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HPLC—CAD法同時(shí)測(cè)定風(fēng)濕定片中7種活性成分的含量

2018-10-19 05:13侯?lèi)?ài)榮邢曄忠吳雪松
中國(guó)藥房 2018年23期
關(guān)鍵詞:風(fēng)濕甘草色譜

侯?lèi)?ài)榮 邢曄忠 吳雪松

中圖分類(lèi)號(hào) R917;R284.1 文獻(xiàn)標(biāo)志碼 A 文章編號(hào) 1001-0408(2018)23-3212-05

DOI 10.6039/j.issn.1001-0408.2018.23.10

摘 要 目的:建立同時(shí)測(cè)定風(fēng)濕定片中甘草酸、水楊苷、甘草次酸、毒藜?jí)A、丹皮酚、歐前胡素及異歐前胡素含量的方法。方法:采用高效液相色譜-電霧式檢測(cè)器(HPLC-CAD)法。色譜柱為T(mén)hermo Hypersil BDS C18,流動(dòng)相為乙腈-10 mmol/L甲酸銨(甲酸調(diào)pH至4.5,梯度洗脫),流速為1.0 mL/min,柱溫為35 ℃,CAD霧化器溫度為35 ℃,氣壓為(59.6±0.1) psi,檢測(cè)頻率為10 Hz,進(jìn)樣量為20 μL。結(jié)果:甘草酸、水楊苷、甘草次酸、毒藜?jí)A、丹皮酚、歐前胡素及異歐前胡素檢測(cè)質(zhì)量濃度線性范圍為0.42~16.80、0.28~11.20、0.16~6.20、0.98~39.40、1.02~41.00、0.11~4.40、0.10~3.80 μg/mL(r≥0.999 1);檢測(cè)限分別為0.03、0.02、0.02、0.03、0.03、0.02、0.02 μg/mL,定量限分別為0.11、0.06、0.06、0.10、0.11、0.08、0.07 μg/mL;精密度、穩(wěn)定性(48 h)、重復(fù)性試驗(yàn)的RSD均<2.0%(n=6或n=7);平均回收率為98.61%~99.76%,RSD為1.11%~1.51%(n=6)。結(jié)論:建立的方法操作簡(jiǎn)便、靈敏度高、結(jié)果準(zhǔn)確,可用于風(fēng)濕定片中甘草酸、水楊苷、甘草次酸、毒藜?jí)A、丹皮酚、歐前胡素及異歐前胡素含量的同時(shí)測(cè)定。

關(guān)鍵詞 高效液相色譜-電霧式檢測(cè)器法;風(fēng)濕定片;水楊苷;毒藜?jí)A;丹皮酚;歐前胡素;含量測(cè)定

ABSTRACT OBJECTIVE: To establish the method for simultaneous determination of glycyrrhizic acid, salicin, glycyrrhetinic acid, chenopodium, paeonol, imperatorin and isoimperatorin in Fengshiding tablet. METHODS: HPLC-CAD method was adopted. The determination was performed on Thermo Hypersil BDS C18 column with mobile phase consisted of acetonitrile-10 mmol/L ammonium formate (pH value adjusted to 4.5 using formic acid, gradient elution) at the flow rate of 1.0 mL/min. The column temperature was set at 35 ℃. CAD atomizer temperature was 35 ℃, and air pressure was (59.6±0.1) psi. The detection frequency was 10 Hz, and sample size was 20 μL. RESULTS: The linear range of glycyrrhizic acid, salicin, glycyrrhetinic acid, chenopodium, paeonol, imperatorin and isoimperatorin were 0.42-16.80, 0.28-11.20, 0.16-6.20, 0.98-39.40, 1.02-41.00, 0.11- 4.40, 0.10-3.80 μg/mL(r≥0.999 1), respectively. The detection limits were 0.03, 0.02, 0.02, 0.03, 0.03, 0.02, 0.02 μg/mL, respectively; quantitation limits were 0.11, 0.06, 0.06, 0.10, 0.11, 0.08, 0.07μg/mL, respectively. RSDs of precision, stability (48 h) and reproducibility tests were all lower than 2.0% (n=6 or n=7). Average recoveries rate were 98.61%-99.76%, and RSDs were 1.11%-1.51% (n=6). CONCLUSIONS: The established method is simple, sensitive, accurate, and can be used for simultaneous determination of glycyrrhizic acid, salicin, glycyrrhetinic acid, chenopodium, paeonol, imperatorin and isoimperatorin in Fengshiding tablet.

