施凱 馮月娟 王建峰 王燦燦 郁東偉 陳學(xué)遠(yuǎn)
[摘要] 目的 探討microRNA-149(miR-149)在順鉑耐藥A549細(xì)胞(A549/DDP)中的表達(dá)規(guī)律及作用機(jī)制。 方法 生物信息學(xué)方法分析順鉑耐藥A549細(xì)胞中的microRNA表達(dá)變化。體外培養(yǎng)A549細(xì)胞并誘導(dǎo)對順鉑耐藥的A549/DDP細(xì)胞系,實時熒光定量PCR(qRT-PCR)檢測miR-149在兩種細(xì)胞系中的表達(dá)差異。CCK-8試驗及流式細(xì)胞術(shù)檢測單純miR-149 過表達(dá)以及miR-149和ABCC1同時過表達(dá)對細(xì)胞順鉑敏感性的影響。qRT-PCR及Western blot檢測A549及A549/DDP細(xì)胞中ABCC1的表達(dá)差異,雙熒光素酶報告試驗檢測miR-149以ABCC1之間的靶向關(guān)系,并利用qRT-PCR及Western blot加以證實。 結(jié)果 A549/DDP細(xì)胞中的miR-149 表達(dá)較低,與A549細(xì)胞相比,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(t=-4.65,P<0.05)。miR-149過表達(dá)可以降低順鉑處理后A549/DDP細(xì)胞的活力但增加其凋亡率,與陰性轉(zhuǎn)染對照細(xì)胞相比,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P均<0.05)。與A549細(xì)胞相比ABCC1在A549/DDP細(xì)胞中存在mRNA及蛋白水平的高表達(dá),差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(t=8.44、5.14,P均<0.05)。過表達(dá)miR-149可以降低A549/DDP細(xì)胞中ABCC1的mRNA及蛋白水平,與陰性轉(zhuǎn)染對照細(xì)胞相比,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(t=-3.14、-4.54,P<0.05)。雙熒光報告酶分析顯示miR-149可直接與ABCC1 mRNA的3UTR結(jié)合。miR-149與ABCC1同時過表達(dá)的A549/DDP細(xì)胞與單純miR-149過表達(dá)的細(xì)胞相比,順鉑處理后細(xì)胞活力增加,凋亡減少,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P均<0.05)。 結(jié)論 miR-149表達(dá)不足可能引起A549細(xì)胞對順鉑的耐藥,該機(jī)制與miR-149對ABCC1的抑制作用有關(guān)。
[關(guān)鍵詞] 非小細(xì)胞肺癌;microRNA-149;ABCC1;順鉑;耐藥性
[中圖分類號] R734.2 [文獻(xiàn)標(biāo)識碼] A [文章編號] 1673-9701(2018)30-0001-05
[Abstract] Objective To investigate the expression principle and mechanism of microRNA-149(miR-149) in cisplatin-resistant A549 cells (A549/DDP). Methods Bioinformatics methods were used to analyze microRNA expression changes in cisplatin-resistant A549 cells. A549 cells were cultured in vitro and induced to cisplatin-resistant A549/DDP cell line. Real-time fluorescence quantification PCR(qRT-PCR) was used to detect the differences in the expression of miR-149 in both cell lines. CCK-8 assay and flow cytometry were used to detect the effect of miR-149 overexpression alone and the simultaneous overexpression of miR-149 and ABCC1 on cell cisplatin sensitivity. qRT-PCR and Western blot were used to detect the difference of ABCC1 expression in A549 and A549/DDP cells. Dual luciferase reporter assay was used to detect the targeting relationship between miR-149 and ABCC1, which was confirmed by qRT-PCR and Western blot. Results The expression of miR-149 was lower in A549/DDP cells. The difference was statistically significant compared to A549 cells(t=-4.65, P<0.05). Overexpression of miR-149 could reduce the viability of A549/DDP cells after cisplatin treatment but increase its apoptosis rate. The difference was statistically significant compared to the negative transfected control cells(P<0.05). Compared with A549 cells, ABCC1 had high expression of mRNA and protein in A549/DDP cells, and the difference was statistically significant(t=8.44 and 5.14, P<0.05). Overexpression of miR-149 could decrease the mRNA and protein levels of ABCC1 in A549/DDP cells. The difference was statistically significant compared to the negative transfected control cells(t=-3.14 and -4.54, P<0.05). Dual luciferase reporter assay showed that miR-149 bound directly to the 3' UTR of ABCC1 mRNA. Compared with cells overexpressing miR-149 alone, combined overexpression of miR-149 and ABCC1 in A549/DDP cells showed increased cell viability and decreased apoptosis after cisplatin treatment, and the differences were statistically significant(P<0.05). Conclusion Insufficient expression of miR-149 may cause resistance of cisplatin to A549 cells. This mechanism is related to the inhibition of ABCC1 by miR-149.
