袁 瑞,楊 寧,姜 秦,王正麗
( 青島農(nóng)業(yè)大學(xué),海洋科學(xué)與工程學(xué)院,山東 青島 266109 )
魚粉是水產(chǎn)飼料的優(yōu)質(zhì)蛋白源,然而,近年來(lái)過(guò)度捕撈和不良?xì)夂蚴刽~粉產(chǎn)量降低,魚粉價(jià)格逐年增長(zhǎng)[1]。尋找優(yōu)質(zhì)廉價(jià)的替代蛋白源成為水產(chǎn)飼料研究的主要問題之一。大豆蛋白消化吸收率高、價(jià)格低、資源豐富,可作為替代蛋白源成為研究熱點(diǎn)[2]。
但是,大豆蛋白中所含有的抗?fàn)I養(yǎng)因子限制了其利用[3]。其中大豆異黃酮屬于黃酮類化合物,是大豆中較為常見的抗?fàn)I養(yǎng)因子,在飼料中超過(guò)一定劑量對(duì)動(dòng)物的生長(zhǎng)、健康及對(duì)飼料中營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的利用率均有負(fù)面作用[4-6]。研究發(fā)現(xiàn),飼料中豆粕對(duì)魚粉的替代水平超過(guò)75%時(shí),影響羅非魚(Oreochromissp.)的生長(zhǎng)、消化酶和轉(zhuǎn)氨酶活性,而這與豆粕中所含的抗?fàn)I養(yǎng)因子大豆異黃酮的含量相關(guān)[4];在飼料中添加1~3 g/kg大豆異黃酮對(duì)褐牙鲆(Paralichthysolivaceus)生長(zhǎng)無(wú)顯著影響,但添加量達(dá)到4 g/kg時(shí),顯著抑制褐牙鲆生長(zhǎng)[5]。也有研究表明,飼料中適量的大豆異黃酮對(duì)動(dòng)物生長(zhǎng)有一定促進(jìn)作用[6-8]。Zhou等[6]發(fā)現(xiàn),隨著飼料中大豆異黃酮含量的增加,卵形鯧鲹(Trachinotusovatus)的生長(zhǎng)性能顯著提高,40 mg/kg為最適添加量,添加量達(dá)60~80 mg/kg時(shí)則表現(xiàn)出抑制作用。而對(duì)陸生動(dòng)物中的研究則表明,除了影響生長(zhǎng),大豆異黃酮無(wú)論在體內(nèi)或體外還具有免疫調(diào)節(jié)作用[9-10],能夠提高小鼠的殺傷細(xì)胞反應(yīng)[11]、調(diào)節(jié)人類的細(xì)胞免疫[12]等。但目前有關(guān)大豆異黃酮對(duì)魚類影響的研究多集中在豆粉替代魚粉后對(duì)魚類生長(zhǎng)產(chǎn)生的影響上,研究結(jié)果也存在較大的差異。大豆異黃酮是否具有增強(qiáng)魚類免疫的作用及其相關(guān)機(jī)理仍不明確。因此,為進(jìn)一步研究大豆異黃酮對(duì)魚類的免疫效應(yīng),筆者建立了離體細(xì)胞模型,研究了離體條件下大豆異黃酮對(duì)褐牙鲆相關(guān)免疫細(xì)胞的免疫效應(yīng)。
褐牙鲆是我國(guó)北方沿海地區(qū)廣泛養(yǎng)殖的重要海水魚類之一[13]。頭腎巨噬細(xì)胞[14]和外周血白細(xì)胞[15]是褐牙鲆重要的免疫細(xì)胞,在褐牙鲆免疫過(guò)程中起重要作用。本試驗(yàn)旨在研究大豆異黃酮對(duì)體外培養(yǎng)的褐牙鲆頭腎巨噬細(xì)胞和外周血白細(xì)胞免疫力的影響,明確大豆異黃酮對(duì)褐牙鲆的免疫細(xì)胞是否具有免疫促進(jìn)抑或抑制作用,為大豆異黃酮在水產(chǎn)養(yǎng)殖飼料中的添加以及植物蛋白源的合理開發(fā)和利用提供試驗(yàn)依據(jù)。為尋求新的水產(chǎn)養(yǎng)殖飼料原料替代品提供參考。
試驗(yàn)用褐牙鲆購(gòu)自日照某養(yǎng)殖場(chǎng),體質(zhì)量(250±12) g,健康無(wú)傷,暫養(yǎng)于海水循環(huán)系統(tǒng)中。水溫17~19 ℃,鹽度32~40,溶氧8.0 mg/L以上,每日投喂商品飼料兩次。
