李文桂,陳雅棠
重慶醫(yī)科大學(xué) 附屬第一醫(yī)院 傳染病寄生蟲病研究所,重慶 400016
惡性瘧原蟲(Plasmodium falciparum,Pf)和間日瘧原蟲(P.vivax,Pv)是寄生人體的2種常見(jiàn)瘧原蟲,可分別引起惡性瘧和間日瘧。大量研究[1-7]表明,用X線照射的瘧原蟲子孢子或紅內(nèi)期原蟲、熱滅活的紅內(nèi)期原蟲以及去除紅細(xì)胞的裂殖體免疫小鼠均可有效對(duì)抗瘧原蟲子孢子的攻擊。Renia等[8]認(rèn)為瘧原蟲疫苗大體經(jīng)歷了全蟲疫苗、減毒活疫苗和分子疫苗這幾個(gè)階段,但全蟲疫苗幾乎不能誘導(dǎo)宿主產(chǎn)生有效的保護(hù)力,減毒活疫苗存在恢復(fù)毒力和臨床感染的風(fēng)險(xiǎn),單個(gè)重組蛋白疫苗的免疫效果較差,這就需要進(jìn)一步研制新型疫苗。
Pfs25和Pvs25存在于瘧原蟲的配子、合子和動(dòng)合子的表面,是相對(duì)分子質(zhì)量(Mr)為25 000的受精后抗原,具有4個(gè)串聯(lián)的表皮生長(zhǎng)因子樣結(jié)構(gòu)域、大量半胱氨酸殘基和復(fù)雜的四聚體結(jié)構(gòu),在動(dòng)合子穿透蚊胃上皮及動(dòng)合子轉(zhuǎn)為卵囊的過(guò)程中起重要作用。呂芳麗等[9]將100 μg的pCDPfs25肌肉注射BALB/c鼠,在首次免疫后10和20 d加強(qiáng)2次,在首次免疫后40 d發(fā)現(xiàn)血清IgG升高,脾細(xì)胞增殖,CD8+T細(xì)胞數(shù)目增加;Shimp等[10]將Pfs25與銅綠假單胞菌的外蛋白A(exopro?tein A,EPA)融合為Pfs25-EPA,將2.5 μg融合蛋白加鋁佐劑皮下注射CD1鼠,在首次免疫后4周加強(qiáng)1次,在首次免疫后6周發(fā)現(xiàn)血清IgG升高75倍;Kongkasuriyachai等[11]將 25 μg的 VR1020-Pvs25肌肉注射BALB/c鼠,在首次免疫后5和10周加強(qiáng)2次,在首次免疫后100 d發(fā)現(xiàn)血清IgG、IgG1和IgG2a升高,間接免疫熒光(IFA)證實(shí)此血清識(shí)別Pv合子內(nèi)的Pvs25蛋白,這些研究表明Pfs25和Pvs25是2種有希望的疫苗分子。
微生物通常對(duì)人體具有一定的致病性,隨著對(duì)微生物致病機(jī)制研究的深入,人們發(fā)現(xiàn)編碼微生物的毒力因子或編碼關(guān)鍵代謝途徑的酶基因突變以及控制微生物在體內(nèi)生存的調(diào)節(jié)基因失活,均可使微生物減毒且保留高度的免疫原性。隨后人們構(gòu)建了根癌農(nóng)桿菌、酵母菌、腺病毒、牛痘病毒和桿狀病毒等微生物的減毒株,這些減毒株均可成為有希望的疫苗載體。在此,我們就微生物介導(dǎo)的瘧原蟲Pfs25和Pvs25疫苗的研制現(xiàn)狀做簡(jiǎn)要綜述。
1983年Fraley等[12]首次將細(xì)菌基因?qū)胫参锛?xì)胞,而Curtiss等[13]在煙草種子中成功表達(dá)了變形鏈球菌的表面蛋白抗原,這為研制轉(zhuǎn)基因植物疫苗提供了可行性。