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大蒜精油和發(fā)酵劑對(duì)熏馬腸中生物胺及微生物分布的影響

2018-05-25 00:52:40李彬彬張雅晴趙利利盧士玲
食品科學(xué) 2018年9期
關(guān)鍵詞:酪胺發(fā)酵劑精油

李彬彬,張雅晴,趙利利,毛 順,盧士玲*

熏馬腸是新疆哈薩克民族特色的傳統(tǒng)肉類制品,是一種營(yíng)養(yǎng)豐富、蛋白質(zhì)含量極高、脂肪含量少但多不飽和脂肪酸所占比例高的發(fā)酵肉制品。熏馬腸作為優(yōu)質(zhì)獨(dú)特的功能性食品,具有很好的銷售前景,但由于其在加工成熟及貯藏過程中產(chǎn)生的生物胺累積,造成了一定的食品安全隱患[1]。

食物中存在生物胺的累積現(xiàn)象,主要可能由于十分充足的前體物質(zhì)的存在,還有許多含有氨基酸脫羧酶基因的細(xì)菌以及能夠促進(jìn)其生長(zhǎng)并且對(duì)脫羧酶活性有促進(jìn)作用的環(huán)境因素造成[2]。在所有胺類化合物中,組胺和酪胺被確認(rèn)毒理作用最強(qiáng)。當(dāng)它們作用于機(jī)體時(shí),會(huì)對(duì)人類的精神狀態(tài)、血管活性造成影響,甚至導(dǎo)致嚴(yán)重的毒性反應(yīng)[3]。此外生物胺具有良好的熱穩(wěn)定性,食品加工和制備過程中的高溫對(duì)其破壞力有限,目前只能通過預(yù)防和監(jiān)測(cè)的方式來有效控制生物胺在食品加工中的形成從而延長(zhǎng)食品鏈[4]。

據(jù)目前大量研究結(jié)果來看,發(fā)酵劑對(duì)發(fā)酵香腸中生物胺的產(chǎn)生具有良好的控制作用[5],如乳酸菌和凝固酶陰性葡萄球菌[6]。乳酸菌在原料肉中數(shù)量極低(3~4(lg(CFU/g))),但它能夠在很短時(shí)間內(nèi)提高乳酸菌的數(shù)量,使其在發(fā)酵初期成為熏馬腸中的優(yōu)勢(shì)菌株(8(lg(CFU/g))),葡萄球菌能夠在發(fā)酵過程中分解原料形成風(fēng)味化合物[7]。乳酸菌分解產(chǎn)生大量乳酸或有機(jī)酸導(dǎo)致pH值在短時(shí)間內(nèi)快速降低,抑制了腐敗微生物的生長(zhǎng),從而減少生物胺的積累[8]。添加香辛料和天然植物提取物對(duì)原料肉進(jìn)行腌制[9],也是目前控制生物胺產(chǎn)生的重要途徑,它能夠使熏馬腸中的初始微生物的數(shù)量和種類得到有效控制。

微生物宏基因組分類測(cè)序是根據(jù)對(duì)被檢樣品中微環(huán)境的基因序列實(shí)施檢測(cè),能夠高效準(zhǔn)確地辨別其中微生態(tài)物種的類別以及相對(duì)豐度。宏基因組學(xué)目前已被廣泛應(yīng)用到發(fā)酵制品的發(fā)酵加工過程中,對(duì)微生物多樣性和動(dòng)態(tài)進(jìn)行研究。新疆熏馬腸發(fā)酵成熟時(shí)期涉及多菌種共同作用,分化發(fā)酵肉中微生物種類以及在各時(shí)期的變化規(guī)律和機(jī)理,對(duì)于深入研究其發(fā)酵機(jī)理和構(gòu)建發(fā)酵時(shí)期的監(jiān)測(cè)手段和控制途徑具有舉足輕重的意義。本實(shí)驗(yàn)將利用宏基因組學(xué)的方法對(duì)熏馬腸發(fā)酵成熟時(shí)期的細(xì)菌群落的構(gòu)成和多樣性進(jìn)行詳細(xì)監(jiān)測(cè),旨在為發(fā)酵劑和大蒜精油對(duì)熏馬腸發(fā)酵成熟過程中優(yōu)勢(shì)菌群的發(fā)掘和腐敗微生物的抑制提供一定的理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 菌株、材料與試劑

屎腸球菌(Enterococcus faecium)KT923202、糞腸球菌(E. faecalis)KT923193均為本實(shí)驗(yàn)室從熏馬腸中分離篩選。

馬肉購(gòu)自石河子牧民家庭;輔料(天然動(dòng)物腸衣、食鹽、煙熏液)均為市售。

改良后的甘露醇高鹽瓊脂培養(yǎng)基(manitol salt agar,MSA)、結(jié)晶紫中性紅膽鹽瓊脂培養(yǎng)基(violet red bile agar,VRBA)、MRS培養(yǎng)基 北京奧博星生物試劑公司;發(fā)酵劑 科漢森菌種有限公司;大蒜精油仲景大廚房股份有限公司。

1.2 儀器與設(shè)備

甲醇、乙腈(均為色譜純) 天津福晨化學(xué)試劑廠;生物胺標(biāo)準(zhǔn)品(色胺、苯乙胺、腐胺、尸胺、組胺、酪胺、亞精胺、精胺、丹磺酰氯(dansyl chloride,DNS-Cl))美國(guó)Sigma公司。

