賈東旭,王騰,孫嘉誠,金利群,廖承軍,陳德水,王紅艷
1(浙江工業(yè)大學,浙江省生物有機合成技術研究重點實驗室,浙江 杭州,310014) 2(浙江華康藥業(yè)股份有限公司,浙江 開化,324032)
D-葡萄糖和D-果糖分別是自然界分布最廣和甜度最大的單糖,兩者互為同分異構體,混合,可制得高果糖漿(high fructose corn syrup,HFCS)。根據(jù)果糖質(zhì)量分數(shù)的不同,HFCS分為HFCS-90、HFCS-42和HFCS-55[1]。其中,HFCS-55的口感和甜度更適用于工業(yè)應用[2]。
葡萄糖異構酶(EC 5.3.1.5,glucose isomerase,GI),可催化D-葡萄糖異構化為D-果糖,是生產(chǎn)HFCS最重要的商業(yè)酶[3]。伴隨HFCS日益膨脹的市場需求,需要研制熱穩(wěn)定性更好并可以循環(huán)使用的新型GI酶制劑。固定化酶(細胞)是20世紀崛起并已成功應用于多種酶的工業(yè)化實用技術,經(jīng)固定化的酶或細胞的半衰期和操作穩(wěn)定性會有很大提升,便于填充床連續(xù)反應和催化劑的回收再使用[4]。
GI異構化過程中,高溫有利于推動反應平衡向果糖方向進行,本實驗室已通過基因挖掘技術篩選到新型耐高溫酶ThermusoshimaiGI(ToGI),于85 ℃保溫48 h,仍保留80%以上酶活,熱穩(wěn)定性顯著優(yōu)于已有耐高溫酶[9]?;诖耍瑢ふ疫m用于ToGI的固定化方法成為當務之急。有報道指出,三羥甲基磷[P(CH2OH)3](THP),是一種可以替代GLU使用的交聯(lián)劑,其與氨基物質(zhì)交聯(lián)形成P—CH2—N鍵,該鍵在高溫下非常穩(wěn)定[8]。該交聯(lián)劑已用于固定化脂肪酶[10]、α-葡萄糖苷酶[11]和β-半乳糖苷酶[12],各固定化產(chǎn)物的相對酶活或熱穩(wěn)定性較游離酶都明顯提高。
此外,固定化材料的理化性質(zhì)同樣影響固定化產(chǎn)物的性能,廉價易得、對酶無損害、可提高酶穩(wěn)定性、能延長固定化酶的使用周期等都應該是固定化材料的選擇準則[13]。固定化過程中,各條件因素的變化也會影響固定化產(chǎn)物的催化性能[14]。因此,需要對影響固定化的關鍵因素,如細胞裝載量、絮凝劑和交聯(lián)劑的使用量進行研究。
本研究首次詳細優(yōu)化了THP交聯(lián)固定耐高溫ToGI的過程,首先確定固定化所用的最佳材料,如載體、絮凝劑和THP交聯(lián)劑類型等;此后,進一步優(yōu)化了固定化過程的條件因素,如絮凝和交聯(lián)時間、金屬離子摩爾濃度等,以確定最優(yōu)固定化方法,最終實現(xiàn)高溫連續(xù)制備高果糖濃度HFCS。
表達ToGI的重組菌E.coliBL21 (DE3)/pET28b/ToGI由本實驗室構建并保存[15]。
卡那霉素(Kan)購于上海生工生物工程股份有限公司;D-葡萄糖、80%(質(zhì)量分數(shù))四羥甲基氯化磷水溶液(THPC)、75%(質(zhì)量分數(shù))四羥甲基硫酸磷水溶液(THPS)、各種分子質(zhì)量(600~70 000 Da)的聚乙烯亞胺(PEI)購于上海阿拉丁生化科技股份有限公司;D-果糖購于北京索萊寶科技有限公司;各種粒徑(9.6~36.8 μm)的硅藻土(DE)購自百靈威科技有限公司;其他實驗試劑為國產(chǎn)分析純。
高壓蒸汽滅菌鍋,上海博訊實業(yè)有限公司;超凈工作臺,蘇州中亞凈化設備有限公司;5 L立式發(fā)酵罐,上海保興生物器材有限公司;高速冷凍離心機,美國Beckman公司;電熱恒溫水浴鍋,德國Julobo公司;高效液相色譜,美國Waters公司。
1.3.1 培養(yǎng)基與靜息細胞的制備
LB液體培養(yǎng)基(g/L):蛋白胨10、酵母粉5、NaCl 10(固體培養(yǎng)基添加20 g/L瓊脂)。