[Key words] Non-small cell lung cancer; microRNA-149; ABCC1; Cisplatin; Drug resistance
非小細(xì)胞肺癌(non-small cell lung cancer,NSCLC)是常見的肺癌分型,約占全部病例的80%,且患者預(yù)后較差[1]。順鉑是NSCLC治療的一線化療藥物,但臨床應(yīng)用過程中的順鉑耐藥現(xiàn)象消弱了治療效果,制約了化療方案的開展[2]。順鉑耐藥現(xiàn)象的發(fā)生與多種原因有關(guān),如P-糖蛋白的異常、患者基因突變、藥物轉(zhuǎn)運載體蛋白的結(jié)構(gòu)功能缺陷、腫瘤干細(xì)胞的行為異常以及腫瘤微環(huán)境的異常等[3,4]。對順鉑耐藥分子機(jī)制的研究有助于臨床化療效果的改進(jìn)和療效監(jiān)測。
microRNA是一類非編碼短鏈RNA,長度在21~26個核苷酸左右。哺乳動物中,microRNA可通過與靶基因mRNA 3端非翻譯區(qū)(3-UTR)的互補結(jié)合,抑制靶基因mRNA的翻譯,從而實現(xiàn)對靶基因的轉(zhuǎn)錄后調(diào)控[5,6]。研究證實microRNA的異常不但與多種腫瘤的發(fā)生發(fā)展有關(guān),也與腫瘤對化療的敏感性或耐藥性的發(fā)生有關(guān)。有研究指出,microRNA-149(miR-149)的下調(diào)與結(jié)腸癌對5-氟尿嘧啶的耐藥性有關(guān),miR-149可以通過對FOXM1的調(diào)節(jié)增加結(jié)腸癌細(xì)胞對5-氟尿嘧啶的敏感性[7]。但關(guān)于miR-149是否參與NSCLC對順鉑的耐藥及其機(jī)制還有待研究。ABCC1是ATP-結(jié)合盒轉(zhuǎn)運蛋白超家族的成員,一般認(rèn)為過量的ABCC1表達(dá)會引起腫瘤細(xì)胞的耐藥,特別是多藥耐藥[8,9]。因此本研究探討了miR-149與NSCLC對順鉑耐藥的關(guān)系,并假設(shè)此過程中其以ABCC1為靶點,通過對ABCC1的調(diào)控來實現(xiàn)作用。
1 資料與方法
1.1 主要試劑
胎牛血清(美國GIBCO公司);DMEM培養(yǎng)基(美國GIBCO公司);順鉑(美國sigma-aldaich公司);CCK-8細(xì)胞活力分析試劑盒(美國sigma-aldaich公司);Trizol試劑(美國thermofisher公司);Prime script RT反轉(zhuǎn)錄試劑盒(大連寶生物有限公司);SYBR premix EX taq實時熒光定量試劑盒(大連寶生物有限公司);GoScript Reverse Transcription反轉(zhuǎn)錄試劑盒(美國Promega公司);雙熒光素酶報告分析試劑盒(美國Promega公司);Annexin V-FITC和碘化丙啶(美國sigma-aldaich公司);小鼠抗人ABCC1多克隆抗體、小鼠抗人多克隆GAPDH及HRP標(biāo)記的山羊抗小鼠lgG二抗(美國Santa-Cruz公司);ECL超敏發(fā)光試劑盒(北京索萊寶科技有限公司)。
1.2 生物信息學(xué)分析
檢索Gene Expressionomnibus(GEO)公共基因數(shù)據(jù)庫中的相關(guān)基因芯片數(shù)據(jù),分析miR-149在順鉑耐藥非小細(xì)胞肺癌中的表達(dá)差異。使用Target scan及miRanda數(shù)據(jù)庫預(yù)測miR-149的靶基因。
1.3 細(xì)胞培養(yǎng)
人類肺腺癌A549細(xì)胞系購自中國科學(xué)院上海細(xì)胞研究所。通過將A549細(xì)胞暴露于逐漸增高的濃度的順鉑中可獲得對順鉑耐藥的A549細(xì)胞株(最大順鉑暴露濃度為1 μg/mL),該細(xì)胞株命名為A549/DDP細(xì)胞。細(xì)胞培養(yǎng)于含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液中,于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中常規(guī)培養(yǎng)。為維持A549/DDP細(xì)胞的耐藥性,培養(yǎng)液中需加入0.5 μg/mL的順鉑。進(jìn)行其他試驗前1周,A549/DDP需培養(yǎng)于無順鉑的培養(yǎng)液中,以避免藥物干擾。
