国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

建立SCID鼠增生性瘢痕模型的實驗研究

2018-04-09 03:25錢進鄧辰亮楊松林鄭江紅
組織工程與重建外科雜志 2018年1期
關(guān)鍵詞:厚皮皮片組織學(xué)

錢進 鄧辰亮 楊松林 鄭江紅

增生性瘢痕(Hypertrophic scars,HS)是外傷、燒傷和手術(shù)后,皮膚損傷處經(jīng)過一系列復(fù)雜的炎癥反應(yīng)及病理性纖維化過程而產(chǎn)生的,其組織學(xué)特點是大量炎性細(xì)胞及生長因子浸潤、新生血管大量形成、細(xì)胞外基質(zhì)(ECM)過度堆積,膠原沉積及形態(tài)重塑、肌成纖維細(xì)胞形成等[1-3]。HS表現(xiàn)為高出皮面、充血狀、質(zhì)地實韌的紅色或暗紅色皮損,伴有局部疼痛瘙癢,其特點是病變范圍不超過原損傷范圍。盡管增生性瘢痕屬于良性病變[1,3-4],但由于影響美觀,關(guān)節(jié)部位的瘢痕還可影響關(guān)節(jié)活動,而且容易復(fù)發(fā),因此是臨床上亟待解決的一大難題[5]。

增生性瘢痕治療手段主要有壓迫療法、瘢痕內(nèi)藥物注射治療、激光治療、生物敷料輔助治療及手術(shù)治療等[6-8]。由于病因尚未明確,因此缺乏針對性的治療手段。由于種屬間的差異,實驗研究中缺乏一種病理特征完全相同的動物模型[9-10]。本實驗嘗試在重癥聯(lián)合免疫缺陷鼠(SCID鼠)背部移植人類刃厚皮片,建立SCID鼠增生性瘢痕模型,并驗證該模型的可行性,以期進一步揭示增生性瘢痕的發(fā)病機制。

1 材料和方法

1.1 實驗材料

4周齡SCID小鼠30只(上海市腫瘤研究所),雌性,體質(zhì)量 18~23 g,為 T、B 淋巴細(xì)胞缺陷(BABL/c同源近交的突變系);人類移植皮膚來源于臨床腹壁整形術(shù)切除皮膚,術(shù)前征得患者知情同意。

1.2 實驗方法

1.2.1人類刃厚皮片切取

將手術(shù)切除的人類皮膚組織,經(jīng)75%乙醇消毒后,用滾軸取皮刀取下刃厚皮片,厚度約0.3 mm,修剪成1.5 cm×1.0 cm的皮片,用生理鹽水紗布包裹,放入無菌標(biāo)本盒中,置于-4℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2.2刃厚皮片移植

小鼠隨機分組,實驗組20只,對照組10只。腹腔麻醉,實驗組小鼠背部剪去1.5 cm×1.0 cm的皮膚,注意保留皮下毛細(xì)血管網(wǎng)完整,移植人刃厚皮片,凡士林紗布覆蓋并以縫線固定,無菌紗布加壓包扎。對照組形成創(chuàng)面后直接覆蓋凡士林紗布,同樣方法固定包扎。術(shù)后,同樣條件下分籠飼養(yǎng),10 d后拆線,暴露術(shù)區(qū)。

1.2.3觀察術(shù)區(qū)移植物大體變化

術(shù)后10 d觀察瘢痕顏色、質(zhì)地、面積等變化,并拍照記錄,隨機選擇5只每周測量大體瘢痕厚度。

1.2.4模型瘢痕組織學(xué)檢測

術(shù)后2周、4周時,取下類瘢痕組織標(biāo)本,10%福爾馬林液固定24 h,制成石蠟標(biāo)本,切片(5μm厚),分別進行HE染色和Masson's染色,鏡下觀察①瘢痕組織形態(tài)特點②新生血管生成情況③膠原形態(tài)及排列情況。

