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線粒體DNA變異與腫瘤的相關性研究進展

2018-01-19 23:59綜述審校
中國腫瘤臨床 2018年6期
關鍵詞:拷貝數線粒體變異

綜述 審校

腫瘤的發(fā)生發(fā)展是由多基因、多信號通路參與的復雜生物學過程。近10余年的研究表明,針對一種代謝特征的研究不適用于所有的腫瘤類型,對腫瘤發(fā)生發(fā)展的研究及對臨床治療的探索正在突破越來越多的傳統(tǒng)模式。在線粒體DNA(mitochondrial DNA,mtDNA)產生變異時,腫瘤細胞會發(fā)生遷移,最終導致轉移灶的形成。而線粒體作為細胞的“能量工廠”,在這一過程中充當了促使腫瘤轉移的“開關”。并且,mtDNA變異是涉及腫瘤疾病發(fā)展及預后等方面的重要因素,其在腫瘤發(fā)生發(fā)展中的作用正備受關注。因此,進一步深入理解mtDNA變異的發(fā)生規(guī)律及作用機制,為腫瘤疾病的診斷、治療及預后判斷提供有意義的參考是極有必要的。

1 腫瘤細胞中mtDNA的變異

mtDNA是高等動物細胞內唯一的核外DNA,在調節(jié)線粒體功能方面起著至關重要的作用,其變異主要包括點突變、缺失、插入及拷貝數的改變,而近年一些研究也發(fā)現mtDNA和nDNA的比率與惡性腫瘤的發(fā)生及進展密切相關。

1.1 點突變

點突變是腫瘤細胞中最常見的mtDNA變異,線粒體 DNA 控制區(qū)(displacement loop,D-loop)是mtDNA轉錄復制的調控區(qū),同時也是mtDNA突變的熱點區(qū)域,其中包含一個多聚胞嘧啶區(qū)(np303-np315),命名為D310,是惡性腫瘤mtDNA最常見的突變區(qū)。Shakhssalim等[1]在110個變異中發(fā)現了48個新突變,膀胱癌患者顯著存在C16069T變異;在D310中,包括C7TC6、C8TC6、C9TC6和C10TC6,這些變異在膀胱癌的病因中發(fā)揮重要作用,促進了對致癌突變的定義。De等[2]在核苷酸57處的mtDNA起始復制位點和D300-310區(qū)段中也證實了另外兩個點突變A4767G和G13481A。Ye等[3]評估來自乳腺癌患者的腫瘤、相鄰非腫瘤和良性乳腺疾?。╞enign breast disease,BBD)患者的組織樣本,發(fā)現D環(huán)區(qū)域的核苷酸16 106和16 437之間的MnⅡ位點突變可能影響乳腺癌的發(fā)生。Guo等[4]通過對40例人喉鱗狀細胞癌(laryngeal squamous cell carcinoma,LSCC)患者的癌旁組織和外周靜脈血樣中的mtDNA檢測發(fā)現,有21例(52.5%)具有體細胞mtDNA D環(huán)突變,而在34個突變點中,28個(82.4%)位于HVⅡ,6個(17.6%)位于HVⅠ。Pereira等[5]認為腫瘤中體細胞mtDNA突變的致病性較非腫瘤組織顯著增高,且與氨基酸變異集合中的隨機選擇是無法分開的。Har?die等[6]在胰腺癌細胞系(patient derived cell lines,PD?CL's)中鑒定了24個mtDNA體細胞突變,在與線粒體代謝功能密切相關的1 000個nDNA中鑒定出另外18個突變,結果表明胰腺腫瘤的異質基因組可能會有共同的代謝表型,但不同腫瘤是通過不同的遺傳機制完成合成代謝需求。

