郭 蕊,傅 鈺,馬婉琪,王 苓,白 惠,龍 鴻
(天津農(nóng)學(xué)院 園藝園林學(xué)院,天津 300384)
營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)是高等植物早期形態(tài)建成的重要時(shí)期,由幼齡期和成熟期組成[1]。只有經(jīng)歷幼齡期和成熟期,實(shí)現(xiàn)營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)時(shí)相轉(zhuǎn)變(vegetative phase change, VPC),植物體才能進(jìn)入生殖生長(zhǎng),完成開(kāi)花、結(jié)果[2]。
最早關(guān)于VPC的研究是Knight對(duì)木本植物梨樹(shù)(Pyruscommunis)和蘋(píng)果(Malusdomestica)進(jìn)行的嫁接實(shí)驗(yàn),實(shí)驗(yàn)說(shuō)明了植物的營(yíng)養(yǎng)特性與其未來(lái)生殖能力密切相關(guān)[3]。
模式植物擬南芥中,幼齡期葉片近圓形,葉緣平滑,葉片長(zhǎng)寬比小,僅在近軸面出現(xiàn)表皮毛;成熟期葉片近匙形,葉緣卷曲,近軸面和遠(yuǎn)軸面均具有表皮毛[2-3]。調(diào)控VPC的分子基礎(chǔ)仍不清楚,擬南芥和玉米(Zeamays)中VPC的分子遺傳分析表明,一種小分子RNA,miR156,及其靶基因SPL(SQUAMOSAPROMOTERBINDINGPROTEINLIKE)基因家族,在這個(gè)轉(zhuǎn)變中發(fā)揮重要作用。miR156表達(dá)量在幼齡期較高,而在成熟期則降低;SPL3基因表達(dá)則相反,并受到miR156的強(qiáng)烈抑制[2,4]。
生物體中,以約24 h為一個(gè)時(shí)間節(jié)點(diǎn),周期反復(fù)振蕩,這一節(jié)律,接近地球自轉(zhuǎn)周期,在原核和真核生物中都存在,是為生物鐘[5-6]。研究表明,生物鐘參與調(diào)控植物生理和生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程,如細(xì)胞伸長(zhǎng)、氣孔開(kāi)閉、葉片運(yùn)動(dòng)和開(kāi)花等[5]。生物鐘由輸入途徑、輸出途徑及核心振蕩器組成;生物鐘核心振蕩器又由中心反饋環(huán)、早反饋環(huán)及晚反饋環(huán)組成[7-8]。擬南芥中,該反饋調(diào)節(jié)環(huán)由3個(gè)基因組成:CCA1 (CIRCADIANCLOCKASSOCIATED1)、LHY(LATEELONGATEDHYPOCOTYL)和TOC1 (TIMINGOFCABEXPRESSION1),其中LHY和CCA1負(fù)調(diào)控TOC1表達(dá),TOC1則正向調(diào)控LHY和CCA1表達(dá)[9]。GI(GIGANTEA)是植物特異的核蛋白,GI在開(kāi)花時(shí)間調(diào)控、光信號(hào)傳導(dǎo)、下胚軸伸長(zhǎng)、生物鐘調(diào)控、糖和淀粉積累、抗植物逆境脅迫等許多生理反應(yīng)中起作用[10]。在參與生物鐘調(diào)控中,GI是維持CCA1和LHY啟動(dòng)子高表達(dá)所必需,并可能是一個(gè)TOC1的共同作用因子[5]。
營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)時(shí)相轉(zhuǎn)變是植物生長(zhǎng)發(fā)育的一個(gè)重要生理過(guò)程,與植物自身生物鐘節(jié)律密切相關(guān),但其調(diào)控機(jī)制仍不清楚,生物鐘相關(guān)基因在此轉(zhuǎn)變中的作用仍不明確。本研究對(duì)擬南芥gi突變體VPC過(guò)程進(jìn)行了觀察研究,以探討GI對(duì)VPC的影響,為生物節(jié)律與VPC之間的關(guān)聯(lián)提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
材料來(lái)源參見(jiàn)文獻(xiàn)[11]。WT-Col背景下的gi突變體在突變體庫(kù)中編號(hào)為SALK_092757。
1.2.1 植物種植
方法參見(jiàn)文獻(xiàn)[11]。植物生長(zhǎng)箱中培養(yǎng)周期為:光照培養(yǎng)16 h,暗培養(yǎng)8 h。
1.2.2 植株形態(tài)觀察
待種子長(zhǎng)出子葉后,開(kāi)始觀察野生型Col-0及突變體gi的表型,并記錄其生長(zhǎng)速率。方法參見(jiàn)文獻(xiàn)[11]。抽薹后,將所有蓮座葉片摘下,測(cè)量其長(zhǎng)和寬,計(jì)算其長(zhǎng)寬比。
1.2.3 石蠟切片
方法參見(jiàn)文獻(xiàn)[11]。
1.2.4 反轉(zhuǎn)錄PCR(RT-PCR)與熒光定量PCR(Q-PCR)
