平:瑞士Mettler Toledo公司;50mL離心管:美國Thermo Fisher公司;250 mL分液漏斗、三角漏斗、濃縮瓶:天津市天科玻璃儀器制造有限公司;0.20 μm的有機相針頭濾膜:天津市津騰實驗設(shè)備有限公司。

1.3 氣相色譜-質(zhì)譜(gas chromatographic-mass spectrometric,GC-MS)條件

1.3.1 色譜條件

色譜柱采用HP-5MS毛細管柱 [30 m×0.25 mm×0.25μm(膜厚)],載氣為高純氦氣,恒流(流速1mL/min),進樣量為2 μL,進樣口溫度在一定范圍內(nèi)(200、210、220、230、240、250、260、270、280、290、300 ℃) 逐漸升高,進樣方式分別選擇不分流和脈沖不分流兩種,柱箱升溫程序采用8種不同保持時間組合(3個階段溫度分別為:50、170、200℃)。

1.3.2 質(zhì)譜條件

EI源,轟擊電壓70 eV;離子源溫度230℃,四極桿溫度150℃,輔助接口溫度260℃;采集模式:全掃描和選擇離子監(jiān)測(selected ion monitor,SIM);掃描范圍:50 amu~550 amu;溶劑延遲:根據(jù)出峰時間確定。特征選擇離子見表1。

表1 特征選擇離子和定量離子Table 1 Feature selection ions and quantitative ions

1.4 試驗方法

1.4.1 樣品制備

取一定量(250 g左右)的風(fēng)干牦牛肉樣品切成小塊,取樣方法采用四分法。所取的樣品平均分成2份,1份用于試驗測定,另1份放置于冰箱中保存,備用。在組織搗碎機中粉碎待測樣品成勻漿或均勻粉狀[18]。

1.4.2 樣品提取

稱取樣品5.0 g、乙酸鋅0.5 g,加入50 mL離心管中,再加入一定濃度(水+乙腈體積比:1+9、2+9和1+1)乙腈溶液20 mL,使用均質(zhì)機均質(zhì)2 min,將離心管置于高速離心機中以一定速率(4 000、5 000、6 000 r/min)離心一定時間(2、3、4、5 min),轉(zhuǎn)移上清液至250 mL分液漏斗中。再向離心管中的殘渣加入20 mL乙腈溶液,均質(zhì)機均質(zhì)2 min,離心機離心一定時間,合并上清液于同一分液漏斗中[19]。

1.4.3 樣品凈化

將80 mL 20 g/L的硫酸鈉水溶液加入上述分液漏斗中,振蕩混勻。再向分液漏斗中加入20 mL選定的萃取溶劑(三氯甲烷、二氯甲烷和飽和乙酸乙酯),劇烈振蕩2 min,靜置分層,重復(fù)萃取兩次后合并萃取液。將萃取液通過無水硫酸鈉,濾入干凈干燥的濃縮瓶中,用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器濃縮至近干,定量加入2 mL選定的溶劑。溶液使用漩渦混勻器混勻后通過0.20 μm有機相濾膜,過濾后上機測定。同時做空白對照[19-20]。

2 結(jié)果與討論

2.1 定量方法的確定

使用氣相色譜質(zhì)譜聯(lián)用儀對敵百蟲標準品進行分析,根據(jù)相關(guān)研究報道可知,敵百蟲受熱后極易發(fā)生分解,三氯乙醛、亞磷酸二甲酯和敵敵畏是3種主要分解產(chǎn)物,見圖1、圖2。

圖1 敵百蟲標準溶液3.5 min~4.5 min全掃描圖Fig.1 Full scan chromatogram of trichlorfon from 3.5 min to 4.5 min

圖2 敵百蟲標準溶液10.5 min~12.5 min全掃描圖Fig.2 Full scan chromatogram of trichlorfon from 10.5 min to 12.5 min

由于存在分解會使測量敵百蟲母體變得非常困難,結(jié)果準確性無法保證,因此可以通過測定分解產(chǎn)物的含量對敵百蟲進行定量。在食品的農(nóng)殘分析中,某些分析對象自身常會含有微量的三氯乙醛或敵敵畏[21],而在自然條件下亞磷酸二甲酯易分解,是一種在環(huán)境中極少可能會存在的農(nóng)藥中間體[22],所以本方法選擇以亞磷酸二甲酯的含量對敵百蟲進行定量。根據(jù)圖2中亞磷酸二甲酯的出峰時間,確定溶劑延遲時間為3.6 min。亞磷酸二甲酯質(zhì)譜全掃描如圖3。

圖3 亞磷酸二甲酯質(zhì)譜全掃描圖Fig.3 Full scan MS-spectrum of dimethyl phosphite

2.2 進樣口溫度的確定

隨著進樣口溫度的升高,敵百蟲的量逐漸減少,而分解產(chǎn)物的量逐漸增大[21]。進樣口的溫度過低(200℃以下),對分析實際應(yīng)用意義不大,且極易污染進樣口,最高可達到300℃。因此本試驗在200℃~300℃范圍內(nèi),通過逐步升高色譜進樣口溫度,考察了進樣口溫度變化對敵百蟲分解率的影響,見圖4。