發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L):蛋白胨15、酵母粉12、NaCl 10、甘油12、KH2PO41.5、(NH4)2SO45、K2HPO4(3H2O 2.3、MnCl23.8。
補料培養(yǎng)基(g/L):蛋白胨75、酵母粉50、甘油500、KH2PO46.75、(NH4)2SO45、Na2HPO43、H2O 3、檸檬酸3。
將重組菌E.coliBL21(DE3)/pET28b/ToGI接種至含100 μg/mL Kan的LB液體培養(yǎng)基,于37 ℃培養(yǎng)10 h,獲得種子液;將100 mL種子液接種至裝有3 L發(fā)酵培養(yǎng)基的發(fā)酵罐中,于37 ℃、500 r/min、1.33 vvm和0.05 MPa罐壓條件下發(fā)酵3.5 h,過程中流加2 mol/L磷酸和25%(體積分數(shù))氨水調(diào)節(jié)pH值至7.0;當發(fā)酵至罐內(nèi)溶氧上升時,流加200 mL補料培養(yǎng)基;將發(fā)酵罐溫度降至28 ℃,加入質(zhì)量濃度為10 g/L的乳糖誘導表達10 h,離心收集濕菌體,即為含ToGI基因的濕菌體細胞(簡稱重組ToGI細胞)。
1.3.2 初始固定化方法
制備THP水溶液:按THPC和KOH摩爾比1∶0.995的配制原則[12],將15 g THPC(或32.6 g THPS)溶于90 mL ddH2O,再將3.4 g KOH溶于10 mL ddH2O,室溫條件下將兩者緩慢混合,制得THP水溶液。
在攪拌條件下,將5 g的重組ToGI細胞懸浮于50 mL Na2HPO4-NaH2PO4緩沖液(pH 7.0),先加入0.3 g Celite 545載體,再加入2 mL體積分數(shù)為4%的PEI(分子質(zhì)量10 000 Da)母液,絮凝反應1.5 h,最后加入體積分數(shù)為0.5%的上述THP水溶液,交聯(lián)反應2 h。然后抽濾,濾餅用蒸餾水洗滌后用軸向擠壓機擠壓成長條狀,室溫風干后,粉碎成顆粒,得到含耐高溫ToGI固定化顆粒。
1.3.3 固定化載體、絮凝劑和交聯(lián)劑的選擇
以相對酶活為考察指標,進行如下實驗,確定最佳固定化材料。
(1)確定最佳固定化載體。按1.3.2,選擇不同粒徑9.6、19.6和36.8 μm的DE作為載體進行固定化,然后進行酶活測定。
(2)確定最佳絮凝劑。取上述最優(yōu)結果,分別選擇分子質(zhì)量為600、1 800、10 000和70 000 Da的PEI作為絮凝劑進行固定化,然后進行酶活測定。
(3)確定最佳交聯(lián)劑。取上述最優(yōu)結果,分別選擇THPC和THPS作為前體物質(zhì)制備THP用于固定化,然后進行酶活測定。
1.3.4 固定化條件研究
選用上述最優(yōu)固定化載體、絮凝劑和交聯(lián)劑,以酶活為考察指標,詳細優(yōu)化以下各條件,具體為:
(1)確定最佳細胞裝載量。選用細胞裝載量分別為3、4、5、6、7和8 g,其他同1.3.2,進行細胞固定化。
(2)確定Mn2+添加摩爾濃度。取上述最優(yōu)結果,在加入載體后,分別加入3、5、10、15和20 mmol/L Mn2+,其他同1.3.2,進行細胞固定化。
(3)確定PEI最佳體積分數(shù)。取上述最優(yōu)結果,選用PEI絮凝劑母液體積分數(shù)分別為1%、2%、3%、4%、5%和6%,其他同1.3.2,進行細胞固定化。
(4)確定最佳絮凝時間。取上述最優(yōu)結果,選用絮凝時間分別為0、0.5、1、1.5、2和2.5 h,其他同1.3.2,進行細胞固定化。
(5)確定最佳THP體積分數(shù)。取上述最優(yōu)結果,設定所用THP體積分數(shù)分別為0.5%、1%、1.5%、2%和2.5%,其他同1.3.2,進行細胞固定化。
