劉曉玲,王振東,孫涵甜,王振華,趙振軍,李 忌
(煙臺(tái)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,山東煙臺(tái) 264005)
Foxl2(forkhead box l2)是叉頭框轉(zhuǎn)錄因子基因,研究發(fā)現(xiàn)其在脊椎動(dòng)物卵巢中高表達(dá),而在精巢中弱表達(dá)或不表達(dá)[1],深入的功能研究表明,該基因參與哺乳動(dòng)物卵巢功能維持[1-2]。該基因在無脊椎動(dòng)物中的相關(guān)研究相當(dāng)有限,在海膽 (Strongylocentrotus purpuratus)[3]、皮 海 綿(Suberites domuncula)[4]、太 平 洋 牡 蠣(Crassostrea gigas)[5]和 櫛 孔 扇 貝 (Chlamys farreri)[6]中有表達(dá)研究,且其表達(dá)研究主要集中在轉(zhuǎn)錄水平:其中 TU等[3]對紫色球海膽的Foxl2研究僅發(fā)現(xiàn)胚胎期都有表達(dá),是一種合子基因,未有深入研究。DHEILLY等[5]利用基因芯片技術(shù)通過差異檢測發(fā)現(xiàn)Foxl2在太平洋牡蠣中是雌性相關(guān)基因,在卵巢中特異表達(dá)。劉曉玲等[7]發(fā)現(xiàn)Foxl2在成體櫛孔扇貝中具與已報(bào)道的脊椎動(dòng)物一樣的明顯性別二態(tài)性表達(dá),推測該基因在性別穩(wěn)定的無脊椎動(dòng)物櫛孔扇貝的卵巢中發(fā)揮一定功能。LI等[8]通過轉(zhuǎn)錄組測序發(fā)現(xiàn)Foxl2在蝦夷扇貝 (Patinopecten yessoensis)卵巢中高表達(dá),推測參與卵巢決定和分化。然而上述無脊椎Foxl2的性別相關(guān)表達(dá)研究僅集中在轉(zhuǎn)錄水平,僅ADELL等[4]利用免疫組化技術(shù)對皮海綿的Sd-Foxl2進(jìn)行了蛋白水平表達(dá)檢測,發(fā)現(xiàn)在各種細(xì)胞中都有表達(dá),認(rèn)為在皮海綿中該基因不是性別相關(guān)基因。
綜上,F(xiàn)oxl2基因在低等動(dòng)物中的功能尚需深入研究。在前期研究的基礎(chǔ)上,本研究繼續(xù)選取性別穩(wěn)定的櫛孔扇貝為研究對象,通過PCR克隆櫛孔扇貝Foxl2基因,構(gòu)建了大腸桿菌表達(dá)載體并誘導(dǎo)獲得重組蛋白,純化后制備了多克隆抗體,探索了Foxl2蛋白在性腺中的表達(dá),旨在為進(jìn)一步研究Foxl2在櫛孔扇貝卵巢中的作用奠定實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
櫛孔扇貝cDNA、質(zhì)粒及菌種cDNA均由本實(shí)驗(yàn)室制備,DH5α、BL21(DE3)及載 pET-28a等則購自寶生物工程(大連)有限公司。
限制性內(nèi)切酶 EcoRΙ和 HindIII、T4 DNA連接酶等工具酶以及IPTG等購自寶生物工程 (大連)有限公司;PCR反應(yīng)體系、質(zhì)粒提取試劑盒、DNA回收試劑盒、Ni-NTA蛋白純化試劑盒、DNA Marker、動(dòng)物組織總蛋白提取試劑盒、羊抗兔IgG購自生工生物工程 (上海)股份有限公司;蛋白Marker購自北京經(jīng)科宏達(dá)生物技術(shù)有限公司;新西蘭大白兔 (New Zealand white rabbits)由煙臺(tái)綠葉制藥公司提供,弗氏完全佐劑及弗氏不完全佐劑、考馬斯亮藍(lán)染色液、脫色液等購自德國Sigma公司,PVDF膜購自博士德公司。
儀器包括:搖床DYY-Ⅲ型穩(wěn)流穩(wěn)壓電泳儀(北京市六一儀器廠);高速冷凍離心機(jī)5810R型(Eppendorf公司);凝膠成像系統(tǒng)(美國 UVP公司);NANODROP 1000核酸蛋白測定儀 (Thermo公司);TC-XP型基因擴(kuò)增儀 (杭州博日科技有限公司);RT-6000酶標(biāo)分析儀(Rayto公司)。
根據(jù)櫛孔扇貝 Foxl2基因cDNA全長(GenBank JN642286)[7]設(shè)計(jì)引物,以期擴(kuò)增獲得其完整的開放閱讀框。對其閱讀框內(nèi)所含的酶切位點(diǎn)及pET-28a載體多克隆位點(diǎn)進(jìn)行分析,在上下游引物中增加EcoRΙ和HindIII兩個(gè)酶切位點(diǎn)序列(下劃線),引物由華大基因公司合成,序列如下:5′GAATTCATGGCCTTGTCATTTTACGA 3′;5′AAGCTTTCACCTCTCTCCCCAGTATG3′。
