程 艷,陳 璐,米艷華*,段紅平,茶應(yīng)盛,邵金良,杜麗娟
植物在正常的生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程中會(huì)產(chǎn)生一定量的活性氧(ROS),主要有 O-2·、H2O2、·OH、·O2等[1]。在重金屬脅迫下植物體內(nèi)的 ROS會(huì)大量增加,導(dǎo)致植物內(nèi)發(fā)生代謝紊亂[2]。植物通過(guò)不斷地提高各種抗氧化酶的活性來(lái)消除活性氧產(chǎn)生的不利影響,保障植物正常的生長(zhǎng)[3-5]。因此對(duì)植物過(guò)氧化酶活性的研究,可以掌握植物應(yīng)對(duì)土壤重金屬毒害的解毒應(yīng)激機(jī)理,為進(jìn)一步研究如何防控土壤重金屬對(duì)植物的危害提供理論依據(jù)。
在抗氧化酶系統(tǒng)中超氧化物歧化酶(SOD)和過(guò)氧化物酶(POD)是兩個(gè)非常重要的檢測(cè)指標(biāo)。SOD的測(cè)定方法分為直接法和間接法,由于直接法所需的儀器設(shè)備價(jià)格昂貴以及SOD基質(zhì)-O2-的不穩(wěn)定性,一般多數(shù)采用間接法[6]。間接法分為鄰苯三酚自氧化法、細(xì)胞色素C還原法、氮藍(lán)四唑(NBT)光還原法、黃嘌呤氧化酶-NBT 法等多種方法[7-9]。 POD 的檢測(cè)方法有碘量滴定法[10]、氧電極法和比色法等方法;碘量滴定法重現(xiàn)性差,誤差大[11];氧電極法需要特殊的儀器——氧電極儀,且需要標(biāo)準(zhǔn)酶液制作標(biāo)準(zhǔn)曲線,操作較繁雜。過(guò)氧化氫酶(CAT)的檢測(cè)是根據(jù)CAT催化H2O2生成O2和H20來(lái)測(cè)定其活性,測(cè)定方法有滴定法、紫外分光光度法和氧電極法[12]。
目前在國(guó)內(nèi)外的研究中,測(cè)定抗氧化酶活性的方法較多,國(guó)內(nèi)外還沒(méi)有統(tǒng)一的檢測(cè)方法。由于不同檢測(cè)方法的反應(yīng)原理和酶活力單位定義不同,靈敏度和差異性較大,檢測(cè)結(jié)果差異也較大。在SOD的測(cè)定方法中,鄰苯三酚法的測(cè)定結(jié)果受pH值與鄰苯三酚濃度的影響顯著,因此用該方法測(cè)定SOD時(shí)必須嚴(yán)格控制pH,準(zhǔn)確配制規(guī)定濃度的鄰苯三酚溶液,且在進(jìn)行測(cè)定時(shí)經(jīng)常出現(xiàn)酶液對(duì)鄰苯三酚自氧化速度的負(fù)抑制現(xiàn)象[13];細(xì)胞色素C還原法被認(rèn)為是間接法中的經(jīng)典方法,但要求高純度的細(xì)胞色素C和黃嘌呤氧化酶;而NTB還原法沒(méi)有這些要求,靈敏度比前者約高14.7倍,已被廣泛應(yīng)用于生物學(xué)和醫(yī)學(xué)研究[14-16]。 在 POD 的測(cè)定中,愈創(chuàng)木酚法是應(yīng)用最廣泛的方法,其價(jià)格較經(jīng)濟(jì),且無(wú)需特殊的儀器。在CAT的測(cè)定中,滴定法誤差較大;氧電極法需要專門(mén)的儀器,且CAT標(biāo)準(zhǔn)酶樣品受溫度的影響較大;紫外分光光度法是最常用的方法。
