徐玉鈺 馬澤剛
[摘要]目的探討α突觸核蛋白A53T轉(zhuǎn)基因小鼠早期認知功能的改變及其可能的機制。
方法選取3月齡α突觸核蛋白A53T轉(zhuǎn)基因小鼠和野生型小鼠,采用新物體識別和轉(zhuǎn)棒儀實驗觀察小鼠的認知及運動功能,采用Western Blot方法觀察小鼠海馬和前額葉皮質(zhì)內(nèi)腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(BDNF)表達,采用免疫組織化學(xué)的方法觀察小鼠黑質(zhì)多巴胺能神經(jīng)元數(shù)目。
結(jié)果新物體識別實驗表明,與野生型小鼠相比,A53T轉(zhuǎn)基因小鼠出現(xiàn)認知功能障礙。Western Blot檢測顯示,A53T轉(zhuǎn)基因小鼠的海馬和前額葉皮質(zhì)內(nèi)BDNF的表達較野生型小鼠下調(diào)(t=2.584、4.189,P<0.05)。A53T轉(zhuǎn)基因小鼠在旋轉(zhuǎn)棒上的停留時間與野生型小鼠相比差異無顯著性(P>0.05),黑質(zhì)多巴胺能神經(jīng)元的數(shù)目與野生型小鼠相比也無明顯改變(P>0.05)。
結(jié)論3月齡A53T轉(zhuǎn)基因小鼠出現(xiàn)認知功能障礙且早于運動癥狀的發(fā)生。
[關(guān)鍵詞]A53T小鼠;認知功能障礙;帕金森病;腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子
[中圖分類號]R741
[文獻標志碼]A
[文章編號] 20965532(2018)02020204
帕金森?。≒D)是一種常見的神經(jīng)退變性疾病,其病理表現(xiàn)主要是黑質(zhì)致密部多巴胺(DA)能神經(jīng)元的選擇性死亡和腦內(nèi)路易小體的形成[13]。α突觸核蛋白是PD特征性病理標志物路易小體的主要成分,在黑質(zhì)DA能神經(jīng)元中廣泛存在[45]。在某些因素作用下,α突觸核蛋白可發(fā)生構(gòu)象變化形成聚集體,并引起DA能神經(jīng)元的死亡[4,6]。PD經(jīng)典的運動癥狀包括靜止性震顫、肌強直、運動遲緩和姿勢不穩(wěn)等[7]。然而,一些非運動癥狀如嗅覺障礙、認知
[LL]能力下降、記憶力減退等可在運動癥狀出現(xiàn)之前發(fā)生或伴隨著運動癥狀而發(fā)生[812]。目前,PD的研究多集中在黑質(zhì)紋狀體系統(tǒng)上。但有研究表明,只有當(dāng)黑質(zhì)區(qū)DA能神經(jīng)元損傷或缺失達到80%以上時,才能出現(xiàn)明顯的運動癥狀[13]。因此,對PD早期非運動癥狀進行研究并在發(fā)病前及時干預(yù),將有利于延緩或阻止PD的發(fā)病進程。α突觸核蛋白A53T轉(zhuǎn)基因小鼠攜帶了人突變型α突觸核蛋白A53T基因,且其運動癥狀出現(xiàn)較晚,可模擬PD發(fā)病過程中神經(jīng)病理學(xué)過程的改變,是研究PD早期非運動癥狀的理想實驗?zāi)P汀1狙芯恳栽撃P褪鬄閷嶒瀸ο?,探討PD早期認知功能的改變以及可能的機制?,F(xiàn)將結(jié)果報告如下。
1材料與方法
1.1實驗材料和動物
實驗所用試劑除做特別說明外,均購自美國Sigma公司。腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(BDNF)抗體為美國abcam公司產(chǎn)品,βactin抗體為中國博奧森公司產(chǎn)品。選取20只雄性健康3月齡C57/BL6小鼠(其中A53T轉(zhuǎn)基因小鼠和野生型小鼠各10只),體質(zhì)量(22±2)g,由安徽博源實驗動物有限公司提供。小鼠飼養(yǎng)溫度為(19±2)℃,12 h/12 h晝夜自動循環(huán)光照,自由進食、飲水。
1.2實驗方法
1.2.1轉(zhuǎn)棒實驗轉(zhuǎn)棒實驗可以評估小鼠的運動協(xié)調(diào)能力。小鼠首先被放置在靜置的轉(zhuǎn)棒上適應(yīng)2 min,然后旋轉(zhuǎn)桿以4~40 r/min均勻加速共5 min。實驗期間,小鼠掉下轉(zhuǎn)棒或在轉(zhuǎn)棒上連續(xù)跑超過5 min,系統(tǒng)會自動停止,并記錄小鼠停留在旋轉(zhuǎn)桿上的時間。實驗每天測試3次,連續(xù)3 d,取平均值。每次測試時間間隔不小于1 h。