1.2.1 褐牙鲆頭腎巨噬細(xì)胞的分離培養(yǎng)
在超凈臺(tái)內(nèi)剖取褐牙鲆頭腎,研磨備用。采用Ortuńo的方法分離褐牙鲆頭腎巨噬細(xì)胞[16],將頭腎研磨液過(guò)100目篩絹,加入到34%/51% percoll(Solarbio公司)分離液的液面,4 ℃,2200 r/min離心25 min,吸取中間層巨噬細(xì)胞;然后加入3 mL 0.15 mol/L磷酸鹽緩沖液,1200 r/min離心5 min后洗滌兩次,加入2% FBS-L-15(添加1%雙抗、4%抗凝劑、2%胎牛血清)重懸得巨噬細(xì)胞。
1.2.2 外周白細(xì)胞的分離
在無(wú)菌條件下,用含有抗凝劑的注射器尾靜脈抽血,分離外周血白細(xì)胞[17]。取稀釋血液加入到60% Percoll分離液液面上,4 ℃,2200 r/min離心25 min后,從上到下依次為血漿層、白細(xì)胞層、粒細(xì)胞層、紅細(xì)胞層,于白細(xì)胞層輕輕吸取白細(xì)胞;加入3 mL 0.15 mol/L磷酸鹽緩沖液,1200 r/min離心5 min后洗滌兩次,用2% FBS-L-15重懸得白細(xì)胞。
1.2.3 細(xì)胞計(jì)數(shù)及培養(yǎng)
用臺(tái)盼藍(lán)法檢測(cè)分離頭腎細(xì)胞和白細(xì)胞活性[16],用2% FBS-L-15培養(yǎng)基調(diào)整這兩種細(xì)胞的密度為107個(gè)/mL,分別接種到96孔板中,每孔100 μL細(xì)胞液,放置于19 ℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)2 h后,棄上清液以去除未貼壁細(xì)胞,然后分別加入100 μL含有0、0.1、0.5、1.0、1.5 mg/mL和2.0 mg/mL大豆異黃酮的細(xì)胞培養(yǎng)液(添加不同質(zhì)量濃度大豆異黃酮的2% FBS-L-15培養(yǎng)基),放于19 ℃恒溫培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)24 h,每個(gè)梯度設(shè)置4個(gè)重復(fù)。
1.3.1 氧呼吸爆發(fā)活力測(cè)定
采用Dolmatova[18]的方法稍作修改。吸棄細(xì)胞培養(yǎng)液上清,每孔中加入100 μL氯化硝基四氮唑藍(lán)溶液[質(zhì)量濃度為1 mg/mL,含有10 μL 1 mg/mL的乙酸肉豆蔻佛波醇],在19 ℃恒溫培養(yǎng)箱避光孵育40 min后吸棄上清液,加入200 μL 100%甲醇固定10 min,用200 μL 70%甲醇洗滌細(xì)胞兩次后每孔加入120 μL KOH(2 mol/L)和140 μL二甲基亞砜(100%),用酶標(biāo)儀在620 nm測(cè)定吸光值。
1.3.2 增殖活力測(cè)定
采用MTT法[19]稍作修改。不同細(xì)胞中加入10 μL噻唑藍(lán)(5 mg/mL MTT),19 ℃恒溫培養(yǎng)箱避光孵育4 h,吸棄上清液,每孔加入150 μL二甲基亞砜(100%),用酶標(biāo)儀在490 nm測(cè)定吸光值。
1.3.3 吞噬活力的測(cè)定[19-20]
1.3.3.1 頭腎巨噬細(xì)胞吞噬活力
在每孔細(xì)胞中加入20 μL密度為5×108cfu/mL的自制鰻弧菌懸液,19 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)5 h;吸棄上清液后再每孔加100 μL 0.2%的吐溫-20,反應(yīng)10 min后加10 μL噻唑藍(lán)(MTT 5 mg/mL),19 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)4 h;吸棄上清液后,每孔再加150 μL二甲基亞砜(100%)10 min后,用酶標(biāo)儀在490 nm下測(cè)定吸光值。