1.2 缺失及插入

目前,在腫瘤細胞中已發(fā)現超過一百種mtDNA片段缺失,其中mtDNA 4 977 bp(np8 470-np13 447)大片段缺失是最為常見的一種。Tao等[7]對中國溫州地區(qū)104例結直腸癌(colorectal cancer,CRC)患者的臨床特征和mtDNA進行了全面分析,表明在CRC的早期階段可能出現大量4 977 bp片段缺失,且隨著腫瘤TNM分期增高缺失數量降低。Nar等[8]研究表明當哇巴因與2-脫氧葡萄糖(2-deoxyglucose,2-DG)聯(lián)合時,mtDNA損傷和mtDNA4977缺失頻率增加,哇巴因可以通過在癌細胞中引起氧化應激來誘導DNA損傷和細胞凋亡。Han等[9]證實了mtDNA片段的缺失可以抑制肺癌細胞的生物合成和代謝,而C-myc可能作為缺氧和放射條件下的關鍵基因,在誘導肺癌細胞凋亡中起到重要作用。Datta等[10]研究發(fā)現,在健康組和白細胞組的mtDNA缺失分別比癌組織低9.8倍和10.5倍,已發(fā)現的mtDNA插入呈現不明顯特異性。Ye等[11]評估了來自55例原發(fā)性乳腺癌患者和21例BBD患者的腫瘤組織和鄰近組織,發(fā)現在所有樣本中檢測到mtDNA4977插入突變,其水平為0.000 149%~7.0%,雖然目前研究提示這些插入不具有腫瘤特異性,但其可能會作為衡量腫瘤變異度的相關因素。

1.3 拷貝數變異

mtDNA功能的發(fā)揮既依賴于其分子結構的完整性,同時也與細胞中mtDNA拷貝數密切相關。Castle等[12]使用500萬33 nt的讀數檢測到人肺良性腫瘤細胞(UMC-11)的大量拷貝數變異。Mengelfrom等[13]在對1 067例年齡為18~93歲丹麥患者研究中發(fā)現血液中的mtDNA通過拷貝增加更多的mtDNA組群,與老年人的健康水平及生存質量密切相關。Cui等[14]研究中發(fā)現,在CRC組織中的mtDNA拷貝數與相應的非腫瘤組織相比較低,較低mtDNA拷貝數的患者比較高mtDNA拷貝數的患者3年生存率低,與淋巴結轉移顯著相關,證實了mtDNA拷貝數的高低與CRC的惡性程度顯著相關。并且,mtDNA拷貝數的改變在不同類型腫瘤中有著顯著性差異[1-4,14-28]:腦癌、食管癌、喉癌、子宮內膜癌、甲狀腺乳頭狀癌及神經膠質瘤組織中mtDNA拷貝數明顯增加,而肝癌、胃癌、口腔癌、肺癌、乳腺癌、結直腸癌、前列腺癌及尤氏肉瘤組織中mtDNA拷貝數顯著降低。Luna等[15]發(fā)現mtDNA3196G、9952A、10006G、10398G的突變,mtD?NA氧化損傷和mtDNA拷貝數增高的組合效應使女性兒童腦腫瘤發(fā)病率超出兒科腦腫瘤正常發(fā)病率的51倍,其結果對兒童腦腫瘤的治療具有指導意義。研究證實氧化磷酸化產能或者呼吸功能的下降可能有助于腫瘤細胞增殖及侵襲能力的增強,而mtDNA作為對其的一種適應性反應則表現出拷貝數量的增加,在一定程度上導致突變進行性累積,為腫瘤細胞的惡性變異、轉移蓄積了內在動力。因此,通過選擇性地誘導mtDNA損傷,調控mtDNA的拷貝數量將有助于腫瘤的靶向治療。