Jones等[14]將Pfs25基因插入pGRD4得pGRD-Pfs25,電穿孔轉(zhuǎn)化根癌農(nóng)桿菌(Agrobacterium tumefacieu,At)的 GV3101株,真空浸染煙草的子葉,培育轉(zhuǎn)基因植株;SDS-PAGE證實(shí)轉(zhuǎn)基因植株表達(dá)Mr為46 000的Pfs25-FhCMB-6His融合蛋白;將 5 μg融合蛋白加 Al(OH)3佐劑肌肉注射BALB/c鼠,在首次免疫后3周加強(qiáng)1次,在首次免疫后6周發(fā)現(xiàn)血清IgG滴度為1∶3318~1∶5835,標(biāo)準(zhǔn)膜飼養(yǎng)試驗(yàn)(standard membrane feed?ing assay,SMFA)發(fā)現(xiàn)首次免疫后6周的鼠血清在體外抑制蚊胃卵囊的發(fā)育,抑制率為92%。
Blaborough等[15]將Pvs25基因插入pGRD4得pGRD4-Pvs25,電穿孔轉(zhuǎn)化根癌農(nóng)桿菌GV3101株,轉(zhuǎn)染煙草子葉,培育轉(zhuǎn)基因植株;SDS-PAGE發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)基因煙草表達(dá)Pvs25-FhCMB融合蛋白;將50 μg融合蛋白加Abisco-100佐劑腹腔注射免疫BALB/c鼠,在首次免疫后3周加強(qiáng)1次,在首次免疫后6周發(fā)現(xiàn)血清IgG升高,IFA證實(shí)此血清可識(shí)別Pv的合子和動(dòng)合子;合子發(fā)育試驗(yàn)(zygote de?velopment assay,ZDA)發(fā)現(xiàn)此血清抑制蚊胃卵囊的發(fā)育,抑制率為65%~74%;在首次免疫后6周腹腔注射106伯氏瘧原蟲ANKA234株的子孢子進(jìn)行攻擊,在攻擊后6~12 d發(fā)現(xiàn)鼠血瘧原蟲的數(shù)目減少。
酵母菌及其菌體成分是有效的佐劑,與抗原結(jié)合后形成免疫刺激復(fù)合物,促進(jìn)免疫應(yīng)答。Gozar等[16]將Pfs25基因插入pIXY154得pIXY155,轉(zhuǎn)化釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)2905株,篩選培養(yǎng)陽(yáng)性菌株;免疫印跡發(fā)現(xiàn)Pf患者血清識(shí)別重組菌表達(dá)Mr為39 000的Pfs25蛋白;將1250 pmol重組蛋白加Al(OH)3佐劑腹腔注射免疫CAF1鼠,在首次免疫后3和6周加強(qiáng)2次,在首次免疫后12周發(fā)現(xiàn)脾細(xì)胞增殖,血清IgG升高,該血清可抑制血涂片中Pf配子體的發(fā)育。Zou等[17]將 25 μg重組蛋白加 Al(OH)3佐劑腹腔注射免疫BALB/c鼠,在首次免疫后3、6和9周加強(qiáng)3次,在首次免疫后12周發(fā)現(xiàn)血清IgG升高,該血清在體外可抑制血涂片中Pf配子體的發(fā)育。雷青等[18]將Pfs25基因分別插入pPIC9和pGAPZαA得pPIC10和pGAP-10,分別電穿孔轉(zhuǎn)化畢赤酵母(Pichia pastoris)GS115株,篩選陽(yáng)性菌株,命名為IC-PfS25和GAP-PfS25;然后再將pIC10電轉(zhuǎn)GAP-PfS25株,篩選培養(yǎng)陽(yáng)性菌株IC-GAP-PfS25;免疫印跡發(fā)現(xiàn)Pf患者血清識(shí)別血涂片中的Pfs25蛋白,但未進(jìn)行保護(hù)力試驗(yàn)。