1.4 細(xì)胞活力分析
細(xì)胞活力分析采用CCK-8細(xì)胞活力分析試劑盒。將A549細(xì)胞和A549/DDP細(xì)胞以4000個/孔的密度種植于96孔板中,培養(yǎng)24 h待細(xì)胞貼壁后,加入不同濃度的順鉑(0~20 μg/mL),繼續(xù)培養(yǎng)48 h后,每孔加入10 μL CCK8試劑,溫箱孵育1 h后使用酶標(biāo)儀(Biotech Elx800)測量450 nm處吸光度。
1.5 熒光實時定量PCR
使用Trizol試劑提取A549細(xì)胞及A549/DDP細(xì)胞的總RNA樣本。為檢測樣品中miR-149的水平,使用Prime script RT反轉(zhuǎn)錄試劑盒對RNA樣本進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,獲取的cDNA使用SYBR premix EX Taq試劑盒進(jìn)行擴(kuò)增定量。反應(yīng)體系和條件嚴(yán)格按照廠商說明書進(jìn)行設(shè)定,內(nèi)參基因使用SNORD-48。為檢測ABCC1 mRNA水平,使用GoScript Reverse Transcription反轉(zhuǎn)錄試劑盒將RNA反轉(zhuǎn)為cDNA,接著使用GoTaqRqPCR 試劑盒進(jìn)行擴(kuò)增定量,反應(yīng)體系和條件按照說明書提供的方案進(jìn)行。使用GAPDH作為內(nèi)參,miR-149和ABCC1的相對表達(dá)水平通過2-△△CT計算,△CT=CT目標(biāo)-CT內(nèi)參。
1.6 細(xì)胞轉(zhuǎn)染
通過向A549/DDP轉(zhuǎn)染miR-149 mimic以提高細(xì)胞內(nèi)的miR-149水平。將細(xì)胞以3×105/孔的密度種植于6孔板,當(dāng)細(xì)胞匯合度到達(dá)70%時,進(jìn)行轉(zhuǎn)染,轉(zhuǎn)染試劑采用Lipofectamine RNAiMax試劑,轉(zhuǎn)染混合物的配置及用量參考廠商提供的說明書。轉(zhuǎn)染All star 無關(guān)序列作為mimic陰性對照(mimic NC)。通過轉(zhuǎn)染PcDNA3.0-ABCC1真核表達(dá)質(zhì)粒提高A549/DDP細(xì)胞以實現(xiàn)ABCC1的過表達(dá),轉(zhuǎn)染試劑采用lipofectamine 2000,以PcDNA3.0空質(zhì)粒為陰性對照。轉(zhuǎn)染48 h后,使用qRT-PCR及Western blot對轉(zhuǎn)染效果進(jìn)行驗證,選擇轉(zhuǎn)染有效的細(xì)胞進(jìn)行隨后試驗。CCK-8試驗分析轉(zhuǎn)染后細(xì)胞對不同濃度順鉑處理的敏感性變化。
1.7 雙熒光素酶報告試驗
采用雙熒光素酶報告試驗驗證miR-149與ABCC1的靶向關(guān)系。分別構(gòu)建ABCC1 3-UTR野生型及突變型熒光素酶報告質(zhì)粒,分別命名為pMIR-ABCC1-wild與pMIR-ABCC1-mut。對A549細(xì)胞實施報告質(zhì)粒與miR-149 mimic的共轉(zhuǎn)染,轉(zhuǎn)染組合為miR-149 mimic+pMIR-ABCC1-wild、mimic 陰性對照+pMIR-ABCC1-wild、miR-149 mimic+pMIR-ABCC1-mut以及mimic 陰性對照+pMIR-ABCC1-mut。將轉(zhuǎn)染后的各組細(xì)胞以1×104/孔的密度種植于96孔板,繼續(xù)培養(yǎng)48 h,隨后每孔加入100 μL裂解液,收集裂解后的上清液,取出部分上清液加入40 μL螢火蟲熒光素底物,混合均勻15 s 后測定熒光強(qiáng)度。剩余上清液加入40 μL海腎熒光素酶底物,混合均勻后測定熒光強(qiáng)度,計算螢火蟲熒光素強(qiáng)度值與海腎熒光素強(qiáng)度值的比值。
1.8 凋亡分析