本文以水稻為研究對(duì)象,利用酶檢測(cè)試劑盒與傳統(tǒng)檢測(cè)方法對(duì)水稻根部抗氧化酶的活性進(jìn)行了檢測(cè),以便篩選出一種便捷、結(jié)果可信度高的檢測(cè)方法,為后續(xù)檢驗(yàn)測(cè)定水稻不同部位的抗氧化酶活性提供依據(jù)。
水稻盆栽試驗(yàn)在云南省農(nóng)業(yè)科學(xué)院科研基地進(jìn)行,采用50 cm×30 cm×40 cm的塑料盆,每盆裝土40.0 kg。本試驗(yàn)設(shè)置對(duì)照組CK(不添加Na3AsO4)和試驗(yàn)組 As-40(添加 40 mg/kg的 Na3AsO4)兩組試驗(yàn),分別在水稻旺長(zhǎng)期取水稻根系進(jìn)行抗氧化酶活性的檢測(cè)。
隨機(jī)選取5株水稻,剪取根系,洗凈泥沙,用蒸餾水沖洗3~5次,吸干多余水分;取待測(cè)樣品0.5 g,剪碎置于玻璃勻漿器,加5 mL磷酸緩沖液(0.1 mol/L,pH 7.4),冰浴研磨制成勻漿;在低溫(4℃)下離心(轉(zhuǎn)速5000 r/min)10 min,取上清液即為酶粗提液;于-4℃冷藏備用。
SOD活性檢測(cè)采用總超氧化物歧化酶(T-SOD)測(cè)試盒(A001-1,羥胺法,南京建成科技有限公司);CAT活性檢測(cè)采用過(guò)氧化氫酶(CAT)測(cè)試盒(A007-1,可見(jiàn)光法,南京建成科技有限公司);POD活性檢測(cè)采用過(guò)氧化物酶(POD)測(cè)試盒(A084-3,南京建成科技有限公司)。實(shí)驗(yàn)過(guò)程嚴(yán)格按照試劑盒說(shuō)明書(shū)操作。
采用李合生的方法[17],并加以改進(jìn)。
SOD活性采用氮藍(lán)四唑(NBT)光還原法檢測(cè):取酶液100μL,加入3.4 mL反應(yīng)混合液和0.3 mL 20 μmol/L核黃素溶液,混勻,以不加酶液為對(duì)照,對(duì)照管罩黑色硬紙遮光;將測(cè)定管與對(duì)照管同時(shí)置于4000 lx燈下反應(yīng) 20~30 min,于 560 nm處測(cè)定OD值。
POD活性采用愈創(chuàng)木酚比色法檢測(cè):取分光光度計(jì)比色杯(半徑1 cm),加入反應(yīng)液(含0.1 mol/L pH 6.0的磷酸緩沖液5 mL、愈創(chuàng)木酚28μL、30%H2O219μL)和1 mL酶液,以不加酶液為對(duì)照,混勻,立即計(jì)時(shí),測(cè)定470 nm處的OD值,每隔1 min讀數(shù)1次。
CAT活性采用紫外分光光度法檢測(cè):取酶液100 μL,加入 2.9 mL 反應(yīng)液(20 mmol/L H2O2溶液),混勻。以蒸餾水為空白對(duì)照,在反應(yīng)15 s后開(kāi)始記錄反應(yīng)體系于240 nm處的OD值,即為初始值;然后每隔30 s記錄1次,至少測(cè)定6個(gè)點(diǎn)的OD值,重復(fù)3次。
采用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)分析軟件和Microsoft Excel 2010對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。
從圖1中可以看出:用傳統(tǒng)方法測(cè)定的水稻根部SOD的活性略高于用酶試劑盒法測(cè)定的結(jié)果,且SOD活性表現(xiàn)為As-40>CK,但差異不大;用傳統(tǒng)方法測(cè)定的CAT活性也高于用試劑盒法的檢出值,但兩者間無(wú)顯著差異;用兩種方法檢測(cè)的POD活性值幾乎一致。