圖4 亞磷酸二甲酯含量隨進樣口溫度變化圖Fig.4 Dimethyl phosphite content diagram of different inlet temperature

溫度從200℃升至260℃時,亞磷酸二甲酯的含量逐漸增加,在260℃~300℃區(qū)間,含量趨于平緩,并達到相對穩(wěn)定的狀態(tài)。如選擇200℃~250℃溫度段,此時敵百蟲的分解量處在上升階段,樣品響應(yīng)值不理想且不穩(wěn)定的狀態(tài)會導(dǎo)致重現(xiàn)性不好。根據(jù)試驗數(shù)據(jù)分析,選擇進樣口溫度260℃較為適宜,該溫度也是氣相色譜分析中的常用溫度。

2.3 提取條件的選擇

作為極性較強的有機磷農(nóng)藥,敵百蟲在三氯甲烷、乙酸乙酯和乙腈等試劑中的溶解度較好,使用三氯甲烷或乙酸乙酯作為有機磷的提取溶劑比較常見。然而,蛋白、脂肪等雜質(zhì)在肉類食品中含量較高。而類脂化合物在乙腈中的溶解度較差,動物蛋白又能很好的沉淀下來[23],因此乙腈作為肉類食品的提取溶劑。常用為1+9或2+9乙腈溶液[19,23-24],對于某些干肉類食品,可選用1+1乙腈溶液,以保證乙酸鋅的凈化作用。本試驗分別使用1+9、2+9和1+1乙腈溶液對風(fēng)干牦牛肉樣品進行兩次提取,同時做平行試驗??疾觳煌瑵舛鹊囊译嫒芤簩μ崛÷实挠绊?,見表2。

表2 不同濃度乙腈溶液對樣品的提取率結(jié)果(n=3)Table 2 Sample extraction rate results in different concentrations of acetonitrile(n=3)

由表2結(jié)果可知,1+1乙腈溶液對樣品的提取率高于另外兩個濃度,且達到95%以上,滿足分析要求,因此提取溶劑選擇1+1乙腈溶液。

使用高速離心機分離提取時,查閱大量文獻,通常選用4 000 r/min離心3 min[19,23-24]。本試驗選擇離心速率為4 000、5 000、6 000 r/min時分別對樣品液離心2 min~5 min,測定不同離心速率和時間組合的提取率,見表3。

表3 不同離心條件對樣液的提取率結(jié)果Table 3 Sample extraction rate results in different centrifugal conditions

由表3結(jié)果可知,當離心速率為5 000 r/min以上,提取率可以達到97%,滿足分析要求。在此條件下增加離心速率和時間不會帶來提取率的顯著提升,因此遵循高效、簡捷的原則,確定離心條件為:以5 000 r/min的速率離心2 min。

2.4 凈化溶劑的選擇

查閱相關(guān)文獻可知,在肉類食品樣液的凈化過程,提取液常使用三氯甲烷、二氯甲烷和乙酸乙酯進行凈化處理[19-20,23-24]。本試驗使用三氯甲烷、二氯甲烷和飽和乙酸乙酯分別萃取提取液,比較萃取效果,見表4。

表4 不同凈化溶劑對提取液的萃取效果比較Table 4 Comparison of extraction effect in different purificants

根據(jù)表4比較結(jié)果,選擇飽和乙酸乙酯作為凈化溶劑。此處使用硫酸鈉飽和的乙酸乙酯,可以排除硫酸鈉水溶液中帶來部分水分的影響,同時在相轉(zhuǎn)移過程,減少了因更換不同溶劑造成萃取過程中樣品的損失。在風(fēng)干牦牛肉中加入敵百蟲標準品進行試驗,結(jié)果譜圖顯示了較少的雜質(zhì)峰,并且不會對目標物的測定產(chǎn)生影響,表明凈化試驗取得了理想的效果??瞻兹芤?、樣品溶液、添加敵百蟲樣品液全掃描和選擇離子掃描色譜圖如圖5~圖7。

圖5 空白對照溶液全掃描圖Fig.5 Full scan chromatogram of blank control

圖6 樣品溶液全掃描圖Fig.6 Full scan chromatogram of sample

圖7 樣品添加標樣選擇離子掃描圖Fig.7 Sim scan chromatogram of spiked sample

2.5 進樣方式的選擇

敵百蟲在進樣時極易發(fā)生分解,因此研究了不分流和脈沖不分流兩種進樣方式對其穩(wěn)定性的影響,見圖8。

由圖8可知,采用不同的進樣方式時,敵百蟲分解產(chǎn)生亞磷酸二甲酯的含量存在顯著差異,因此選擇脈沖不分流的方式進樣,更有助于利用其進行定量分析。

圖8 亞磷酸二甲酯含量與進樣方式的關(guān)系圖Fig.8 Dimethyl phosphite content diagram of different injection methods

