劉丹 羅睿 陳海麗 夏麗莎 高華霞
摘 要:為進(jìn)一步揭示半夏屬植物珠芽發(fā)育的分子機(jī)理,本文利用Illumina Hiseq平臺(tái)對(duì)滴水珠進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組和表達(dá)譜測(cè)序。轉(zhuǎn)錄組測(cè)序獲得6.68 Gb的數(shù)據(jù),組裝去冗余后得到66,907個(gè)Unigene,平均長(zhǎng)度為893 bp。將Unigene比對(duì)到Nr、KOG、GO和KEGG數(shù)據(jù)庫(kù)中,分別獲得了34,947、27,886、9,149和27,006個(gè)注釋信息。葉柄、珠芽和塊莖表達(dá)譜測(cè)序分別獲得24.08、24.02和24.06 Mb的數(shù)據(jù)庫(kù),其中6,961個(gè)Unigene的表達(dá)量在葉柄、珠芽與塊莖之間同時(shí)存在差異(6,576和4,021個(gè)差異Unigene分別比對(duì)到GO和KEGG數(shù)據(jù)庫(kù))。轉(zhuǎn)錄組測(cè)序獲得13個(gè)Unigene為PEBP基因家族成員相關(guān)序列,其中4個(gè)為差異表達(dá)。結(jié)果表明轉(zhuǎn)錄組和表達(dá)譜測(cè)序可用于篩選調(diào)控珠芽發(fā)育的候選基因,PEBP基因家族成員在珠芽發(fā)育調(diào)控中的作用值得進(jìn)一步研究。
關(guān)鍵詞:滴水珠;珠芽發(fā)育;轉(zhuǎn)錄組;表達(dá)譜;PEBP基因家族
中圖分類(lèi)號(hào):Q943
文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼: A
滴水珠(Pinellia cordata N. E. Brown)是主要分布于我國(guó)安徽、福建、廣東、廣西、貴州、湖北、湖南等地區(qū)的天南星科植物[1],具有解毒消腫、散痰止痛等功效[2]。滴水珠的自然繁殖主要通過(guò)在葉柄下部和上部(葉片基部)形成珠芽進(jìn)行。滴水珠及同屬植物半夏的珠芽發(fā)育形態(tài)、解剖學(xué)已經(jīng)報(bào)道[3-4],其發(fā)育特征除啟動(dòng)位置和后期成熟過(guò)程外與龍舌蘭、臺(tái)閩苣苔、山藥和淡黃花百合等類(lèi)似[5-7]。對(duì)于植物珠芽發(fā)育的分子調(diào)控機(jī)制研究而言,Wang 等[8]在臺(tái)閩苣苔上發(fā)現(xiàn)GFLO基因與珠芽形成有關(guān),珠芽形成過(guò)程中該基因的表達(dá)量呈現(xiàn)出下調(diào)趨勢(shì);Abraham-Juarez等[9]研究表明在龍舌蘭中KNOX I基因表達(dá)量隨著珠芽成熟而逐漸增加;Sandoval等[10]發(fā)現(xiàn)在龍舌蘭珠芽形成過(guò)程中MADS1, 2, 4, 6, 7基因均呈現(xiàn)出表達(dá)量減少的相同模式。目前在珠芽發(fā)育的分子基礎(chǔ)上研究報(bào)道少且不同植物珠芽發(fā)育的共同特性尚不明確。此外,磷脂酰乙醇胺結(jié)合蛋白基因(PEBP)家族包含F(xiàn)T、MFT和TFL三個(gè)亞家族,其不同家族成員可參與調(diào)節(jié)植物開(kāi)花[11]、馬鈴薯塊莖形成[12]和洋蔥鱗莖形成[13]等有性和無(wú)性生殖發(fā)育過(guò)程。但是,目前尚未見(jiàn)報(bào)道PEBP基因家族成員參與調(diào)節(jié)珠芽發(fā)育。
轉(zhuǎn)錄組和表達(dá)譜測(cè)序可用于揭示植物器官發(fā)育過(guò)程中的調(diào)節(jié)基因,如程立寶等[14]發(fā)現(xiàn)了蓮藕根狀莖發(fā)生過(guò)程中的86個(gè)相關(guān)基因。轉(zhuǎn)錄組和表達(dá)譜測(cè)序也用于植物珠芽發(fā)育研究:彭斌[15]在山藥的轉(zhuǎn)錄組測(cè)序中篩選出23個(gè)可能與珠芽發(fā)生有關(guān)的候選基因;姜福星等[16]在萬(wàn)年青的轉(zhuǎn)錄組測(cè)序中發(fā)現(xiàn)EMB基因、TATA結(jié)合蛋白基因和FKBP蛋白等基因在珠芽的形成過(guò)程中表達(dá)量發(fā)生了明顯變化;葉德等[17]在半夏珠芽和葉柄的轉(zhuǎn)錄組測(cè)序中篩選出了19個(gè)與激素有關(guān)的差異基因,其中玉米素、茉莉酸、脫落酸4種激素合成代謝相關(guān)的基因在珠芽中的表達(dá)量高于莖中,赤霉素相反。但是,不同植物珠芽發(fā)育的轉(zhuǎn)錄組特征異同的揭示需要更多的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)。