1.4mtDNA/nDNA

mtDNA誘發(fā)細胞癌變的另一個可能途徑是通過mtDNA分子及片段在nDNA中整合來實現的,并使mtDNA與nDNA的比值產生變化。Evdokimovsky等[16]觀察到放療輻射后的小鼠,其有核血細胞中的氧化磷酸化相關基因cytb、ATP6、ND4、ND2和D環(huán)區(qū)域的轉錄,血液細胞中mtDNA/nDNA的比例減少50%,血清中mtDNA/nDNA比值增加,這種釋放進入血液循環(huán)的機制,被認為是由于腫瘤的增生或轉移引起的細胞凋亡、組織壞死、炎癥和線粒體功能障礙所導致的。Chiba等[17]對mtDNA單層(2D)和三維(3D)培養(yǎng)的CRC細胞進行比較,與2D細胞相比,在3D細胞中觀察到mtDNA水平顯著降低,且在3D球狀細胞培養(yǎng)物中觀察到的mtDNA/nDNA比值降低。表明與缺氧條件相比,CRC細胞在含氧量正常條件下,其胞質中所含的大量線粒體會使細胞增殖分化失控,誘發(fā)癌變。Zhang等[18]在放療輻射6個月后的BALB/c小鼠肝臟中觀察到mtDNA/nDNA比例升高,而肌肉、非再生器官表現出mtDNA的減少,肝臟中較高的mtDNA含量是該器官適應高氧化應激的結果,提示在接受放療的腫瘤患者中,mtDNA/nDNA可能作為今后重要的臨床診斷依據。Mohammed等[19]在6例CRC組織和3例健康對照中發(fā)現,線粒體基因tRNALeu(CUN)中的多態(tài)性突變A12308G可能是mtDNA與nDNA結合產生癌癥的致病突變,可能用作未來的診斷工具之一。因此,mtDNA除了自身的變化可使其成為一種潛在的致癌靶標,還能通過與nDNA的相互作用激發(fā)細胞的癌變潛能。

2 mtDNA變異與腫瘤的發(fā)生

Zhang等[20]發(fā)現在膠質母細胞瘤(glioblastoma multiforme,GBM)患者中mtDNA含量比健康對照組顯著升高。Bao等[21]發(fā)現mtDNA在老年肝癌(hepato?cellular carcinoma,HCC)患者的病因中起著關鍵作用。Platek等[22]發(fā)現mtDNA突變在乳腺癌中尤其是雌激素受體(estrogen receptor,ER)陰性的乳腺癌患者中更為頻繁,證實了其可以參與誘導乳腺癌發(fā)生。Feng等[23]研究表明mtDNA突變可能影響人乳頭瘤病毒(human papillomavirus,HPV)感染和宮頸癌的發(fā)生。Chen等[24]研究表明C-myc基因可能通過參與mtDNA的序列整合到子宮頸上皮細胞核中,并參與子宮頸上皮細胞癌的發(fā)生。Chattopadhyay等[25]在口腔鱗狀細胞癌(oral squamous cell carcinoma,OSCC)組織中發(fā)現,mtDNA突變和拷貝數在癌癥組織中呈低表達,推測氧化磷酸化(oxidative phosphorylation,OXPHOS)復合蛋白的功能損傷可能有利于癌細胞生長。Liu等[26]將OSCC患者非癌組織中mtDNA序列與癌組織的D環(huán)進行比較,發(fā)現大量體細胞突變。Zhang等[27]進一步通過克隆和測序mtDNA D環(huán)區(qū)域,發(fā)現D環(huán)中的體細胞突變在癌組織中顯著增多,并且Datta等[10]也證實D環(huán)中的體細胞突變可促進癌癥發(fā)生。Lee等[28]基于CRC中端粒和線粒體的頻繁遺傳變化,從109例CRC組織、64例結腸直腸管腺瘤和28例鋸齒狀息肉中提取mtDNA,其PCR結果表明,端粒和線粒體之間的調節(jié)功能喪失可能觸發(fā)癌癥因子,促使CRC的發(fā)生。因此,對mtDNA突變的檢測可能會成為癌癥早期篩查的重要參考指標。

3 mtDNA變異與腫瘤發(fā)展及預后

Zhang等[29]認為低mtDNA拷貝數可能提示了晚期胃癌患者的不良預后,可變mtDNA含量增加了淋巴結轉移的風險和晚期患者的死亡率。Bao等[21]認為在HCC患者中,較長的白細胞相對端粒長度以及較低的mtDNA拷貝數預示較差的預后。Dang等[30]認為低mtDNA含量與一些臨床病理特征如吸煙、TNM分期密切相關,可能導致喉癌患者的不良預后,與腫瘤患者生存率具有一定的相關性。Feng等[23]認為高mtDNA含量加上10398A突變可能是宮頸癌預后不良的標志物。Yeung等[31]在GBM細胞系的編碼和非編碼區(qū)域內鑒定了大量的mtDNA變體,頻率在D環(huán)最大,且p53突變顯著增加,蛋白質基因ND6是最易發(fā)生的突變基因,而蛋白質基因ND4具有最高的突變頻率,新型變體通過提供電子傳遞鏈(electron transfer chain,ETC)來促進GBM的發(fā)展,促進厭氧糖酵解的發(fā)生,導致腫瘤細胞增殖的加速。Chen[32]指出上皮癌細胞和癌相關基質中線粒體功能的調節(jié)異??纱龠M轉移灶的形成,mtDNA D環(huán)的體細胞突變與癌癥患者的生存率相關,這種突變負荷的增加提示正常細胞向癌細胞轉化。總之,mtDNA已經作為新型的腫瘤標志物對不同腫瘤發(fā)展的各個時期及患者預后情況的判定起到重要作用。