利用RT-PCR與Q-PCR做miR156表達(dá)分析,為Actin-2。植株的總RNA采用CTAB法提取,反轉(zhuǎn)錄方法參見(jiàn)文獻(xiàn)[11]。miR156擴(kuò)增采用頸環(huán)法,Col-0擴(kuò)增33個(gè)循環(huán),gi擴(kuò)增31個(gè)循環(huán)。Q-PCR實(shí)驗(yàn)過(guò)程中使用BIO-RAD CFX96實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀,反應(yīng)條件參見(jiàn)文獻(xiàn)[11]。引物序列:Actin2-F:5′-GCTGAGAGATTCAGATGCCCA-3′,Actin2-R:5′-GTGGATTCCAGCAGCTTCCATACT-3′;miR156-F:5′-CATCTTGTAGATCTCTGAAGTTGGACT-3′,miR156-R: 5′-GAGATTGAGACATAGAGAACGAAGACA-3′。
為探討GI對(duì)植物生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程和VPC的影響,我們觀測(cè)了gi突變體的生長(zhǎng)周期特征。通過(guò)對(duì)各自25株植株進(jìn)行詳細(xì)的表型觀察統(tǒng)計(jì)及分析可看出,野生型Col-0蓮座葉葉片總數(shù)為10片,gi突變體蓮座葉葉片總數(shù)為40片,數(shù)量明顯增多(表1),說(shuō)明突變體gi生長(zhǎng)周期明顯延長(zhǎng);Col-0蓮座葉出現(xiàn)遠(yuǎn)軸面表皮毛為第6片(15 d時(shí)),而gi則是在第8片(18 d時(shí)),表明突變體的遠(yuǎn)軸面表皮毛出現(xiàn)晚于野生型(表1;圖1),說(shuō)明其VPC被延遲;生長(zhǎng)發(fā)育進(jìn)程觀察顯示,野生型Col-0在生長(zhǎng)約23 d出現(xiàn)可見(jiàn)花芽,而突變體在約43 d才出現(xiàn)可見(jiàn)花芽(表1),開(kāi)花明顯延遲。
表1 擬南芥野生型和突變體營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)發(fā)育情況統(tǒng)計(jì)Table 1 Growth characteristics of wild-type Col-0 and mutant gi
為進(jìn)一步探討gi突變體的VPC過(guò)程特點(diǎn),我們對(duì)野生型Col-0和gi突變體的葉形變化進(jìn)行了觀察比較。結(jié)果顯示,野生型Col-0的前4片蓮座葉接近圓形,后期的葉片則呈漸長(zhǎng)的匙形,葉片長(zhǎng)寬比在第6片葉時(shí)達(dá)到高位值1.55,隨后逐漸增大;gi突變體的前5片蓮座葉也近圓形,后期的葉片逐漸呈較長(zhǎng)的匙形,葉片長(zhǎng)寬比在第8片葉時(shí)達(dá)到高位值1.89,隨后逐漸增大(圖1),說(shuō)明野生型和突變體分別在第6和第8片葉時(shí)完成VPC,與遠(yuǎn)軸面表皮毛出現(xiàn)的時(shí)間一致,突變體的VPC被延遲。
圖1 野生型Col-0與gi突變體的葉形圖及不同生長(zhǎng)時(shí)期gi突變體和野生型的葉片長(zhǎng)寬比Fig 1 Leaf morphology of wild-type Col-0 and gi mutant and the length width ratio of leaves in wild-type Col-0 and mutant giA:Col-0從第1片真葉開(kāi)始至第11片蓮座葉葉形;B:gi從第1片真葉至第39片蓮座葉葉形。箭頭處表示VPC發(fā)生時(shí)期,即從箭頭后的葉片開(kāi)始出現(xiàn)遠(yuǎn)軸面表皮毛,Bars=1 cm。C:葉片長(zhǎng)寬比是以葉片頂端到葉柄聯(lián)合處的距離為長(zhǎng),葉片中部最寬位置為寬得到的比值。* P<0.05 (Student′s t-test)
我們?cè)诮馄式Y(jié)構(gòu)層面對(duì)莖尖分生組織(shoot apical meristem, SAM)的發(fā)育過(guò)程進(jìn)行了顯微觀察。莖尖石蠟切片結(jié)果顯示:Col-0在生長(zhǎng)第5 天時(shí),植株分化出2片葉,此時(shí)SAM生長(zhǎng)錐縱切面呈平坦?fàn)?,?xì)胞尚未分化(圖2-A);在生長(zhǎng)第10天時(shí),植株分化出4片葉,生長(zhǎng)錐縱切面稍有凸起,SAM的原套細(xì)胞為單層(圖2-B);在生長(zhǎng)第15天時(shí),植株分化出6片葉,生長(zhǎng)錐明顯凸起,原套細(xì)胞開(kāi)始分化成多層,原體和髓分生組織細(xì)胞分裂,數(shù)目增多(圖2-C);在第19天,植株分化出8片葉,生長(zhǎng)錐繼續(xù)生長(zhǎng)、發(fā)育,凸起增高(圖2-D);在第23天時(shí),植株分化出12片葉,花原基出現(xiàn)(圖2-E)。gi突變體在生長(zhǎng)第5天時(shí),植株分化出2片葉,SAM縱切面也為平坦?fàn)?,?xì)胞無(wú)分化(圖2-F)。