T25型勻漿機(jī) 德國(guó)IKA公司;BagMixer 400VW型均質(zhì)器 法國(guó)Interscience公司;9020-0094 KBF 240型恒溫恒濕培養(yǎng)箱 德國(guó)Binder公司;高速冷凍離心機(jī) 美國(guó)貝克曼公司。

1.3 方法

1.3.1 新疆熏馬腸的制作

配方:瘦肉80%(質(zhì)量分?jǐn)?shù),下同)、肥肉20%、食鹽2.5%、白糖2%、亞硝酸鈉0.02%、胡椒粉0.1%、花椒粉0.15%、姜粉0.2%、味精0.1%、五香粉0.1%、八角0.1%、煙熏液1%、大蒜精油0.025%、發(fā)酵劑0.025%。

工藝流程:原料肉處理(紫外燈照射30 min)→修整、切丁(切小拇指上指尖大?。淞稀缰疲? ℃,1 d)→接種→灌腸→發(fā)酵(18 ℃,相對(duì)濕度90%~95%,2 d)→成熟(12 ℃,相對(duì)濕度70%~75%,25 d)→成品。

分別在第0、3、7、14、21、28天取樣,每次取一根,每根香腸分裝成5 節(jié),對(duì)微生物數(shù)量、水分含量、pH值測(cè)定,置于-20 ℃冷凍保藏,以備生物胺的測(cè)定。

1.3.2 實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)

將1.3.1節(jié)處理好的原料肉均勻地分為8 組,其中4 組接種濃度約為103CFU/mL的屎腸球菌和糞腸球菌菌液作為產(chǎn)胺菌接種劑,另外4 組不接種產(chǎn)胺菌。然后在模擬發(fā)酵條件下進(jìn)行熏馬腸的發(fā)酵和成熟,并在發(fā)酵過程中的第0、3、7、14、21、28天分別取樣,進(jìn)行實(shí)驗(yàn)分析。

對(duì)原料馬肉分別做如下處理:第1組(OJ)添加大蒜精油和接種產(chǎn)胺菌;第2組(CK)空白對(duì)照組;第3組(S)只添加發(fā)酵劑;第4組(SO)添加發(fā)酵劑和大蒜精油;第5組(O)只添加大蒜精油;第6組(SOJ)添加發(fā)酵劑和大蒜精油及接種產(chǎn)胺菌;第7組(SJ)添加發(fā)酵劑和接種產(chǎn)胺菌;第8組(J)接種產(chǎn)胺菌。每組腐敗菌的接種量均約為103CFU/g。發(fā)酵劑為清酒乳桿菌和肉糖葡萄球菌,添加量為106CFU/g。

1.3.3 微生物計(jì)數(shù)

取10 g香腸,加入到90 mL無菌生理鹽水中,在室溫下200 r/min搖床培養(yǎng)30 min。然后根據(jù)微生物實(shí)驗(yàn)操作書上的要求進(jìn)行規(guī)范操作,吸取適當(dāng)濃度菌液于對(duì)應(yīng)固體培養(yǎng)基進(jìn)行均勻涂布。乳酸菌用MRS培養(yǎng)基,在37 ℃條件下培養(yǎng)72 h;葡萄球菌/微球菌用MSA培養(yǎng)基,37 ℃培養(yǎng)48 h;腸細(xì)菌用VRBA培養(yǎng)基,30 ℃培養(yǎng)48 h。

1.3.4 樣品pH值測(cè)定

無菌條件下取樣品20 g于180 mL滅菌生理鹽水,裝入無菌拍打袋中。使用拍打機(jī),強(qiáng)度調(diào)至4拍打20 min,直至樣品完全散開在無菌生理鹽水中,上清液用pH計(jì)進(jìn)行測(cè)定。

1.3.5 樣品生物胺含量測(cè)定

參考文獻(xiàn)[10]的方法,取5 g熏馬腸樣品加入20 mL的0.4 mol/L的高氯酸,取上述樣品1 mL,加入200 μL 2 mol/L NaOH溶液使溶液呈堿性,再加入300 μL飽和NaHCO3溶液進(jìn)行緩沖,然后再加入2 m L 10 mg/mL的DNS-Cl丙酮溶液,使之在黑暗條件40 ℃反應(yīng),45 min后加入100 μL的NH3·H2O終止反應(yīng),去除殘留的DNS-Cl溶液。用乙腈定容到5 mL,用0.22 μm濾膜過濾后裝入樣品瓶待測(cè)。

色譜條件:C18色譜柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動(dòng)相A為水,流動(dòng)相B為乙腈;流速為0.9 mL/min;進(jìn)樣量:20 μL;柱溫:30 ℃;檢測(cè)波長(zhǎng):254 nm。梯度洗脫程序?yàn)椋?.1 min、35% A;5.0 min、25% A;44 min、0% A;55 min、35% A。1.3.6 宏基因組學(xué)測(cè)序

將8 組熏馬腸發(fā)酵成熟所有時(shí)期的共41 個(gè)樣品,無菌條件下取樣送至華大基因測(cè)序公司進(jìn)行宏基因組學(xué)測(cè)序。對(duì)樣品純度進(jìn)行檢測(cè);檢測(cè)合格的樣品構(gòu)建文庫:回收目的Amplicon片段,用T4 DNA Polymerase、Klenow DNA Polymerase和T4 PNK將打斷形成的黏性末端修復(fù)成平末端,再通過3’端加堿基“A”,使得DNA片段能與3’端帶有“T”堿基的特殊接頭連接。也可通過對(duì)具有測(cè)序接孔的雙Index融合引物進(jìn)行設(shè)計(jì)并合成,以DNA為模板,對(duì)PCR引物進(jìn)行融合。磁珠篩選目的Amplicon片段,最后,用合格的文庫進(jìn)行cluster制備和測(cè)序。用下機(jī)得到的數(shù)據(jù)進(jìn)行相應(yīng)的生物信息分析。