細(xì)胞經(jīng)轉(zhuǎn)染處理48 h后,以3×105/孔的密度種植于6孔板,待細(xì)胞貼壁后,加入15 μg/mL順鉑,處理48 h后收集細(xì)胞,70%預(yù)冷酒精固定12 h,隨后使用Annexin V-FITC和碘化丙啶對細(xì)胞進(jìn)行染色,避光孵育半小時,使用流式細(xì)胞儀(GuavaR easyCyte system)分析各組細(xì)胞凋亡情況,計算凋亡率。
1.9 Western blot分析
使用含有蛋白酶抑制劑的RIPA裂解液提取細(xì)胞中的總蛋白,BCA試劑盒測定樣本濃度后,以每孔50 μg的濃度上樣。電泳采用10%聚丙烯酰胺凝膠,電壓為100 V。電泳完成后,90 V電壓進(jìn)行轉(zhuǎn)膜。將轉(zhuǎn)膜完成后的PVDF膜置于5%脫脂奶粉中室溫封閉1 h。隨后分別使用1:500的小鼠抗人ABCC1多克隆抗體、1:1000小鼠抗人GAPDH多克隆抗體進(jìn)行一抗孵育,時間12 h,溫度4℃。一抗孵育完成后,使用PBST洗滌3次,除去多余抗體。使用辣根過氧化物酶標(biāo)記的山羊抗小鼠二抗(1:2000)室溫繼續(xù)孵育1~2 h,ECL超敏發(fā)光試劑盒顯色并分析條帶。
1.10 統(tǒng)計學(xué)分析
統(tǒng)計學(xué)分析使用SPSS19.0軟件,符合正態(tài)分布的計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,兩組間均數(shù)的比較采用獨立樣本t檢驗,多組間均數(shù)的比較采用單因素方差分析。P<0.05為差異具有統(tǒng)計學(xué)意義。
2 結(jié)果
2.1 miR-149在順鉑耐藥A549細(xì)胞中的表達(dá)
編號GSE85603的芯片數(shù)據(jù)集顯示順鉑耐藥A549細(xì)胞中的miR-149表達(dá)水平較低,與順鉑敏感的A549細(xì)胞相比降低了2.11倍,且差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。體外實驗顯示,miR-149在A549/DDP細(xì)胞中的相對表達(dá)水平為(0.51±0.03),與A549細(xì)胞相比(1.00±0.02)顯著降低,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(t=-4.65,P<0.05)。
2.2 上調(diào)miR-149可增加A549/DDP細(xì)胞對順鉑的敏感性
CCK-8試驗的結(jié)果顯示,通過轉(zhuǎn)染miR-149 mimic上調(diào)miRNA-149的水平,并經(jīng)不同濃度順鉑處理后,A549/DDP細(xì)胞的活力明顯低于陰性轉(zhuǎn)染對照細(xì)胞(mimic NC),差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),見表1。凋亡分析顯示,經(jīng)15 μg/mL順鉑處理48 h后,上調(diào)miR-149后A549/DDP細(xì)胞的凋亡率為(30.12±4.21)%,轉(zhuǎn)染mimic NC的A549/DDP細(xì)胞凋亡率為(10.21±2.45)%,兩組間的差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(t=-5.25,P<0.05)。
2.3 miR-149與ABCC1的靶向關(guān)系
qRT-PCR結(jié)果顯示,A549/DDP細(xì)胞中ABCC1 mRNA的相對水平為(4.31±0.52),而A549細(xì)胞中的ABCC1 mRNA的相對水平為(1.00±0.03),差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(t=8.44,P<0.05)。Western blot結(jié)果顯示(圖1),A549/DDP細(xì)胞同時存在ABCC1蛋白水平的高表達(dá)(t=5.14,P<0.05)。上調(diào)miR-149 后,A549/DDP細(xì)胞內(nèi)ABCC1的mRNA相對水平降至(0.61±0.24),而陰性轉(zhuǎn)染對照細(xì)胞的ABCC1 mRNA相對水平為(1.00±0.20),差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(t=-3.14,P<0.05),同時ABCC1蛋白表達(dá)也有所降低(t=-4.54,P<0.05)(圖2)。