在生長(zhǎng)第10天和第15天時(shí),植株分別分化出4片葉和6片葉,生長(zhǎng)錐縱切面開(kāi)始凸起,但莖尖分生組織原套細(xì)胞無(wú)分化或?yàn)閱螌?圖2-G和2-H);在生長(zhǎng)第19天時(shí),植株分化出8片葉,生長(zhǎng)錐縱切面凸起明顯,原套、原體和髓分生組織均分化、發(fā)育(圖2-I);在生長(zhǎng)第43天時(shí),植株分化出20片葉,花芽發(fā)育(圖2-J)。根據(jù)野生型和突變體莖尖生長(zhǎng)錐明顯凸起且分化的時(shí)間(分別為第15天和第19天),判定突變體VPC延遲,與形態(tài)學(xué)觀察結(jié)果一致。
我們還檢測(cè)了植株發(fā)育過(guò)程中miR156的表達(dá)變化。RT-PCR顯示,在野生型Col-0和突變體gi植株中miR156的轉(zhuǎn)錄水平都隨著生長(zhǎng)進(jìn)程呈下降趨勢(shì)。Col-0植株在第15 d時(shí),miR156表達(dá)量比第11天明顯降低,只約為前者的一半(圖3),說(shuō)明在15天時(shí)發(fā)生VPC;突變體植株則是在第19天時(shí)表達(dá)量約為15天時(shí)的一半(圖3),說(shuō)明在19 d時(shí)發(fā)生VPC。這一結(jié)果表明,突變體VPC延遲。隨后發(fā)育中,當(dāng)植株進(jìn)入開(kāi)花期(即Col-0生長(zhǎng)到23 d,gi生長(zhǎng)到43 d)時(shí),幾乎檢測(cè)不到miR156的表達(dá)(圖3)。
圖2 野生型Col-0與gi突變體莖尖分生組織解剖結(jié)構(gòu)Fig 2 The anatomical structure of SAM of wild type Col-0 and mutant gi
A-E:Col-0在LD下生長(zhǎng)5、10、15、19、23 d時(shí)SAM縱切圖;F~J:gi在LD下生長(zhǎng)5、10、15、19和43 d時(shí)SAM縱切圖。A~J:Bars=50 μm。左上角為切片取材時(shí)植株的生長(zhǎng)發(fā)育情況,Bars=1 cm
圖3 RT-PCR檢測(cè)Col-0與gi不同發(fā)育過(guò)程中miR156的表達(dá)Fig 3 Expression analysis of miR156 in Col-0 and gi with RT-PCR amplification
A:Col-0植株中在LD下生長(zhǎng)11、15、19、23 d時(shí)miR156的表達(dá)量變化; B:gi植株中在LD下生長(zhǎng)11、15、19、23、27、31、35、39和43 d時(shí)miR156的表達(dá)量變化;Actin-2基因?yàn)閮?nèi)參,其表達(dá)量作為對(duì)照
進(jìn)一步熒光定量PCR檢測(cè)結(jié)果顯示,隨著生長(zhǎng)發(fā)育進(jìn)程,野生型和突變體植株中的miR156表達(dá)均呈下降趨勢(shì),且miR156在gi中的表達(dá)量高于相應(yīng)發(fā)育時(shí)期的Col-0(圖 4);Col-0植株在生長(zhǎng)第15天時(shí),miR156的表達(dá)量下降最快,比前面11 d時(shí)測(cè)定的量下降1倍多,而gi突變體植株則在第19天時(shí)miR156的表達(dá)量下降到前面的1倍多,之后均緩慢下降,說(shuō)明野生型和突變體植株分別在第15天和第19天時(shí)發(fā)生VPC,gi突變體中相對(duì)于野生型Col-0延遲了VPC,與本文中其他實(shí)驗(yàn)(包括RT-PCR檢測(cè))結(jié)果相符。
在對(duì)長(zhǎng)日照開(kāi)花途徑的研究過(guò)程中,鑒定出了與開(kāi)花相關(guān)的重要基因CO(CONSTANS)、FT(FLOWERINGLOCUST)和GI(GIGANTEA)[12]。其中GI是一個(gè)與生物鐘相關(guān)的控制開(kāi)花周期的基因,GI發(fā)生突變導(dǎo)致擬南芥在長(zhǎng)日照條件下開(kāi)花延遲[13],GI超表達(dá)會(huì)造成早花表型[14]。由于開(kāi)花是營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)的延續(xù),GI作為生物鐘相關(guān)基因,參與調(diào)節(jié)了開(kāi)花的進(jìn)程,但它對(duì)營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)發(fā)育進(jìn)程的影響仍未知。
圖 4 Col-0與gi不同發(fā)育過(guò)程中Q-PCR檢測(cè)miR156表達(dá)Fig 4 Relative expression analysis of miR156 in Col-0 and gi with Q-PCR amplification