1.3.3.2 外周血白細(xì)胞吞噬活力
將培養(yǎng)后的外周血白細(xì)胞96孔板1000 r/min離心,吸棄上清液。每孔加入0.075%的中性紅溶液100 μL,19 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)1 h;離心棄上清液,用200 μL 0.15 mol/L 磷酸鹽緩沖液洗凈未被吞噬的中性紅;每孔加150 μL細(xì)胞裂解液(乙酸∶無(wú)水乙醇=1∶1),19 ℃恒溫培養(yǎng)過(guò)夜反應(yīng)后,用酶標(biāo)儀測(cè)定510 nm下的吸光值。
試驗(yàn)數(shù)據(jù)用SPSS 19.0軟件進(jìn)行單因素方差分析,當(dāng)P<0.05時(shí)認(rèn)為差異顯著,進(jìn)行Duncan多重比較。
在體外培養(yǎng)條件下,大豆異黃酮對(duì)褐牙鲆頭腎巨噬細(xì)胞和外周血白細(xì)胞免疫力有顯著影響(P<0.05),且隨著培養(yǎng)液中大豆異黃酮質(zhì)量濃度的增加,細(xì)胞免疫力呈先增加后降低的趨勢(shì)。
2.1.1 對(duì)褐牙鲆頭腎巨噬細(xì)胞氧呼吸爆發(fā)活力的影響
體外培養(yǎng)條件下,細(xì)胞培養(yǎng)中不同質(zhì)量濃度大豆異黃酮顯著影響褐牙鲆頭腎巨噬細(xì)胞的氧呼吸爆發(fā)活力(P<0.05)(圖1)。當(dāng)大豆異黃酮質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL時(shí),褐牙鲆巨噬細(xì)胞氧呼吸爆發(fā)活力顯著高于對(duì)照組和其他處理組(P<0.05),而最高質(zhì)量濃度組(2 mg/mL)的氧呼吸爆發(fā)活力顯著低于最低質(zhì)量濃度組(0.1 mg/mL)(P<0.05),其他處理組之間差異不顯著(P>0.05)。
圖1 不同質(zhì)量濃度大豆異黃酮在體外對(duì)褐牙鲆頭腎巨噬細(xì)胞氧呼吸爆發(fā)活力的影響
2.1.2 對(duì)褐牙鲆頭腎巨噬細(xì)胞增殖活力的影響
細(xì)胞培養(yǎng)液中大豆異黃酮質(zhì)量濃度為0.1、0.5、1.0 mg/mL時(shí),褐牙鲆頭腎巨噬細(xì)胞增殖活力顯著增加(P<0.05),在質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL時(shí)活力最高;隨著大豆異黃酮質(zhì)量濃度的增加,褐牙鲆頭腎巨噬細(xì)胞增殖活力顯著降低,當(dāng)大豆異黃酮質(zhì)量濃度為2 mg/mL時(shí),頭腎巨噬細(xì)胞增殖活力最低,顯著低于對(duì)照組和其他處理組(P<0.05)(圖2)。
圖2 不同質(zhì)量濃度大豆異黃酮在體外對(duì)褐牙鲆頭腎巨噬細(xì)胞增殖活力的影響
2.1.3 對(duì)褐牙鲆頭腎巨噬細(xì)胞吞噬活力的影響
當(dāng)細(xì)胞培養(yǎng)液中大豆異黃酮質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL和1.0 mg/mL時(shí),褐牙鲆頭腎巨噬細(xì)胞吞噬活力顯著高于對(duì)照組和其他處理組(P<0.05),質(zhì)量濃度在0.5 mg/mL時(shí)值最高;而當(dāng)細(xì)胞培養(yǎng)液中大豆異黃酮質(zhì)量濃度為2.0 mg/mL時(shí),褐牙鲆巨噬細(xì)胞的吞噬活力值最低(P<0.05)(圖3)。
2.2.1 對(duì)褐牙鲆外周血白細(xì)胞氧呼吸爆發(fā)活力的影響