(6)確定最佳交聯(lián)時間。取上述最優(yōu)結果,分別選用以下交聯(lián)時間1、1.5、2、2.5、3和3.5 h,其他同1.3.2,進行細胞固定化。
1.3.5 GI酶活測定
參照賈東旭等[16],略做修改,測酶活體系包括:200 mmol/LD-葡萄糖、10 mmol/L Mg2+、1 mmol/L Co2+、0.25 g固定化產(chǎn)物(或細胞),用50 mmol/L PBS緩沖液(pH 7.0)補齊至5 mL。異構化反應于85 ℃反應20 min,置于冰上10 min終止反應,離心吸取上清液進行D-果糖的HPLC檢測。酶活定義:每min生成1 μmolD-果糖所需的酶量定義為1個活力單位U。
1.3.6 HPLC分析D-果糖和D-葡萄糖
色譜柱Hypersil NH2柱(250 mm×4.6 mm,5 μm)(依利特分析儀器有限公司)。Waters 2414示差折光檢測器。柱溫30 ℃,流動相80%(體積分數(shù))乙腈,流速1.0 mL/min,進樣量10 μL。D-果糖和D-葡萄糖出峰時間分別為8.73和10.39 min。
1.3.7 固定化顆粒操作穩(wěn)定性研究
20 mL催化體系包括:50 mmol/L Na2HPO4-NaH2PO4緩沖液(pH 7.0)、1 100 mmol/LD-葡萄糖、8 mmol/L Mn2+、1 g固定化細胞顆粒。異構化反應于85 ℃反應2 h,反應液經(jīng)離心,少量上清液經(jīng)0.22 μm膜過濾后用HPLC檢測D-果糖濃度;收集的THP固定化顆粒經(jīng)緩沖液洗滌,用于下一批的生物轉化。
2.1.1 確定最佳DE類型
工業(yè)應用的固定化載體應廉價易得、對酶活力無過多損害。在各種有機和無機載體中,較為常用的有樹脂、殼聚糖、幾丁質(zhì)、DE和SiO2等[13]。其中,DE擁有吸附和抗溶脹的性能,可以改善固定化顆粒傳質(zhì)特性,是固定化GI最為常用的載體[15]。例如,張帆等以DE為載體,選擇殼聚糖絮凝-GLU交聯(lián)法固定ThermobifidafuscaGI所制成的固定化細胞酶活為2 579 U/g,酶活回收率達到70.5%[17]。本實驗考察不同粒徑DE對固定化細胞酶活的影響,結果如圖1所示。當使用的DE粒徑從9.6 μm增大至36.8 μm,固定化細胞的相對酶活提高了37.5%,并且,使用36.8 μm DE的固定化細胞酶活同樣優(yōu)于采用Celite 545的固定化產(chǎn)物的酶活。該現(xiàn)象的原因可能是高粒徑載體的比表面積與負載量大,能夠耦聯(lián)更多的酶細胞[18]。本實驗確定固定化DE的最佳粒徑為36.8 μm。
圖1 不同粒徑DE對固定化酶活的影響Fig.1 Effect of different diatomite on the activity of immobilized product
2.1.2 確定最佳PEI類型
固定化交聯(lián)之前,先加入多胺類物質(zhì)(PEI)作為絮凝劑,其伯胺基團會與后加的交聯(lián)劑反應,從而提高固定化產(chǎn)物的穩(wěn)定性[19]。例如,WILSON等在采用CLEAS法固定化脂肪酶時,先選用PEI進行絮凝,所制備的交聯(lián)酶聚集體表現(xiàn)出較高的有機溶劑耐受性[20]。但是,市售PEI的相對分子質(zhì)量不盡相同,因此,很有必要考察不同分子量的PEI作為絮凝劑對固定化產(chǎn)物酶活的影響。本實驗結果如圖2,當選用PEI分子質(zhì)量增大至70 000 Da,固定化細胞可以獲得最大相對酶活。原因是高分子量的PEI擁有更多分支[21],其與交聯(lián)劑聯(lián)合使用會使細胞表面形成的聚合物膜包裹更加緊密,從而獲得更佳的固定化效果。本試驗確定絮凝劑PEI的最佳分子質(zhì)量為70 000 Da。