KEYWORDS HPLC-CAD; Fengshiding tablet; Salicin; Chenopodium; Paeonol; Imperatorin; Content determination

風(fēng)濕定片由八角楓、徐長(zhǎng)卿、白芷及甘草這4味中藥組成,有散風(fēng)除濕、通絡(luò)止痛的功效,用于風(fēng)濕阻絡(luò)所致的痹病、癥見(jiàn)關(guān)節(jié)疼痛以及風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎、類(lèi)風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎、肋神經(jīng)痛、坐骨神經(jīng)痛見(jiàn)上述證候者[1]。研究表明,毒藜?jí)A為八角楓中松弛肌肉的活性成分,也是主要毒性成分[2],水楊苷為八角楓解熱鎮(zhèn)痛的主要活性成分,對(duì)關(guān)節(jié)炎有治療作用[3];丹皮酚為徐長(zhǎng)卿中主要活性成分,具有抗炎及免疫調(diào)節(jié)作用[4];以歐前胡素及異歐前胡素為代表的香豆素類(lèi)成分是白芷鎮(zhèn)痛抗炎的活性成分[5];甘草酸及甘草次酸是甘草的主要活性成分,具有抗炎、抗氧化作用[6]。風(fēng)濕定片現(xiàn)行質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)收載于2015年版《中國(guó)藥典》(一部)中[1],其含量測(cè)定項(xiàng)僅以丹皮酚為指標(biāo)性成分,且關(guān)于風(fēng)濕定片質(zhì)量研究的文獻(xiàn)也未見(jiàn)3種以上的多成分質(zhì)量控制[7-9],由于中藥復(fù)方制劑化學(xué)成分復(fù)雜,僅控制其中少量成分含量,很難全面反映其質(zhì)量。

電霧式檢測(cè)器(CAD)是近年來(lái)發(fā)展起來(lái)的一種新型檢測(cè)器,與傳統(tǒng)的紫外檢測(cè)器、二極管陣列檢測(cè)器(DAD)、蒸發(fā)光散射檢測(cè)器比較,具有靈敏高、重現(xiàn)性好等優(yōu)點(diǎn)[10]。本試驗(yàn)建立高效液相色譜(HPLC)-CAD法同時(shí)測(cè)定風(fēng)濕定片中甘草酸、水楊苷、甘草次酸、毒藜?jí)A、丹皮酚、歐前胡素及異歐前胡素的含量,以期為完善風(fēng)濕定片的質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)提供參考。

1 材料

1.1 儀器

3000 HPLC儀,包括Corona Veo CAD(美國(guó)Thermo Fisher公司);KQ -400DB超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);SQP千分之一天平、CPA225D十萬(wàn)分之一天平、MSE百萬(wàn)分之一天平(德國(guó)Sartorius公司)。

1.2 藥品與試劑

風(fēng)濕定片(陜西君碧莎制藥有限公司,規(guī)格:0.22 g×16片×2板/盒,丹皮酚含量≥1.0 mg/片,共6批,批號(hào)分別為20170602、20170712、20170923、20180310、2018- 0325、20180516;江西濟(jì)民可信藥業(yè)有限公司,規(guī)格:0.22 g×12片×2板/盒,丹皮酚含量≥1.0 mg/片,共3批,批號(hào)分別為20171109、20171222、20180320); 甘草酸對(duì)照品(日本和光純藥工業(yè)株式會(huì)社,批號(hào):070-06021,純度:99%);水楊苷對(duì)照品(批號(hào):132590050,純度:99%)、毒藜?jí)A對(duì)照品(批號(hào):458980010,純度:98%)均購(gòu)自比利時(shí)Acros公司;甘草次酸對(duì)照品(批號(hào):110723-201715,純度:98%)、丹皮酚對(duì)照品(批號(hào):110708-201407,純度:97%)、歐前胡素對(duì)照品(批號(hào):110826-201616,純度:99%)、異歐前胡素對(duì)照品(批號(hào):110827-201812,純度:98%)均購(gòu)自中國(guó)食品藥品檢定研究院;甲醇為色譜純,乙腈、甲酸、甲酸銨為分析純,水為超純水。