1.2.5瘢痕模型4-羥脯胺酸含量測定

參照Tejiram等[11]的方法,在術(shù)后4周時分別取實驗組(5只)、對照組(2只)的標(biāo)本組織,磨成勻漿,與4N鹽酸溶液混勻后100℃酸解18 h,緩沖液清洗后超速離心,冷卻過濾后制成樣液,然后用比色法測定樣液中的羥脯胺酸含量(μg/mg),標(biāo)準(zhǔn)曲線由波長(558±2)nm處吸光值繪制而成。

1.2.6檢測瘢痕模型組織中細(xì)胞因子的表達

RT-PCR測定TGF-β1和CTGF的表達情況。參考Wang等[12]的方法,術(shù)后2周、4周時分別取實驗組(5只)、對照組(2只)標(biāo)本,磨成勻漿,用 DNA酶降解1 h以去除DNA雜質(zhì)干擾,離心提取mRNA。引物序列:TGF-β1(正)5'-TGTTAAAACTGGCATCTGA-3'、(反)5'-GTCtCTTAGGAAGTAGGT-3'; CTGF(正)5'-GAGTGTGCACTGCCAAAGAT-3'、(反)5'-GGCAAGTGCATTGGTATTTG-3'。合成初級cDNA后按照如下條件循環(huán)擴增:95℃下變性10 min,間隔15 s,擴增40次,然后在60℃下退火引物鏈結(jié)合,間隔60 s。將PCR產(chǎn)物電泳30 min后觀察結(jié)果,表達水平記錄為實驗組與對照組的比值。

1.3 數(shù)據(jù)分析

所有數(shù)據(jù)以(x±s)表示,采用單因素方差檢驗,Excel統(tǒng)計數(shù)據(jù),P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 瘢痕模型形態(tài)學(xué)變化

術(shù)后10 d拆線后,實驗組皮片顏色暗紅、質(zhì)地柔軟;術(shù)后2周時,實驗組2只小鼠皮片顏色逐漸變?yōu)楹谏?,干燥,結(jié)痂脫落;其余小鼠皮片周圍逐漸隆起,有灰褐色邊界,整個皮片顏色逐漸變?yōu)榭Х壬?,表皮結(jié)痂,約30 d后痂皮逐漸脫落,瘢痕樣組織逐漸隆起,高出皮面,呈淡紅褐色,質(zhì)地偏硬,充血狀;術(shù)后8周時,瘢痕逐漸收縮,顏色呈深褐色。對照組小鼠皮膚自行愈合結(jié)痂,長期存活,20 d后結(jié)痂脫落,皮膚與周圍皮膚無差異。實驗組大體組織厚度明顯增加,術(shù)后2周、4周時分別增加(20.2%±4.3%)、(25.1%±3.5%);術(shù)后8周時有所下降,但仍較原組織增加了(22.6%±3.2%)(P<0.05)(圖 1、圖 3A)。

2.2 瘢痕模型組織學(xué)變化

術(shù)后4周的標(biāo)本HE染色后,鏡下可見真皮層增厚,皮膚附屬器結(jié)構(gòu)改變,毛囊減少,部分層次不連續(xù),新生血管形成,類瘢痕組織厚度較對照組明顯增加。Masson's染色結(jié)果顯示膠原排列紊亂,膠原束較細(xì),呈結(jié)節(jié)狀或旋渦狀分布(圖2)。

2.3 瘢痕模型組織總羥脯胺酸含量上調(diào)

羥脯胺酸的含量能夠反映組織中膠原的含量。術(shù)后4周時實驗組平均羥脯胺酸含量(52±9)μg/mg,較對照組(37±7)μg/mg明顯增加(P<0.05)(圖 3B)。

2.4 瘢痕模型中TGF-β1與CTGF表達上調(diào)

TGF-β1和CTGF在瘢痕形成過程中共同調(diào)節(jié)纖維化過程[13]。RT-PCR結(jié)果顯示,術(shù)后2周和4周時,TGF-β1 mRNA表達水平較對照組明顯提高(P<0.01);CTGF的變化和TGF-β1相似,實驗組亦較對照組明顯提高(P<0.01)(圖 3C、D)。

圖1 移植皮片后瘢痕模型大體觀察Fig.1 Gross observation of scar model after skin graft

圖2 移植皮片后瘢痕模型組織學(xué)觀察Fig.2 Histological observation of scar model after skin graft