4 mtDNA變異與腫瘤臨床治療

Ye等[33]通過PCR技術準確定量在血漿提取循環(huán)細胞mtDNA,第三代PCR檢測(droplet digital PCR,ddPCR)被證明比實時熒光定量檢測(quantitative PCR,qPCR)技術更簡單和靈敏,而沒有提取的血漿可以直接用于ddPCR中檢測外源核酸。D-loop是影響活性氧(reactive oxygen species,ROS)產生mtDNA改變的熱點,錳超氧化物歧化酶(mitochondrial super?oxide dismutase,Mn-SOD)是保護細胞免受ROS介導損傷的抗氧化酶。Govatati等[34]通過分析線粒體D環(huán)和Mn-SOD表達的CRC序列改變之間的關系,證實線粒體微衛(wèi)星不穩(wěn)定性(mitochondrial microsatellite instability,mtMSI)和Mn-SOD過度表達的檢測,可能有助于識別高風險的患者。Safdar等[35]報道聚合酶-γ射線(polymerase-gamma1,POLG1)被認為是目前唯一的mtDNA修復酶,證明p53在運動介導的維護mtDNA中的作用,并證實了線粒體靶向p53作為線粒體病因疾病的新型治療方式。Ishikawa等[36]認為高轉移特性的腫瘤細胞mtDNA中ND6基因的G13997A突變導致了ROS的過量產生,為腫瘤轉移提供條件,這意味著抗氧化劑的使用可以有效抑制腫瘤轉移的發(fā)生。Yeung等[37]研究表明博來霉素可以作為誘導急性髓細胞白血病(acute myeloid leukemia,AML)細胞mtDNA損傷的藥物,且在原代AML中發(fā)揮同樣作用,采用mtDNA靶向治療可能是AML的有效方法。mtDNA變異的相關研究將不斷應用于臨床,為生物醫(yī)學的進步提供更廣闊的空間。

5 結語

線粒體作為為生命體提供能量的場所,是腫瘤細胞代謝環(huán)節(jié)的關鍵點。目前,對mtDNA變異是否是腫瘤發(fā)生的誘因尚不明確,mtDNA在腫瘤治療中的作用研究也存在著樣本量小、研究方法不統(tǒng)一、對不同腫瘤類型及腫瘤發(fā)生發(fā)展各個階段的針對性不明確等弊端。因此,未來更需要注意的是,針對mtD?NA變異的靶向治療研究不能拘泥于某單一位點,而是要結合其單倍體類型,規(guī)避表觀遺傳改變,使其在臨床治療中適用于腫瘤發(fā)生發(fā)展等不同階段的代謝變化。

綜上所述,由于腫瘤生物學的高度復雜性,臨床上更迫切的需要新的治療方法,而掌握腫瘤細胞發(fā)生發(fā)展過程中所涉及的線粒體代謝的參與過程及機制可以為臨床綜合治療提供新的思路。相信隨著科學研究的深入,mtDNA變異與腫瘤等各類疾病的相關性會被更進一步地揭示,以線粒體為靶向的腫瘤治療方案也將廣泛應用于臨床。

[1]Shakhssalim N,Houshmand M,Kamalidehghan B,et al.The mito‐chondrial C16069T polymorphism,not mitochondrial D310(D‐loop)mononucleotidesequencevariations,isassociatedwithbladdercancer[J].Cancer Cell Int,2013,13(1):120.