2 方法與結(jié)果

2.1 色譜條件

色譜柱:Thermo Hypersil BDS C18(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動(dòng)相:乙腈(A)-10 mmol/L甲酸銨(B,甲酸調(diào)pH至4.5),梯度洗脫(0~8 min,15% A;8~30 min,15%~25% A;30~35 min,25%~30% A;35~45 min,30%~55% A;45~50 min,55%~70% A);流速:1.0 mL/min;柱溫:35 ℃;進(jìn)樣量:20 μL ;CAD霧化器溫度:35 ℃,氣壓:(59.6±0.1) psi,檢測(cè)頻率:10 Hz。

2.2 溶液的制備

2.2.1 混合對(duì)照品溶液 精密稱取甘草酸、水楊苷、甘草次酸、歐前胡素及異歐前胡素對(duì)照品適量,分別置于10 mL量瓶中,加70%甲醇溶解并稀釋至刻度,分別制成含甘草酸、水楊苷、甘草次酸、歐前胡素及異歐前胡素分別為0.84、0.56、0.31、0.22、0.19 mg/mL的對(duì)照品貯備液;分別精密稱取毒藜?jí)A及丹皮酚適量置于10 mL量瓶中,并分別精密移取甘草酸、水楊苷、甘草次酸、歐前胡素及異歐前胡素的對(duì)照品貯備液各1.0 mL置于同一10 mL量瓶中,加70%甲醇溶解并稀釋至刻度,分別制成含甘草酸、水楊苷、甘草次酸、毒藜?jí)A、丹皮酚、歐前胡素及異歐前胡素質(zhì)量濃度分別為0.084、0.056、0.031、0.197、0.205、0.022、0.019 mg/mL的混合對(duì)照品母液;精密移取混合對(duì)照品母液1.0 mL,置于10 mL量瓶中,加70%甲醇稀釋至刻度,搖勻,制成每1 mL含甘草酸、水楊苷、甘草次酸、毒藜?jí)A、丹皮酚、歐前胡素、異歐前胡素質(zhì)量濃度分別為0.008 4、0.005 6、0.003 1、0.019 7、0.020 5、0.002 2、0.001 9 mg的混合對(duì)照品溶液。

2.2.2 供試品溶液 取本品10片,去除糖衣并精密稱定,研細(xì),取約0.2 g,置于50 mL量瓶中,加70%甲醇30 mL,45 ℃超聲(功率:220 W,頻率:30 kHz) 處理40 min,放冷,加70%甲醇稀釋至刻度,搖勻,過(guò)濾,取續(xù)濾液,即得。

2.2.3 陰性對(duì)照溶液 按處方比例及制法[1]分別制備不含八角楓、徐長(zhǎng)卿、白芷及甘草的4種陰性樣品,按“2.2.2”項(xiàng)下供試品溶液制備方法提取,分別得缺八角楓、缺徐長(zhǎng)卿、缺白芷及缺甘草的陰性對(duì)照溶液。

2.3 系統(tǒng)適用性試驗(yàn)

精密量取“2.2”項(xiàng)下混合對(duì)照品溶液、供試品溶液(批號(hào):20170602)和缺八角楓、缺徐長(zhǎng)卿、缺白芷、缺甘草的陰性對(duì)照溶液,按“2.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣測(cè)定,記錄色譜。結(jié)果,甘草酸、水楊苷、甘草次酸、毒藜?jí)A、丹皮酚、歐前胡素及異歐前胡素與其他組分色譜峰的分離度均不低于1.5,理論板數(shù)以甘草酸計(jì)不低于 8 000,陰性對(duì)照溶液圖譜顯示各陰性樣品均無(wú)干擾。高效液相色譜圖見(jiàn)圖1。

2.4 線性關(guān)系考察

精密量取“2.2.1”項(xiàng)下混合對(duì)照品母液1.0 mL,分別置于5、10、25、50、100、200 mL量瓶中,加70%甲醇稀釋至刻度,得不同質(zhì)量濃度的系列溶液,按“2.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣測(cè)定,記錄峰面積。以待測(cè)成分質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(x)、峰面積為縱坐標(biāo)(y)進(jìn)行線性回歸,線性關(guān)系考察結(jié)果見(jiàn)表1。

2.5 檢測(cè)限與定量限考察

取“2.2.1”項(xiàng)下混合對(duì)照品溶液適量,逐級(jí)稀釋?zhuān)础?.1”項(xiàng)下色譜條件連續(xù)進(jìn)樣測(cè)定6次,記錄峰面積。當(dāng)信噪比為3 ∶ 1時(shí),得檢測(cè)限;當(dāng)信噪比為10 ∶ 1時(shí),得定量限。結(jié)果, 甘草酸、水楊苷、甘草次酸、毒藜?jí)A、丹皮酚、歐前胡素及異歐前胡素的檢測(cè)限分別為0.03、0.02、0.02、0.03、0.03、0.02、0.02 μg/mL,定量限分別為0.11、0.06、0.06、0.10、0.11、0.08、0.07 μg/mL。

