陳 超,張延慧,王明卉,許 勝,劉翠云,李培峰,王 昆
阿霉素(doxorubicin,DOX)是屬蒽環(huán)類抗腫瘤抗生素。作為化療藥物廣泛用于治療各種腫瘤,臨床上多用于治療乳腺癌、淋巴瘤、肺癌、白血病等多種惡性腫瘤[1]。然而,限制其臨床應(yīng)用的主要因素是化學(xué)治療中發(fā)揮抗腫瘤作用的同時(shí)帶來的心臟毒性,其劑量的增加和積累會(huì)導(dǎo)致更為嚴(yán)重的且不可逆的各種擴(kuò)張性心肌病以及充血性心力衰竭。雖然一些研究表明DOX是心肌細(xì)胞凋亡的關(guān)鍵刺激因素,但迄今為止,未能找到有效治療DOX誘發(fā)的心臟毒性和心力衰竭的方法[2]。因此,研究和了解這一過程所依賴的分子機(jī)制是非常重要的,揭示DOX誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞凋亡機(jī)制將為降低心臟毒性和保護(hù)心臟功能提供新的途徑。
長鏈非編碼RNA(long non-coding RNA,lncRNA)是一類長度大于200 bp且缺乏蛋白質(zhì)編碼功能的RNA。越來越多的研究發(fā)現(xiàn)lncRNA在基因組印記、X染色體沉默以及核內(nèi)運(yùn)輸、轉(zhuǎn)錄激活、轉(zhuǎn)錄干擾、染色質(zhì)修飾等多種重要的調(diào)控過程中扮演重要角色[3]。近年來的研究證實(shí)lncRNA可能作為治療的潛在靶點(diǎn)在心臟再生和修復(fù)中起重要作用[4]。本研究采用lncRNAs基因芯片篩選表達(dá)差異明顯的lncRNAs進(jìn)行實(shí)時(shí)定量PCR驗(yàn)證。
線粒體對(duì)細(xì)胞的生命和死亡起著重要的作用[5]。線粒體的融合和裂變已被確定為DOX誘導(dǎo)心臟細(xì)胞損傷的主要因素之一[6]。51 kDa的線粒體動(dòng)力學(xué)蛋白、MIEF1基因在調(diào)節(jié)線粒體形態(tài)中起重要作用。據(jù)報(bào)道,敲除MIEF1可降低Drp1的結(jié)合并增強(qiáng)線粒體融合[7],另有報(bào)道也發(fā)現(xiàn)MIEF1起到增強(qiáng)線粒體融合作用[8]。然而,目前尚不清楚MIEF1是否參與了DOX治療對(duì)心肌細(xì)胞線粒體動(dòng)力學(xué)的調(diào)控。
1.1 藥品與試劑 C57BL/6J小鼠購自濟(jì)南朋悅實(shí)驗(yàn)動(dòng)物繁育有限公司[SCXK-(魯)-2014-0007];昆明小鼠乳鼠購自濟(jì)南朋悅實(shí)驗(yàn)動(dòng)物繁育有限公司[SCXK-(魯)-2014-0007];鹽酸阿霉素(上海阿拉丁生化科技股份有限公司);MIEF1抗體(英國Gibico公司);內(nèi)參β-actin抗體(武漢博士德公司);二抗山羊抗兔(北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司);山羊抗小鼠(北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司,商品編號(hào):ZF-0312);RR820A takara SYBR?Premix Ex TaqTMⅡ(Tli RNaseH Plus)(日本TaKaRa公司);DMEM培養(yǎng)基(英國Gibico公司);胎牛血清(英國Gibico公司);胰蛋白酶和Ⅱ型膠原酶(日本TaKaRa公司);TRIzol試劑盒(日本TaKaRa公司);RNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒(日本TaKaRa公司);LipofectamineTM2000(美國Invitrogen公司);放射免疫沉淀法裂解液(北京索萊寶公司);增強(qiáng)化學(xué)發(fā)光液(德國Milli-pore公司),western-抗二抗去除液(杭州昊鑫生物科技股份有限公司)。