采用柱式動(dòng)物RNAout試劑盒(北京天恩澤公司)提取櫛孔扇貝卵巢RNA,cDNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒(大連寶生物公司)反轉(zhuǎn)錄形成cDNA,以此cDNA為模板,構(gòu)建如下20μL PCR體系:10×PCR buffer 2.0μL;MgCl2(25 mM)1.6μL;dNTP(10 mM)0.4μL;引物 (10μM)各2.0μL;Taq DNA聚合酶 (5UμL-1)0.2μL;cDNA模板 1 μL,ddH2O補(bǔ)齊。反應(yīng)條件為:95℃預(yù)變性5 min;95℃變性30 s,57℃退火35 s,72℃延伸90 s,30個(gè)循環(huán);72℃充分延伸10 min。產(chǎn)物電泳鑒定后TA連接,轉(zhuǎn)化DH5α,篩選陽性克隆后提取質(zhì)粒。
上述提取的質(zhì)粒與pET-28a分別進(jìn)行EcoRΙ和HindIII雙酶切,對酶切產(chǎn)物進(jìn)行膠回收,T4連接酶16℃溫育連接過夜,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化感受態(tài)DH5α,卡那霉素及菌落PCR篩選陽性克隆,提取質(zhì)粒雙酶切鑒定,對應(yīng)菌株送華大基因測序。
將測序結(jié)果與櫛孔扇貝Foxl2基因序列一致的陽性菌株大量培養(yǎng),提取質(zhì)粒后轉(zhuǎn)化感受態(tài)BL21,卡那霉素篩選陽性克隆,并再次測序驗(yàn)證序列。
分別取陽性克隆30 mL,37℃培養(yǎng)至OD 600 nm達(dá)0.6左右,分別加入IPTG至終濃度為0.2、0.4、0.8、1.0、1.2 mmol·L-1,誘導(dǎo) 6 h對 IPTG誘導(dǎo)濃度進(jìn)行優(yōu)化。
取含重組質(zhì)粒的誘導(dǎo)后菌液4 000 r·min-1離心5 min,收集沉淀,加入無菌1×PBS溶液懸浮,于冰浴中200 W超聲波破碎細(xì)胞。分別取全細(xì)胞、12 000 r·min-1離心后的上清和沉淀進(jìn)行SDS-PAGE分析以確定重組蛋白的可溶性。
大量誘導(dǎo)的菌液,用Ni-NTA蛋白純化試劑盒中的Binding/wash buffer(含有終濃度為8 M的尿素)溶解(包涵體),室溫下溫育30~60 min。待溫育完全后,12 000 r·min-1離心30 min,將上清進(jìn)行Ni柱親和層析純化,核酸蛋白測定儀檢測純化蛋白濃度。
取200μg純化后的重組Foxl2蛋白,與弗式完全佐劑按1∶1的體積比乳化完全(油包水狀),采用背部皮下多點(diǎn)注射的方法分別免疫兩只雄性新西蘭大白兔;兩周后取100μg純化的Foxl2蛋白與弗式不完全佐劑按1∶1的體積比乳化完全,進(jìn)行二次免疫,兩周后以同樣的方法進(jìn)行第三次免疫,一周后取血,4℃靜置24 h后,血液變?yōu)槟z凍狀,5 000 rpm離心10 min,收集上層血清。
以純化后的Foxl2蛋白為抗原,將制備的抗體血清按照1∶200~1∶256 000倍稀釋,采用HRP(辣根過氧化物酶)標(biāo)記的羊抗兔IgG為二抗,進(jìn)行間接ELISA分析,當(dāng)OD450nm=1.0時(shí),抗血清的稀釋度即為抗體效價(jià)[9]
WB(Western blot)分析所制備抗體的特異性,利用蛋白提取試劑盒(上海生工生物工程公司)提取扇貝成體精卵巢組織蛋白,分別進(jìn)行SDS-PAGE電泳(兔抗β-actin多抗調(diào)平組織蛋白上樣量),將蛋白轉(zhuǎn)到PVDF膜上,用稀釋到1∶2 000的所制抗體血清進(jìn)行孵育,洗膜后再用羊抗兔IgG孵育后顯色,凝膠成像系統(tǒng)拍照觀察結(jié)果。
如圖1所示,利用設(shè)計(jì)的引物擴(kuò)增目的基因,獲得與預(yù)期大?。? 119 bp,含引物中增加的酶切位點(diǎn)序列)相符的片段。
圖1 Foxl2基因PCR擴(kuò)增結(jié)果Fig.1 PCR amplification results of Foxl2 gene注:1:Foxl2基因擴(kuò)增產(chǎn)物;M:DL2000 DNA markerNotes:1:Foxl2 PCR amplification product;M:DL2000 DNA marker