Schuldt等[19]認(rèn)為腺病毒血清型 5(Adenovirus serotype 5,Ad5)以及猩猩腺病毒血清型63(Chim?panzee adenovirus serotype 63,ChAd63)是2種有希望的疫苗載體,均可有效表達(dá)瘧原蟲的外源抗原;重組腺病毒可誘導(dǎo)記憶性T細(xì)胞,誘發(fā)長(zhǎng)期應(yīng)答,可誘導(dǎo)CD8+T細(xì)胞反應(yīng);外源抗原表達(dá)在衣殼蛋白纖維或六環(huán)上可以提高疫苗效率,降低毒副作用。Goodman等[20]將 1×1010病毒顆粒(viral particles,VP)的 ChAd63-Pfs25肌肉注射 BALB/c鼠,在首次免疫后10周肌肉注射1×107PFU的MVA-Pfs25進(jìn)行加強(qiáng),發(fā)現(xiàn)血清IgG在首次免疫后2~12周升高,在首次免疫后12周達(dá)較高水平,血清IgG1和IgG2a增加;SMFA試驗(yàn)表明首次免疫后12周血清抑制蚊胃卵囊的發(fā)育;在首次免疫后12周腹腔注射106伯氏瘧原蟲ANKA234株子孢子進(jìn)行攻擊,在攻擊后3 d用斯氏按蚊(Anopheles stephensis)叮咬24 h,叮咬24 h后解剖蚊胃,發(fā)現(xiàn)蚊胃的卵囊數(shù)目減少67%~93%。Miyata等[21]將5.1×109PFU的rAd5-Pvs25皮下或肌肉注射BALB/c鼠,在首次免疫后3、5和7周加強(qiáng)3次,在末次反應(yīng)后2周發(fā)現(xiàn)血清IgG升高,SMFA試驗(yàn)證實(shí)皮下或肌肉注射組的血清顯著降低蚊胃的卵囊數(shù)目,減囊率分別為82.4%~87.8%和82.9%~98.6%。
Sutter等[22]發(fā)現(xiàn)牛痘病毒的減毒株可表達(dá)流感病毒的核殼蛋白、麻疹病毒的融合蛋白F以及呼吸道合胞病毒的糖蛋白等。Tine等[23]以Pf基因組DNA為模板擴(kuò)增Pfs25基因,插入pMLB得pMLB-Pfs25,加牛痘病毒減毒株NYVAC共同轉(zhuǎn)化HeLa細(xì)胞,篩選培養(yǎng)重組病毒;免疫印跡發(fā)現(xiàn)Pf患者血清識(shí)別MYVAC-Pfs25表達(dá)Mr為25 000的Pfs25蛋白;將108PFU重組病毒肌肉注射恒河猴,在首次免疫后2和26周加強(qiáng)2次,發(fā)現(xiàn)血清IgG在首次免疫后2~35周升高,在首次免疫后6周達(dá)較高水平;IFA表明首次免疫后28周血清識(shí)別血涂片Pf的Pfs25蛋白。
昆蟲桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)是一個(gè)真核表達(dá)系統(tǒng),可提高外源基因的表達(dá)效率,可對(duì)表達(dá)產(chǎn)物進(jìn)行糖基化、磷酸化和蛋白切割等。Blagborough等[24]用桿狀病毒雙表達(dá)系統(tǒng)(Baculovirusdual ex?pression system,BDES)表達(dá) Pvs25,將 5×107PFU的BDES-Pvs25肌肉注射或滴鼻免疫BALB/c鼠,在首次免疫后3、6和9周加強(qiáng)3次,在首次免疫后11周發(fā)現(xiàn)血清 IgG、IgG1、IgG2a和IgG2b升高,此時(shí)腹腔注射106伯氏瘧原蟲ANKA234株的子孢子進(jìn)行攻擊,在攻擊后3 d用50只斯氏按蚊叮咬小鼠,叮咬后24 h解剖蚊胃,計(jì)數(shù)卵囊數(shù)目,發(fā)現(xiàn)肌肉注射組和滴鼻免疫的卵囊數(shù)目分別下降83.8%和92.1%。