1.2 實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè) 根據(jù)篩選出的差異表達(dá)lncRNAs基因,對(duì)研究中上調(diào)最為明顯的lncRNA,NONMMUT071802,我們命名為心肌細(xì)胞凋亡因子(cardiac apoptosis factor,CAF)進(jìn)行實(shí)時(shí)定量PCR驗(yàn)證。分別檢測(cè)正常對(duì)照組和DOX處理組總RNA中l(wèi)ncRNA CAF含量。具體實(shí)驗(yàn)方法:采用合適方法提取細(xì)胞總RNA,將提取好的總RNA從-80℃冰箱取出,對(duì)總RNA使用miRcute mi-RNA First-Strandc DNA Synthesis Kit試劑盒合成第一鏈cDNA。然后對(duì)已經(jīng)合成的cDNA使用RR820A takara SYBR?Premix Ex TaqTMⅡ(Tli RNaseH Plus)試劑盒進(jìn)行Real-Time PCR System qPCR反應(yīng)檢測(cè)。最后使用ABI7900熒光定量PCR儀進(jìn)行定量PCR檢測(cè)。上述實(shí)驗(yàn)均重復(fù)3次。
1.3 載體的構(gòu)建 使用PCR擴(kuò)增lncRNA CAF全長,將擴(kuò)增后的lncRNA CAF全長雙酶切連接至pcDNA3.1(-)載體的EcoRI和XhoI之間,構(gòu)建過表達(dá)pcDNA3.1(-)-CAF;按照RNA干擾序列設(shè)計(jì)原則結(jié)合慢病毒載體質(zhì)粒pLKO.1-puro結(jié)構(gòu)的特征設(shè)計(jì)合成shRNA序列,通過分子克隆技術(shù)構(gòu)建lncRNA CAF的RNA干擾慢病毒載體pLKO.1-CAF-shRNA,酶切位點(diǎn)為AgeI和EcoRI。轉(zhuǎn)化DH5α大腸桿菌后,挑取陽性克隆子進(jìn)行質(zhì)粒抽提電泳及測(cè)序鑒定。
1.4 實(shí)驗(yàn)分組
1.4.1 動(dòng)物分組及給藥 參考相關(guān)文獻(xiàn),建立慢性DOX心臟毒性模型[9-10],具體如下:將12只C57BL/6J小鼠隨機(jī)分成2組:實(shí)驗(yàn)組6只,腹腔注射DOX 5 mg/kg,1周1次,連續(xù)注射4周;同時(shí)設(shè)立等劑量生理鹽水注射對(duì)照組6只,同一時(shí)間每周注射。4周后行心臟超聲檢測(cè),評(píng)估小鼠心功能狀態(tài);同時(shí)處死小鼠,取出左心室心肌標(biāo)本。取小鼠心肌組織于-80 ℃中保存,用于后續(xù)基于MIEF1的基因和蛋白表達(dá)水平的檢測(cè)。
1.4.2 細(xì)胞分組 根據(jù)實(shí)驗(yàn),共分為pcDNA3.1(-)空載對(duì)照組、pcDNA3.1(-)-CAF組、pLKO.1空載對(duì)照組和pLKO.1-CAF-shRNA(CAF-siRNA)組。
1.5 超聲心動(dòng)觀察 用4%水合氯醛以0.1 mL/10g劑量腹腔注射麻醉,脫毛后將小鼠仰臥位固定于加溫的檢查臺(tái),連接心電圖電極。
1.6 小鼠體重和心室質(zhì)量稱重 每次注射藥物注射后稱量體重(body weight,BW),取第一周稱重和第四周稱重分別為初重和終重。處死小鼠后,立即取出心臟,置于冷生理鹽水中洗去血液,濾紙吸干水分,測(cè)心室質(zhì)量(ventricular weight,VW),并計(jì)算VW/BW的比值。
1.7 乳鼠心肌細(xì)胞培養(yǎng) 用75%酒精浸泡1~3 d齡昆明小鼠乳鼠,消毒2次,無菌操作下取出心臟,用預(yù)冷的磷酸鹽緩沖液沖洗2遍。于滅菌超凈臺(tái)中用眼科剪取心尖大部放入盛有1×ADS buffer的小平皿中,并放在冰臺(tái)上清洗3次后剪刀剪碎并用混合酶液(膠原酶:10 mg/mL,胰液素:30 mg/mL)消化,所提取的細(xì)胞置于含有5%胎牛血清DMEM/F12培養(yǎng)基中,種于6孔板,細(xì)胞濃度調(diào)到(0.5~1)×105/mL。差速貼壁2 h后更換新的培養(yǎng)基,放入37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱。