下機(jī)數(shù)據(jù)經(jīng)過過濾,濾除低質(zhì)量的reads,剩余高質(zhì)量的Clean data方可用于后期分析。通過reads之間的Overlap關(guān)系將reads拼接成Tags。在規(guī)定的一定相似度下將Tags集聚合成操作分類單元(operational taxonomic units,OTU),最后將OTU與數(shù)據(jù)庫比對(duì),對(duì)OTU進(jìn)行物種注釋?;贠TU和物種注釋結(jié)果進(jìn)行樣品物種復(fù)雜度分析以及組間物種差異分析。

1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

所有數(shù)據(jù)從液相分析平臺(tái)導(dǎo)出,用Excel 2010建立數(shù)據(jù)庫,并用DPS 7.05版進(jìn)行鄧肯氏多重比較分析。

2 結(jié)果與分析

2.1 pH值分析

pH值的下降是熏馬腸在發(fā)酵成熟過程中的一個(gè)顯著變化,新鮮馬肉的初始pH值為5.78。由表1可知,8 組熏馬腸在發(fā)酵初期(0~3 d),pH值迅速下降,接種發(fā)酵劑組熏馬腸的酸化程度要顯著高于對(duì)照組的熏馬腸(P<0.05),主要是由于發(fā)酵劑或接種的乳酸菌等微生物作用于內(nèi)源或添加的糖等碳水化合物,使其分解為乳酸、醋酸或其他有機(jī)酸,從而導(dǎo)致pH值降低,pH值降低可以有效抑制雜菌的生長(zhǎng)。因此,未接種的對(duì)照組pH值下降過程不明顯,發(fā)酵結(jié)束后pH值為5.3。發(fā)酵結(jié)束后pH值下降緩慢,這是由于成熟溫度為18 ℃,要低于發(fā)酵溫度,導(dǎo)致一些微生物生長(zhǎng)速率緩慢,產(chǎn)酸能力受到抑制。直到成熟期21 d,pH值開始回升,主要原因是在成熟過程中,水分蒸發(fā)流失,含氮化合物被乳酸菌利用作為能源,蛋白酶分解蛋白質(zhì)產(chǎn)生堿性緩沖物質(zhì)如生物胺的積累。在成熟結(jié)束后,各組樣品的pH值大多處于4.64~4.92之間,依然能夠?yàn)槭称诽峁┮粋€(gè)較低的酸性環(huán)境,能夠很好地抑制細(xì)菌的氨基酸脫羧酶活性,從而控制生物胺的產(chǎn)生。Fanco等[11]報(bào)道,pH 5左右的酸性條件有利于維持發(fā)酵香腸貨架期的穩(wěn)定性。但這一結(jié)果要低于Lu Shiling等[9]終產(chǎn)品中的pH值,可能是由于所使用的馬肉品質(zhì)間的差異所致。通過比較分析可得,添加發(fā)酵劑組pH值下降幅度顯著(P<0.05)大于未接種發(fā)酵劑組,并且在終產(chǎn)品中的pH值顯著低于未接種發(fā)酵劑組(P<0.05);與接種發(fā)酵劑相比,添加大蒜精油對(duì)熏馬腸pH值的作用效果并不明顯(P>0.05),這與Bozkurt[12]的研究結(jié)果較為相似。

表1 新疆熏馬腸在成熟過程中pH值變化情況Table 1 Change in pH during the ripening of smoked horsemeat sausages

2.2 微生物分布分析2.2.1 乳酸菌分析

表2 新疆熏馬腸在成熟過程中乳酸菌生長(zhǎng)情況(n=6)Table 2 Growth of lactic acid bacteria during the ripening of smoked horsemeat sausages (n= 6)lg(CFU/g)

由表2可知,不同處理的樣品在發(fā)酵成熟過程中乳酸菌數(shù)量存在差異。在發(fā)酵結(jié)束時(shí)(0~3 d),除CK和O組,其他香腸中的乳酸菌都迅速由原料肉中的3.85(lg(CFU/g))增長(zhǎng)到7.36~8.38(lg(CFU/g)),通常情況下生鮮肉中的乳酸菌數(shù)量在3~4(lg(CFU/g))[13],其中接種發(fā)酵劑組的熏馬腸,乳酸菌數(shù)量平均都在8.22(lg(CFU/g)),顯著高于其他未接種發(fā)酵劑的熏馬腸(P<0.05)。此結(jié)果與Mokhtar等[5]研究結(jié)果相比,對(duì)照組乳酸菌數(shù)量高1.587(lg(CFU/g)),接種發(fā)酵劑組平均高1.159(lg(CFU/g)),這可能是由于原料肉品質(zhì)間的差異引起的,也可能是發(fā)酵劑中菌種活性不同所致。在熏馬腸的整個(gè)成熟階段,加入大蒜精油對(duì)接種產(chǎn)胺菌組的乳酸菌數(shù)量有一定抑制作用。在未接種發(fā)酵劑的樣品中,乳酸菌依然成為了優(yōu)勢(shì)菌,之前許多國(guó)內(nèi)外學(xué)者已有報(bào)道[14]。在成熟結(jié)束后(第28天),每組熏馬腸中的乳酸菌數(shù)量在6.44~7.47(lg(CFU/g))之間,與國(guó)際上建議的乳酸菌在功能性食品中的數(shù)量范圍6~8(lg(CFU/g))相符[15],說明產(chǎn)品具有一定的可信度。2.2.2 微球菌和葡萄球菌分析