通過Target scan及miRanda數(shù)據(jù)庫進(jìn)行生物信息學(xué)預(yù)測顯示,ABCC1可能為miR-149的靶基因。雙熒光素酶報告試驗顯示(表2),共轉(zhuǎn)染miR-149 mimic+pMIR-ABCC1-wild的細(xì)胞內(nèi)相對熒光強(qiáng)度低于共轉(zhuǎn)染miR-149 mimic+pMIR-ABCC1-mut的細(xì)胞,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),提示miR-149可以結(jié)合ABCC1的3-UTR區(qū)域,可以ABCC1為直接靶基因。當(dāng)轉(zhuǎn)染PcDNA3.0-ABCC1表達(dá)質(zhì)粒實現(xiàn)A549/DDP細(xì)胞中的ABCC1的過表達(dá)后,可見miR-149提高A549/DDP細(xì)胞順鉑敏感性的作用被抑制。表現(xiàn)為與僅上調(diào)miR-149的A549/DDP細(xì)胞相比,同時過表達(dá)ABCC1的細(xì)胞在順鉑處理后的活力增加(表3),差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P均<0.05)。另一方面,僅上調(diào)miR-149的A549/DDP細(xì)胞的凋亡率為(35.41±5.21)%,同時過表達(dá)ABCC1的細(xì)胞凋亡率降至(20.11±3.98)%,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(t=4.62,P<0.05)。
3 討論
盡管基于鉑類藥物的化療方案已經(jīng)廣泛地應(yīng)用于NSCLC的治療,但其臨床療效仍然受限于原發(fā)或繼發(fā)性的藥物耐受[2]。因此充分掌握NSCLC對鉑類藥物耐受的機(jī)制,有助于臨床治療方案的制定和改進(jìn),從而提高治療效果。關(guān)于NSCLC對順鉑耐藥的機(jī)制,不少研究已經(jīng)有所報道,主要有以下幾個經(jīng)典的機(jī)制:(1)細(xì)胞表面膜蛋白異常,導(dǎo)致藥物攝取減少或泵出增多;(2)DNA修復(fù)功能過強(qiáng),凋亡減少;(3)細(xì)胞代謝增強(qiáng),藥物被代謝酶過多清除[10,11]。近期研究發(fā)現(xiàn),獲得性的順鉑耐藥與microRNA的失調(diào)有關(guān)[12-15]。如Su等[16]發(fā)現(xiàn),miR-135b在對順鉑耐藥的肺癌細(xì)胞系中存在顯著低表達(dá),恢復(fù)其水平后,該細(xì)胞系對順鉑的敏感性提高。其機(jī)制可能為miR-135b能夠降低FZD1基因的表達(dá),后者表達(dá)的產(chǎn)物為Wnt通過的受體,F(xiàn)ZD1過度表達(dá)可以引起腫瘤細(xì)胞的耐藥性。還有研究指出,一些microRNA的過表達(dá)可以誘導(dǎo)NSCLC對順鉑的耐藥性。如miR-379會導(dǎo)致其靶基因EIF4G2的表達(dá)抑制,EIF4G2具有抑制腫瘤細(xì)胞生長、誘導(dǎo)凋亡的功能,因此miR-379的過表達(dá)引起EIF4G2的不足,從而導(dǎo)致NSCLC細(xì)胞對順鉑的敏感性降低[17]。關(guān)于microRNA與NSCLC順鉑耐藥性的研究近期較為熱門,涉及microRNA及其相關(guān)靶基因各不相同。但關(guān)于miR-149與NSCLC順鉑耐藥的研究還較少,因此本研究將焦點集中在miR-149。
研究表明,miR-149具有抑癌作用。有研究證實其可抑制結(jié)腸癌細(xì)胞的轉(zhuǎn)移和侵襲,在乳腺癌中也能發(fā)揮抑制侵襲的作用[7,18]。在腦膠質(zhì)瘤中miR-149可以抑制腫瘤細(xì)胞的增殖[19]。更重要的是,有研究發(fā)現(xiàn),miR-149可以增加結(jié)腸癌細(xì)胞對5-氟尿嘧啶的敏感性[7],因此基于miR-149在腫瘤中的抑癌作用及涉及耐藥性的相關(guān)研究,本研究推測,miR-149可能與NSCLC細(xì)胞對順鉑耐藥有關(guān)。首先我們分析了公共數(shù)據(jù)庫中的已發(fā)表數(shù)據(jù),結(jié)果顯示miR-149在A549/DDP中存在較低的表達(dá)。