1.8 細(xì)胞轉(zhuǎn)染 將6孔板中生長狀態(tài)良好的乳鼠心肌細(xì)胞用Lipofectamine2000將pcDNA3.1(-)空載、pcDNA3.1(-)-CAF、pLKO.1空載和pLKO.1-CAF-shRNA(CAF-siRNA)轉(zhuǎn)入細(xì)胞中。分別為pcDNA3.1(-)空載對(duì)照組、pcDNA3.1(-)-CAF組以及pLKO.1空載對(duì)照組和pLKO.1-CAF-shRNA(CAF-siRNA)組。置37 ℃、5%CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱孵育,24 h后提取細(xì)胞產(chǎn)物。
1.9 qRT-PCR檢測(cè)MIEF1基因的表達(dá) 組織樣本:取100 mg心肌組織樣本加1 mL TRIzol試劑冰上研磨裂解細(xì)胞;細(xì)胞樣本:細(xì)胞轉(zhuǎn)染24 h后用TRIzol試劑裂解細(xì)胞(6孔板每孔加1 mL TRIzol試劑)。細(xì)胞裂解后用TaKaRa逆轉(zhuǎn)錄試劑盒逆轉(zhuǎn)錄成cDNA。用ABI StepOne實(shí)時(shí)PCR系統(tǒng)進(jìn)行反應(yīng)擴(kuò)增。反應(yīng)條件:95 ℃ 5 min、95 ℃10 s、60 ℃ 30 s共34個(gè)循環(huán),實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。以β-actin作為內(nèi)參,2-ΔΔCt法計(jì)算mRNA的相對(duì)表達(dá)量。RT-qPCR引物序列見表1。
表1 RT-qPCR引物序列
1.10 蛋白印跡法檢測(cè)蛋白表達(dá) 組織樣本:每組取3只小鼠心室標(biāo)本以100 ug/mL TRIzol分別行組織勻漿,組織裂解液裂解,提取上清液,BCA法行總蛋白定量,測(cè)量蛋白濃度后取等量蛋白質(zhì)樣品(40 μg/孔)進(jìn)行十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳,再將凝膠轉(zhuǎn)移到PVDF膜上,5%脫脂奶粉封閉 1 h后加入MIEF1的兔 -多克隆抗體(1∶1 000),室溫孵育2 h后用TBST緩沖液(NaCl 8.5 g/L、Tris 6.05 g/L、Tween20 1 mL/L,pH=7.45)洗膜,HRP-山羊抗兔IgG 的二抗 (1 ∶2 000)孵育1.5 h,增強(qiáng)化學(xué)發(fā)光法檢測(cè),X線顯影。掃描并保存圖像后,用western一抗二抗去除液清洗PVDF膜后重新進(jìn)行封閉,加入β-actin的小鼠多克隆抗體(1:2 000)及HRP-山羊抗小鼠IgG 的二抗 (1 ∶2 000)孵育,顯影后保存影像并以β-actin表達(dá)作內(nèi)參分析結(jié)果。
細(xì)胞樣本:細(xì)胞轉(zhuǎn)染48 h后,用蛋白裂解液裂解細(xì)胞提取總蛋白,后續(xù)操作同組織樣本中總蛋白的提取。
2.1 小鼠體重與心臟重量的變化 正常對(duì)照組BW明顯增加,而實(shí)驗(yàn)組BW明顯降低,2者有顯著差異(P<0.05),2組VW相比無顯著差異,而實(shí)驗(yàn)組VW/BW明顯增加,和正常對(duì)照組比較有顯著差異(n=6;P<0.05,表2)。
表2 注射藥物4周后2組BW、VW及VW/BW
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05
2.2 小鼠心臟功能檢測(cè) DOX處理組(圖1B)小鼠心臟超聲心動(dòng)波形圖與對(duì)照組(圖1A)相比,振幅降低,頻率略有減少,心室容積下降,其心功能下降明顯。