表3 新疆熏馬腸在成熟過程中微球菌和葡萄球菌生長(zhǎng)情況(n=6)Table 3 Growth of Micrococcus and Staphylococcus during the ripening of smoked horsemeat sausages (n= 6)lg(CFU/g)

由于微球菌和葡萄球菌具有解朊作用和分解脂肪活性,因此與乳酸菌一起作為發(fā)酵劑被廣泛應(yīng)用于發(fā)酵香腸中。為研究發(fā)酵劑和大蒜精油對(duì)微球菌和葡萄球菌數(shù)量的影響,分別對(duì)8 組熏馬腸樣品中檢測(cè)出的微球菌和葡萄球菌數(shù)量進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析及多重比較,結(jié)果見表3。接種發(fā)酵劑組的熏馬腸中微球菌和葡萄球菌數(shù)量遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于其他未接種發(fā)酵劑組(P>0.05),數(shù)量在5.5(lg(CFU/g))左右,而未接種發(fā)酵劑的熏馬腸中微球菌和葡萄球菌數(shù)量在4.5(lg(CFU/g))左右,接種發(fā)酵劑組比未接種發(fā)酵劑組高1(lg(CFU/g))左右。該結(jié)果與Gücüko?lu等[16]研究接種不同發(fā)酵劑的發(fā)酵香腸在發(fā)酵結(jié)束后,微球菌和葡萄球菌數(shù)量在5.66~5.80(lg(CFU/g))相近。微球菌和葡萄球菌在發(fā)酵階段雖然數(shù)量增長(zhǎng)的幅度遠(yuǎn)低于乳酸菌,也可能是乳酸菌的快速產(chǎn)酸不利于其增殖,但接種發(fā)酵劑對(duì)微球菌和葡萄球菌的快速增殖還是有一定促進(jìn)作用。到熏馬腸成熟的第21天時(shí),添加大蒜精油對(duì)添加發(fā)酵劑的熏馬腸中微球菌和葡萄球菌數(shù)量沒有顯著抑制作用。在熏馬腸終產(chǎn)品中,各組樣品中的微球菌和葡萄球菌數(shù)量在3.83~5.63(lg(CFU/g))之間,與一些學(xué)者報(bào)道的發(fā)酵香腸中微球菌數(shù)量相近(4.1~5.9(lg(CFU/g)))[17]。

2.2.3 腸細(xì)菌分析

表4 熏馬腸在成熟過程中腸細(xì)菌生長(zhǎng)情況(n=6)Table 4 Growth of Enterobacteria during the ripening of smoked horsemeat sausages (n= 6)lg(CFU/g)

腸細(xì)菌比起乳酸菌、微球菌和葡萄球菌,可以說是一類不受歡迎的菌種,大量的腸細(xì)菌存在于發(fā)酵香腸時(shí)可同時(shí)產(chǎn)生尸胺和腐胺。其常在肉中出現(xiàn),如果在不適宜的環(huán)境下加工肉制品,很可能導(dǎo)致致病性危害以及對(duì)發(fā)酵香腸的感官品質(zhì)造成影響[18];同時(shí)它也能通過水解蛋白、分解脂肪和分解糖等作用為發(fā)酵香腸貢獻(xiàn)芳香化合物[19]。在熏馬腸成熟時(shí)期中取樣檢測(cè)腸細(xì)菌數(shù)量,從表4可以看出,各組在發(fā)酵結(jié)束后,腸細(xì)菌數(shù)量變化不大,添加大蒜精油組腸細(xì)菌數(shù)量顯著低于未添加大蒜精油組(P<0.05)。到熏馬腸成熟第7天時(shí),腸細(xì)菌的數(shù)量出現(xiàn)了兩種變化情況,添加大蒜精油和接種發(fā)酵劑組熏馬腸中的腸細(xì)菌數(shù)量顯著減少,且添加大蒜精油組比接種發(fā)酵劑組減少效果更顯著(P<0.05),而其余各組熏馬腸中的腸細(xì)菌數(shù)量均有一定程度的增長(zhǎng),說明大蒜精油對(duì)腸細(xì)菌的生長(zhǎng)具有一定的抑制效果,而發(fā)酵劑在熏馬腸成熟階段對(duì)減少腸細(xì)菌數(shù)量上也做出一定的貢獻(xiàn),這與Simion等[20]研究結(jié)果相符。成熟第28天時(shí),各組熏馬腸樣品中的腸細(xì)菌數(shù)量都相對(duì)較低,說明使用的原料肉符合良好的衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn),添加發(fā)酵劑和精油對(duì)腸細(xì)菌有顯著的抑制作用,但接種發(fā)酵劑和添加大蒜精油處理組之間腸細(xì)菌數(shù)量沒有顯著性的差異(P>0.05)。