圖2 不同分子質(zhì)量的PEI對固定化酶活的影響Fig.2 Effect of PEI with different molecular weight on the activity of immobilized product
2.1.3 確定最佳交聯(lián)劑
THP是由四羥甲基磷化合物與堿類物質(zhì)(KOH)混合制備生成[12]。市場上能夠買到的四羥甲基磷化合物有THPS和THPC,前者的單價較低。因此,本實驗考察了兩者用于固定化對產(chǎn)物酶活的影響。由圖3可知,盡管兩者的有效成分相同,但與THPS制備的交聯(lián)劑相比,使用THPC制備的交聯(lián)劑所獲得的固定化細胞的相對酶活為95.7%。因此,結合固定化效果和成本兩因素,最終確定使用THPS制備THP交聯(lián)劑。另外,本實驗還考察了THP與傳統(tǒng)交聯(lián)劑GLU的固定化效果比較,結果顯示,經(jīng)GLU交聯(lián)的固定化細胞的相對酶活僅為85.4%,進一步說明THP與氨基物質(zhì)發(fā)生Mannich反應生成的P—CH2—N鍵有利于結合更多細胞。
圖3 不同交聯(lián)劑對固定化產(chǎn)物酶活的影響Fig.3 Effect of different crosslinker on the activity of immobilized product
2.2.1 確定細胞裝載量
載體的結合空間有限,當被過量含酶細胞占據(jù)時,底物和產(chǎn)物的擴散速率就會降低,這樣就限制固定化產(chǎn)物的催化能力,導致酶活降低[22]。因此,當載體定量,為了達到最佳固定化效果,需要優(yōu)化細胞裝載量。本研究考察3~8 g細胞裝載量對固定化酶活的影響,如圖4所示。
圖4 不同細胞裝載量對固定化酶活的影響Fig.4 Effect of different cell loading on the activity of immobilized product
當細胞量從3 g增加至6 g,固定化細胞的酶活隨之上升,當細胞量為6.0 g時,酶活達到最大107.9 U/g。細胞量繼續(xù)增加,酶活卻呈現(xiàn)下降趨勢,說明結合過量細胞導致載體通道堵塞,固定化產(chǎn)物酶活受到抑制[23]。因此,確定6 g細胞裝載量為最佳。
2.2.2 確定固定時Mn2+添加量
GI的活力及穩(wěn)定性與金屬離子有關,如Mg2+、Co2+和Mn2+對保持酶的有序構象、提高酶穩(wěn)定性和活力均有促進作用,而Fe3+、Ca2+則對催化反應起到抑制作用[7]。對于ToGI,本團隊已經(jīng)發(fā)現(xiàn)發(fā)酵時添加5 mmol/L Mn2+,能夠顯著提高ToGI酶活[9]。因此,在固定化過程中,本實驗繼續(xù)考察添加不同摩爾濃度的Mn2+對固定化細胞酶活的影響,實驗結果見圖5。當固定化過程中添加5 mmol/L Mn2+,固定化酶活升高至最大值110.3 U/g;當Mn2+摩爾濃度繼續(xù)增加至20 mmol/L,酶活已逐漸下降至94.3 U/g。酶活提高幅度較小的原因可能是菌體發(fā)酵時添加的Mn2+[16]已與酶的金屬結合位點飽和,固定化時繼續(xù)添加Mn2+只能維持該狀態(tài)。因此,可以在固定化時添加5 mmol/L Mn2+以提高固定化產(chǎn)品活力。
圖5 Mn2+添加量對固定化酶活的影響Fig.5 Effect of different Mn2+ concentration on the activity of immobilized product
2.2.3 確定PEI體積分數(shù)
