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中藥復(fù)方“脊髓康”對神經(jīng)干細(xì)胞分化作用的影響*

2018-01-05 08:01:26苑文超黃桂成
關(guān)鍵詞:含藥原代膠質(zhì)

苑文超,王 磊,馬 勇,2**,黃桂成,郭 楊,

潘婭嵐1,楊博元1,董晤訓(xùn)1,宗永剛2

(1.南南京中醫(yī)藥大學(xué)骨傷修復(fù)與重建新技術(shù)實驗室 南京 210023;2.揚(yáng)州大學(xué)江蘇省中西醫(yī)結(jié)合老年病防治重點實驗 揚(yáng)州 225002)

脊髓損傷(Spinal Cord Injury,SCI)是由汽車事故、跌倒、運(yùn)動和暴力等高能量損傷引起的疾病[1]。嚴(yán)重的SCI會損傷神經(jīng)組織,導(dǎo)致神經(jīng)功能的突然喪失。據(jù)流行病學(xué)顯示,我國SCI的發(fā)病率呈逐年上升趨勢,且多發(fā)于中青年[2,3],SCI的發(fā)生不但給患者身體和精神狀態(tài)帶來了極大的影響,而且給家庭和社會帶來巨大的經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)[4]。脊髓損傷后自身神經(jīng)元大量丟失,且一旦損傷難以修復(fù),因此成為骨科及神經(jīng)科學(xué)領(lǐng)域的研究熱點和難點。NSCs是能夠?qū)崿F(xiàn)自我更新、增殖和分化的神經(jīng)母體細(xì)胞,具有產(chǎn)生神經(jīng)元和膠質(zhì)細(xì)胞的多向分化潛能,在治療SCI方面具有巨大的應(yīng)用前景。但研究表明[5],經(jīng)移植的NSCs在生理狀態(tài)下,大部分分化為神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞,產(chǎn)生神經(jīng)元的幾率較低,從而阻礙SCI部位的恢復(fù)。中藥復(fù)方“脊髓康”為臨床驗方,用于脊髓損傷患者的治療,療效確切[6]。前期研究表明,JSK可促進(jìn)大鼠SCI后神經(jīng)功能的恢復(fù)、提升SCI后脊髓內(nèi)腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子蛋白及mRNA的表達(dá)水平[7]。鑒于此,課題組通過對JSK調(diào)控大鼠NSCs分化方向的研究,擬為NSCs移植治療SCI提供新的研究思路和為中醫(yī)藥治療SCI提供一定的依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 動物

清潔級SD孕鼠1只,孕期13-15天,體質(zhì)量300-350 g;清潔級SD大鼠10只,雌雄均可,體質(zhì)量250-300 g。均購自南京青龍山動物繁殖中心,動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(蘇)2012-0008。

1.1.2 藥物及試劑

脊髓康(生黃芪30 g,當(dāng)歸12 g,丹參20 g,地鱉蟲10 g,赤芍12 g,淫羊藿10 g,蜈蚣1條等)為我們臨床經(jīng)驗方(國家發(fā)明專利ZL200910026193.7)(鑒定人:馬勇;工作單位:南京中醫(yī)藥大學(xué);職稱:教授),其生藥由南京中醫(yī)藥大學(xué)附屬醫(yī)院藥劑科提供。DMEM/F12(1:1)培養(yǎng)基、B-27(無血清添加劑)、多聚賴氨酸(PLL)、谷氨酰胺(Glutamin)、FBS、HBSS溶液均購自美國Gibco公司;堿性成纖維細(xì)胞生長因子(basic fibroblast growth factor,bFGF)、表 皮 生 長 因 子(epidermal growth factor,EGF)均購于美國 PeproTech公司;二脒基苯基吲哚(4′6-diamidino-2-phenylindole,dihydrochloride,Dapi),購于Sigma公司,大鼠抗Nestin抗體、GFAP抗體、βⅢ-Tubulin抗體均購于美國CST公司,二抗Alexa488、Alexa 594均購于Abcam公司。