[2]De VH,Mendon?a BS,Elseth KM,et al.Part II.Mitochondrial muta‐tional status of high nitric oxide adapted cell line BT‐20(BT‐20‐HNO)as it relates to human primary breast tumors[J].Tumor Biol,2013,34(1):337‐347.

[3]Ye C,Shu XO,Pierce L,et al.Mutations in the mitochondrial DNA D‐loop region and breast cancer risk[J].Breast Cancer Res Treat,2010,119(2):431‐436.

[4]Guo W,Yang D,Xu H,et al.Mutations in the D‐loop region and in‐creased copy number of mitochondrial DNA in human laryngeal squamous cell carcinoma[J].Mole Biol Rep,2013,40(1):13‐20.

[5]Pereira L,Soares P,Máximo V,et al.Somatic mitochondrial DNA mutations in cancer escape purifying selection and high pathoge‐nicity mutations lead to the oncocytic phenotype:pathogenicity analysis of reported somatic mtDNA mutations in tumors[J].Bmc Cancer,2012,12(1):1‐10

[6]Hardie RA,Dam EV,Cowley M,et al.Mitochondrial mutations and metabolic adaptation in pancreatic cancer[J].Cancer Metab,2017,5(1):2.

[7]Tao C,Jing H,Shen L,et al.The mitochondrial DNA 4,977‐bp dele‐tion and its implication in copy number alteration in colorectal can‐cer[J].BMC Medi Gene,2011,12(1):8.

[8]Nar R,Bedir A,Alacam H,et al.The effect of ouabain on mitochon‐drial DNA damage in HepG2 cell lines[J].Tumor Biol,2012,33(6):2107‐2115.

[9]Han CB,Sun L,Ma JT,et al.The influence of mtDNA deletion on lung cancer cells under the conditions of hypoxia and irradiation[J].Lung,2014,192(6):997‐1004.

[10]Datta S,Chattopadhyay E,Ray JG,et al.D‐loop somatic mutations and 5 kb"common"deletion in mitochondrial DNA:important mo‐lecular markers to distinguish oral precancer and cancer[J].Tumor Biol,2015,36(4):3025‐3033.

[11]Ye C,Shu XO,Wen W,et al.Quantitative analysis of mitochondrial DNA 4977‐bp deletion in sporadic breast cancer and benign breast diseases[J].Breast Cancer Res Treat,2008,108(3):427‐434.

[12]Castle JC,Biery M,Bouzek H,et al.DNA copy number,including telomeres and mitochondria,assayed using next‐generation se‐quencing[J].BMC Genomics,2010,11(1):1‐11.

[13]Mengelfrom J,Thinggaard M,Kyvik KO,et al.Mitochondrial DNA copy number in peripheral blood cells declines with age and is as‐sociated with general health among elderly[J].Human Gene,2014,133(9):1149‐1159.

[14]Cui HH,Huang P,Wang ZJ,et al.Association of decreased mito‐chondrial DNA content with the progression of colorectal cancer[J].BMC Cancer,2013,13(1):110.

[15]Luna B,Bhatia S,Yoo C,et al.Proteomic and mitochondrial genom‐ic analyses of pediatric brain tumors[J].Mole Neurobiol,2015,52(3):1341‐1363.

[16]Evdokimovsky EV,Ushakova TE,Kudriavtcev AA,et al.Alteration of mtDNA copy number,mitochondrial gene expression and extracel‐lular DNA content in mice after irradiation at lethal dose[J].Radi Environ Biophy,2011,50(1):181.

[17]Chiba M,Yokoyama C,Okada M,et al.Mitochondrial DNA reduced by hypoxic conditions in three‐dimensional(3D)spheroid cell cul‐tures[J].Tumor Biol,2014,35(12):12689‐12693.

[18]Zhang SB,Zhang M,Cao Y,et al.Delayed dffects of radiation on mi‐tochondrial DNA in radiation‐sensitive organs[M].Oxygen Trans‐port to Tissue XXXIII.Springer New York,2012:139‐145.

[19]Mohammed FM,Khorasany ARR,Mosaieby E,et al.Mitochondrial A12308G alteration in tRNA Leu(CUN)in colorectal cancer samples[J].Diagno Path,2015,10(1):1‐4.