本研究以滴水珠為材料進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組和表達(dá)譜測(cè)序,分析珠芽發(fā)育過(guò)程中的表達(dá)譜宏觀差異,并進(jìn)一步分析PEBP家族成員的表達(dá)差異,為進(jìn)一步研究半夏屬植物的珠芽發(fā)育機(jī)制提供基礎(chǔ)。
1 材料與方法
1.1 實(shí)驗(yàn)材料
滴水珠采集自浙江溫州,盆栽于實(shí)驗(yàn)室備用。在植物的珠芽發(fā)育初期采集植株,純水沖洗后在冰上進(jìn)行取樣:葉柄(pc1)、珠芽(≤3 mm, pc2)和塊莖(pc3)。取得鮮樣用液氮速凍后,放入-80 ℃冰箱保存。
1.2 總RNA的提取和文庫(kù)的構(gòu)建
CTAB法提取總RNA,DNase I處理去除DNA,然后用磁珠法富集mRNA。富集后mRNA等量分為兩份:一份將三個(gè)組織鮮樣的mRNA等量混合后進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組測(cè)序的相關(guān)分析;另一份將各組織mRNA進(jìn)行單獨(dú)表達(dá)譜分析。向獲得的mRNA中加入打斷試劑使得mRNA片段化,以mRNA片段為模板進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄生成cDNA。之后對(duì)cDNA的末端進(jìn)行修復(fù)、并在3'末端加上“A”堿基并連接接頭。之后對(duì)連接產(chǎn)物進(jìn)行擴(kuò)增并將PCR產(chǎn)物環(huán)化,最終文庫(kù)構(gòu)建成功。構(gòu)建好的文庫(kù)利用Agilent 2100 Bioanalyzer進(jìn)行質(zhì)檢,合格后使用Illumina Hi Seq平臺(tái)進(jìn)行測(cè)序。
1.3 測(cè)序數(shù)據(jù)的加工、組裝和注釋
等量混合mRNA建庫(kù)后測(cè)序得到的raw reads進(jìn)行過(guò)濾處理獲得Clean reads,再利用Trinity軟件[18]對(duì)Clean reads進(jìn)行de novo組裝獲得轉(zhuǎn)錄組序列。之后使用Tgicl軟件[19]對(duì)轉(zhuǎn)錄本進(jìn)行處理后獲得Unigene。最后,將所有組裝的Unigene利用BLAST[20]比對(duì)到non redundant protein database (Nr)、the Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG)、clusters of eukaryotic Orthologous Groups(KOG)蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫(kù)(E<10-5);利用Blast2GO[21]獲得GO注釋?zhuān)焕肐nterProScan5[22]將Unigene注釋到InterPro數(shù)據(jù)庫(kù)。
1.4 差異基因的GO注釋和KEGG注釋
單獨(dú)建庫(kù)mRNA(1.2)表達(dá)譜測(cè)序后以de nevo組裝、注釋的轉(zhuǎn)錄組序列為參考并利用FPKM法(Fragments Per kb per Million fragments)計(jì)算各個(gè)樣本Unigene表達(dá)量[23];利用FDR法[24]來(lái)進(jìn)行差異表達(dá)的真實(shí)性(FDR≤0.001且倍數(shù)差異在2倍以上的基因被定義為差異基因)。利用Blast2GO[21]軟件將差異基因進(jìn)行GO功能注釋?zhuān)瑥亩@得差異表達(dá)基因的GO注釋和分類(lèi)。利用BLAST[20]軟件將差異基因比對(duì)到KEGG數(shù)據(jù)庫(kù)中,進(jìn)一步獲得差異表達(dá)基因的Pathway的注釋信息。