圖1 用兩種方法測(cè)定的抗氧化酶活性
2.1.1 SOD檢測(cè)方法的比較 采用酶試劑盒法測(cè)定樣品的SOD活性并以變異系數(shù)對(duì)其精確度進(jìn)行比較,表1顯示酶試劑盒測(cè)定結(jié)果的變異系數(shù)均小于3%,說(shuō)明酶試劑盒測(cè)定結(jié)果精確性好。在相同條件下,采用傳統(tǒng)方法測(cè)定樣品的SOD活性,其變異系數(shù)均大于酶試劑盒測(cè)定的結(jié)果,故在SOD活性檢測(cè)中,酶試劑盒法優(yōu)于傳統(tǒng)方法。
2.1.2 CAT活性測(cè)定方法的比較 采用兩種方法測(cè)定樣品的CAT活性并以變異系數(shù)對(duì)其精確度進(jìn)行比較。從表2可以看出,酶試劑盒法所測(cè)結(jié)果的變異系數(shù)均小于傳統(tǒng)方法所測(cè)結(jié)果的,說(shuō)明酶試劑盒測(cè)定結(jié)果的精確性優(yōu)于傳統(tǒng)方法的。這可能是由于傳統(tǒng)方法的操作工序較為繁雜,每個(gè)環(huán)節(jié)都可能影響檢測(cè)結(jié)果的穩(wěn)定性。故在CAT活性檢測(cè)中,采用酶試劑盒法檢測(cè)優(yōu)于傳統(tǒng)方法檢測(cè)。
表1 SOD活性測(cè)定結(jié)果的變異系數(shù)
表2 CAT活性測(cè)定結(jié)果的變異系數(shù)
2.1.3 POD活性測(cè)定方法的比較 采用兩種方法測(cè)定樣品的POD活性并以變異系數(shù)對(duì)其精確度進(jìn)行比較。從表3可知,酶試劑盒法所測(cè)結(jié)果的變異系數(shù)均小于傳統(tǒng)方法的。這是因?yàn)橛脗鹘y(tǒng)方法測(cè)定時(shí)需要進(jìn)行等時(shí)段的連續(xù)測(cè)定,增加了檢測(cè)的難度,降低了檢出值的準(zhǔn)確度。因此,POD酶試劑盒優(yōu)化了操作過(guò)程,使測(cè)定結(jié)果更穩(wěn)定更準(zhǔn)確。
表3 POD活性測(cè)定結(jié)果的變異系數(shù)
對(duì)兩種方法測(cè)定的結(jié)果進(jìn)行差異顯著性比較,結(jié)果見(jiàn)表4。從表4可以看出,3個(gè)檢測(cè)項(xiàng)目的P值均大于0.05,說(shuō)明用2種方法測(cè)得的結(jié)果都無(wú)顯著性差異。
表4 抗氧化酶活性測(cè)定結(jié)果的差異顯著性
以傳統(tǒng)方法測(cè)得的數(shù)據(jù)為自變量x,以試劑盒法測(cè)得的數(shù)據(jù)為因變量y,對(duì)兩種方法進(jìn)行相關(guān)性分析,結(jié)果見(jiàn)表5。表5的結(jié)果表明,用傳統(tǒng)檢測(cè)方法和酶試劑盒法檢測(cè)的SOD、CAT、POD活性間的相關(guān)系數(shù)都達(dá)到了1,因此可以認(rèn)為兩種方法測(cè)得的3種酶活性基本相同。