圖1 小鼠超聲心動(dòng)圖
2.3 差異表達(dá)明顯的lncRNA CAF行RT-PCR驗(yàn)證 2 μmol/L DOX處理24 h后,DOX組lncRNA CAF的表達(dá)水平明顯高于對(duì)照組(P<0.01,圖2)。
注:與對(duì)照組比較,n=4;*P<0.01圖2 2 μmol/L DOX處理的心肌細(xì)胞中 lncRNA CAF的表達(dá)量
2.4 DOX對(duì)心肌細(xì)胞內(nèi)MIEF1的抑制作用
2.4.1 心臟毒性模型中各組MIEF1的表達(dá)水平經(jīng)5 mg/kg濃度DOX體外注射4周后,每組取3只小鼠的心室標(biāo)本做MIEF1實(shí)驗(yàn)的基因表達(dá)量檢測(cè)。RT-PCR結(jié)果顯示DOX誘導(dǎo)的心臟毒性模型組中MIEF1在基因水平上的表達(dá)量低于對(duì)照組(n=3;t=14.978,因P<0.01,圖3)。每組取4只小鼠的心室標(biāo)本做MIEF1的蛋白水平表達(dá)量檢測(cè)。蛋白印跡法檢測(cè)結(jié)果顯示DOX處理組中基因MIEF1在蛋白質(zhì)水平上的表達(dá)量都低于對(duì)照組(n=4;t=8.47,P<0.01,圖4)。
注:與對(duì)照組比較,n=3;*P<0.01圖3 DOX心臟毒性模型中MIEF1的基因表達(dá)量變化
圖4 DOX心臟毒性模型中MIEF1的蛋白表達(dá)量變化
2.4.2 小鼠原代心肌細(xì)胞中的各組MIEF1的表達(dá)水平 2 μmol/L、4 μmol/L、6 μmol/L DOX處理24 h后,小鼠原代心肌細(xì)胞每組中基因MIEF1在基因水平上的表達(dá)量都低于對(duì)照組,并且其表達(dá)量呈明顯的梯度遞減(n=4;t2 μmol/L=33.423,P<0.01;t4 μmol/L=36.120,P<0.01;t6 μmol/L=40.205,P<0.01,圖5),蛋白印跡法檢測(cè)結(jié)果顯示小鼠原代心肌細(xì)胞中2 μmol/L DOX處理組中基因MIEF1在蛋白質(zhì)水平上的表達(dá)量都低于對(duì)照組(n=4,P<0.05,圖6)。
注:2 μmol/L DOX組與對(duì)照組比較,n=4;*P<0.01; 4 μmol/L DOX組與對(duì)照組比較,n=4;**P<0.01; 6 μmol/L DOX組與對(duì)照組比較,n=4;***P<0.01圖5 不同濃度的DOX對(duì)小鼠原代心肌細(xì)胞表達(dá)量的變化
圖6 2 μmol/L DOX處理的乳鼠心肌細(xì)胞中MIEF1 的蛋白表達(dá)量變化
2.5 小鼠原代心肌細(xì)胞中CAF對(duì)MIEF1基因表達(dá)水平的影響 pcDNA3.1(-)-CAF過表達(dá)組MIEF1的表達(dá)水平明顯低于對(duì)照組(n=4;t=12.909,P<0.01);si-lncRNA組細(xì)胞的MIEF1表達(dá)水平明顯高于NC組(n=4;t=33.634,P<0.01,圖7)。
注:與對(duì)照組比較,n=4;*P<0.01;n=4;**P<0.01圖7 乳鼠心肌細(xì)胞內(nèi)MIEF1的mRNA水平相對(duì)表達(dá)
2.6 小鼠原代心肌細(xì)胞中CAF對(duì)MIEF1蛋白表達(dá)水平的影響 2 μmol/L DOX處理24 h后,pcDNA3.1(-)-lncRNA過表達(dá)組MIEF1的表達(dá)明顯低于NC組(P<0.05),si-lncRNA組中MIEF1的表達(dá)明顯高于對(duì)照組(P<0.05,圖8)。
注:與對(duì)照組比較,n=4;*P<0.01;n=4;**P<0.01圖8 MIEF1在各組中的表達(dá)