圖3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計Fig.3 Data statistics

3 討論

HS的主要病理特點為過度的炎癥反應(yīng)及病理性纖維化過程[2,14]。大量研究表明,過度的炎癥反應(yīng)會阻礙創(chuàng)面的正常愈合,并且炎癥細(xì)胞可導(dǎo)致正常纖維化過程紊亂,從而導(dǎo)致病理性纖維化。因此,在病程早期,HS組織學(xué)上表現(xiàn)為炎性細(xì)胞的大量浸潤及新生血管形成,而隨著病程推移,則表現(xiàn)為纖維化過程的紊亂,細(xì)胞外基質(zhì)的沉積,尤其是Ⅰ型膠原的沉積[2,15]。但是,進一步的研究受制于理想動物模型的缺乏,許多動物模型嘗試移植人類瘢痕,但由于只局限于終末期瘢痕的纖維化改變,而不包括對瘢痕形成初始影響因素的研究,因此這類模型存在很大的局限性[9]。

迄今為止,比較理想的動物模型有以下幾種。Morris等[16]首先建立了兔耳瘢痕模型,該模型在兔耳表面制造深達軟骨膜毛細(xì)血管網(wǎng)的創(chuàng)面,通過軟骨表面愈合形成瘢痕組織,但兔耳皮膚層次中缺乏皮下組織層,與人類皮膚結(jié)構(gòu)存在明顯差異[17-18]。Zhu等[19]報道了紅色Duroc豬背部深層次創(chuàng)面通過瘢痕樣組織修復(fù),盡管豬皮膚解剖結(jié)構(gòu)與人類最為相似,但所形成的類瘢痕組織在形態(tài)學(xué)上表現(xiàn)為低平緊縮,而不是人HS那樣潮紅充血,高出皮面[20-22]。Yang等[23]建立了裸鼠表面移植人全厚皮片的瘢痕模型,形成的移植產(chǎn)物在形態(tài)學(xué)與組織學(xué)上與人HS相似。后續(xù)研究進一步優(yōu)化了這個模型,通過在裸鼠表面移植人刃厚皮片,形成的瘢痕組織較之前的模型在組織學(xué)與形態(tài)學(xué)方面與人HS更為接近[24-25]。

SCID鼠由于其T、B細(xì)胞缺乏,而對外源性抗原無細(xì)胞免疫及抗體反應(yīng),和裸鼠相似。這種免疫缺陷也使得皮膚移植排斥反應(yīng)減輕,從而使皮膚存活時間延長,為后續(xù)瘢痕長時間維持提供了理論支持[26]。我們將人刃厚皮片移植到SCID鼠背部,術(shù)后10 d拆線后,移植組織顏色粉紅、質(zhì)軟、邊緣輕度高出皮面,提示皮片存活良好。約1個月左右,移植物逐漸變硬、顏色加深,且表面干燥結(jié)痂。待痂皮逐漸脫落后,觀察到明顯高出皮面的紅褐色瘢痕樣組織,與人HS外觀相似。實驗組20只小鼠中,18只可得到具有上述特點的類瘢痕組織,形成后均能存活2個月以上,且厚度逐漸增加,但持續(xù)一段時間后逐漸降低。另外兩只SCID鼠移植皮片顏色逐漸發(fā)黑,約術(shù)后20 d壞死脫落,術(shù)后1個月創(chuàng)面由鄰近自身皮膚修復(fù)。皮片壞死可能由于移植皮膚抗原性過強、小鼠個體免疫差異,以及手術(shù)包扎等原因引起。

人HS在組織學(xué)上表現(xiàn)為真皮層增厚,真皮乳頭層及網(wǎng)狀層界限不清,皮膚附屬器結(jié)構(gòu)改變,包括毛囊及釘突數(shù)量減少,毛細(xì)血管化明顯[25]。我們在模型中可以觀察到上述變化,并且組織學(xué)厚度的測量和大體結(jié)果一致,排除了小鼠自體愈合的干擾;值得一提的是,移植物的組織切片中可觀察到肌成纖維細(xì)胞,而該細(xì)胞是人HS形成過程中的關(guān)鍵因素之一[27],該細(xì)胞的數(shù)量上升可導(dǎo)致細(xì)胞外基質(zhì)過度合成,從而增加瘢痕厚度。