1.2 方法

1.2.1 含藥血清的制備

“脊髓康”原方,加10倍水量,常法煎煮,濾液濃縮至2 g·mL-1,4℃保存?zhèn)溆谩:幯褰M以生藥量20 g·kg-1灌胃,連續(xù)給藥3天。末次給藥后1 h經(jīng)乙醚呼吸麻醉,腹動脈采血,每只大鼠采血5 mL,室溫靜置2 h[8],3000 r·min-1離心6 min,分離血清,0.22 μm 微孔濾膜過濾除菌,分裝,-40℃保存?zhèn)溆?。按照上述方法另取空白血? mL以稀釋含藥血清濃度。

1.2.2 原代NSCs的分離、培養(yǎng)以及鑒定1.2.2.1 原代NSCs的分離、培養(yǎng)

取孕期13-15天SD大鼠,2.5%戊巴比妥鈉麻醉,剖腹取出胎鼠,迅速置于冰上;75%乙醇浸泡消毒后,完整取出大腦及腦干;體式顯微鏡下,暴露海馬體,剝離血管膜,剪碎海馬體至1-2 mm3大小,暫存于0℃HBSS溶液中;用5 mL注射器緩慢吹打形成細(xì)胞懸液;400目濾網(wǎng)過濾,收集懸液;1000 rpm離心5 min,移去上清,以無血清培養(yǎng)基重懸;計數(shù)后,以106·mL-1密度接種于培養(yǎng)瓶中,37℃、5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng);24 h后全量換液,首次換液后每3天半量換液。約7-8天后形成神經(jīng)球,以機(jī)械吹打法進(jìn)行傳代。

1.2.2.2 原代NSCs鑒定

將部分神經(jīng)球或消化后的單個細(xì)胞接種到PLL(濃度為0.1 mg/mL)處理的蓋玻片上,繼續(xù)培養(yǎng)15 min(神經(jīng)球)或過夜(單個細(xì)胞),4%多聚甲醛固定15 min后,PBS潤洗(5 min×3),0.2%Triton×-100室溫處理15 min,PBS潤洗(5 min×3),1%BSA常溫封閉1 h,PBS潤洗(5 min×3)加入鼠抗Nestin一抗,4℃過夜。次日,PBS潤洗(5 min×3),加入FITC標(biāo)記山羊抗兔二抗,常溫孵育2 h,PBS潤洗(5 min×3),DAPI標(biāo)記細(xì)胞核,室溫5 min,PBS潤洗(5 min×3),封片、拍照。

1.2.2.3 NSCs分化后行免疫化學(xué)染色

將NSCs接種于經(jīng)PLL處理過的24孔培養(yǎng)板中,每孔約接種40個神經(jīng)球,加入500 μL 10%FBS完全培養(yǎng)基,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中,2-3天后全量換液,7天后行βIII-Tubulin、GFAP免疫熒光染色,Alexa 594標(biāo)記神經(jīng)元骨架,Alexa 488標(biāo)記星形膠質(zhì)細(xì)胞相關(guān)膜蛋白,免疫熒光顯微鏡下觀察、拍照。

1.2.3 “脊髓康”含藥血清干預(yù)NSCs的分化情況1.2.3.1 實驗分組

10%FBS誘導(dǎo)分化后,每孔分別加入10%、5%、2.5%的脊髓康含藥血清,即JSK高、中、低劑量組(JSKH、JSK-M、JSK-L),2.5%、5%含藥血清組用空白血清稀釋,臨用前將各組血清加入培養(yǎng)液中,并使培養(yǎng)液中含藥血清終濃度為10%,同時設(shè)置不加含藥血清(Blank)組(對照組),每組分別重復(fù)3次以確保穩(wěn)定性。

1.2.3.2βⅢ-Tubulin、GFAP免疫熒光染色

(1)不同視野下計算βⅢ-Tubulin、GFAP細(xì)胞百分比

待以上兩組NSCs貼壁分化7天后,分別行βⅢ-Tubulin、GFAP免疫熒光染色,熒光顯微鏡下觀察、拍照。每組各取30個視野,分別計算出βⅢ-Tubulin、GFAP陽性細(xì)胞數(shù)占細(xì)胞總數(shù)的百分比,進(jìn)行統(tǒng)計分析。