1.2.2新物體識別該實驗周期為5 d。前3 d是適應(yīng)期:每只小鼠放置在測試箱內(nèi)熟悉環(huán)境,測試箱內(nèi)不放置任何物品,10 min后把小鼠放回原飼養(yǎng)籠內(nèi)。第4天為熟悉期:將小鼠放回裝有兩個完全相同物體的測試箱中,讓小鼠自由探索,訓(xùn)練持續(xù)10 min。第5天為測試期:先讓小鼠在測試箱內(nèi)自由探索兩個相同的物體10 min,1 h后進行記憶測試。測試期和熟悉期過程類似,只是測試箱內(nèi)的兩個相同的物體中的一個被改變,測試5 min。每次測試結(jié)束后,用體積分數(shù)0.75乙醇清洗物體和箱子,以減少物體上的氣味。如果小鼠在1 cm之內(nèi)指向或用鼻子觸及物體,則視為探索行為。用攝像機記錄測試視頻,離線分析并記錄小鼠對新舊物體的探索時間。
1.2.3酪氨酸羥化酶(TH)陽性神經(jīng)元免疫熒光化學(xué)染色行為學(xué)實驗結(jié)束后,每組取5只小鼠用80 g/L水合氯醛(400 mg/kg,腹腔注射)麻醉,先用37 ℃生理鹽水灌注心臟15 min,待流出的液體變清澈后,快速換成40 g/L多聚甲醛灌注10 min,然后在冰上快速斷頭取腦。用40 g/L多聚甲醛在4 ℃下固定6 h,300 g/L蔗糖脫水24~48 h后,用包埋液將整個腦組織包埋后,進行連續(xù)冠狀切片,切片厚度為20 μm。將收集的腦片放置在24孔板中,進行黑質(zhì)區(qū)TH陽性神經(jīng)元熒光染色及計數(shù)。1×PBS沖洗3次后,將腦片放置在配置好的兔抗小鼠TH一抗(1∶2 000)中,每孔300 μL,4 ℃搖床過夜。1×PBS沖洗3次后,每孔加入300 μL的山羊抗兔熒光二抗(1∶500),室溫避光孵育2 h。1×PBS沖洗3次后,將腦片貼于載玻片上并用體積分數(shù)0.70甘油封片。使用蔡司顯微鏡進行掃描,計數(shù)黑質(zhì)區(qū)TH陽性神經(jīng)元總數(shù)。
1.2.4Western Blot方法檢測海馬和前額葉皮質(zhì)BDNF蛋白的表達行為學(xué)實驗后,每組取5只小鼠,冰上快速斷頭取腦,分離出左右兩側(cè)海馬和前額葉,分別稱質(zhì)量后保存于-80 ℃?zhèn)溆?。? mg組織中加入100 μL混合裂解液(RIPA與PMSF以體積分數(shù)99∶1混合而成),研磨成勻漿,于冰上靜置裂解30 min。4 ℃下以12 000 r/min離心20 min,吸出上清,應(yīng)用BCA法測定蛋白濃度。蛋白經(jīng)過SDSPAGE電泳并濕轉(zhuǎn)至0.22 μm的PVDF膜上。切出帶有目的蛋白的條帶,用50 g/L脫脂奶粉在室溫下封閉2 h,分別用BDNF(1∶500)、βactin(1∶10 000)一抗于4 ℃搖床孵育過夜。TBST洗膜后,分別用羊抗鼠HRPIgG(1∶10 000)和羊抗兔HRPIgG(1∶10 000)二抗室溫孵育1 h。用ECL發(fā)光液進行顯影,用LSUVP Vision WorksTM LS軟件掃描后進行統(tǒng)計分析。
1.3統(tǒng)計學(xué)分析
采用Graphpad prism 5軟件進行統(tǒng)計分析,計量資料數(shù)據(jù)以[AKx-D]±s表示,兩獨立樣本均數(shù)比較采用 Students t檢驗。P<0.05表示差異有顯著性。
2結(jié)果
2.1A53T轉(zhuǎn)基因與野生型小鼠認知功能比較
實驗結(jié)果表明,A53T轉(zhuǎn)基因小鼠對新物體的探索時間為(52.70±4.96)s,對舊物體的探索時間為(45.24±2.51)s,A53T轉(zhuǎn)基因小鼠對新舊物體的探索時間比較差異無顯著性(P>0.05);野生型小鼠對新物體的探索時間為(62.23±4.32)s,對舊物體的探索時間為(44.87±1.79)s,野生型小鼠對新物體的探索時間明顯長于對舊物體的探索時間(t=3.283,P<0.01)。兩組小鼠對新舊兩種物體的總探索時間差異無顯著性(P>0.05)。
2.2A53T轉(zhuǎn)基因與野生型小鼠海馬和前額葉皮質(zhì)BDNF蛋白水平比較
A53T轉(zhuǎn)基因小鼠與野生型小鼠海馬的BDNF
水平分別為0.691 8±0.063 4和1.025 0±0.112 1,兩組比較差異有顯著意義(t=2.584,P<0.05)。A53T轉(zhuǎn)基因小鼠與野生型小鼠腦前額葉皮質(zhì)的BDNF水平分別為0.300 8±0.033 4和0.466 6±0.023 7,兩組相比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=4.189,P<0.01)。