2.3 微生物多樣性分析

通過與數(shù)據(jù)庫進(jìn)行比對(duì),對(duì)OTU進(jìn)行物種分類并在科分類等級(jí)對(duì)各個(gè)樣品作物種分布柱狀圖。圖1為41 個(gè)熏馬腸樣品在科水平中物種相對(duì)豐度柱狀圖,不同色塊寬度表示不同物種相對(duì)豐度比例。如圖1所示,在科水平上除SJ-21其他所有樣品乳桿菌科(Lactobacillaceae)相對(duì)豐度占細(xì)菌類群的50%以上,其中S-3、OJ-7、O-14、SO-14的相對(duì)豐度高達(dá)90%,說明乳酸菌的確在熏馬腸整個(gè)發(fā)酵成熟過程中是優(yōu)勢(shì)菌群。而假單胞菌科(Pseudomonadales)在SJ-21樣品中占主導(dǎo)地位相對(duì)豐度約為60%,其次在SOJ-7中也出現(xiàn)一定比例,說明這兩組樣品在加工成熟過程中有可能受到污染,但在成熟結(jié)束時(shí),在所有熏馬腸樣品中都沒有發(fā)現(xiàn)假單胞菌的存在,可能是水分缺失,不利于其生長(zhǎng)。由表5中可以看出,SOJ-7與同一時(shí)期其他樣品相比,酪胺含量較高,達(dá)到82.40 mg/kg,而SJ-21組產(chǎn)生的尸胺和酪胺的含量均顯著高于其他組,Li Miaoyun等[21]也證實(shí)了假單胞菌通常是腐胺、酪胺和組胺的產(chǎn)生菌,這與本實(shí)驗(yàn)所研究結(jié)論相符。除此之外,葡萄球菌科(Staphylococcaceae)在J-3、SJ-14、O-21、S-21、SO-21、OJ-28和SO-28這7 個(gè)樣品中相對(duì)豐度相對(duì)較高,約為10%~20%,由此可以看出,葡萄球菌常出現(xiàn)在發(fā)酵肉制品的成熟后期,是為發(fā)酵香腸的風(fēng)味貢獻(xiàn)產(chǎn)香物質(zhì)的主要菌群。Essid等[7]研究表明,葡萄球菌在發(fā)酵香腸中有兩大貢獻(xiàn),一是酸化作用,二是反硝化作用,如脂解作用和蛋白質(zhì)水解作用,同時(shí)還能生成低分子質(zhì)量化合物如肽類、氨基酸等賦予發(fā)酵肉香氣成分。

圖1 樣品科分類水平中物種相對(duì)豐度柱狀圖Fig. 1 Relative abundance of sequences assigned to families

2.4 生物胺含量分析

如表5所示,每種樣品中各種生物胺數(shù)據(jù)的變化可能要結(jié)合一些能夠影響生物胺產(chǎn)生的因素進(jìn)行解釋分析,如原料肉的新鮮程度和衛(wèi)生質(zhì)量、加工和成熟階段引起的微生物種類和數(shù)量的變化等。

由于生物胺存在于發(fā)酵香腸對(duì)消費(fèi)者健康造成潛在的威脅,因此酪胺、組胺、尸胺和腐胺已被建議作為發(fā)酵肉制品受腐敗微生物污染的標(biāo)志[22]。許多研究表明,尸胺和腐胺是肉制品中主要的胺類[23],雖然它們通常不被認(rèn)為具有毒性作用,但是它們能夠增強(qiáng)一些芳香族胺的毒性作用,如酪胺和組胺;此外,它們能夠與一些胺氧化酶反應(yīng),從而降低氧化酶降解生物胺的活性。腐胺主要是由假單胞菌產(chǎn)生的,尸胺主要是由腸桿菌產(chǎn)生的[24]。本研究中腐胺和尸胺的結(jié)果如表5所示,在0~3 d內(nèi),兩種胺的含量平均都低于50 mg/kg,腐胺含量到成熟結(jié)束也一直保持這樣的水平,該值被Ladero等[25]報(bào)道作為安全限量。而在熏馬腸成熟后期(第28天),與空白組相比,添加大蒜精油可使尸胺和腐胺含量減少75.50%和37.98%,接種發(fā)酵劑并添加大蒜精油可使尸胺和腐胺含量分別減少75.56%、70.34%,說明大蒜精油和發(fā)酵劑的結(jié)合使用能夠大幅度抑制這兩種生物胺的產(chǎn)生。從表5可看出,接種發(fā)酵劑的S組對(duì)腐胺的影響不是很大,但Zhang Qilin等[26]研究表明添加不產(chǎn)胺的乳酸菌作為發(fā)酵劑可以降低腐胺和尸胺的積累,并且能夠快速產(chǎn)酸,抑制不受歡迎的細(xì)菌如假單胞菌和大腸桿菌等的產(chǎn)生。而添加大蒜精油的O和SO組腐胺產(chǎn)生的數(shù)量要顯著低于其他組(P<0.05),說明可能是大蒜精油對(duì)鳥氨酸脫羧酶活性具有抑制作用,也可能是大蒜精油和發(fā)酵劑聯(lián)合使用阻礙了腐胺的產(chǎn)生。

表5 新疆熏馬腸中生物胺含量Table 5 Concentrations of biogenic amines in smoked horsemeat sausages mg/kg

從表5中可得,在熏馬腸發(fā)酵成熟的各個(gè)時(shí)期,接種發(fā)酵劑和添加大蒜精油組(S和SO組),尸胺含量比對(duì)照組(CK)平均減少了60%以上,此結(jié)果高于Simion等[20]研究在發(fā)酵香腸僅接種發(fā)酵劑對(duì)尸胺含量的影響,結(jié)果說明尸胺的形成受發(fā)酵劑的影響較大,而將大蒜精油與發(fā)酵劑相結(jié)合,對(duì)產(chǎn)生尸胺的微生物起到了良好的抑制效果。朱志遠(yuǎn)[27]研究稱pH值對(duì)氨基酸脫羧酶活性具有很大的影響。在熏馬腸中快速降低pH值,能夠抑制產(chǎn)胺菌的生長(zhǎng),特別對(duì)于腸細(xì)菌作用最顯著,因此其尸胺含量也顯著低于其他胺類。而接種產(chǎn)胺菌組對(duì)尸胺的產(chǎn)生影響不大,說明屎腸球菌和糞腸球菌不是主要產(chǎn)生尸胺的菌種。