膠原過度沉積和膠原束排列紊亂是人HS的另一特點。由于炎性細(xì)胞及成纖維細(xì)胞分泌的大量生長因子,引起傷口愈合纖維化過程紊亂,導(dǎo)致膠原異常增生,特別是Ⅰ型膠原,在HS中膠原束往往較細(xì)長,直徑在60 nm左右,而正常皮膚Ⅰ型膠原直徑100 nm,成粗大條索狀平行于皮面[25,28]。 Masson's染色后,觀察到移植物膠原束較細(xì)長,成旋渦狀或結(jié)節(jié)狀分布,可提示該組織中膠原異常沉積且排列紊亂。羥脯胺酸含量測定表明組織中膠原含量增加[28-29],進一步說明該模型與人HS在膠原分布上的相似性。

TGF-β是人創(chuàng)面愈合過程中的重要作用因子,參與炎癥反應(yīng)、血管再生、成纖維細(xì)胞增生、膠原及細(xì)胞外基質(zhì)的合成與重塑等過程[13,30]。在燒傷患者的血清中,往往可以觀察到TGF-β的過度表達。研究表明,HS與TGF-β1的作用關(guān)系密切,而CTGF作為TGF-β1表達通路下游調(diào)節(jié)因子,在調(diào)節(jié)纖維化過程中和TGF-β1協(xié)同作用,TGF-β1和CTGF的表達水平可能對纖維化過程及瘢痕預(yù)后有潛在影響[13]。本實驗中,移植物中的TGF-β1及CTGF的mRNA水平相較對照組有顯著升高,表明該模型中類瘢痕組織的產(chǎn)生可能是TGF-β1與CTGF協(xié)同作用的結(jié)果。Sisco等[31]的研究顯示,在動物模型中抑制CTGF的表達能夠有效減少肌成纖維細(xì)胞的數(shù)量、TIPM-1及Ⅰ型膠原的合成,從而抑制HS的形成,但不會延長傷口愈合時間。我們擬在后續(xù)實驗中進一步通過該模型來研究CTGF對于人HS的作用機制。

除了TGF-β外,該模型產(chǎn)生瘢痕的原因較復(fù)雜,考慮到該模型所用SCID鼠是一種免疫缺陷鼠,但其巨噬細(xì)胞、粒細(xì)胞、NK細(xì)胞均正常,而巨噬細(xì)胞也是HS形成早期就存在并發(fā)揮功能的一種炎性細(xì)胞,并能夠分泌大量生長因子,從而影響炎癥反應(yīng)及纖維化[32-34],其中就包括TGF-β。因此,可以推測巨噬細(xì)胞的功能可能是該模型類瘢痕組織形成的另一因素,也可能是該模型的潛在應(yīng)用方向和治療靶點。

綜上所述,我們可通過移植人類刃厚皮片于SCID鼠背創(chuàng)面,獲得類似于人HS的組織,其在形態(tài)學(xué)及組織學(xué)上和人HS相似,但是尚不能證明兩者完全一致,還需要從細(xì)胞水平進一步檢測巨噬細(xì)胞和肌成纖維細(xì)胞的表達水平。但該模型制作操作簡單,并能從瘢痕形成初始開始觀察,具有很好的可控性,是一種理想的瘢痕模型。

[1]Momtazi M,Ding J,Kwanp,et al.Morphologic and histologic comparison of hypertrophic scar in nude mice,T-cell receptor,and recombination activating gene knockout mice[J].Plast Reconstr Surg,2015,136(6):1192-1204.

[2]Ogawa R.Keloid and hypertrophic scars are the result of chronic inflammation in the reticular dermis[J].Int JMol Sci,2017,18(3):E606.

[3]Ali S,Hajrah NH,Ayuob NN,et al.Morphological and morphometric study of cultured fibroblast from treated and untreated abnormal scar[J].Saudi Med J,2010,31(8):874-881.