2.3A53T轉(zhuǎn)基因小鼠和野生型小鼠運動協(xié)調(diào)能力比較
野生型小鼠停留在旋轉(zhuǎn)桿的時間為(267.1±7.4)s,A53T轉(zhuǎn)基因小鼠為(274.8±10.0)s,兩組比較差異無顯著性(P>0.05)。
2.4A53T轉(zhuǎn)基因小鼠和野生型小鼠黑質(zhì)區(qū)TH陽性神經(jīng)元數(shù)目比較
野生型小鼠的黑質(zhì)區(qū)TH陽性神經(jīng)元為(6 945±
261)個,A53T轉(zhuǎn)基因小鼠為(6 194±316)個,兩組比較差異無顯著性(P>0.05)。
3討論
DA作為重要的神經(jīng)遞質(zhì),可控制情緒和運動能力[14]。本文研究結(jié)果顯示,3月齡A53T轉(zhuǎn)基因小鼠運動協(xié)調(diào)能力并無改變,且其黑質(zhì)區(qū)DA標志物TH陽性神經(jīng)元數(shù)目也沒有明顯改變,提示3月齡A53T轉(zhuǎn)基因小鼠黑質(zhì)區(qū)無明顯損傷。推測調(diào)節(jié)運動功能的紋狀體DA含量可能也沒有明顯變化,這可能是A53T轉(zhuǎn)基因小鼠運動協(xié)調(diào)能力無明顯障礙的原因之一。
本文研究結(jié)果顯示,A53T轉(zhuǎn)基因小鼠早期出現(xiàn)認知功能下降,海馬和前額葉皮質(zhì)的BDNF水平出現(xiàn)了下調(diào)。眾所周知,海馬和額葉皮質(zhì)與學(xué)習(xí)記憶有著內(nèi)在的聯(lián)系,但目前尚不清楚這兩個區(qū)域的損傷是否與認知功能障礙有關(guān)。但研究表明,海馬損傷可能導(dǎo)致動物和人的空間記憶障礙[15]。另外,BDNF被認為是神經(jīng)元存活的主要調(diào)節(jié)因子[1618],BDNF基因的變化也與神經(jīng)退行性疾病的發(fā)病有關(guān)[1921]。
[HJ2mm]
BDNF是維持神經(jīng)元完整性和促進神經(jīng)細胞生長與分化的重要調(diào)節(jié)因子,其主要表達于中樞神經(jīng)系統(tǒng)的神經(jīng)元內(nèi)[2223]。另外,BDNF還有修復(fù)受損神經(jīng)元,調(diào)節(jié)神經(jīng)突觸功能以及參與學(xué)習(xí)記憶的功能[24]。BDNF不僅在神經(jīng)膠質(zhì)細胞和DA能神經(jīng)元中廣泛分布,并且也分布在中樞神經(jīng)系統(tǒng)的其他神經(jīng)元中[2526]。本文研究結(jié)果顯示,海馬和前額葉的BDNF水平均下調(diào),這可能是A53T轉(zhuǎn)基因小鼠認知能力下降的一個原因。有研究結(jié)果表明,
在黑質(zhì)區(qū)中正常濃度的α突觸核蛋白可以同步提
[LL]高BDNF的水平,但在黑質(zhì)中過度表達的α突觸核蛋白卻能下調(diào)BDNF的水平,這表明BDNF水平的下降也可能與突變型A53T小鼠α突觸核蛋白的聚集有關(guān)[11,2728]。還有研究顯示,老年鼠和AD病人海馬中BDNF表達均出現(xiàn)了下調(diào)[2930]。另外,有研究在其他腦區(qū)內(nèi)也發(fā)現(xiàn)了BDNF水平的改變,MOGI等[31]應(yīng)用ELISA技術(shù)研究顯示,PD病人黑質(zhì)紋狀體DA能神經(jīng)元分布區(qū)的BDNF水平明顯低于正常對照組,BDNF濃度的改變可能與PD的發(fā)病有著某種關(guān)聯(lián)。另有研究發(fā)現(xiàn),杏仁核是識別和調(diào)節(jié)情緒的腦區(qū),也與學(xué)習(xí)和記憶相關(guān),杏仁核內(nèi)BDNF的下調(diào)也與抑郁癥等相關(guān)[32]。但本研究中并未涉及其他腦區(qū)內(nèi)BDNF水平的變化,有待今后進一步研究。
綜上所述,在PD早期會出現(xiàn)認知功能障礙等非運動癥狀,且非運動癥狀會早于運動癥狀發(fā)生。在PD早期非運動癥狀中,認知功能障礙是最容易被發(fā)現(xiàn)的,但目前并不清楚出現(xiàn)認知功能障礙的確切原因。認知能力的下降可能是早期PD海馬功能受損和腦相關(guān)區(qū)域BDNF水平下降所致。如能在運動癥狀出現(xiàn)之前及時診斷PD并進行干預(yù),可減輕PD病人的痛苦。本文結(jié)果也為治療PD病人認知功能障礙提供了一個有效的靶點。