2 結(jié)果
2.1 轉(zhuǎn)錄組序列的de novo組裝
去除質(zhì)量較低、接頭污染以及N含量過(guò)高的序列后,轉(zhuǎn)錄組測(cè)序共獲得44.54 Mb高質(zhì)量的Clean reads,Q20和Q30的百分比分別為98.86%和96.53%。Clean reads組裝后獲得180,862個(gè)Contigs,Contigs的序列長(zhǎng)度范圍是≥200 bp,序列的平均長(zhǎng)度和N50的長(zhǎng)度分別為547 bp和940 bp,GC%為48.73%。Contigs的片段大小分布:200-500 nt: 73.96%; 600-1000 nt: 12.36%; 1100-1500 nt: 5.61%; 1600-2000 nt: 3.46%; 2100-2500 nt: 1.96%; 2600-3000 nt: 1.04%; ≥3000: 1.60%。轉(zhuǎn)錄本進(jìn)行聚類(lèi)去冗余得到了66,907個(gè)Unigene,Unigene的平均長(zhǎng)度和N50長(zhǎng)度分別為893 bp和1,540 bp。Unigene的長(zhǎng)度分布:300-500 nt: 50%; 600-1000 nt: 19.82%; 1100-1500 nt: 11.55%; 1600-2000 nt: 7.76%; 2100-2500 nt: 4.55%; 2600-3000 nt: 2.51%;≥3000: 3.80%。
2.2 轉(zhuǎn)錄組序列的KOG功能注釋
利用BLAST將Unigene比對(duì)到Nr、Nt、Swiss-prot、KEGG、KOG、Interpro和GO 七個(gè)公共數(shù)據(jù)庫(kù)中(E<10-5)。結(jié)果顯示,有34,947(52.23%)個(gè)Unigene比對(duì)到Nr數(shù)據(jù)庫(kù)中,22,133(33.08%)個(gè)Unigene比對(duì)到Nt數(shù)據(jù)庫(kù),23,915(35.74%)個(gè)Unigene比對(duì)到Swiss-Prot數(shù)據(jù)庫(kù),比對(duì)到KEGG、KOG、Interpro 和 GO數(shù)據(jù)庫(kù)的Unigene數(shù)分別為:27,006(40.36%)、 27,886(41.68%)、 25,962(40.30%)和 9,149(13.67%)。
比對(duì)到KOG數(shù)據(jù)庫(kù)中的共有27,886個(gè)Unigene根據(jù)功能劃分屬于25個(gè)功能類(lèi)型(圖1)。其中,“一般功能預(yù)測(cè)”的Unigene數(shù)最多,有8,669個(gè)Unigene,其次是“信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)機(jī)制”,有5,022個(gè)Unigene,最少的是“細(xì)胞運(yùn)動(dòng)”,僅有43個(gè)。
2.3 轉(zhuǎn)錄組序列的GO功能注釋和表達(dá)譜差異
比對(duì)到GO數(shù)據(jù)庫(kù)的Unigene參與生物過(guò)程(Biological process)、細(xì)胞組成(Cellular component)和分子功能(Molecular function)3大類(lèi)別55個(gè)小類(lèi)。生物過(guò)程中:“代謝過(guò)程”的Unigene數(shù)最多(4,628個(gè)), “細(xì)胞進(jìn)程”次之(4,445個(gè)),最少的是“細(xì)胞凋亡”和“移動(dòng)”(分別僅有1個(gè))。細(xì)胞組分中,“細(xì)胞”所含的Unigene數(shù)最多,有3,823個(gè),其次是“細(xì)胞部分”,有3,787個(gè)Unigene,“細(xì)胞核”是Unigene數(shù)最少的類(lèi)別,僅有11個(gè)。分子功能中,“催化活化”的Unigene數(shù)最多(4,389個(gè))。其次是“結(jié)合”(3,985個(gè)),“蛋白標(biāo)簽”僅有1個(gè)Unigene,是分子功能中Unigene數(shù)最少的類(lèi)別。