本研究也通過qRT-PCR驗證了miR-149在順鉑耐藥NSCLC細(xì)胞株 A549/DDP細(xì)胞中的表達(dá),結(jié)果顯示與非順鉑耐藥的A549細(xì)胞株相比,miR-149在耐藥株中存在低表達(dá)。通過轉(zhuǎn)染miR-149 mimic提高其在A549/DDP細(xì)胞中的表達(dá)后,耐藥株對順鉑的敏感性得到了提高,表現(xiàn)為增殖抑制增加,凋亡增加。另一方面,我們也發(fā)現(xiàn)ABCC1在A549/DDP細(xì)胞中存在高表達(dá),生物信息學(xué)分析也顯示,ABCC1為miR-149的潛在靶基因。因此,我們進(jìn)一步推測miR-149可能通過調(diào)控ABCC1來實現(xiàn)對NSCLC細(xì)胞順鉑耐藥性的影響。之所以關(guān)注ABCC1,是因為已經(jīng)有研究指出,ABCC1與腫瘤細(xì)胞的耐藥密切相關(guān),特別是與多重耐藥的發(fā)生密不可分。如有研究發(fā)現(xiàn)ABCC1的高表達(dá)能引起肺癌化療敏感性的降低,其基因多態(tài)性可以作為肺癌治療敏感性的指標(biāo)。Pei等[20]證實,在小細(xì)胞肺癌中,ABCC1的過表達(dá)意味著患者對化療的敏感性較差,提示不良預(yù)后。Liu等[21]在小細(xì)胞肺癌中發(fā)現(xiàn),ABCC1可受microRNA-7的直接靶向調(diào)節(jié),microRNA-7可以抑制ABCC1的表達(dá)從而提高小細(xì)胞肺癌對多種化療藥物的敏感性。還有研究發(fā)現(xiàn)ABCC1同時受microRNA-185的調(diào)控,從而參與NSCLC對順鉑的耐藥調(diào)控。本研究證實A549/DDP細(xì)胞株中存在ABCC1的高表達(dá),提示其參與順鉑的耐藥,與既往研究一致。為明確其與miR-149的靶向關(guān)系,本研究設(shè)計了雙熒光素酶報告試驗,結(jié)果提示,在A549/DDP細(xì)胞中,miR-149可直接以ABCC1為靶點。增加miR-149的表達(dá)后,ABCC1的mRNA和蛋白水平均降低。更重要的是,當(dāng)使用ABCC1表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染A539/DDP后,即使提高miR-149水平,也無法增加細(xì)胞對順鉑的敏感性。該結(jié)果提示miR-149 對順鉑耐藥的NSCLC敏感性的提高有賴于對ABCC1的靶向調(diào)節(jié)。本研究未使用動物實驗驗證結(jié)果,這是本研究的局限性,有待于在進(jìn)一步研究中解決。
總之,本研究發(fā)現(xiàn)miR-149可通過靶向抑制ABCC1的水平增加NSCLC細(xì)胞對順鉑的敏感性。設(shè)計可改變miR-149水平的靶向方案,具有提高NSCLC患者順鉑治療療效的潛力。同時,檢測miR-149可能成為預(yù)測患者化療敏感性的指標(biāo)。
[參考文獻(xiàn)]
[1] Ben Amar J,Ben Safta B,Zaibi H,et al. Prognostic factors of advanced stage non-small-cell lung cancer[J]. Tunis Med,2016,94(5):360-367.
[2] Akhtari M,Bernicker EH,Teh BS.Chemotherapy in non-small cell lung cancer:opportunities for advancement[J]. Chin J Cancer,2016,35(1):56-63.
[3] Steuer CE,Behera M,Ernani V,et al. Comparison of Concurrent Use of Thoracic Radiation With Either Carboplatin-Paclitaxel or Cisplatin-Etoposide for Patients With Stage III Non-Small-Cell Lung Cancer:A Systematic Review[J]. JAMA Oncol,2017,3(8):1120-1129.