[20]Zhang J,Li D,Qu F,et al.Association of leukocyte mitochondrial DNA content with glioma risk:evidence from a Chinese case‐con‐trol study[J].BMC Cancer,2014,14(1):680.

[21]Bao D,Ba Y,Zhou F,et al.Alterations of telomere length and mtD‐NA copy number are associated with overall survival in hepatocel‐lular carcinoma patients treated with transarterial chemoemboliza‐tion[J].Cancer Chemother Pharmacol,2016,78(4):1‐9.

[22]Platek ME,Shields PG,Tan D,et al.Alcohol consumption and breast tumor mitochondrial DNA mutations[J].Breast Cancer Res Treat,2010,121(2):453‐460.

[23]Feng D,Xu H,Li X,et al.An association analysis between mitochon‐drial DNA content,G10398A polymorphism,HPV infection,and the prognosis of cervical cancer in the Chinese han population[J].Tu‐mor Biol,2016,37(4):1‐9.

[24]Chen D,Xue W,Xiang J.The intra‐nucleus integration of mitochon‐drial DNA(mtDNA)in cervical mucosa cells and its relation with c‐myc expression[J].J Exp Clin Cancer Res,2008,27(1):36.

[25]Chattopadhyay E,De SN,Singh R,et al.Genome‐wide mitochondri‐al DNA sequence variations and lower expression of OXPHOS genes predict mitochondrial dysfunction in oral cancer tissue[J].Tu‐mor Biol,2016,37(9):11861‐11871.

[26]Liu SA,Jiang RS,Chen FJ,et al.Somatic mutations in the D‐loop of mitochondrial DNA in oral squamous cell carcinoma[J].Eur Arch Otorhinolaryngol,2012,269(6):1665‐1670.

[27]Zhang Y,Wang B,Liang Q,et al.Mitochondrial DNA D‐loop AG/TC transition mutation in cortical neurons of mice after long‐term ex‐posure to nucleoside analogues[J].J Neurovir,2015,21(5):500.

[28]Lee H,Cho JH,Park WJ,et al.Loss of the association between telo‐mere length and mitochondrial DNA copy number contribute to colorectal carcinogenesis[J].Path Oncol Res,2018,24(2):323‐328.

[29]Zhang G,Qu Y,Dang S,et al.Variable copy number of mitochondri‐al DNA(mtDNA)predicts worse prognosis in advanced gastric can‐cer patients[J].Diag Path,2013,8(1):173.

[30]Dang S,Qu Y,Jing W,et al.Low copy number of mitochondrial DNA(mtDNA)predicts worse prognosis in early‐stage laryngeal cancer patients[J].Diag Path,2014,9(1):28.

[31]Yeung KY,Dickinson A,Donoghue JF,et al.The identification of mi‐tochondrial DNA variants in glioblastoma multiforme[J].Acta Neu‐ropath Commun,2014,2(1):1.

[32]Chen EI.Mitochondrial dysfunction and cancer metastasis[J].J Bio‐energe Biomem,2012,44(6):619‐622.

[33]Ye W,Tang X,Liu C,et al.Accurate quantitation of circulating cell‐free mitochondrial DNA in plasma by droplet digital PCR[J].Analyt Bioanalyt Chemis,2017,409(10):2727‐2735.

[34]Govatati S,Malempati S,Saradamma B,et al.Manganese‐superox‐ide dismutase(Mn‐SOD)overexpression is a common event in colorectal cancers with mitochondrial microsatellite instability[J].Tumor Biol,2016,37(8):10357‐10364.

[35]Safdar A,Khrapko K,Flynn JM,et al.Exercise‐induced mitochondri‐al p53 repairs mtDNA mutations in mutator mice[J].Skeletal Mus‐cle,2016,6(1):1‐18.

[36]Ishikawa K,Imanishi H,Takenaga K,et al.Regulation of metastasis;mitochondrial DNA mutations have appeared on stage[J].J Bioen‐erge Biomem,2012,44(6):639‐644.

[37]Yeung M,Hurren R,Nemr C,et al.Mitochondrial DNA damage by bleomycin induces AML cell death[J].Apoptosis,2015,20(6):811‐820.

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