不同質(zhì)量濃度大豆異黃酮顯著影響褐牙鲆外周血白細(xì)胞氧呼吸爆發(fā)活力(P<0.05),當(dāng)培養(yǎng)液中大豆異黃酮質(zhì)量濃度為0.5、1.0 mg/mL時(shí),白細(xì)胞氧呼吸爆發(fā)活力顯著高于對(duì)照組(P<0.05);0.1、1.5 mg/mL處理組則與對(duì)照組差異不顯著(P>0.05)(圖4)。
圖3 不同質(zhì)量濃度大豆異黃酮在體外對(duì)褐牙鲆頭腎巨噬細(xì)胞吞噬活力的影響
圖4 不同質(zhì)量濃度大豆異黃酮下褐牙鲆外周血白細(xì)胞氧呼吸爆發(fā)活力的影響
2.2.2 對(duì)褐牙鲆外周血白細(xì)胞增殖活力的影響
培養(yǎng)液中添加不同質(zhì)量濃度大豆異黃酮顯著增強(qiáng)了褐牙鲆外周血白細(xì)胞的增殖活力(P<0.05),且大豆異黃酮質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL時(shí),白細(xì)胞增殖活力值最高(圖5)。
2.2.3 對(duì)褐牙鲆外周血白細(xì)胞吞噬活力的影響
不同質(zhì)量濃度大豆異黃酮顯著影響了褐牙鲆外周血白細(xì)胞的吞噬活力(P<0.05)(圖6),大豆異黃酮質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL時(shí)褐牙鲆外周血白細(xì)胞吞噬活力最高,顯著高于其他試驗(yàn)組(P<0.05);隨著培養(yǎng)液中大豆異黃酮質(zhì)量濃度的增加,褐牙鲆外周血白細(xì)胞吞噬活力顯著降低,當(dāng)大豆異黃酮質(zhì)量濃度為2.0 mg/mL時(shí),白細(xì)胞吞噬活力最低,顯著低于其他試驗(yàn)組(P<0.05)。
圖5 不同質(zhì)量濃度大豆異黃酮下褐牙鲆外周血白細(xì)胞的增殖活力
圖6 不同質(zhì)量濃度大豆異黃酮下褐牙鲆外周血白細(xì)胞的體外吞噬活力
大豆異黃酮是大豆中主要的植物雌激素,是一種具有類雌激素性質(zhì)的抗?fàn)I養(yǎng)因子[7]。研究表明,動(dòng)物飼糧中添加適量的大豆異黃酮能夠促進(jìn)動(dòng)物生長(zhǎng),降低飼料成本,增強(qiáng)機(jī)體免疫力[21]。日糧中添加大豆異黃酮能夠促進(jìn)蛋雞免疫器官發(fā)育,提高免疫功能[22];大豆異黃酮顯著影響了仔豬生長(zhǎng)、免疫性能等[8]。但是,大豆異黃酮在水產(chǎn)動(dòng)物中的研究較少,Tzchori等[23]在飼料中添加2、20 μg/g的大豆異黃酮促進(jìn)了歐洲鰻鱺(Anguillaanguilla)的生長(zhǎng);張偉[7]研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)飼料中大豆異黃酮含量在4800 μg/g以下時(shí),對(duì)異育銀鯽(Carassiusauratusgibelio)的生長(zhǎng)無(wú)顯著影響,而當(dāng)含量超過(guò)7200 μg/g時(shí),則顯著抑制異育銀鯽的生長(zhǎng)。在本試驗(yàn)中,離體條件下大豆異黃酮顯著影響褐牙鲆頭腎巨噬細(xì)胞和外周血白細(xì)胞的免疫力。培養(yǎng)液中大豆異黃酮的質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL時(shí),顯著促進(jìn)了褐牙鲆相關(guān)免疫活力;但大豆異黃酮質(zhì)量濃度進(jìn)一步增加,褐牙鲆的免疫力反而下降,在本試驗(yàn)條件下,當(dāng)大豆異黃酮質(zhì)量濃度為2.0 mg/mL時(shí),褐牙鲆的細(xì)胞呼吸爆發(fā)活力、巨噬細(xì)胞增殖活力和吞噬活力降低,培養(yǎng)液中高質(zhì)量濃度的大豆異黃酮對(duì)褐牙鲆的細(xì)胞免疫力表現(xiàn)出抑制作用。