DOX是一種用于癌癥化療的有效藥物,然而,DOX的使用受到其副作用的極大限制。DOX在許多方面對(duì)細(xì)胞的存活是惡性的,包括誘導(dǎo)DNA損傷、增加活性氧生成和線粒體過激活[1,11]。心臟似乎是最易感的組織[12],DOX誘導(dǎo)的心臟毒性通常在臨床實(shí)踐中構(gòu)成挑戰(zhàn)。探索和揭示DOX心臟毒性的潛在機(jī)制可能在癌癥治療中具有突破性的發(fā)現(xiàn),然而,DOX心臟毒性的確切機(jī)制仍然在很大程度上是未知的。許多研究表明凋亡在確定心肌細(xì)胞的命運(yùn)方面起重要作用[13]。據(jù)報(bào)道,DOX已被證明能激活胱天蛋白酶并誘導(dǎo)心肌細(xì)胞凋亡[14-15]。DOX還可以增加氧化劑產(chǎn)生并誘導(dǎo)心肌細(xì)胞凋亡,最終導(dǎo)致心肌病[16]。DOX也可能導(dǎo)致心肌細(xì)胞中caspase依賴性凋亡[17]。DOX誘導(dǎo)的心臟損傷與心臟氧化應(yīng)激增加密切相關(guān),抗氧化劑水平降低[18]。
線粒體是不斷進(jìn)行裂變和融合并在心肌細(xì)胞中形成動(dòng)態(tài)網(wǎng)絡(luò)的移動(dòng)細(xì)胞器[19],線粒體融合產(chǎn)生長線粒體小管,而裂變導(dǎo)致小圓囊泡[20],線粒體的功能障礙與心臟毒性有關(guān),已被確定為DOX誘導(dǎo)心臟亞細(xì)胞損傷的主要靶點(diǎn)之一[6],線粒體形態(tài)動(dòng)態(tài)可影響細(xì)胞凋亡[21]。因此,保持線粒體完整性對(duì)于維持能量產(chǎn)生和防止細(xì)胞凋亡至關(guān)重要。線粒體不斷經(jīng)歷融合和裂變,這是維持細(xì)胞器保真所必需的[22]。線粒體裂隙的抑制增強(qiáng)心肌細(xì)胞的功能[23],線粒體裂變受線粒體裂變蛋白激酶相關(guān)蛋白1(Drp1)調(diào)控[24],在線粒體裂變過程中,Drp1聚合并在收縮位點(diǎn)環(huán)化[25],而抑制Drp1可減輕心肌細(xì)胞線粒體裂隙[26]。MIEF1和MIEF2都是線粒體外膜蛋白[27],研究發(fā)現(xiàn),敲除MIEF2抑制DOX誘導(dǎo)的線粒體分裂,抑制原代心肌細(xì)胞的凋亡以及小鼠的心臟毒性,揭示了由Foxo3a和MIEF2組成的調(diào)節(jié)DOX心臟毒性的新途徑[28]。
lnc-RNA在心臟發(fā)育和功能維持中具有重要作用。越來越多的研究表明lnc-RNA在冠心病[29]、先天性心臟病[30]、心肌疾病[31]、心肌肥厚、心肌纖維化以及心力衰竭等方面中發(fā)揮著重要作用。目前為止,lnc-RNA在DOX誘導(dǎo)的心臟毒性上的研究在很大程度上仍然是未知的,值得我們研究。
本研究首次證明lncRNA CAF介導(dǎo)的MIEF1參與DOX心臟毒性的調(diào)節(jié),研究結(jié)果將為DOX心臟毒性分子機(jī)制的研究提供新的見解。本研究揭示了MIEF1和lncRNA CAF在DOX誘導(dǎo)的心臟毒性中的作用,而lncRNA CAF和MIEF1將是有希望的治療靶點(diǎn),這一發(fā)現(xiàn)為治療心臟保護(hù)提供了治療策略。
【參考文獻(xiàn)】
[1]Octavia Y,Tocchetti CG,Gabrielson KL,et al.Doxorubicin-induced cardiomyopathy:from molecular mechanisms to therapeutic strategies[J].J Mol Cell Cardiol,2012,52(6):1213-1225.
[2]Neilan TG,Blake SL,Ichinose F,et al.Disruption of nitric oxide synthase 3 protects against the cardiac injury,dysfunction,and mortality induced by doxorubicin[J].Circulation,2007,116(5):506-514.