2.6 精密度試驗(yàn)

取“2.2.1”項(xiàng)下混合對(duì)照品溶液適量,按“2.1”項(xiàng)下色譜條件連續(xù)進(jìn)樣測(cè)定6次,記錄峰面積。結(jié)果,甘草酸、水楊苷、甘草次酸、毒藜?jí)A、丹皮酚、歐前胡素及異歐前胡素峰面積的RSD分別為1.52%、1.11%、1.33%、0.82%、0.91%、1.58%、1.19%(n=6),表明儀器精密度良好。

2.7 穩(wěn)定性試驗(yàn)

取“2.2.2” 項(xiàng)下供試品溶液(批號(hào):20170602)適量,分別于室溫下放置0、2、4、6、12、24、48 h時(shí)按“2.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣測(cè)定,記錄峰面積。結(jié)果,甘草酸、水楊苷、甘草次酸、毒藜?jí)A、丹皮酚、歐前胡素及異歐前胡素峰面積的RSD分別為0.92%、1.48%、1.32%、1.34%、1.21%、1.62%、1.78%(n=7),表明供試品溶液在室溫下放置48 h內(nèi)穩(wěn)定性良好。

2.8 重復(fù)性試驗(yàn)

精密稱取樣品(批號(hào):20170602)適量,按“2.2.2”項(xiàng)下方法制備供試品溶液,共6份,再按“2.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣測(cè)定,記錄峰面積并計(jì)算樣品含量。結(jié)果,甘草酸、水楊苷、甘草次酸、毒藜?jí)A、丹皮酚、歐前胡素及異歐前胡素含量的平均值分別為0.46、0.31、0.16、1.08、1.14、0.12、0.10 mg/片, RSD分別為1.39%、1.02%、1.32%、1.21%、1.09%、1.63% 、1.74%(n=6),表明本方法重復(fù)性良好。

2.9 加樣回收試驗(yàn)

取樣品(批號(hào):20170602)適量,共6份,每份約0.2 g,精密稱定,置于50 mL量瓶中,加入甘草酸、水楊苷、甘草次酸、毒藜?jí)A、丹皮酚、歐前胡素及異歐前胡素對(duì)照品適量,按“2.2.2”項(xiàng)下方法制備供試品溶液,再按“2.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣測(cè)定,記錄峰面積并計(jì)算回收率,結(jié)果見(jiàn)表2。

2.10 樣品含量測(cè)定

取9批樣品各10片,除去糖衣,按“2.2.2”項(xiàng)下方法制備供試品溶液,再按“2.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣測(cè)定,記錄峰面積并計(jì)算樣品含量,結(jié)果見(jiàn)表3。

3 討論

3.1 檢測(cè)器的選擇

取各成分對(duì)照品溶液采用DAD進(jìn)樣并進(jìn)行全波長(zhǎng)掃描發(fā)現(xiàn),甘草酸與甘草次酸的最大吸收波長(zhǎng)均為250 nm,水楊苷、毒藜?jí)A、丹皮酚最大吸收波長(zhǎng)分別為269、259、274 nm,而歐前胡素、異歐前胡素分別在248、301 nm波長(zhǎng)處有最大吸收,將以上各波長(zhǎng)下樣品的DAD圖譜與CAD圖譜進(jìn)行比較發(fā)現(xiàn),CAD獲得的色譜峰個(gè)數(shù)顯著多于DAD,且靈敏度高、基線更平穩(wěn),故選擇CAD進(jìn)行各成分的含量測(cè)定。