[4] Fadejeva I,Olschewski H,Hrzenjak A.MicroRNAs as regulators of cisplatin-resistance in non-small cell lung carcinomas[J]. Oncotarget,2017,8(70):115754-115773.
[5] Charkiewicz R,Pilz L,Sulewska A,et al. Validation for histology-driven diagnosis in non-small cell lung cancer using hsa-miR-205 and hsa-miR-21 expression by two different normalization strategies[J]. Int J Cancer,2016,138(3):689-697.
[6] 陳芹,周彩存,張頡.ERCC1、RRM1和BRCA1在非小細(xì)胞肺癌中的表達(dá)及預(yù)后意義[J].腫瘤,2007,27(9):719-722.
[7] Liu X,Xie T,Mao X,et al. MicroRNA-149 Increases the Sensitivity of Colorectal Cancer Cells to 5-Fluorouracil by Targeting Forkhead Box Transcription Factor FOXM1[J].Cell Physiol Biochem,2016,39(2):617-629.
[8] Spitzwieser M,Pirker C,Koblmuller B,et al. Promoter methylation patterns of ABCB1,ABCC1 and ABCG2 in human cancer cell lines,multidrug-resistant cell models and tumor,tumor-adjacent and tumor-distant tissues from breast cancer patients[J]. Oncotarget,2016,7(45):73347-73369.
[9] Sun KX,Jiao JW,Chen S,et al. MicroRNA-186 induces sensitivity of ovarian cancer cells to paclitaxel and cisplatin by targeting ABCB1[J]. J Ovarian Res,2015,8(1):80-89.
[10] Zang H,Peng J,Wang W,et al. Roles of microRNAs in the resistance to platinum based chemotherapy in the non-small cell lung cancer[J]. J Cancer,2017,8(18): 3856-3861.
[11] Pang L,Lu J,Huang J,et al. Upregulation of miR-146a increases cisplatin sensitivity of the non-small cell lung cancer A549 cell line by targeting JNK-2[J]. Oncol Lett, 2017, 14(6):7745-7752.
[12] Nascimento AV,Singh A,Bousbaa H,et al. Overcoming cisplatin resistance in non-small cell lung cancer with Mad2 silencing siRNA delivered systemically using EGFR-targeted chitosan nanoparticles[J]. Acta Biomater,2017,47(1):71-80.
[13] Ye Z,Yin S,Su Z,et al. Downregulation of miR-101 contributes to epithelial-mesenchymal transition in cisplatin resistance of NSCLC cells by targeting ROCK2[J]. Oncotarget,2016,7(25):37524-37535.
[14] Liu X,Ma M,Duan X,et al. Knockdown of OCT4 may sensitize NSCLC cells to cisplatin[J]. Clin Transl Oncol,2017,19(5):587-592.
[15] Xu Z,Mei J,Tan Y.Baicalin attenuates DDP (cisplatin) resistance in lung cancer by downregulating MARK2 and p-Akt[J]. Int J Oncol,2017,50(1):93-100.
[16] Su W,Mo Y,Wu F,et al. miR-135b reverses chemoresistance of non-small cell lung cancer cells by downregulation of FZD1[J]. Biomed Pharmacother,2016,84(6):123-129.
[17] Hao GJ,Hao HJ,Ding YH,et al. Suppression of EIF4G2 by miR-379 potentiates the cisplatin chemosensitivity in nonsmall cell lung cancer cells[J]. FEBS Lett,2017,591(4): 636-645.
[18] He Y,Yu D,Zhu L,et al. miR-149 in Human Cancer:A Systemic Review[J]. J Cancer,2018,9(2):375-388.
[19] Shen X,Li J,Liao W,et al. microRNA-149 targets caspase-2 in glioma progression[J]. Oncotarget,2016,7(18):26388-26399.
[20] Pei K,Zhu JJ,Wang CE,et al. MicroRNA-185-5p modulates chemosensitivity of human non-small cell lung cancer to cisplatin via targeting ABCC1[J]. Eur Rev Med Pharmacol Sci,2016,20(22):4697-4704.
[21] Liu H,Wu X,Huang J,et al. miR-7 modulates chemoresistance of small cell lung cancer by repressing MRP1/ABCC1[J]. Int J Exp Pathol,2015,96(4):240-247.
(收稿日期:2018-04-16)