2.6 柱箱程序時間的確定

考察亞磷酸二甲酯含量在8組不同保持時間組合(如表5)的柱箱程序中的變化(如圖9),選擇最佳柱箱程序為:50℃保持2 min,10℃/min升至170℃保持3 min,20℃/min升至200℃保持1 min。

表5 8組不同保持時間組合Table 5 8 groups of different hold time

圖9 亞磷酸二甲酯含量與柱箱程序的關(guān)系圖Fig.9 Dimethyl phosphite content diagram of different oven programs

2.7 線性范圍

用乙酸乙酯逐級稀釋濃度為100 μg/mL的敵百蟲標準溶液,配制成濃度為 0.05、0.1、0.5、1、2、5 μg/mL的標準系列溶液。按上述測定條件上機測定,以亞磷酸二甲酯的定量離子峰面積對濃度繪制標準曲線。在0.05 μg/mL~5 μg/mL 濃度范圍內(nèi),峰面積(Y)與濃度(X)的線性回歸方程為Y=4 310 000X+52 173,線性相關(guān)系數(shù)達到0.999 9,線性關(guān)系良好。

2.8 方法精密度與回收率

稱取5.0 g風(fēng)干牦牛肉空白樣品,分別加入敵百蟲標準溶液0.25、0.5、10 μg作為3個加標水平,同時各做6份平行處理,按照1.4的處理方法制備樣品加標溶液,精密度與回收率試驗結(jié)果見表6~表7。

由表中數(shù)據(jù)可以看出,樣品的RSD為2.8%~5.1%,本方法的室內(nèi)精密度試驗結(jié)果符合測定的要求。加標3個水平樣品回收率范圍為85.3%~102.3%,本方法的回收率結(jié)果理想,符合農(nóng)藥殘留檢測的要求。查閱其他相關(guān)文獻方法,殷帥等[19]使用乙腈-三氯甲烷-正己烷液液萃取法處理干制魚樣品,GC-MS上機測試,所得精密度范圍為4.3%~6.9%,回收率范圍為84.8%~107.7%;張衛(wèi)鋒等[20]使用乙腈-乙酸乙酯液液萃取法處理咸魚樣品,GC-FPD上機測試,所得精密度范圍為3.82%~5.80%,回收率范圍為84%~99%;農(nóng)業(yè)部783號公告-3-2006《水產(chǎn)品中敵百蟲殘留量的測定氣相色譜法》[24]使用乙腈-三氯甲烷液液萃取法處理水產(chǎn)品樣品,氣相色譜法上機測試,所得精密度≤10%,回收率≥75%。對比可知本方法的精密度與回收率結(jié)果均較其它方法更理想。

表6 精密度試驗結(jié)果(n=6)Table 6 Results of precision test(n=6)

表7 回收率試驗結(jié)果Table 7 Results of recovery test

2.9 方法檢出限

對風(fēng)干牦牛肉空白樣品進行加標回收試驗,在敵百蟲標準品添加水平為0.02 mg/kg時,得到亞磷酸二甲酯定性離子的信噪比等于3,因此本方法的檢出限為0.02 mg/kg。查閱其他相關(guān)文獻方法,農(nóng)業(yè)部783號公告-3-2006《水產(chǎn)品中敵百蟲殘留量的測定氣相色譜法》[24]使用乙腈-三氯甲烷液液萃取法處理水產(chǎn)品樣品,氣相色譜法上機測試,所得檢出限結(jié)果為0.04 mg/kg。對比可知本方法的檢出限水平高于標準使用的液液萃取-氣相色譜法,可以滿足敵百蟲限量檢測的要求。本方法改進了前處理過程中使用的萃取溶劑的種類和濃度,提高了前處理效率,使用了定量更準確的GC-MS法進行上機測試,優(yōu)化了儀器參數(shù),針對被檢樣品特性使儀器達到最佳檢測狀態(tài),因此本方法更具有推廣泛先進性。

3 結(jié)論

本試驗采用氣相色譜質(zhì)譜聯(lián)用法,選擇最佳儀器分析條件,線性相關(guān)性和結(jié)果精密度均能滿足敵百蟲的測定要求。前處理方法選取適合的提取和凈化條件組合進行萃取,有效減少中間步驟帶來的損失,且試劑相比傳統(tǒng)方法用量更合理,回收率更好。使用本方法測定風(fēng)干牦牛肉中的敵百蟲殘留,操作簡捷、靈敏度高、重復(fù)性好、雜質(zhì)干擾少、測定結(jié)果達到了我國對敵百蟲殘留分析的要求。該研究為肉類敵百蟲的檢測提供了新方法,對風(fēng)干牦牛肉中敵百蟲檢測和安全監(jiān)控具有重要意義。

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