上述實驗確定了絮凝劑PEI的最佳分子質(zhì)量為70 000 Da,本實驗隨即考察了1%~6%的PEI母液體積分數(shù)對固定化細胞酶活的影響,結果如圖6所示。當PEI母液體積分數(shù)處于1%~3%之間,固定化細胞酶活隨之升高;當PEI母液的體積分數(shù)為3%時,固定化細胞酶活達到最高的118.7 U/g。該結果表明該體積分數(shù)對細胞的絮凝程度較合適,過高的PEI體積分數(shù)會使其自身發(fā)生粘連,造成傳質(zhì)阻力過大,對酶活產(chǎn)生不利的影響[15]。丁為龍等在固定化β-呋喃果糖苷酶時,選定PEI體積分數(shù)為2.0%[24];鄭劍鋒等通過PEI共沉淀技術制備海藻糖合酶交聯(lián)聚集體,確定了最優(yōu)PEI體積分數(shù)為1%[25]。本實驗選定了較高的細胞裝載量,所需的PEI體積分數(shù)僅為0.12%,說明本工藝具備一定的過程經(jīng)濟性。
圖6 聚乙烯亞胺體積分數(shù)對固定化酶活的影響Fig.6 Effect of different PEI concentration on the activity of immobilized product
2.2.4 確定PEI絮凝時間
確定了絮凝劑PEI的體積分數(shù),還需要優(yōu)化其絮凝時間。鄭建永等在PEI/GLU交聯(lián)法固定化重組酯酶細胞過程中,確定PEI最佳絮凝時間為1.0 h[26];海洪等在PEI對海藻酸固定化重組E.coli細胞的強化作用研究時,將細胞置于體積分數(shù)為0.2%~1% PEI溶液中間歇攪拌反應24 h,制得固定化細胞連續(xù)反應10批次,酶活無明顯下降[27]。本研究考察了PEI絮凝時間對固定化ToGI重組細胞酶活的影響,選用的絮凝時間為0~2.5 h,結果如圖7所示。
圖7 不同PEI絮凝時間對固定化酶活的影響Fig.7 Effect of different PEI flocculation time on the activity of immobilized product
隨著絮凝時間的增加,固定化產(chǎn)物酶活也上升。在絮凝時間為1.0 h時活力達到最高的121.7 U/g;繼續(xù)增加絮凝時間,酶活開始下降,絮凝2.5 h,酶活僅剩95.3 U/g。該結果說明絮凝時間過長導致固定化產(chǎn)物結構過于緊密,傳質(zhì)阻力變大,降低固定化細胞酶活。因此,最終選擇1.0 h為最佳絮凝時間。
2.2.5 確定THP交聯(lián)體積分數(shù)
在固定化交聯(lián)過程中,選取適當體積分數(shù)的交聯(lián)劑可以與細胞和載體形成最大的活性交聯(lián)體[28]。本實驗通過調(diào)整THPS和KOH的添加量,將THP控制在體積分數(shù)為0.5%~2.5%范圍內(nèi),以考察不同交聯(lián)劑體積分數(shù)對固定化細胞酶活的影響。如圖8所示,當THP體積分數(shù)從0.5%提高至1.5%,固定化細胞酶活升高至最大值127.3 U/g,繼續(xù)提高THP體積分數(shù),固定化酶活有所下降。該結果說明1.5%的THP體積分數(shù)剛好可以與載體和細胞上的氨基完全反應。梁欣欣以純棉浴巾為載體、PEI為吸附劑、利用THP為交聯(lián)劑固定脂肪酶,優(yōu)化所得THP的添加量也為1.5%[10]。但是,THP由等摩爾THPS和KOH混合而成,合成大量THP必然需要提高KOH添加量,但過量OH-加速催化生成沒有固定化能力的(HOCH2)3P=O(THPO),該物質(zhì)會對固定化細胞的酶活產(chǎn)生不利影響[11]。因此,確定固定化時添加THP的最佳體積分數(shù)為1.5%。
圖8 不同THP體積分數(shù)對固定化酶活的影響Fig.8 Effect of different THP volume fraction on the activity of immobilized product
2.2.6 確定THP交聯(lián)時間
交聯(lián)時間對固定化效果的影響至關重要,交聯(lián)反應是否徹底、固定化是否牢固均會影響最終產(chǎn)物的酶活[29]。因此,本研究考察了交聯(lián)時間對固定化細胞酶活力的影響,見圖9。