(2)不同視野下對βⅢ-Tubulin、GFAP細(xì)胞熒光定量

應(yīng)用Image-Pro Plus軟件對各組βⅢ-Tubulin、GFAP陽性細(xì)胞進(jìn)行Area(Area of interest)、累計光密度(IOD)定量,并計算Area(紅光)/Area(綠光)、IOD(紅光)/IOD(綠光)的百分比,進(jìn)行統(tǒng)計分析。

1.2.4 統(tǒng)計學(xué)處理

用SPSS19.0統(tǒng)計軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行處理,實驗所得數(shù)據(jù)以±s表示,采用單因素方差分析進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)處理。P<0.05具顯著性差異。

2 結(jié)果

2.1 原代NSCs培養(yǎng)

原代分離的NSCs,懸浮于無血清培養(yǎng)基中,3-4天后單細(xì)胞逐漸形成、大小不一的細(xì)胞團(tuán),待7-8天后,細(xì)胞團(tuán)逐漸生長成神經(jīng)球形,如圖1所示。

2.2 原代NSCs的鑒定

將生長狀態(tài)良好的第4代NSCs行免疫化學(xué)染色,行Dapi、Nestin雙標(biāo),如圖2所示。

2.3 在“脊髓康”作用下,NSCs的分化情況

NSCs經(jīng)JSK-H、JSK-M、JSK-L含藥血清干預(yù)分化7天后,行βⅢ-Tubulin、GFAP免疫熒光雙標(biāo),如圖3所示。

2.4 βIII-Tubulin、GFAP的陽性細(xì)胞表達(dá)的百分比比較

如表1所示,JSK-H、JSK-M、JSK-L與Blank比較βIII-Tubulin百分比明顯增高(P<0.05),JSK-H與JSKM、JSK-L比較均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01);JSK-H、JSKM、JSK-L與Blank比較GFAP百分比明顯降低(P<0.05),JSK-H與JSK-M、JSK-L、比較均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。

2.5 βIII-Tubulin、GFAP的陽性細(xì)胞表達(dá)熒光定量百分比比較

圖1 a、b、c分別是NSCs在100、200、400倍顯微鏡下的生長狀態(tài)

圖2 a:NSCs形成神經(jīng)球后的鑒定;b:NSCs神經(jīng)球貼壁24 h后的鑒定。

JSK-H、JSK-M、JSK-L與Blank相比有顯著差異(P<0.05);JSK-H與JSK-M、JSK-L均有顯著差異(P<0.01)。

圖3 A、B、C、D分別為脊髓康含藥血清高、中、低劑量組和空白組。

表1 βIII-tubulin、GFAP陽性細(xì)胞百分比比較

3 討論

NSCs是一類具有分裂潛能和實現(xiàn)自我更新能力的母細(xì)胞,可以通過不對等的分裂方式產(chǎn)生神經(jīng)組織的各類細(xì)胞。通過移植的方式將NSCs植入宿主體內(nèi),不但能夠向神經(jīng)系統(tǒng)的病變部位遷移、趨化,而且能夠存活、增殖,分化為神經(jīng)元和膠質(zhì)細(xì)胞,進(jìn)而促進(jìn)損傷部位功能的部分恢復(fù)。目前,NSCs移植技術(shù)業(yè)已應(yīng)用于腦梗塞、腦中風(fēng)、脊髓損傷等疾病的治療當(dāng)中,并取得了一定進(jìn)展[12]。