已有大量研究表明,組胺的產(chǎn)生與尸胺和腐胺有關(guān),尤其與尸胺關(guān)系更為密切,因?yàn)樗鼈兌贾饕赡c細(xì)菌產(chǎn)生[28]。從表5可以看出,各個(gè)時(shí)期的8 組熏馬腸樣品中組胺含量都不超過50 mg/kg,遠(yuǎn)低于一些學(xué)者提出的發(fā)酵肉制品中組胺的最低限量100 mg/kg[29]。接種發(fā)酵劑和添加大蒜精油的熏馬腸中組胺的含量顯著少于空白對(duì)照組(P<0.05),且在第28天時(shí),組胺含量相較對(duì)照組減少了68.88%,說明發(fā)酵劑和大蒜精油在抑制組胺形成過程中具有一定作用。

酪胺在食物中引起中毒的劑量范圍為100~800 mg/kg[30],而本實(shí)驗(yàn)8 組熏馬腸樣品只有J組在發(fā)酵結(jié)束時(shí)酪胺的含量最高為117 mg/kg,而且即使在接種發(fā)酵劑或添加大蒜精油的樣品中,酪胺的含量也都在75 mg/kg以上,說明酪胺主要是由屎腸球菌和糞腸球菌等乳酸菌產(chǎn)生的,Pircher等[31]研究也認(rèn)為,酪胺的累積通常與一些污染菌如非發(fā)酵型乳酸菌有關(guān),特別是腸球菌屬;Linares等[32]也曾報(bào)道稱酪胺通常是由一些具有生物胺脫羧酶活性的乳酸菌屬產(chǎn)生的,如彎曲乳桿菌、短乳桿菌等。高濃度的酪胺通常在發(fā)酵階段產(chǎn)生,并且與Parente等[33]報(bào)道相似。在成熟第28天,接種發(fā)酵劑和添加大蒜精油的樣品酪胺平均含量為30 mg/kg,而接種產(chǎn)胺菌組酪胺含量平均在78 mg/kg,都沒超過酪胺在食品中規(guī)定的限量。

通常苯乙胺是伴隨著大量的酪胺出現(xiàn)的[34],有些學(xué)者認(rèn)為苯乙胺是有非特異活性的酪氨酸脫羧酶形成的,而Montel等[35]則報(bào)道稱該胺是由腸球菌和乳酸菌(彎曲乳桿菌、屎腸球菌和糞腸球菌)產(chǎn)生的。由表5中可以看出,原料肉中苯乙胺的含量非常低,說明該生物胺不是內(nèi)源性胺。而大量的苯乙胺的形成是在發(fā)酵結(jié)束第3天時(shí),接種產(chǎn)胺菌組中的苯乙胺含量要顯著高于未接種產(chǎn)胺菌組(P<0.05),經(jīng)對(duì)比發(fā)現(xiàn),大蒜精油對(duì)產(chǎn)胺菌產(chǎn)生物胺的抑制作用要優(yōu)于發(fā)酵劑,而聯(lián)合使用效果最佳。在Gücüko?lu等[16]研究中也證實(shí)了接種發(fā)酵劑能夠阻礙苯乙胺的形成。在成熟結(jié)束后,接種產(chǎn)胺菌平均可產(chǎn)生苯乙胺39.78 mg/kg、酪胺5.35 mg/kg,只添加大蒜精油或接種發(fā)酵劑可使苯乙胺含量分別減少60.88%和68.57%,使酪胺含量分別減少61.31%和57.38%,接種發(fā)酵劑和添加大蒜精油組的熏馬腸中苯乙胺含量在11.55~18.20 mg/kg之間,稍高于Gücüko?lu等[16]的研究結(jié)果,但與Bover-Cid等[36]測(cè)定的苯乙胺在發(fā)酵香腸中的含量5~45 mg/kg相近。

精胺和亞精胺是天然存在的胺類,它們會(huì)經(jīng)常存在于新鮮的肉中。它們既會(huì)出現(xiàn)在用于制作香腸的瘦肉中,也會(huì)存在于脂肪里。并且它們受香腸成熟過程中的影響變化非常小,精胺和亞精胺的含量在加工成熟過程中幾乎保持不變,甚至精胺會(huì)被某些微生物當(dāng)作氮源利用導(dǎo)致含量降低。從表5中可以看出,所有組的熏馬腸樣品中精胺和亞精胺的含量都相當(dāng)?shù)?,而且各組之間的差異性不顯著(P>0.05),說明使用的原料肉中自身所含的精胺和亞精胺就相對(duì)較少。

3 結(jié) 論

將大蒜精油和發(fā)酵劑聯(lián)合使用能夠很好地減少熏馬腸中尸胺、腐胺、組胺、酪胺和苯乙胺的產(chǎn)生,對(duì)控制生物胺在熏馬腸中的含量起到非常顯著的作用。添加大蒜精油可使尸胺和腐胺含量減少75.50%和37.98%;接種發(fā)酵劑并添加大蒜精油尸胺、腐胺和組胺含量平均減少75.56%、70.34%和68.88%。接種產(chǎn)胺菌平均可產(chǎn)生苯乙胺39.78 mg/kg、酪胺5.35 mg/kg;只添加大蒜精油或接種發(fā)酵劑可使苯乙胺含量分別減少60.88%和68.57%,使酪胺含量分別減少61.31%和57.38%;而復(fù)合添加物可苯乙胺和酪胺含量平均減少75.17%和63.30%。