[參考文獻]
[1]TOLLESON C M, FANG J Y. Advances in the mechanisms of Parkinsons disease[J]. Discovery Medicine, 2013,15(80):6166.
[2]陳偉賢,張賽. 帕金森病的診斷和治療[J]. 中華全科醫(yī)學(xué), 2015,13(5):692693.
[3]DISSANAYAKA N N, LAWSON R A, YARNALL A J, et al. Anxiety is associated with cognitive impairment in newlydiagnosed Parkinsons disease[J]. Parkinsonism & Related Disorders, 2017,36(1):6368.
[4]GUBELLINI P, KACHIDIAN P. Animal models of Parkinsons disease: an updated overview[J]. Revue Neurologique, 2015,171(11):750761.
[5]PUSPITA L, CHUNG S Y, SHIM J W. Oxidative stress and cellular pathologies in Parkinsons disease[J]. Molecular Brain, 2017,10(1):5357.
[6]TOLMASOV M, DJALDETTI R, LEV N, et al. Pathological and clinical aspects of alpha/beta synuclein in Parkinsons di
sease and related disorders[J]. Expert Review of Neurotherapeutics, 2016,16(5):505513.
[7]KANSARA S, TRIVEDI A, CHEN Sheng, et al. Early diagnosis and therapy of Parkinsons disease: can disease progres
sion be curbed[J]? Journal of Neural Transmission (Vienna,Austria:1996), 2013,120(1):197210.
[8]SHIMIZU S, OHNO Y. Improving the treatment of Parkinsons disease: a novel approach by modulating 5HT(1A) receptors[J]. Aging and Disease, 2013,4(1):113.
[9]OZANSOY M, BASAK A N. The central theme of Parkinsons disease: αsynuclein[J]. Molecular Neurobiology, 2013,47(2):460465.
[10]KWON K Y, LEE H M, LEE S M, et al. Comparison of motor and nonmotor features between essential tremor and tre
mor dominant Parkinsons disease[J]. Journal of the Neurological Sciences, 2016,361(15):3438.
[11]GRAH M, MIHANOVIC M, RULJANCIC N, et al. Brainderived neurotrophic factor as a suicide factor in mental disorders[J]. Acta Neuropsychiatrica, 2014,26(6):356363.
[12]KONNO T, DEUTSCHLANDER A, HECKMAN M G, et al. Comparison of clinical features among Parkinsons disease subtypes: a large retrospective study in a single center[J]. Journal of the Neurological Sciences, 2018,386(1):3945.