[4]Shekhter AB,Guller AE.The morphologic characteristics of scar tissues and the new clinicomorphologic classification of human skin scars[J].Arkh Patol,2008,70(1):6-13.

[5]Mari W,Alsabri SG,Tabal N,et al.Novel insights on understanding of keloid scar:article review[J].JAm Coll Clin Wound Spec,2016,7(1-3):1-7.

[6]Ledon JA,Savas J,Franca K,et al.Intralesional treatment for keloids and hypertrophic scars:a review[J].Dermatol Surg,2013,39(12):1745-1757.

[7]Kadunc BV,Trindade de Almeida AR.Surgical treatment of facial acne scars based on morphologic classification:a Brazilian experience[J].Dermatol Surg,2003,29(12):1200-1209.

[8]Rabello FB,Souza CD,Farina Júnior JA.Update on hypertrophic scar treatment[J].Clinics(Sao Paulo),2014,69(8):565-573.

[9]Domergue S,Jorgensen C,No e l D.Advances in research in animal models of burn-related hypertrophic scarring[J].J Burn Care Res,2015,36(5):e259-e266.

[10]Honardoust D,Kwan P,Momtazi M,et al.Novel methods for the investigation of human hypertrophic scarring and other dermal fibrosis[J].Methods Mol Biol,2013,1037:203-231.

[11]Tejiram S,Zhang J,Travis TE,et al.Compression therapy affects collagen type balance in hypertrophic scar[J].J Surg Res,2016,201(2):299-305.

[12]Wang J,Ding J,Jiao H,et al.Human hypertrophic scar-like nude mousemodel:characterization of themolecular and cellular biology of thescar process[J].Wound Repair Regen,2011,19(2):274-285.

[13]Penn JW,Grobbelaar AO,Rolfe KJ.The role of the TGF-βfamily in wound healing,burns and scarring:a review[J].Int J Burns Trauma,2012,2(1):18-28.

[14]Berman B,Maderal A,Raphael B.Keloids and hypertrophic scars:pathophysiology,classification,and treatment[J].Dermatol Surg,2017,43 Suppl 1:S3-S18.

[15]Ogawa R,Akaishi S.Endothelial dysfunction may play a key role in keloid and hypertrophic scar pathogenesis-Keloids and hypertrophic scars may be vascular disorders[J].Med Hypotheses,2016,96:51-60.

[16]Morris DE,Wu L,Zhao LL,et al.Acute and chronic animal models for excessive dermal scarring:quantitative studies[J].Plast Reconstr Surg,1997,100(3):674-681.

[17]Nabai L,Ghahary A.Hypertrophic scarring in the rabbit ear:a practical model for studying dermal fibrosis[J].Methods Mol Biol,2017,1627(4):81-89.

[18]Jia S,Xie P,Hong SJ,et al.Local application of statins significantly reduced hypertrophic scarring in a rabbit ear model[J].Plast Reconstr Surg Glob Open,2017,5(6):e1294.

[19]Zhu KQ,Engrav LH,Gibran NS,et al.The female,red Duroc pig as an animal model of hypertrophic scarring and the potential role of the cones of skin[J].Burns,2003,29(7):649-664.

[20]Foubert P,Zafra D,Liu M,et al.Autologous adipose-derived regenerative cell therapy modulates development of hypertrophic scarring in a red Duroc porcine model[J].Stem Cell Res Ther,2017,8(1):261.

[21]Sood RF,Muffley LA,Seaton ME,et al.Dermal fibroblasts from the red Duroc pig have an inherently fibrogenic phenotype:an in vitro model of fibroproliferative scarring[J].Plast Reconstr Surg,2015,136(5):990-1000.

[22]Harunari N,Zhu KQ,Armendariz RT,et al.Histology of the thick scar on the female,red Duroc pig:final similarities to human hypertrophic scar[J].Burns,2006,32(6):669-677.

[23]Yang DY,Li SR,Wu JL,et al.Establishment of a hypertrophic scar model by transplanting full-thickness human skin grafts onto the backs of nude mice[J].Plast Reconstr Surg,2007,119(1):104-109.

