呂縝一,陸昌瑞
(東華大學(xué) 化學(xué)化工與生物工程學(xué)院,上海 201600)
CBX7是存在于多梳蛋白家族(Polycomb group,PcG)中多梳抑制復(fù)合物1(Polycomb repressive complex 1,PRC1)上,對細(xì)胞的增殖及衰老起到調(diào)控作用的轉(zhuǎn)錄抑制因子[1]。人源CBX7蛋白位于人類染色體22q13.1上,由251個氨基酸組成,全長約28.3 KDa[2]。其能直接參與PcG復(fù)合物對其他CBX蛋白家族編碼基因的轉(zhuǎn)錄抑制[3],且和人類的多種癌癥和腫瘤的發(fā)生都有著一定聯(lián)系[4-5]。到目前為止,對人源CBX7蛋白結(jié)功能的研究報道并不多,對其結(jié)構(gòu)的研究僅有兩篇報道[6-7]。
本實驗通過對人源CBX7蛋白的二級結(jié)構(gòu)預(yù)測,設(shè)計出相應(yīng)的片段進(jìn)行ppSUMO-CBX7/domain融合蛋白的構(gòu)建[8-10],通過一系列純化方法得到蛋白單體,為CBX7蛋白結(jié)構(gòu)及功能的研究及PcG家族蛋白成員的研究奠定了基礎(chǔ)[11]。
載體:pp-SUMO表達(dá)載體(含6個His標(biāo)簽);菌種:DH5α、BL21感受態(tài)細(xì)胞,CBX7 Template;試劑:K+、IPTG、各種酶及各種分析純等。
根據(jù)預(yù)測得到人源CBX7的二級結(jié)構(gòu)和該蛋白內(nèi)在無序分布圖,設(shè)計出了相應(yīng)的引物及需要表達(dá)的片段[8-10],見表1。
表1 引物的設(shè)計
將PCR擴增后的CBX7/domain和SUMO質(zhì)粒一同用BamH1、Xhol1酶切;再將CBX7/domain與SUMO用T4連接酶連接后轉(zhuǎn)入DH5α感受態(tài)中培養(yǎng),挑取單克隆再次轉(zhuǎn)入BL21感受態(tài)保菌備用。
在37℃、225 r/min的條件下培養(yǎng)構(gòu)建好的工程菌,其OD600到0.6時,向培養(yǎng)基中加入適量IPTG誘導(dǎo)。取菌液經(jīng)4℃,3 500 r/min離心收集細(xì)胞,用 Ni-NTA Binding Buffer(500 mmol/L NaCl,pH值根據(jù)片段PI確定)重懸。用高壓細(xì)胞破碎儀破碎細(xì)胞后將懸液于4℃,12 000 r/min離心1 h。使上清與Ni結(jié)合;用Wash Buffer(設(shè)置Imidazole濃度梯度,500 mmol/L NaCl,pH值根據(jù)片段PI確定)洗脫;接著用Elution Buffer(250 mmol/L Imidazole,500 mmol/L NaCl)洗脫目標(biāo)蛋白;最后 用 Strip Buffer(1mol/L Imidazole,500 mmol/L NaCl)清洗 Ni柱。
經(jīng)過Ni柱親和純化后,若存在和目標(biāo)蛋白分子量大小相近的雜蛋白,需要通過離子交換純化進(jìn)行再次純化。根據(jù)蛋白質(zhì)的PI選取Q_SP_FF Prepacked預(yù)裝柱,通過 Buffer A(50 mmol/L Tris-HCl,1 mmol/L DTT,1 mmol/L EDTA)柱平衡、進(jìn)樣、柱沖洗、Buffer A+Buffer B(50 mmol/L Tris-HCl,1 mmol/L DTT,1 mmol/L EDTA,1 mol/L NaCl)梯度洗脫的程序設(shè)定純化蛋白。
將純化好的目標(biāo)蛋白加入10mL Buffer A+1 mmol/L DTT+5 μL ULP1酶的體系進(jìn)行酶切,切除SUMO載體和His標(biāo)簽。將酶切后的樣品再次用Ni柱純化,得到不含有殘基的CBX7/domain目標(biāo)蛋白[11]。
使用GE公司Superdex 75 10/300 GL預(yù)裝柱,按照 Buffer A(50 mmol/L Tris-HCl,1 mmol/L DTT,1 mmol/L EDTA,500 mmol/L NaCl)柱平衡、上樣、洗脫的步驟進(jìn)行純化。
本次實驗使用PCR、雙酶切、鏈接、轉(zhuǎn)化等方法,構(gòu)建了ppSUMO-CBX7(13-65aa)、ppSUMO-CBX7(51-151aa)和ppSUMO-CBX7(Full-Length)三個蛋白質(zhì)片段。