3.2 流動(dòng)相的選擇

2015年版《中國(guó)藥典》(一部)[1]風(fēng)濕定片的含量測(cè)定是以水-乙腈等度洗脫,但在實(shí)際應(yīng)用中發(fā)現(xiàn),除丹皮酚外,其他6種成分在該條件下均難以實(shí)現(xiàn)基線分離,且峰形拖尾。參考文獻(xiàn)[7-9],本試驗(yàn)考察了甲醇-三乙胺、甲醇-純水及乙腈-甲酸等流動(dòng)相系統(tǒng),均難以實(shí)現(xiàn)7種成分的基線分離,繼而本試驗(yàn)對(duì)甲醇-10 mmol/L甲酸銨、乙腈-10 mmol/L甲酸銨、甲醇-10 mmol/L乙酸銨以及乙腈-10 mmol/L乙酸銨等流動(dòng)相體系進(jìn)行考察。結(jié)果,乙腈-10 mmol/L甲酸銨系統(tǒng)下各成分分離度較佳。本試驗(yàn)還考察了采用甲酸分別調(diào)節(jié)pH值至3.0、3.5、4.0、4.5、5.0及5.5,結(jié)果pH值為4.5時(shí)基線平穩(wěn),各色譜峰對(duì)稱度及理論板數(shù)均為最佳,故選擇乙腈-10 mmol/L甲酸銨(甲酸調(diào)pH至4.5)為流動(dòng)相。

3.3 色譜柱的選擇

文獻(xiàn)[7-9]均采用Diamonsil C18為色譜柱進(jìn)行分析,結(jié)果均發(fā)現(xiàn)該色譜柱條件下水楊苷峰形拖尾,且歐前胡素與異歐前胡素?zé)o法實(shí)現(xiàn)基線分離,在多種流動(dòng)相系統(tǒng)中均難以改善。鑒于此,本試驗(yàn)也對(duì)Waters XBridge C18、Agilent ZORBAX Eclipse XDB C18以及Thermo Hypersil BDS C18等不同色譜柱進(jìn)行考察比較,結(jié)果顯示Thermo Hypersil BDS C18色譜柱可以滿足檢測(cè)要求。

3.4 供試品制備方法的選擇

本試驗(yàn)考察了體積分?jǐn)?shù)為60%、70%、80%及純甲醇4種提取溶劑對(duì)各成分的提取效果,結(jié)果顯示,70%甲醇對(duì)風(fēng)濕定片中7種成分的提取效果最佳。本試驗(yàn)還考察了30、40、50 min等不同超聲處理時(shí)間以及40、45、50 ℃等不同超聲加熱溫度對(duì)待測(cè)成分提取的影響,結(jié)果45 ℃超聲40 min即可將7種待測(cè)成分提取完全,故選擇70%甲醇45 ℃超聲40 min為供試品制備方法,且本方法較2015年版《中國(guó)藥典》(一部)[1]及文獻(xiàn)[7,9]提取更加完全,且操作簡(jiǎn)便易行。

3.5 含量測(cè)定結(jié)果分析

結(jié)果顯示,丹皮酚含量均符合2015年版《中國(guó)藥典》(一部)標(biāo)準(zhǔn)(1.0 mg/片)[1]。與文獻(xiàn)[7-9]的檢測(cè)結(jié)果比較,甘草酸含量與文獻(xiàn)報(bào)道基本一致,毒藜?jí)A含量略有降低,丹皮酚及歐前胡素含量比文獻(xiàn)有所升高。除異歐前胡素外,兩個(gè)不同廠家樣品中的其他6種成分含量無(wú)顯著差異,同一廠家不同批次樣品亦無(wú)明顯的批間差異;本品中異歐前胡素含量相對(duì)較低,在本品的制劑工藝中[1],未對(duì)白芷進(jìn)行提取,而直接以細(xì)粉與其他藥材的提取濃縮液混合制粒壓片,可能由于原藥材質(zhì)量批間差異且本試驗(yàn)超聲提取不充分而導(dǎo)致部分批次樣品中異歐前胡素未檢出。

本試驗(yàn)建立了HPLC-CAD法同時(shí)測(cè)定風(fēng)濕定片中甘草酸、水楊苷、甘草次酸、毒藜?jí)A、丹皮酚、歐前胡素及異歐前胡素的含量,該方法簡(jiǎn)便、準(zhǔn)確、重現(xiàn)性好,為風(fēng)濕定片的質(zhì)量研究提供了更加全面的方法。后續(xù)試驗(yàn)中將采用所建立的方法對(duì)更多廠家樣品進(jìn)行分析檢測(cè)與數(shù)據(jù)積累,以期形成更加準(zhǔn)確、完善的風(fēng)濕定片質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)。

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[10] 劉路,高旋,楊永健. HPLC-電霧式檢測(cè)器的應(yīng)用[J].中國(guó)醫(yī)藥工業(yè)雜志,2012,43(3):227-231.

(收稿日期:2018-08-17 修回日期:2018-09-27)

(編輯:余慶華)

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