[3]Quinn JJ,Chang HY.Unique features of long non-coding RNA biogenesis and function[J].Nat Rev Genet,2016,17(1):47-62.[4]Rotini A,Martínez-Sarrà E,Pozzo E,et al.Interactions between microRNAs and long non-coding RNAs in cardiac development and repair[J].Pharmacol Res,2018,127:58-66.
[5]Archer SL.Mitochondrial dynamics--mitochondrial fission and fusion in human diseases[J].N Engl J Med,2013,369(23):2236-2251.
[6]Suliman HB,Carraway MS,Ali AS,et al.The CO/HO system reverses inhibition of mitochondrial biogenesis and prevents murine doxorubicin cardiomyopathy[J].J Clin Invest,2007,117(12):3730-3741.
[7]Osellame LD,Singh AP,Stroud DA,et al.Cooperative and independent roles of the Drp1 adaptors Mff,MiD49 and MiD51 in mitochondrial fission[J].J Cell Sci,2016,129(11):2170-2181.
[8]Zhao J,Liu T,Jin S,et al.Human MIEF1 recruits Drp1 to mitochondrial outer membranes and promotes mitochondrial fusion rather than fission[J].EMBO J,2011,30(14):2762-2778.
[9]Fisher PW,Salloum F,Das A,et al.Phosphodiesterase-5 inhibition with sildenafil attenuates cardiomyocyte apoptosis and left ventricular dysfunction in a chronic model of doxorubicin cardiotoxicity[J].Circulation,2005,111(11):1601-1610.
[10]Wang JX,Zhang XJ,Feng C,et al.MicroRNA-532-3p regulates mitochondrial fission through targeting apoptosis repressor with caspase recruitment domain in doxorubicin cardiotoxicity[J].Cell Death Dis,2015,6:e1677.
[11]Zhang T,Zhang Y,Cui M,et al.CaMKII is a RIP3 substrate mediating ischemia-and oxidative stress-induced myocardial necroptosis[J].Nat Med,2016,22(2):175-182.
[12]Buzdar AU,Marcus C,Smith TL,et al.Early and delayed clinical cardiotoxicity of doxorubicin[J].Cancer,1985,55(12):2761-2765.
[13]Adameova A,Goncalvesova E,Szobi A,et al.Necroptotic cell death in failing heart:relevance and proposed mechanisms[J].Heart Fail Rev,2016,21(2):213-221.