神經(jīng)元是構(gòu)成神經(jīng)系統(tǒng)結(jié)構(gòu)和功能的基本單位,通過誘導(dǎo)的方法促進(jìn)神經(jīng)干細(xì)胞向神經(jīng)元分化,有利于神經(jīng)受損后神經(jīng)功能的恢復(fù)[13]。然而,在實驗過程中,我們發(fā)現(xiàn),誘導(dǎo)NSCs分化后,其形成的大量的膠質(zhì)細(xì)胞,以星形膠質(zhì)細(xì)胞為主,而神經(jīng)元細(xì)胞卻很少。在細(xì)胞的培養(yǎng)過程中,星形膠質(zhì)細(xì)胞迅速生長,導(dǎo)致神經(jīng)元細(xì)胞生長緩慢,甚至停止生長,最后大量死亡,給后期的NSCs體內(nèi)回輸實驗帶來了諸多困難。如何有效的抑制膠質(zhì)細(xì)胞增殖,促進(jìn)神經(jīng)元細(xì)胞的生長儼然已是亟待解決的問題。脊髓損傷后,神經(jīng)功能的恢復(fù)主要依賴于神經(jīng)元對神經(jīng)通路的重建,但是神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞的大量產(chǎn)生會阻礙神經(jīng)通路的形成,并且導(dǎo)致脊髓受損部位瘢痕的產(chǎn)生[14]。因此,通過調(diào)控因素抑制星形膠質(zhì)細(xì)胞增殖、定向誘導(dǎo)NSCs分化為神經(jīng)元細(xì)胞并促進(jìn)其生長,對于SCI的治療意義重大。

圖4 βIII-Tubulin、GFAP的陽性細(xì)胞表達(dá)熒光定量百分比

JSK是我們結(jié)合多年臨床實踐經(jīng)驗,篩選出具有“祛瘀通督,溫腎利濕,調(diào)和氣血”功效的中藥復(fù)方。以大補(bǔ)元?dú)庵S芪為君藥;配以理氣之枳實,補(bǔ)血之當(dāng)歸,清熱涼血之赤芍加強(qiáng)調(diào)和氣血之力;又配以活血化瘀之川芎、丹參,攻下逐瘀之大黃祛瘀生新;更加搜經(jīng)剔絡(luò)之水蛭、蜈蚣和地鱉蟲等蟲類藥通督。諸藥配合,共奏“袪瘀通督”之功效。以溫補(bǔ)腎陽之肉蓯蓉、仙靈脾、益智仁治腎之虛寒;在上之濕治以行氣化濕之厚樸;在下之濕治以利水滲濕之澤瀉、茯苓,車前子。諸藥配合,共奏“溫腎利濕”之功效。前期基礎(chǔ)研究及臨床研究均提示該方對SCI有著良好的功效,在改善脊髓微環(huán)境,促進(jìn)SCI后患者神經(jīng)功能的恢復(fù)方面療效顯著[15-17]。基于該方的良好療效及神經(jīng)元在SCI后發(fā)揮的重要作用,本實驗即嘗試探討JSK治療SCI是否與其促進(jìn)NSCs分化為神經(jīng)元的作用存有一定聯(lián)系,實驗結(jié)果(圖3、4)顯示,JSK能促進(jìn)NSCs向神經(jīng)元方向分化,且存在一定的量效關(guān)系。NSCs分化的調(diào)控機(jī)制主要與微環(huán)境、基因和信號通路三個方面有關(guān)[18]?!凹顾杩怠备纳萍顾栉h(huán)境的作用已經(jīng)得到證實[15,19],但其干預(yù)NSCs分化的分子機(jī)制尚不清楚,仍需進(jìn)一步探索。

本實驗仍存在的問題:1、在取原代NSCs時,為保證孕鼠的孕期的一致性,課題組采用觀察未受孕大鼠的動情周期[20]的方法,雖達(dá)到了孕期一致的目的,但是浪費(fèi)了大量時間和精力。目前,課題組也在尋求簡便易行的方法;2、雖然JSK含藥血清促進(jìn)了NSCs向神經(jīng)元分化,但是其具體的分子機(jī)制尚不清楚,這是課題組下一步研究的方向;3、人體是一個復(fù)雜的環(huán)境,如何模擬人體內(nèi)部環(huán)境,進(jìn)而保證NSCs分化后神經(jīng)元細(xì)胞的存活的問題也是我們努力的方向。

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