[13]BERNHEIMER H, BIRKMAYER W, HORNYKIEWICZ O, et al. Brain dopamine and the syndromes of Parkinson and Huntington. Clinical, morphological and neurochemical correlations[J]. Journal of the Neurological Sciences, 1973,20(4):415455.
[14]CHANG P K, YU L, CHEN J C. Dopamine D3 receptor blockade rescues hyperdopamine activityinduced deficit in novel object recognition memory[J]. Neuropharmacology, 2018,133(1):216223.
[15]KHALIL H, ALOMARI M A, KHABOUR O F, et al. Relationship of circulatory BDNF with cognitive deficits in people with Parkinsons disease[J]. Journal of the Neurological Sciences, 2016,362(15):217220.
[16]WANG Q M, WANG G L, MA Z G. Protective effects of myricetin on chronic stressinduced cognitive deficits[J]. Neuro Report, 2016,27(9):652658.
[17]LIU F F, XUAN Aiguo, CHEN Yan, et al. Combined effect of nerve growth factor and brainderived neurotrophic factor on neuronal differentiation of neural stem cells and the potential molecular mechanisms[J]. Molecular Medicine Reports, 2014,10(4):17391745.
[18]YUE L P, MA L Y, CUI S, et al. Brainderived neurotrophic factor in the infralimbic cortex alleviates inflammatory pain[J]. Neuroscience Letters, 2017,655(8):713.
[19]SIUDA J, PATALONGOGIEWA M, ZMUDA W, et al. Cognitive impairment and BDNF serum levels[J]. Neurologia I Neurochirurgia Polska, 2016,51(1):2432.
[20]TOME D, FONSECA C P, CAMPOS F L. Role of neurotrophic factors in Parkinsons disease[J]. Current Pharmaceutical Design, 2017,23(5):809838.
[21]SMITH P A. BDNF: no gain without pain[J]? Neuroscience, 2014,283(283):107123.
[22]CHAGAS M H, ZUARDI A W, TUMAS V, et al. Effects of cannabidiol in the treatment of patients with Parkinsons di
sease: an exploratory doubleblind trial[J]. Journal of Psychopharmacology (Oxford, England), 2014,28(11):10881098.
[23]葉心國,李濤,李翔,等. 帕金森病患者血清EGF和BDNF水平變化與認知障礙的關(guān)系[J]. 腦與神經(jīng)疾病雜志, 2016,24(7):406409.
[24]HAN Z M, HUANG H M, WANG F F. Brainderived neurotrophic factor genemodified bone marrow mesenchymal stem cells[J]. Experimental and Therapeutic Medicine, 2015,9(2):519522.
[25]DA SILVA P G, DOMINGUES D D, DE CARVALHO L A, et al. Neurotrophic factors in Parkinsons disease are regulated by exercise: evidencebased practice[J]. Journal of the Neurological Sciences, 2016,363(8):515.
[26]TRONCI E, NAPOLITANO F, MUNOZ A, et al. BDNF overexpression induces striatal serotonin fiber sprouting and increases the susceptibility to lDOPAinduced dyskinesia in 6OHDAlesioned rats[J]. Experimental Neurology, 2017,297(3):7381.
[27]FANG F, YANG W L, FLORIO J B, et al. Synuclein impairs trafficking and signaling of BDNF in a mouse model of Parkinsons disease[J]. Scientific Reports, 2017,7(1):3868.
[28]劉佳,黃永璐,高宗良. 血清腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子與老年帕金森病患者認知功能障礙的相關(guān)性[J]. 中國老年學(xué)雜志, 2015,35(21):61936194.
[29]LEDREUX A, BOGER H A, HINSON V K, et al. BDNF levels are increased by aminoindan and rasagiline in a double lesion model of Parkinsons disease[J]. Brain Research, 2016,1631(19):3445.
[30]趙淑杰,朱雨嵐. 腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子對帕金森病大鼠多巴胺能神經(jīng)元的影響[J]. 中國實用神經(jīng)疾病雜志, 2015,18(13):4041.
[31]MOGI M, TOGARI A, KONDO T, et al. Brainderived growth factor and nerve growth factor concentrations are decreased in the substantia nigra in Parkinsons disease[J]. Neuroscience Letters, 1999,270(1):4548.
[32]GUILLOUX J P, DOUILLARDGUILLOUX G, KOTA R, et al. Molecular evidence for BDNFand GABArelated dysfunctions in the amygdala of female subjects with major depression[J]. Molecular Psychiatry, 2012,17(11):11301142.
(本文編輯黃建鄉(xiāng))