將41 個(gè)樣品進(jìn)行聚類分析共產(chǎn)生276 個(gè)OTU,說明熏馬腸中含有豐富的微生物物種,通過樣品科分類水平中物種分析,得出乳酸菌在熏馬腸整個(gè)加工過程都是優(yōu)勢(shì)菌,而葡萄球菌在成熟后期數(shù)量較多。大蒜精油對(duì)一些腐敗菌如大腸桿菌、假單胞菌具有一定的抑制作用,加之發(fā)酵劑中的乳酸菌迅速產(chǎn)酸,從而減少了生物胺在熏馬腸中的積累。

參考文獻(xiàn):

[1] AYHAN K, KOLSARICI N, ?ZKAN G A. The effects a starter culture on the formation of biogenic amines in Turkish soudjoucks[J]. Meat Science, 1999, 53(3): 183-188. DOI:10.1016/S0309-1740(99)00046-7.

[2] GARAI G, DUE?AS M T, IRASTORZA A, et al. Biogenic amines in natural ciders[J]. Journal of Food Protection, 2006, 69(12): 3006-3012.

[3] SPANO G, RUSSO P, LONVAUD-FUNEL A, et al. Biogenic amines in fermented foods[J]. European Journal of Clinical Nutrition, 2010,64: 95-100. DOI:10.1038/ejcn.2010.218.

[4] ALVAREZ M A, MORENO-ARRIBAS M V. The problem of biogenic amines in fermented foods and the use of potential biogenic amine-degrading microorganisms as a solution[J]. Trends in Food Science & Technology, 2014, 39(2): 146-155. DOI:10.1016/j.tifs.2014.07.007.

[5] MOKHTAR S, MOSTAFA G, TAHA R, et al. Effect of different starter cultures on the biogenic amines production as a critical control point in fresh fermented sausages[J]. European Food Research &Technology, 2012, 235(3): 527-535. DOI:10.1007/s00217-012-1777-9.

[6] LEROY F, VERLUYTEN J, VUYST L D. Functional meat starter cultures for improved sausage fermentation[J]. International Journal of Food Microbiology, 2006, 106(3): 270-285. DOI:10.1016/j.ijfoodmicro.2005.06.027.

[7] ESSID I, HASSOUNA M. Effect of inoculation of selected Staphylococcus xylosus and Lactobacillus plantarum strains on biochemical, microbiological and textural characteristics of a Tunisian dry fermented sausage[J]. Food Control, 2013, 32(2): 707-714.

[8] LU S L, XU X L, ZHOU G H, et al. Effect of starter cultures on microbial ecosystem and biogenic amines in fermented sausage[J]. Food Control, 2010, 21(4): 444-449. DOI:10.1016/j.foodcont.2009.07.008.

[9] LU Shiling, JI Hua, WANG Qingling, et al. The effects of starter cultures and plant extracts on the biogenic amine accumulation in traditional Chinese smoked horsemeat sausages[J]. Food Control,2015, 50: 869-875. DOI:10.1016/j.foodcont.2014.08.015.

[10] 馬宇霞, 盧士玲, 李開雄, 等. 熏馬腸中生物胺氧化酶菌株的篩選與鑒定[J]. 現(xiàn)代食品科技, 2014, 30(5): 49-55. DOI:10.13982/j.mfst.1673-9078.2014.05.002.

[11] FANCO I, PRIETO B, CRUZ J M, et al. Study of the biochemical changes during the processing of Androlla, a Spanish dry-cured pork sausage[J]. Food Chemistry, 2002, 78(2): 339-345. DOI:10.1016/S0308-8146(02)00118-8.

[12] BOZKURT H. Utilization of natural antioxidants: green tea extract and Thymbra spicata oil in Turkish dry-fermented sausage[J]. Meat Science, 2006, 73(3): 442-450. DOI:10.1016/j.meatsci.2006.01.005.

[13] 盧士玲, 李開雄, 徐幸蓮, 等. 傳統(tǒng)香腸中產(chǎn)生物胺腸細(xì)菌和乳酸菌分離方法的研究[J]. 食品與發(fā)酵工業(yè), 2012, 38(8): 47-52.DOI:10.13995/j.cnki.11-1802/ts.2012.08.031.

[14] ELíAS M, CARRASCOSA A V. Characterisation of the Paio do Alentejo, a traditional Portuguese Iberian sausage, in respect to its safety[J]. Food Control, 2010, 21(1): 97-102. DOI:10.1016/j.foodcont.2009.04.004.

[15] SANTIAGO R M, ALBERTO M, MARíA JOSé B, et al. Application of Lactobacillus fermentum HL57 and Pediococcus acidilactici SP979 as potential probiotics in the manufacture of traditional Iberian dryfermented sausages[J]. Food Microbiology, 2011, 28(5): 839-847.DOI:10.1016/j.fm.2011.01.006.

[16] GüCüKO?LU A, ?ZLEM KüPLüLü. The effect of different starter cultures and ripening temperatures on formation of biogenic amine in Turkish fermented sausages[J]. European Food Research &Technology, 2010, 230(6): 875-884. DOI:10.1007/s00217-010-1220-z.