對(duì)兩種方法的進(jìn)樣量進(jìn)行比較,結(jié)果見(jiàn)表6。由表6可知:在SOD活性檢測(cè)中,傳統(tǒng)檢測(cè)方法的進(jìn)樣量是酶測(cè)定試劑盒法的1.82倍;在CAT活性測(cè)定中,酶測(cè)定試劑盒法的進(jìn)樣量?jī)H為5μL,而傳統(tǒng)檢測(cè)方法的進(jìn)樣量為其20倍;在POD活性測(cè)定中,傳統(tǒng)檢測(cè)方法的進(jìn)樣量為酶試劑盒法的10倍??梢?jiàn),酶試劑盒法測(cè)定的靈敏度遠(yuǎn)高于傳統(tǒng)檢測(cè)法的。
表5 抗氧化酶活性測(cè)定結(jié)果的相關(guān)性分析結(jié)果
表6 兩種抗氧化酶活性測(cè)定方法的進(jìn)樣量比較
酶試劑盒法測(cè)得結(jié)果的變異系數(shù)小于傳統(tǒng)檢測(cè)方法的,且用兩種方法測(cè)定的結(jié)果無(wú)顯著性差異。綜上所述,在測(cè)定水稻根系SOD、CAT、POD活性時(shí),酶測(cè)定試劑盒法的測(cè)定結(jié)果可信度高,且操作簡(jiǎn)便。
本研究結(jié)果表明:在砷脅迫下,水稻根部SOD、CAT活性受到抑制,這與楊桂娣等[18]的研究結(jié)果一致;而POD活性較對(duì)照升高,這與趙天宏等[19]的研究結(jié)果一致。在測(cè)定水稻根部SOD、CAT、POD活性時(shí),酶測(cè)定試劑盒法和傳統(tǒng)檢測(cè)方法都可以采用,且兩種方法的檢測(cè)結(jié)果無(wú)顯著差異。但從精確度方面考慮,采用酶測(cè)定試劑盒法較好。從操作方面考慮,兩種方法均可采用pH 7.4的緩沖液提取3種酶,對(duì)其活性影響不大[20]。在SOD活性檢測(cè)中,傳統(tǒng)檢測(cè)方法需在試劑加完并混勻后,在4000 lx燈下反應(yīng)20~30 min;而酶檢測(cè)試劑盒法只需在室溫下放置10 min,節(jié)省了檢測(cè)時(shí)間。在CAT活性檢測(cè)中,傳統(tǒng)檢測(cè)方法需在反應(yīng)15 s時(shí)記錄其在240 nm處的OD值作為初始值,然后每隔30 s記錄1次,至少獲得6個(gè)點(diǎn)的數(shù)據(jù),并重復(fù)3次,在結(jié)果計(jì)算中,經(jīng)常由于反應(yīng)時(shí)間的取值范圍不準(zhǔn)確而導(dǎo)致結(jié)果錯(cuò)誤[21];而酶檢測(cè)試劑盒法則不需進(jìn)行此操作。在POD活性檢測(cè)中,傳統(tǒng)檢測(cè)方法需在反應(yīng)液與酶液混勻后,立即開(kāi)始計(jì)時(shí),每隔1 min記錄1次在470 nm處的OD值;但采用酶檢測(cè)試劑盒法進(jìn)行檢測(cè)時(shí)只需將酶液與反應(yīng)液混勻后離心(3500 r/min,10 min)即可。 可見(jiàn),與傳統(tǒng)檢測(cè)方法相比,采用酶檢測(cè)試劑盒法測(cè)定水稻根部 SOD、CAT、POD活性具有操作簡(jiǎn)便、快速的優(yōu)點(diǎn)。
由于不同方法的反應(yīng)原理和酶活性單位的定義不同,且從原料中得到的粗提物酶活力一般較低[22],因此不同檢測(cè)方法的靈敏度差異較大。以相同取樣量采用傳統(tǒng)檢測(cè)方法測(cè)定不同樣品的酶活性,會(huì)出現(xiàn)抑制率變化甚至難以測(cè)出其酶活性的情況。因此,從靈敏度方面考慮,酶試劑盒法測(cè)定酶活性優(yōu)于傳統(tǒng)檢測(cè)方法。
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