Col-o植株在生長(zhǎng)第15 d時(shí),miR156的表達(dá)量比gi植株在生長(zhǎng)第19 d時(shí)下降較快,結(jié)果表明,突變體相對(duì)于野生型Col-o延遲了VPC。*P<0.05 (Student′st-test); **P<0.01
本文中,我們從觀察突變體gi的生長(zhǎng)發(fā)育進(jìn)程起始,對(duì)其VPC進(jìn)行了較為詳細(xì)的研究。結(jié)果顯示,從形態(tài)特點(diǎn)、解剖結(jié)構(gòu)以及調(diào)控VPC的miR156表達(dá)的分子檢測(cè)等各方面分析,對(duì)比野生型Col-0,gi突變體的VPC延遲;而且,gi突變體全部生長(zhǎng)發(fā)育歷時(shí)較長(zhǎng),至第43天才出現(xiàn)可見(jiàn)花芽,果實(shí)成熟需要80 d以上,而野生型Col-0在生長(zhǎng)約23 d即出現(xiàn)可見(jiàn)花芽,約60 d果實(shí)即成熟,說(shuō)明gi突變體營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)時(shí)期中成熟期被延長(zhǎng),植株進(jìn)行較長(zhǎng)時(shí)間的營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng),產(chǎn)生更多的葉片,導(dǎo)致遲遲不開(kāi)花,結(jié)果期也延長(zhǎng)。據(jù)此推測(cè),GI可能參與VPC的調(diào)控,使得植株從幼齡期及時(shí)轉(zhuǎn)變到成熟期,同時(shí),通過(guò)和其他開(kāi)花基因互作,及時(shí)完成從營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)到生殖生長(zhǎng)的轉(zhuǎn)變,調(diào)控植物正常開(kāi)花;GI基因突變,導(dǎo)致VPC延遲的同時(shí),也產(chǎn)生晚花、晚結(jié)果的表型。此外,我們的前期研究[11]表明,蓮座葉數(shù)目減少的突變體mgo3推遲了VPC的發(fā)生;而蓮座葉數(shù)目增多突變體amp1-1并未使VPC的發(fā)生提前,切除第1、2片真葉推遲了Col-0的VPC發(fā)生。本研究中,gi突變體蓮座葉葉片總數(shù)明顯增多,但其VPC延遲;推測(cè)突變體幼齡期產(chǎn)生的真葉受GI基因突變影響較大,數(shù)量較少,造成VPC發(fā)生延遲,而在VPC完成后的成熟期,突變體產(chǎn)生了較多的葉片,使得其成熟期被延長(zhǎng)。Yang等[15]通過(guò)葉原基切除實(shí)驗(yàn)證明,VPC起始于葉原基的信號(hào),這些信號(hào)抑制了miR156的轉(zhuǎn)錄而起作用,這種葉原基產(chǎn)生的因子可能與植物葉片數(shù)量相關(guān)。從本研究的結(jié)果分析,這種相關(guān)性可能更集中在幼齡期葉片的發(fā)生上,且也是通過(guò)miR156的表達(dá)調(diào)控的。
SAM的解剖結(jié)構(gòu)在擬南芥發(fā)育成熟過(guò)程中產(chǎn)生了凸起的變化[11,16]。gi突變體營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)期間SAM解剖觀察表明,突變體莖尖分生組織原套、原體細(xì)胞和髓分生組織的高度均低于野生型,且分裂的細(xì)胞層數(shù)和分化狀態(tài)發(fā)生變化,說(shuō)明GI活性缺失改變了生長(zhǎng)的節(jié)律,延遲了SAM的發(fā)育,原套產(chǎn)生多層細(xì)胞較晚,原體和髓分生組織的細(xì)胞發(fā)育延遲,使得突變體蓮座葉生長(zhǎng)速率落后于野生型。GI可能通過(guò)調(diào)控SAM細(xì)胞活性使其發(fā)育延緩,從而造成營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)時(shí)相轉(zhuǎn)變的延遲。我們?cè)谇捌诠ぷ鱗11]的基礎(chǔ)上,通過(guò)本研究進(jìn)一步說(shuō)明VPC的發(fā)生與莖尖分生組織中原套、原體細(xì)胞和髓分生組織的細(xì)胞分化相關(guān),進(jìn)一步的工作有待GI的時(shí)空表達(dá)原位雜交定位。
我們的研究結(jié)果表明GI除了參與開(kāi)花調(diào)控外,也在VPC調(diào)控中起作用,因此,GI具有功能冗余作用,這些結(jié)果也暗示了營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)和生殖生長(zhǎng)可能存在的發(fā)育相關(guān)性,其他生物鐘基因是否也具有此特性尚待研究。
[1]HUIJSER P, SCHMID M.The control of developmental phase transitions in plants [J].Development, 2011, 138(19): 4117-4129.