[17] MARTíN A, COLíN B, ARANDA E, et al. Characterization of Micrococcaceae isolated from Iberian dry-cured sausages[J]. Meat Science, 2007, 75(4): 696-708. DOI:10.1016/j.meatsci.2006.10.001.

[18] HUGAS M, GARRIGA M, AYMERICH M T. Functionalty of enterococci in meat products[J]. International Journal of Food Microbiology, 2003, 88: 223-233. DOI:10.1016/S0168-1605(03)00184-3.

[19] SARANTINOPOULOS P, ANDRIGHETTO C, GEORGALAKI M D, et al. Biochemical properties of enterococci relevant to their technological performance[J]. International Dairy Journal, 2001, 11(8):621-647. DOI:10.1016/S0958-6946(01)00087-5.

[20] SIMION A M C, VIZIREANU C, ALEXE P, et al. Effect of the use of selected starter cultures on some quality, safety and sensorial properties of Dacia sausage, a traditional Romanian dry-sausage variety[J]. Food Control, 2014, 35(1): 123-131. DOI:10.1016/j.foodcont.2013.06.047.

[21] LI Miaoyun, TIAN Lu, ZHAO Gaiming, et al. Formation of biogenic amines and growth of spoilage-related microorganisms in pork stored under different packaging conditions applying PCA[J]. Meat Science,2014, 96(2): 843-848. DOI:10.1016/j.meatsci.2013.09.023.

[22] IGNATENKO N A, BESSELSEN D G, ROY U K, et al. Dietary putrescine reduces the intestinal anticarcinogenic activity of sulindac in a murine model of familial adenomatous polyposis[J]. Nutrition &Cancer, 2006, 56(2): 172-181. DOI:10.1207/s15327914nc5602_8.

[23] FILIPPIS F D, PENNACCHIA C, PASQUA R D, et al. Decarboxylase gene expression and cadaverine and putrescine production by Serratia proteamaculans in vitro and in beef[J]. International Journal of Food Microbiology, 2013, 165(3): 332-338. DOI:10.1016/j.ijfoodmicro.2013.05.021.

[24] HALáSZ A, BARáTH á, SIMON-SARKADI L, et al. Biogenic amines and their production by microorganisms in food[J]. Trends in Food Science and Technology, 1994, 5(94): 42-49. DOI:10.1016/0924-2244(94)90070-1.

[25] LADERO V, CALLES-ENRíQUEZ M, FERNáNDEZ M,et al. Toxicological effects of dietary biogenic amines[J].Current Nutrition & Food Science, 2010, 6(2): 145-156.DOI:10.2174/157340110791233256.

[26] ZHANG Qilin, LIN Shenglin, NIE Xiaohua. Reduction of biogenic amine accumulation in silver carp sausage by an amine-negative Lactobacillus plantarum[J]. Food Control, 2013, 32(2): 496-500.DOI:10.1016/j.foodcont.2013.01.029.

[27] 朱志遠(yuǎn). 發(fā)酵劑對(duì)發(fā)酵香腸生物胺含量及理化品質(zhì)的影響研究[D].南京: 南京農(nóng)業(yè)大學(xué), 2009: 18-20. DOI:10.7666/d.Y1762735.

[28] W?HRL S, HEMMER W, FOCKE M, et al. Histamine intolerancelike symptoms in healthy volunteers after oral provocation with liquid histamine[J]. Allergy and Asthma Proceedings, 2004, 25(5): 305-311.[29] RAUSCHER-GABERNIG E, GROSSGUT R, BAUER F, et al.Assessment of alimentary histamine exposure of consumers in Austria and development of tolerable levels in typical foods[J]. Food Control,2009, 20(4): 423-429. DOI:10.1016/j.foodcont.2008.07.011.

[30] VIDAL-CAROU M C, IZQUIERDO-PULIDO M L, MARTíNMORRO M C, et al. Histamine and tyramine in meat products:relationship with meat spoilage[J]. Food Chemistry, 1990, 37(4): 239-249. DOI:10.1016/0308-8146(90)90104-C.

[31] PIRCHER A, BAUER F, PAULSEN P. Formation of cadaverine,histamine, putrescine and tyramine by bacteria isolated from meat,fermented sausages and cheeses[J]. European Food Research &Technology, 2007, 226(1/2): 225-231. DOI:10.1007/s00217-006-0530-7.

[32] LINARES D M, DEL RíO B, LADERO V, et al. Factors influencing biogenic amines accumulation in dairy products[J]. Frontiers in Microbiology, 2012, 3: 180. DOI:10.3389/fmicb.2012.00180.

[33] PARENTE E, MARTUSCELLI M, GARDINI F, et al. Evolution of microbial populations and biogenic amine production in drysausages produced in Southern Italy[J]. Journal of Applied Microbiology, 2001,90(6): 882-891. DOI:10.1016/0008-6215(96)00070-5.

[34] KURT S, ZORBA O. Biogenic amine formation in Turkish dry fermented sausage (sucuk) as affected by nisin and nitrite[J]. Journal of the Science of Food & Agriculture, 2010, 90(15): 2669-2674.DOI:10.1002/jsfa.4138.

[35] MONTEL M C, MASSON F, TALON R. Comparison of biogenic amine content in traditional and industrial French dry sausages[J].Sciences des Aliments, 1999, 19(2): 247-254.

[36] BOVER-CID S, IZQUIERDO-PULIDO M, VIDAL-CAROU M C.Mixed starter cultures to control biogenic amine production in dry fermented sausages[J]. Journal of Food Protection, 2000, 63(11):1556-1562. DOI:10.4315/0362-028X-63.11.1556.

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