表達(dá)譜測(cè)序一共測(cè)了3個(gè)樣品,葉柄、珠芽和塊莖各獲得24.08、24.02和24.06 Mb的數(shù)據(jù),過(guò)濾后的reads數(shù)目占總raw reads的比例分別為99.78%、99.53%和99.70%。差異篩選獲得6,961個(gè)表達(dá)量在葉柄與珠芽、珠芽與塊莖之間同時(shí)存在差異的Unigene,其中有6,576個(gè)比對(duì)到了GO數(shù)據(jù)庫(kù):細(xì)胞組分2,680個(gè)、生物學(xué)過(guò)程2,556個(gè)、分子功能1,340個(gè)。而轉(zhuǎn)錄組序列GO數(shù)據(jù)庫(kù)比對(duì)時(shí)分別有14,150、18,825和9,724個(gè)Unigene比對(duì)到生物學(xué)過(guò)程、細(xì)胞組分和分子功能三大類(lèi)。轉(zhuǎn)錄組與表達(dá)譜差異基因GO比對(duì)結(jié)果都表現(xiàn)出“從細(xì)胞組分到生物學(xué)過(guò)程再到分子功能Unigene數(shù)量逐漸減少”的趨勢(shì)。轉(zhuǎn)錄組注釋中“代謝過(guò)程”(4,628個(gè))所含的Unigene數(shù)是最多的,其次是“細(xì)胞進(jìn)程”(4,445個(gè)),“細(xì)胞”(3,823個(gè))和“細(xì)胞部分”(3,787個(gè))。表達(dá)譜差異基因功能富集結(jié)果發(fā)現(xiàn),所含Unigene數(shù)最多的是“催化活性”(666個(gè)),其次是“代謝過(guò)程”(646個(gè)),“細(xì)胞進(jìn)程”(611個(gè))和“細(xì)胞”(528個(gè))。GO功能注釋的單獨(dú)類(lèi)別中,轉(zhuǎn)錄組注釋和表達(dá)譜差異基因注釋的Unigene數(shù)存在不同(圖2)。
2.4 轉(zhuǎn)錄組序列的KEGG功能注釋和表達(dá)譜差異
從轉(zhuǎn)錄組的27,006個(gè)Unigene中發(fā)現(xiàn)了137條KEGG代謝通路。其中參與“全局路徑”的Unigene最多(6,426個(gè)),其次是“翻譯”途徑(2,580個(gè))、“糖代謝”(2,287個(gè))、“折疊、分類(lèi)和降解”(1,705個(gè))和“信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)”(1,423個(gè)),Unigene數(shù)最少的是“抗藥性:抗菌劑”代謝途徑(僅8個(gè) Unigene)。表達(dá)譜差異篩選獲得的6,961個(gè)在葉柄、珠芽、塊莖之間同時(shí)存在差異的Unigene中有4,021個(gè)差異基因比對(duì)到了KEGG數(shù)據(jù)庫(kù)中。其中參與“全局路徑”的最多(1,044個(gè)),其次是“碳水化合物代謝”(369個(gè))、“翻譯”(353個(gè))、“其他次生代謝”(216個(gè))和“信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)”(206個(gè)),最少的是“抗藥性:抗菌劑”僅有1個(gè)Unigene。比對(duì)到KEGG數(shù)據(jù)庫(kù)各代謝途徑的轉(zhuǎn)錄組注釋和表達(dá)譜篩選Unigene數(shù)量和比例存在差異(圖3)。
2.5 PEBP家族差異基因篩選
轉(zhuǎn)錄組序列中含有13個(gè)Unigene屬于PEBP基因家族成員,其中有10個(gè)Unigene屬于FT亞家族,TFL亞家族有1個(gè)Unigene,MFT亞家族有2個(gè)Unigene。表達(dá)譜差異基因篩選結(jié)果表明4個(gè)PEBP基因家族的Unigene在不同組織樣品中具有表達(dá)差異:其中屬于FT亞家族的有2個(gè),屬于的MFT亞家族有2個(gè),而沒(méi)有屬于TFL亞家族的成員(表1)。