目的基因與pET-28a連接后轉(zhuǎn)化感受態(tài)DH5α,選陽性克隆提取重組質(zhì)粒pET-28a進(jìn)行雙酶切鑒定,結(jié)果如圖2顯示:酶切后出現(xiàn)與目的條帶大小吻合的片段。選取對應(yīng)的陽性菌株送華大基因有限公司完成DNA序列測序,結(jié)果顯示與扇貝Foxl2基因序列完全一致。提取質(zhì)粒轉(zhuǎn)入BL21后再次測序仍與目的基因序列一致。
圖2 重組載體的酶切鑒定Fig.2 Identification of recombinant vector by enzyme digestion注:M1:DL2000 DNA marker;1:雙酶切重組質(zhì)粒 pET-28a(箭頭所指為酶切后的目的條帶,另一條為酶切后的pET-28a);M2:λDNA/HindIII MarkerNotes:M1:DL2000 DNA marker;1:recombinant plasmid pET-28a digested by double restriction enzymes(arrow represents the objective gene fragment,the other band is pET-28a after enzyme digestion);M2:λDNA/HindIII Marker
對IPTG誘導(dǎo)濃度進(jìn)行優(yōu)化,結(jié)果如圖3所示,IPTG終濃度在1.0 mmol L-1以內(nèi)時(shí),誘導(dǎo)效果隨IPTG濃度增加而增強(qiáng),故選擇1.0 mmol L-1為最終誘導(dǎo)濃度。
對含空質(zhì)粒及含重組質(zhì)粒的菌液誘導(dǎo)6 h后進(jìn)行SDS-PAGE電泳分析,結(jié)果如圖4所示,與對應(yīng)含空載體pET-28a的菌液相比,含重組載體的菌液經(jīng)6 h誘導(dǎo)后約在46 KD(采用Dnastar軟件預(yù)測Foxl2蛋白分子量約為41.96 KD,載體上融合表達(dá)的標(biāo)簽約3.7 KD)左右出現(xiàn)較粗的蛋白條帶。
收集細(xì)菌超聲破碎后,離心獲得沉淀和上清,SDS-PAGE電泳結(jié)果顯示:重組蛋白主要存在于沉淀中,說明pET-28a原核表達(dá)的Foxl2蛋白產(chǎn)物主要以包涵體形式存在。
圖3 IPTG濃度對誘導(dǎo)效果的影響Fig.3 Induction effect of different IPTG concentrations注:1:IPTG終濃度為 0 mmol·L-1;2:IPTG終濃度為 0.2 mmol·L-1;3:IPTG濃度為0.4 mmol·L-1;4:IPTG濃度為0.8 mmol·L-1;5:IPTG濃度為 1.0 mmol·L-1;6:IPTG濃度為1.2 mmol·L-1;箭頭所指為目的蛋白Notes:1:IPTG final concentration was 0 mmol·L-1;2:IPTG final concentration was 0.2 mmol· L-1;3: IPTG final concentration was 0.4 mmol·L-1;4:IPTG final concentration was 0.8 mmol·L-1;5:IPTG final concentration was 1.0 mmol·L-1;6:IPTG final concentration was 1.2 mmol·L-1;the arrow shows interest protein
圖4 誘導(dǎo)蛋白SDS-PAGE圖Fig.4 SDS-PAGE of induced protein注:1:空質(zhì)粒菌液全細(xì)胞;2:空質(zhì)粒菌液上清;3:空質(zhì)粒菌液沉淀;4:重組質(zhì)粒菌液全細(xì)胞;5:重組質(zhì)粒菌液上清;6:重組質(zhì)粒菌液沉淀;箭頭所指為目的蛋白Notes:1:whole cell with empty plasmid;2:supernatant with empty plasmid;3:precipitation with empty plasmid;4:whole cell with recombinant plasmid;5:supernatant with recombinant plasmid;6:precipitation with recombinant plasmid;the arrow shows interest protein
包涵體用含8 M尿素的Binding/wash buffer(Ni-NTA蛋白試劑盒中提供)溶解,利用Ni柱進(jìn)行目的蛋白純化,結(jié)果如圖5所示,獲得目的蛋白,進(jìn)一步測得純化所得蛋白濃度為800μg mL-1。