圖9 THP交聯(lián)時間對固定化酶活的影響Fig.9 Effect of different THP crosslinking time on the activity of immobilized product
由圖9可知,隨著交聯(lián)時間的增長,THP固定化產(chǎn)物酶活呈現(xiàn)先升后降的趨勢;當交聯(lián)1.5 h時,固定化酶活出現(xiàn)峰值138.4 U/g。該結果說明交聯(lián)時間的延長致使更多PEI和細胞表面的氨基基團形成交聯(lián),當所有活性基團均處于交聯(lián)飽和狀態(tài)后,酶活呈現(xiàn)峰值[28];過度交聯(lián)會破壞酶的活性中心導致酶活降低。此外,THP易在空氣中氧化生成副產(chǎn)物(HOCH2)3P=O(THPO),該物質(zhì)可能也會導致酶活下降[11]。因此,結合實驗結果,最終確定最佳的交聯(lián)時間為1.5 h。
操作穩(wěn)定性是評價固定化產(chǎn)品應用性能的關鍵指標[30]。按上述優(yōu)化的固定化配方批量制備固定化細胞顆粒,考察其在85 ℃高溫條件下連續(xù)催化D-葡萄糖制備高濃度D-果糖的生物轉化情況。結果如圖10所示。
圖10 THP固定化產(chǎn)品的操作穩(wěn)定性Fig.10 The operational stability of immobilized biocatalyst
經(jīng)過10個批次的轉化,固定化細胞的酶活雖有下降,但仍保留91%以上初始酶活。整個轉化過程中,D-果糖得率均維持在51.7%以上。段緒果等使用殼聚糖絮凝-GLU交聯(lián)法固定ThermobifidafuscaGI,于70 ℃下重復使用8批次后,轉化率為42.1%[14];劉芳等采用明膠GLU固定化乳糖酶和葡萄糖異構酶用于制備果糖,間歇操作6批次后,催化劑保留75%以上初始酶活[31]。與上述實例相比,本研究所用的固定化催化劑具備優(yōu)良的高溫穩(wěn)定性,并可以極大地提升使用率,展示了良好的操作穩(wěn)定性。
通過上述研究,應用固定化重組ToGI細胞,可以連續(xù)制備50%以上果糖質(zhì)量分數(shù)的HFCS,有效提升了現(xiàn)有的轉化工藝。但在使用固定化細胞作為催化劑的轉化過程中,很容易將E.coli細胞內(nèi)對人體有害的物質(zhì)帶入到產(chǎn)品中[32]。在后續(xù)研究中,為了更好滿足食品工業(yè)的安全要求,需要將E.coli的重組酶表達體系更換為符合食品安全的枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis)表達系統(tǒng),以實現(xiàn)安全、高效生產(chǎn)HFCS的目的。另外,B.subtilis表達系統(tǒng)還具備一定的蛋白質(zhì)分泌功能[33],便于蛋白的分離純化,再與固定化技術相結合,將制備的固定化酶顆粒用于生產(chǎn),產(chǎn)物中不含任何細胞內(nèi)成分,這對于提高食品安全質(zhì)量極為有利。
本研究詳細研究了經(jīng)THP交聯(lián)固定化重組菌E.coliBL21 (DE3)/pET28b/ToGI的關鍵過程條件。選取不同載體、絮凝劑和交聯(lián)劑,確定DE粒徑36.8 μm、PEI分子質(zhì)量為70 000 Da、交聯(lián)劑合成前體為THPC。運用最優(yōu)固定化體系,即0.3 g DE、5 mmol/L Mn2+、0.12% PEI絮凝1.0 h、1.5% THP交聯(lián)1.5 h,細胞具有最高酶活138.4 U/g。于85 ℃和1 100 mmol/LD-葡萄糖條件下連續(xù)轉化10批次,D-果糖得率均高于51.7%。以上研究說明該固定化產(chǎn)物滿足制備高果糖濃度HFCS的要求,為進一步開展該酶在食品安全的表達系統(tǒng)中的表達與固定化研究奠定了基礎。