頭腎巨噬細(xì)胞和外周血白細(xì)胞均屬于魚類主要的吞噬細(xì)胞,其對(duì)免疫的影響主要體現(xiàn)在呼吸爆發(fā)活力、增殖活力和吞噬活力。顆粒與吞噬細(xì)胞的結(jié)合或其它可溶性物質(zhì)的刺激可以激發(fā)吞噬細(xì)胞產(chǎn)生大量的活性氧[超氧陰離子(O2-)、過(guò)氧化氫(H2O2)和單線態(tài)氧(1O2)等]。這些活性氧殺滅細(xì)菌和微生物的過(guò)程即為呼吸爆發(fā)[24]。在本試驗(yàn)中,大豆異黃酮在體外增強(qiáng)了頭腎巨噬細(xì)胞和外周血白細(xì)胞氧呼吸爆發(fā)活力,增強(qiáng)效果隨質(zhì)量濃度的增加先升后降。Disilvestro等[25]曾報(bào)道大豆異黃酮可以提高人體紅細(xì)胞內(nèi)超氧化物歧化酶的活性;Zhou等[6]研究也表明,添加大豆異黃酮改善了機(jī)體抗氧化狀態(tài),抑制自由基的形成,從而減少脂質(zhì)超氧化物的形成。因此大豆異黃酮對(duì)細(xì)胞呼吸爆發(fā)活力的影響可能主要體現(xiàn)在對(duì)細(xì)胞內(nèi)氧自由基的產(chǎn)生上。但大豆異黃酮對(duì)呼吸爆發(fā)活力的影響有一個(gè)閾值,當(dāng)添加量超過(guò)一定值則產(chǎn)生抑制作用。吞噬細(xì)胞為魚體內(nèi)主要的免疫細(xì)胞,外來(lái)微生物入侵后即開始增殖以殺死外來(lái)入侵微生物[26];吞噬作用是細(xì)胞內(nèi)消化、殺滅和消化入侵的微生物過(guò)程,這包括了顆粒與細(xì)胞表面接觸、消化形成吞噬體以及分解吞噬體中的顆粒三個(gè)步驟[27]。本試驗(yàn)結(jié)果表明,大豆異黃酮顯著影響頭腎巨噬細(xì)胞和外周血白細(xì)胞的增殖活力及吞噬活力。Tang等[28]發(fā)現(xiàn),異黃酮衍生物可以通過(guò)抑制巨噬細(xì)胞和骨髓基質(zhì)細(xì)胞中相關(guān)蛋白的信號(hào)通路,抑制破骨細(xì)胞的形成,可以推論大豆異黃酮可以通過(guò)介導(dǎo)與細(xì)胞增殖和吞噬作用相關(guān)的蛋白表達(dá)來(lái)影響其活力,或者是通過(guò)影響細(xì)胞內(nèi)信號(hào)通路的完成來(lái)影響巨噬細(xì)胞和白細(xì)胞的增殖活力。
本試驗(yàn)在離體條件下,在培養(yǎng)液中添加大豆異黃酮培養(yǎng)巨噬細(xì)胞和白細(xì)胞,顯示添加不同質(zhì)量濃度的大豆異黃酮對(duì)褐牙鲆頭腎巨噬細(xì)胞和外周血白細(xì)胞的免疫效果具有顯著影響,推測(cè)存在一個(gè)促進(jìn)魚類生長(zhǎng)的適宜大豆異黃酮質(zhì)量濃度,為進(jìn)一步在飼料中添加大豆異黃酮,促進(jìn)動(dòng)物免疫的研究提供了參考。但飼料中大豆異黃酮的影響受機(jī)體更為復(fù)雜的調(diào)控機(jī)制作用,也與魚的種類、規(guī)格、性別、食性、生理狀態(tài)、養(yǎng)殖系統(tǒng)等多種因素影響,其作用效果和機(jī)理有待于進(jìn)一步探討。
[1] 邢秀蘋,楊歡歡,韋慶勇,等.豆粕和膨化大豆粉對(duì)鯉魚生長(zhǎng)及其肌肉營(yíng)養(yǎng)成分的影響[J].西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(bào),2015,43(12):13-18.
[2] Lilleeng E, Froystad M K, Vekterud K, et al. Comparison of intestinal gene expression in Atlantic cod (Gadusmorhua) fed standard fish meal or soybean meal by means of suppression subtractive hybridization and real-time PCR[J].Aquaculture, 2007,267(1/4):269-283.