圖5 蛋白純化SDS-PAGE圖Fig.5 SDS-PAGE of purified protein注:1:純化前蛋白;2:過柱流出液;3:純化后蛋白;箭頭所指為目的蛋白Notes:1:protein before purified;2:column effluent;3:purified protein;the arrow shows interest protein
ELISA效價(jià)測定顯示所制備抗體效價(jià)大于1:128 000。WB結(jié)果顯示所制備抗體血清能特異識(shí)別扇貝卵巢中42 KD左右蛋白(與Foxl2大小吻合),F(xiàn)oxl2蛋白在卵巢中表達(dá),而精巢中幾乎不表達(dá)。
圖6 櫛孔扇貝性腺組織中Foxl2蛋白表達(dá)的Western blot圖Fig.6 Western blot of Foxl2 protein expression in gonads of scallop Chlamys farreri注:1:卵巢;2:精巢Note:1:Ovary;2:Spermary
本研究中含F(xiàn)oxl2基因重組pET-28a載體的大腸桿菌在37℃誘導(dǎo)系統(tǒng)中有表達(dá),但主要以不溶性包涵體形式存在,實(shí)驗(yàn)嘗試用較低溫度條件誘導(dǎo)表達(dá),其表達(dá)的目的蛋白仍不可溶,或與表達(dá)的Foxl2蛋白偏大有關(guān),通常大腸桿菌所表達(dá)的胞質(zhì)蛋白大于100個(gè)氨基酸,則容易形成包涵體[10]。本研究中,包涵體經(jīng)尿素溶解后純化所得蛋白免疫新西蘭大白兔,所得抗體效價(jià)高、特異性強(qiáng),已能滿足后續(xù)研究需要。
在哺乳動(dòng)物中Foxl2基因被認(rèn)為是卵巢分化的早期標(biāo)記分子[11],對其功能研究發(fā)現(xiàn),該基因可調(diào)節(jié)卵巢顆粒細(xì)胞分化,在卵巢發(fā)育及功能維持方面發(fā)揮作用[12]。而該基因在無脊椎動(dòng)物中的功能研究極少見報(bào)道,LIU等[6,13]通過對櫛孔扇貝中Foxl2 mRNA水平表達(dá)模式研究,推測其在成體卵巢發(fā)育及幼貝卵巢分化中發(fā)揮作用,其具體功能研究有待進(jìn)行。
Foxl2屬于叉頭框轉(zhuǎn)錄因子家族,其功能主要依靠蛋白水平對其他基因的調(diào)控來發(fā)揮[14-15],對于哺乳動(dòng)物Foxl2基因的研究發(fā)現(xiàn)其蛋白水平與mRNA水平的表達(dá)與定位存在差異,小鼠卵母細(xì)胞中可定位到該基因的mRNA[16],小鼠和山羊的睪丸中也可檢測到該基因的mRNA[16-17],但對哺乳動(dòng)物 Foxl2蛋白的表達(dá)研究卻發(fā)現(xiàn),其僅在卵巢顆粒細(xì)胞中表達(dá),而在精巢和卵母細(xì)胞中不表達(dá)[11],故有研究者認(rèn)為該蛋白最終是通過調(diào)節(jié)卵巢顆粒細(xì)胞增殖的方式發(fā)揮作用[1]。無脊椎動(dòng)物中Foxl2的表達(dá)研究多集中在RNA水平,僅在皮海綿中通過免疫組化研究了Foxl2蛋白的表達(dá),卻顯示其在各類細(xì)胞中都有所表達(dá)[4],F(xiàn)oxl2蛋白在無脊椎動(dòng)物中的表達(dá)模式仍不明確。本研究通過制備櫛孔扇貝Foxl2多克隆抗體,進(jìn)一步通過WB檢測到Foxl2在卵巢中強(qiáng)表達(dá),而在精巢中幾乎不表達(dá),該結(jié)果與劉曉玲等[7]對櫛孔扇貝成體性腺中RNA的表達(dá)模式相吻合,也與 LI等[8]對蝦夷扇貝中Foxl2轉(zhuǎn)錄水平表達(dá)的研究相符,推測該蛋白在扇貝卵巢中發(fā)揮重要作用。
對櫛孔扇貝Foxl2蛋白進(jìn)行體外表達(dá)及抗體制備可為扇貝卵巢中該蛋白的具體細(xì)胞定位提供分子工具,從而為進(jìn)一步研究其在貝類卵巢中的作用機(jī)制奠定實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
本研究首次在大腸桿菌原核表達(dá)系統(tǒng)中表達(dá)出櫛孔扇貝的Foxl2蛋白,其在BL21中主要以包涵體形式高效表達(dá),經(jīng)純化后獲得的Foxl2具強(qiáng)免疫原性,免疫新西蘭大白兔獲得效價(jià)高且能特異識(shí)別天然Foxl2的多克隆抗體,用WB檢測發(fā)現(xiàn)Foxl2蛋白在櫛孔扇貝成體中呈雌性性別相關(guān)表達(dá),該表達(dá)模式暗示Foxl2蛋白在櫛孔扇貝卵巢中發(fā)揮重要功能。