[2]POETHIG R S.The past, present and future of vegetative phase change [J].Plant Physi, 2010, 154(2): 541-544.
[3]KNIGHT T A.Observations on the grafting of trees: in a letter from Thomas Andrew Knight, Esq.to Sir Joseph Banks, Bart.PRS [M].London: Philos Trans R Soc Lond, 1795, 85: 290-295.
[4]WU G, POETHIG R S.Temporal regulation of shoot development inArabidopsisthalianabymiR156 and its targetSPL3 [J].Development, 2006, 133(18): 3539-3547.
[5]SOMERS D E.The physiology and molecular bases of the plant circadian clock [J].Plant Physio, 1999, 121(1): 9-20.
[6]SALOMé P A, MCCLUNG C R.TheArabidopsisthalianaclock [J].J Biol Rhythms, 2004, 19(5): 425-435.
[7]BAUDRY A, ITO S, SONG Y H, et al.F-box proteins FKF1 and LKP2 act in concert with ZEITLUPE to controlArabidopsisclock progression [J].Plant Cell, 2010, 22(3): 606-622.
[8]IMAIZUMI T.Arabidopsiscircadian clock and photoperiodism: time to think about location [J].Curr Opin Plant Biol, 2010, 13(1): 83-89.
[9]MISHRA P, PANIGRAHI K C.GIGANTEA-an emerging story [J].Front Plant Sci, 2015, 6: 8.
[10]ALABADD, OYAMA T, YANOVSKY M J, et al.Reciprocal regulation betweenTOC1 andLHY/CCA1 within theArabidopsiscircadian clock [J].Science, 2001, 293(5531): 880-883.
[11]盧 陽(yáng), 龍 鴻.擬南芥葉片數(shù)目變化突變體對(duì)營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)時(shí)相轉(zhuǎn)變的影響[J].植物學(xué)報(bào), 2015, 50(3): 331-337.
[12]YANG S, WEERS B D, MORISHIGE D T, et al.CONSTANS is a photoperiod regulated activator of flowering in sorghum [J].BMC Plant Biology, 2014, 14: 148.
[13]FOWLER S, LEE K, OMOUCHI H, et al.GIGANTEA: a circadian clock-controlled gene that regulates photoperiodic flowering inArabidopsisand encodes a protein with several possible membrane-spanning domains [J].EMBO J, 1999, 18 (17): 4679-4688.
[14]PARK D H, SOMERS D E, KIM Y S, et al.Control of circadian rhythms and photoperiodic flowering by theArabidopsisisGIGANTEAgene [J].Science, 1999, 285(5433): 1579-1582.
[15]YANG L, CONWAY S R, POETHIG R S.Vegetative phase change is mediated by a leaf-derived signal that represses the transcription of miR156 [J].Development, 2011, 138(2): 245-249.
[16]JACQMARD A, GADISSEUR I, BERNIER G.Cell division and morphological changes in the shoot apex ofArabidopsisthalianaduring floral transition [J].Annals of Botany, 2003, 91: 571-576.