3 討論
滴水珠轉(zhuǎn)錄組測(cè)序獲得了180,862個(gè)Contig和66,907個(gè)Unigene。其中有27,886(41.68%)個(gè)Unigene成功地比對(duì)到KOG數(shù)據(jù)庫(kù),GO數(shù)據(jù)庫(kù)和KEGG數(shù)據(jù)庫(kù)分別有9,149(13.67%)和27,006(40.36%)個(gè)Unigene比對(duì)上。葉德等[17]在半夏轉(zhuǎn)錄組測(cè)序時(shí)獲得90,175個(gè)Unigene,KOG、GO和KEGG比對(duì)的Unigene數(shù)分別為46,237(51.27%)、31,622(35.07%)和22,961(25.46%)。與半夏轉(zhuǎn)錄組相比,滴水珠比對(duì)到KOG和GO數(shù)據(jù)庫(kù)的Unigene數(shù)比半夏的多,但比對(duì)到KEGG數(shù)據(jù)庫(kù)結(jié)果則相反,推測(cè)可能是因?yàn)槲锓N特異性和測(cè)序量大小不同造成的。
滴水珠表達(dá)譜測(cè)序獲得6,961個(gè)表達(dá)量在葉柄、珠芽、塊莖之間同時(shí)存在差異表達(dá)的Unigene,數(shù)量低于轉(zhuǎn)錄測(cè)序差異篩選的半夏(15,484)和山藥(7,647)[15,17]。差異Unigene數(shù)的不同可能由物種差異及測(cè)序量大小、比較的取樣組織和差異篩選方法不同導(dǎo)致。滴水珠、半夏和山藥的測(cè)序量分別是66,907、90,175和70,480個(gè)Unigene;三種植物比較的取樣組織分別是葉柄vs珠芽vs塊莖、葉柄vs珠芽和鐵棍珠芽vs鐵棍葉腋vs花籽葉腋及下表皮;而表達(dá)量定量方法分別是表達(dá)譜、轉(zhuǎn)錄組和轉(zhuǎn)錄組。
PEBP基因家族(包含有FT、TFL和MFT三個(gè)亞家族)廣泛存在于動(dòng)物、植物和微生物中[25]。PEBP基因家族參與植物的許多發(fā)育過(guò)程,如植物開(kāi)花[11]、控制氣孔的開(kāi)放[26]、花序分生組織的穩(wěn)定[27]等。雖然滴水珠、半夏的珠芽在結(jié)構(gòu)上類(lèi)似于塊莖[3],淡黃花百合的珠芽在結(jié)構(gòu)上類(lèi)似于鱗莖[7],但是珠芽和塊莖/鱗莖發(fā)育的共同分子基礎(chǔ)目前尚無(wú)報(bào)道。滴水珠表達(dá)譜差異Unigene中具有4個(gè)PEBP家族同源序列(FT: 2; MFT: 2; TFL:0),結(jié)果顯示珠芽和塊莖/鱗莖發(fā)育具有共同分子基礎(chǔ),PEBP基因家族在其中的作用值得進(jìn)一步研究。
參考文獻(xiàn):
[1]Li H., G.H. Zhu, P.C. Boyce, et al. Flora of China[C]. Vol 23, Beijing:Science press, 2010:3-79.
[2]宋立人, 洪恂. 丁緒亮,等.現(xiàn)代中藥學(xué)大辭典[M]. 北京: 人民衛(wèi)生出版社, 2001: 2354.
[3]羅睿, 杜禹珊, 孫瑩瑩, 等. 半夏珠芽發(fā)育過(guò)程的形態(tài)學(xué)和解剖學(xué)研究[J]. 西北植物學(xué)報(bào), 2014, 34(9): 1776-1781.
[4]朱燕燕, 羅睿, 陳海麗, 等. 滴水珠珠芽發(fā)育過(guò)程研究[J]. 廣西植物, 2018(2):225-232.
[5]謝德镕, 曹祥志, 張培源. 薯蕷零余子發(fā)育與形態(tài)學(xué)本質(zhì)探討[J]. 西北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 1993, 21(1): 77-80.
[6]余炳生, 張儀. 薯蕷地下塊莖發(fā)生的解剖學(xué)研究[J]. 植物學(xué)報(bào), 1994, 11: 52.
[7]李騰, 李少群, 羅睿. 淡黃花百合珠芽發(fā)育過(guò)程的形態(tài)學(xué)與解剖學(xué)研究[J]. 西北植物學(xué)報(bào), 2012(1): 85-89.