[3] 陳棟,金秋燕.金雀異黃素對(duì)尼羅羅非魚(Oreochromisniloticus)生長(zhǎng)及生長(zhǎng)軸相關(guān)基因表達(dá)的影響[J].飼料工業(yè),2016,37(6):32-37.
[4] Lin S, Luo L. Effects of different levels of soybean meal inclusion in replacement for fishmeal on growth, digestive enzymes and transaminase activities in practical diets for juvenile tilapia,Oreochromisniloticus×O.aureus[J]. Animal Feed Science and Technology, 2011, 168(1/2):80-87.
[5] Mai K S, Zhang Y J, Chen W, et al. Effects of dietary soy isoflavones on feed intake, growth performance and digestibility in juvenile Japanese flounder (Paralichthysolivaceus)[J]. Journal of Ocean University of China, 2012, 11(4):511-516.
[6] Zhou C P, Lin H Z,Ge X P, et al. The effects of dietary soybean isoflavones on growth, innate immune responses, hepatic antioxidant abilities and disease resistance of juvenile golden pompanoTrachinotusovatus[J]. Fish and Shellfish Immunology, 2015, 43(1):158-166.
[7] 張偉.大豆皂甙與大豆異黃酮對(duì)異育銀鯽生長(zhǎng)、生理及腸道健康的影響[D]. 蘇州:蘇州大學(xué),2010.
[8] 李方方,朱濤濤,朱宇旌,等.大豆異黃酮對(duì)斷奶仔豬生長(zhǎng)性能、免疫性能、養(yǎng)分消化率和糞中微生物菌群的影響[J].養(yǎng)豬,2015(5):25-29.
[9] Bao Z S, Ling H, Yan G, et al. Inhibition of airway inflammation, hyperresponsiveness and remodeling by soy isoflavone in a marine model of allergic asthma[J]. International Immunopharmacology,2011, 11(8):899-906.
[10] Tezuka H, Imai S. Immunomodulatory effects of soybeans and processed soy food compounds[J]. Recent Patents Food Nutrition Agriculture, 2015, 7(2):92-99.
[11] Guo T L, White K L, Brown R D, et al. Genistein modulates splenic natural killer cell activity, antibody-forming cell response, and phenotypic marker expression in F(0) and F(1) generations of Sprague-Dawley rats[J]. Toxicology and Applied Pharmacology, 2002, 181(3):219-227.