[14]Negoro S,Oh H,Tone E,et al.Glycoprotein 130 regulates cardiac myocyte survival in doxorubicin-induced apoptosis through phosphatidylinositol 3-kinase/Akt phosphorylation and Bcl-xL/caspase-3 interaction[J].Circulation,2001,103(4):555-561.
[15]Khouri MG,Douglas PS,Mackey JR,et al.Cancer therapy-induced cardiac toxicity in early breast cancer:addressing the unresolved issues[J].Circulation,2012,126(23):2749-2763.
[16]Nozaki N,Shishido T,Takeishi Y,et al.Modulation of doxorubicin-induced cardiac dysfunction in toll-like receptor-2-knockout mice[J].Circulation,2004,110(18):2869-2874.[17]Wang S,Konorev EA,Kotamraju S,et al.Doxorubicin in-duces apoptosis in normal and tumor cells via distinctly di-fferent mechanisms intermediacy of H(2)O(2)- and p53-dependent pathways[J].J Biol Chem,2004,279(24):25535-25543.
[18]Kim SY,Kim SJ,Kim BJ,et al.Doxorubicin-induced reactive oxygen species generation and intracellular Ca2+increase are reciprocally modulated in rat cardiomyocytes[J].Exp Mol Med,2006,38(5):535-545.
[19]Chan DC.Mitochondria:dynamic organelles in disease,aging, and development[J].Cell,2006,125(7):1241-1252.
[20]van der Bliek AM,Shen Q,Kawajiri S.Mechanisms of mitochondrial fission and fusion[J].Cold Spring Harb Perspect Biol,2013,5(6):a011072.
[21]Hom J,Sheu SS.Morphological dynamics of mitochondria--a special emphasis on cardiac muscle cells[J].J Mol Cell Cardiol,2009,46(6):811-820.
[22]Chen Y,Liu Y,Dorn GW.Mitochondrial fusion is essential for organelle function and cardiac homeostasis[J].Circ Res,2011,109(12):1327-1331.
[23]Givvimani S,Pushpakumar SB,Metreveli N,et al.Role of mitochondrial fission and fusion in cardiomyocyte contractility[J].Int J Cardiol,2015,187:325-333.
[24]Jagasia R,Grote P,Westermann B,et al.DRP-1-mediated mitochondrial fragmentation during EGL-1-induced cell death in C.elegans[J].Nature,2005,433(7027):754-760.
[25]Rosenbloom AB,Lee SH,To M,et al.Optimized two-color super resolution imaging of Drp1 during mitochondrial fission with a slow-switching Dronpa variant[J].Proc Natl Acad Sci USA,2014,111(36):13093-13098.
[26]Ikeda Y,Shirakabe A,Maejima Y,et al.Endogenous Drp1 mediates mitochondrial autophagy and protects the heart against energy stress[J].Circ Res,2015,116(2):264-278.
[27]Palmer CS,Osellame LD,Laine D,et al.MiD49 and MiD51, new components of the mitochondrial fission machinery[J].EMBO Rep,2011,12(6):565-573.
[28]Zhou L,Li R,Liu C,et al.Foxo3a inhibits mitochondrial fission and protects against doxorubicin induced cardiotoxicity by suppressing MIEF2[J].Free Radic Biol Med,2017,104:360-370.
[29]Bochenek G,H?sler R,El Mokhtari NE,et al.The large non-coding RNA ANRIL, which is associated with atherosclerosis,periodontitis and several forms of cancer,regulates ADIPORI,VAMP3 and C1lORFl0[J].Hum Mol Genet,2013,22(22):4516-4527.
[30]Carrion K,Dyo J,Patel V,et al.The long non-coding HOTAIR is modulated by cyclic stretch and WNT/β-CATENIN in human aortic valve cells and is a novel repressor of calcification genes[J].PLoS One,2014,9(5):e96577.
[31]Colley SM,Leedman PJ.Steroid receptor RNA activator-a nuclear receptor coregulator with multiple partners:insights and challenges [J].Bioehimie,2011,93(11):1966-1972.