[8]Wang, C.N.,M. Mller, Q.C.B. Cronk. Altered expression of GFLO, the Gesneriaceae homologue of Floricaula/Leafy, is associated with the transition to bulbil formation in Titanotrichum oldhamii[J]. Dev. Genes Evol., 2004, 214: 122-127.
[9]Abraham-Juarez, M.J., A. Martinez-Hernandez, M.A. Leyva-Gonzalez, et al. ClassI KNOX genes are associated with organogenesis during bulbil formation in Agave tequilana[J]. J. Exp. Bot., 2010, 61: 4055-4067.
[10]Sandoval, S.C.D., M.J. Abraham Juárez, J. Simpson. Agave tequilana MADS genes show novel expression patterns in meristems, developing bulbils and floral organs[J]. Sex. Plant Reprod, 2012, 25: 11-26.
[11]Li, C., Y.N. Zhang, K. Zhang, et al. Promoting owering, lateral shoot outgrowth, leaf development, and ower abscission in tobacco plants overexpressing cotton FLOWERINGLOCUS T (FT)-like gene Gh FT1[J]. Front. Plant Sci., 2015, 6: 454.
[12]González-Schain, N.D., M. Díaz-Mendoza, M. Zurczak, et al. Potato CONSTANS is involved in photoperiodic tuberizationin a graft-transmissible manner[J]. Plant J., 2012, 70: 678-90.
[13]Lee, R., S. Baldwin, F. Kenel, et al. FLOWERING LOCUS T genes control onion bulb formation and owering[J]. Nat Commun., 2013, 4: 2884.
[14]程立寶, 齊曉花, 髙學(xué)雙, 等. 蓮藕根狀莖膨大相關(guān)基因的挖掘與表達(dá)分析[J]. 園藝學(xué)報(bào), 2012, 39(3): 834-846.
[15]彭斌. 山藥基源植物分子鑒別體系建立與珠芽相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄組分析[D]. 南京: 南京農(nóng)業(yè)大學(xué), 2016.
[16]姜福星, 魏丕偉, 吳生, 等. 白花虎眼萬(wàn)年青葉上珠芽的轉(zhuǎn)錄組分析[J]. 分子植物育種, 2017(2): 519-531.
[17]葉德, 楊支力, 李東海, 等. 基于高通量測(cè)序半夏珠芽轉(zhuǎn)錄組研究[J]. 浙江理工大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版), 2017(2): 282-288.
[18]Grabherr, M.G., B.J. Haas, M. Yassour, et al. Trinity: reconstructing a full-length transcriptome without a genome from RNA-Seq data[J]. Nature Biotechnology, 2011, 29: 644-652.
[19]Pertea G., X.Q. Huang, F. Liang, et al.TIGR Gene Indices clustering tools(TGICL): a software system for fast clustering of large EST dataste[J]. Bioinformatics, 2003, 19(5): 651.
[20]Altschul S.F., W. Gish, E.W. Myers, et al.. Basic local alignment search tool[J]. J Mol Biol,1990, 215(3):403-410.
[21]Conesa, A., S. Gotz, J.M. Garcia-Gomez, et al. Blast2GO: a universal tool for annotation, visualization and analysis in functional genomics research[J]. Bioinformatics, 2005, 21: 3674-3676.
[22]Quevillon, E., V. Silventoinen, S. Pillai, et al. InterProScan: protein domains identifier[J]. Nucleic Acids Res., 2005, 33: W116-W120.
[23]Mortazavi A, Williams B.A, McCue, K, et al. Mapping and quantifying mammalian transcriptomes by RNA-Seq[J]. Nature methods, 2008, 5(7):621-628.
[24]Benjamini, Y. , D. Yekutieli. The control of the false discovery rate in multiple testing underdependency[J]. The Annals of Statistics, 2001, 29: 1165-1188.
[25]張禮鳳, 徐冉, 張彥威, 等. 大豆PEBP基因家族的初步分析[J]. 植物遺傳資源學(xué)報(bào), 2015, 16(1):151-157.
[26]Kinoshita, T., N. Ono, Y. Hayashi, et al. FLOWERING LOCUS T Regulates Stomatal Opening[J]. Curr Biol., 2011, 21(14): 1232-1238.
[27]Liu, L., S. Farrona, S. Klemme et al. Post-fertilization expression of FLOWERING LOCUS T suppresses reproductive reversion[J]. Front. Plant Sci., 2014, 5:1-7.
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