[12] Masilamani M, John W, Shiven B, et al. Soybean isoflavones regulate dendritic cell function and suppress allergic sensitization to peanut[J]. The Journal of Allergy and Clinical Immunology, 2011, 128(6):1242-1250.
[13] 王波,張朝暉,左言明,等.牙鲆屬主要經(jīng)濟(jì)魚類的生物學(xué)及養(yǎng)殖研究概況[J].海洋水產(chǎn)研究,2004,25(5):86-92.
[14] Baba T, Imamura J,Izawak, et al. Cell-mediated protection in carp,CyprinuscarpioL., againstAeromonashydrophila[J]. Journal of Fish Diseases, 1998, 11(2):171-179.
[15] 陳旭衍,侯亞義.魚類細(xì)胞因子研究進(jìn)展[J].水生生物學(xué)報(bào),2004,28(6):668-673.
[16] Ortuńo J,Esteban M.High dietary intake of α-tocopherol acetate enhances the non-specific immune response of gilthead seabream (SparusaurataL)[J].Fish and Shellfish Immunology,2000,10(4):293-307.
[17] Warr G W, Simon R C. The mitogen response potential of lymphocytes from the rainbow trout (Salmogairdneri) re-examined [J]. Developmental and Comparative Immunology, 1983, 7(2):379-384.
[18] Filman D J, Brown R J, Dandliker W B.Intracellular supravital stain delocalization as an assay for antibody dependent complement-mediated cell damage [J]. Journal of Immunological Methods, 1975, 6(3):189-207.
[19] Dolmatova L S, Eliseikina M G, Romashina V. Antioxidant enzymatic activity of coelomocytes of the fareast sea cucumberEupentactafraudatrix[J]. Journal of Evolutionary Biochemistry and Physiology,2004,40(2):126-135.
[20] Zhang Q, Ma H M, Mai K S.Interaction of dietaryBacillussubtilisand fructooligosaccharide on the growth performance, non-specific immunity of sea cucumber,Apostichopusjaponicas[J]. Fish and Shellfish Immunology, 2001, 29(2):204-211.
[21] 戴述誠(chéng),李志業(yè),葉勇,等.新型綠色飼料添加劑——大豆異黃酮[J].中國(guó)動(dòng)物保健,2013,15(9):15-18.
[22] 王英華,吳志明,張蕊,等.大豆異黃酮對(duì)蛋雞免疫性能的影響[J].中國(guó)獸醫(yī)雜志,2015,51(5):50-52.
[23] Tzchori I, Degani G. The influence of phytoestrogens and oestradiol-17β on growth and sex determination in the European eel (Anguillaanguilla) [J]. Aquaculture Research, 2004, 35(13):1213-1219.
[24] Hyung S C, Kim J W, Cha Y N. A quantitative nitroblue tetrazolium assay for determining intracellular superoxide anion production in phagocytic cells [J]. Journal of Immunoassay and Immunochemistry, 2006, 27(1):31-44.
[25] Disilvestro R A, Goodman J, Dy E, et al. Soy isoflavone supplementation elevates erythrocyte superoxide dismutase, but not plasma ceruloplasmin in postmenopausal breast cancer survivors [J]. Breast Cancer Res Treat, 2005, 89(3):251-255.
[26] Jyonouchi. Studies of immunomodulating actions of RNA/nucleotides: RNA/nucleotides enhance in vitro immunoglobulin production by human peripheral blood mononuclear cells in response to T-dependent stimuli [J]. Pediatrics, 2002, 33(5):458-465.
[27] Dannevig B H, Lauve A. Receptor-mediated endocytosis and phagocytosis by rainbow trout head kidney sinusoidal cell [J]. Fish and Shellfish Immunology, 1994, 4(1):3-18.
[28] Tang C H, Chang C S, Tan T W, et al. The novelisoflavone derivatives inhibit RANKL -induced osteoclast formation [J]. European Journal of Pharmacology, 2010, 648(1/3):59-66.