根據(jù)每個蛋白的自身性質(zhì)不同,改變誘導(dǎo)溫度及IPTG濃度對3個蛋白進(jìn)行誘導(dǎo)條件的探索;根據(jù)每個蛋白的PI不同,對Ni柱親和純化時Buffer的PH值進(jìn)行探索[12-13]。確定ppSUMO-CBX7(13-65aa)的最適誘導(dǎo)溫度為37℃,IPTG濃度為1 mmol/L,Buffer的 pH值為7.5;ppSUMO-CBX7(51-151aa)的最適誘導(dǎo)溫度為18℃,IPTG濃度為0.5 mmol/L,Buffer的pH值無論是多少目標(biāo)蛋白都不可溶;ppSUMO-CBX7(Full-Length)的最適誘導(dǎo)溫度為18℃,IPTG濃度為1 mmol/L,Buffer的pH值為8.5。
隨后,根據(jù)融合蛋白對Imidazole的敏感度不同進(jìn)行了蛋白Ni柱親和純化Wash的Imidazole濃度探索,Imidazole濃度在20~80 mmol/L的范圍內(nèi)設(shè)置7個梯度。根據(jù)條件探索后發(fā)現(xiàn):ppSUMO-CBX7(13-65aa)的Wash最適Imidazole為 20 mmol/L,ppSUMO-CBX7(Full-Length)的Wash最適Imidazole濃度為60 mmol/L。
選取每段融合蛋白的最適誘導(dǎo)條件及純化條件進(jìn)行親和純化,將純化結(jié)果用SDS-PAGE膠檢,得到圖1,該結(jié)果為Western Bolt所驗證。
圖1 ppSUNO-CBX7全長及片段的Ni柱親和純化SDS-PAGE膠檢
因為ppSUMO-CBX7(13-65aa)的親和純化效果較好,可直接酶切,所以離子交換純化只針對ppSUMO-CBX7(Full-Length),經(jīng)過離子交換純化的SDS-PAGE膠檢如圖2所示。
圖2 ppSUNO-CBX7全長的離子交換純化
對 ppSUMO-CBX7(13-65aa)、ppSUMOCBX7(Full-Length)進(jìn)行ULP1酶切,經(jīng)過SDSPAGE和SDS-Tricine PAGE膠檢得到單一目標(biāo)蛋白,如圖3所示。
圖3 ppSUMO-CBX7 ULP1酶切檢測
酶切后的樣品濃度達(dá)到2 mg/mL才適合做分子篩,而CBX7(Full-Length)濃度在1 mg/mL以下,所以只針對CBX7(13-65aa)做分子篩純化及SDS-Tricine PAGE膠檢,結(jié)果如圖4所示。
圖4 CBX7(13-65aa)蛋白的分子篩純化檢測
CBX7蛋白在人類的多種腫瘤和癌癥中都有著重要的作用,但就目前而言對CBX7的研究無論是結(jié)構(gòu)還是功能的報道都很少。通過Psipred網(wǎng)站對人源CBX7蛋白進(jìn)行二級結(jié)構(gòu)及功能區(qū)進(jìn)行預(yù)測,根據(jù)相關(guān)文獻(xiàn)的報道及預(yù)測結(jié)果設(shè)計了引物。通過多種純化手段得到了較純的兩個單體蛋白以及得到已經(jīng)達(dá)到結(jié)晶濃度和純度的CBX7(13-65aa)單體蛋白。在純化不同的蛋白質(zhì)片段的過程中,發(fā)現(xiàn)即使所構(gòu)建的蛋白片段來自于人源CBX7蛋白,但每一段蛋白的性質(zhì)卻大不相同。誘導(dǎo)溫度時間的不同、Imidazole濃度的選擇、Buffer的pH值等對不同片段的純化有著很大影響。這些條件的探索結(jié)果為后續(xù)人源CBX7蛋白各片段及全長的純化提供了重要的參考價值。
與此同時,通過實驗發(fā)現(xiàn)人源CBX7蛋白質(zhì)的中間區(qū)段存在大量不可溶性的蛋白質(zhì),而這段區(qū)域的存在對CBX7蛋白的穩(wěn)定性有一定影響,凡是帶有這段區(qū)域的蛋白質(zhì)片段純化時都易發(fā)生降解或部分?jǐn)嗔训袈涞痊F(xiàn)象;并且如果單獨將這段區(qū)域構(gòu)建出來純化無法得到可溶性蛋白。由此,猜想人源CBX7蛋白質(zhì)可能是以C端和N端親水區(qū)域包裹著中間疏水區(qū)域的狀態(tài)存在于人體中的。目前人源CBX7蛋白的全長還沒有純化到可以結(jié)晶的條件,但是對該蛋白純化的條件探索已基本完成,以上的猜想后續(xù)可通過結(jié)晶及X-ray晶體衍射來繼續(xù)驗證。
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