[24]Alrobaiea SM,Ding J,Ma Z,et al.A novel nude mouse model of hypertrophic scarring using scratched full thickness human skin grafts[J].Adv Wound Care(New Rochelle),2016,5(7):299-313.

[25]Momtazi M,Kwan P,Ding J,et al.A nude mouse model of hypertrophic scar shows morphologic and histologic characteristics of human hypertrophic scar[J].Wound Repair Regen,2013,21(1):77-87.

[26]de Vries TJ,Andreotta S,Loos BG,et al.Genes critical for developing periodontitis:lessons from mouse models[J].Front Immunol,2017,8:1395.

[27]Wang J,Jiao H,Stewart TL,et al.Accelerated wound healing in leukocyte-specific,protein 1-deficient mouse is associated with increased infiltration of leukocytes and fibrocytes[J].J Leukoc Biol,2007,82(6):1554-1563.

[28]Berthod F,Germain L,Li H,et al.Collagen fibril network and elastic system remodeling in a reconstructed skin transplanted on nude mice[J].Matrix Biol,2001,20(7):463-473.

[29]Marcos-Garcés V,Harvat M,Molina Aguilar P,et al.Comparative measurement of collagen bundle orientation by Fourier analysis and semiquantitative evaluation:reliability and agreement in Masson's trichrome,Picrosirius red and confocal microscopy techniques[J].JMicrosc,2017,267(2):130-142.

[30]Guo J,Lin Q,Shao Y,et al.BMP?7 suppresses excessive scar formation by activating the BMP?7/Smad1/5/8 signaling pathway[J].Mol Med Rep,2017,16(2):1957-1963.

[31]Sisco M,Kryger ZB,O'Shaughnessy KD,et al.Antisense inhibition of connective tissue growth factor(CTGF/CCN2)mRNA limits hypertrophic scarring without affecting wound healing in vivo[J].Wound Repair Regen,2008,16(5):661-673.

[32]Hesketh M,Sahin KB,West ZE,et al.Macrophage phenotypes regulate scar formation and chronic wound healing[J].Int J Mol Sci,2017,18(7):E1545.

[33]He L,Marneros AG.Macrophages are essential for the early wound healing response and the formation of a fibrovascular scar[J].Am JPathol,2013,182(6):2407-2417.

[34]Willenborg S,Eming SA.Macrophages-sensors and effectors coordinating skin damage and repair[J].J Dtsch Dermatol Ges,2014,12(3):214-221.

猜你喜歡
厚皮皮片組織學(xué)
MEEK 微型皮片移植技術(shù)的研究進展及其在兒科領(lǐng)域的應(yīng)用
骨間背側(cè)動脈筋膜瓣聯(lián)合中厚皮片移植修復(fù)手背創(chuàng)面
貝萊斯芽孢桿菌處理對厚皮甜瓜保鮮效果及保護酶活性的影響
疼痛護理管理在VSD聯(lián)合自體游離皮片植皮治療糖尿病足感染創(chuàng)面中的應(yīng)用
不同灸法對免疫抑制兔脾臟、胸腺影響的組織學(xué)研究
早熟優(yōu)質(zhì)厚皮甜瓜新品種浙甜401
——栽培注意事項
早熟優(yōu)質(zhì)厚皮甜瓜新品種浙甜401
花刺參幼參攝食和消化器官形態(tài)學(xué)和組織學(xué)研究
一種3L雙面膠紙法手工制備網(wǎng)狀皮方法介紹
《呼吸道感染牛分枝桿菌對肝臟和腸道影響的病理組織學(xué)觀察》圖版
上蔡县| 宣城市| 新干县| 南昌市| 嘉兴市| 朝阳县| 酒泉市| 犍为县| 瓦房店市| 安乡县| 保定市| 古田县| 东乡族自治县| 同心县| 台中市| 运城市| 乌拉特前旗| 浠水县| 岳池县| 定陶县| 阿巴嘎旗| 石楼县| 彭阳县| 井冈山市| 突泉县| 曲麻莱县| 海晏县| 西林县| 绥中县| 陆良县| 嘉定区| 耿马| 临安市| 眉山市| 贵德县| 保德县| 孝感市| 永胜县| 平南县| 慈利县| 莆田市|