環(huán)子孢子蛋白(circumsporozoite protein,CSP)位于成熟子孢子的表面,是Mr為40 000~60 000的細(xì)胞前期抗原,在子孢子入侵肝細(xì)胞時(shí)起關(guān)鍵作用。Epstein等[25]發(fā)現(xiàn)pCD-PfCSP肌肉注射健康志愿者可產(chǎn)生有效的免疫應(yīng)答。由于宿主MHC分子的多樣性和瘧原蟲抗原結(jié)構(gòu)的復(fù)雜性,宿主將針對(duì)抗原的多個(gè)表位產(chǎn)生免疫反應(yīng),使得單一抗原成分誘導(dǎo)宿主產(chǎn)生的保護(hù)性免疫應(yīng)答效果往往較低,因此,將PvCSP和Pvs25抗原的編碼基因連接起來(lái)可能更為有效。Mizutani等[26]用BDES表達(dá)Mr為110 000的PvCSP-Pvs25融合蛋白,將1×108PFU的BDES-PvCSP-Pvs25肌肉注射BALB/c鼠,在首次免疫后3和6周加強(qiáng)2次,在首次免疫后8周用3~7只感染伯氏瘧原蟲的斯氏按蚊叮咬15 min進(jìn)行攻擊,攻擊后5~7 d發(fā)現(xiàn)免疫組的原蟲血癥為0.01%~0.77%,而對(duì)照組為0.12%~1.69%。
盡管大部分現(xiàn)有微生物介導(dǎo)的瘧原蟲Pfs25和Pvs25疫苗可誘導(dǎo)宿主產(chǎn)生一定的保護(hù)性免疫應(yīng)答,但它們產(chǎn)生的保護(hù)力通常較低,遠(yuǎn)未達(dá)到人們所期望的水平;轉(zhuǎn)基因植物疫苗的質(zhì)量控制和認(rèn)證較難,普遍不被公眾認(rèn)可和接受[27];酵母表達(dá)系統(tǒng)的蛋白表達(dá)水平較高,但其加工修飾與天然蛋白質(zhì)存在差異;腺病毒的自身蛋白及其雙鏈RNA可作為免疫佐劑,但病毒載體有潛在致癌和致病性,人群普遍存在抗腺病毒的抗體,影響其免疫效果;重組牛痘病毒的安全性和有效性值得進(jìn)一步的關(guān)注;昆蟲桿狀病毒表達(dá)蛋白可以糖基化和磷酸化,但其修飾位點(diǎn)與天然蛋白不同。
隨著現(xiàn)代分子生物學(xué)和分子免疫學(xué)等技術(shù)的發(fā)展,人們將對(duì)瘧原蟲的基因組學(xué)、蛋白質(zhì)組學(xué)、代謝組學(xué)、轉(zhuǎn)錄組學(xué)及表觀遺傳學(xué)進(jìn)行深入研究,從而弄清瘧原蟲的抗原結(jié)構(gòu)與功能的關(guān)系,篩選新的抗原分子,構(gòu)建由各期抗原分子組成的多期多價(jià)疫苗;研究這些疫苗的免疫原性、轉(zhuǎn)化效率、MHC限制性以及能否長(zhǎng)期在宿主體內(nèi)表達(dá);研制新型佐劑、疫苗載體和制備融合抗原,提高疫苗的免疫原性;在人體內(nèi)正確評(píng)價(jià)新型疫苗分子的保護(hù)力及其免疫機(jī)制;積極開(kāi)展瘧原蟲抗原蛋白家族及其他相關(guān)蛋白生物學(xué)功能研究,提高疫苗的設(shè)計(jì)水平;探索瘧原蟲的體外培養(yǎng)、功能試驗(yàn)、遺傳變異、分子病理和理想的動(dòng)物模型;由于瘧原蟲已對(duì)氯喹產(chǎn)生抗藥性以及蚊媒對(duì)殺蟲劑DDT產(chǎn)生耐受性,還需要研制新型滅瘧藥和殺蟲劑。相信隨著這些問(wèn)題的闡明,必將推動(dòng)微生物介導(dǎo)的瘧原蟲Pfs25和Pvs25疫苗研究躍上一個(gè)新的臺(tái)階。
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