徐桂珍++簡(jiǎn)雪平++眭云鵬++馬麗++劉燕平+文輝才
[摘要]下肢缺血性疾病是臨床常見(jiàn)的嚴(yán)重危害中老年人健康的疾病之一,目前治療方法多樣,一般采用藥物、血管搭橋、介入手術(shù)等方式,但遠(yuǎn)期療效較差,治療效果往往不甚理想。近年來(lái),脂肪干細(xì)胞在治療下肢缺血性疾病方面的實(shí)驗(yàn)研究逐漸增多。本文擬就目前脂肪干細(xì)胞分化為血管內(nèi)皮細(xì)胞及其治療下肢缺血性疾病的研究現(xiàn)狀作一綜述,并對(duì)其存在的問(wèn)題進(jìn)行分析及展望。
[關(guān)鍵詞]脂肪干細(xì)胞;血管內(nèi)皮細(xì)胞;下肢缺血;移植;分化
[中圖分類號(hào)]Q813.1 R654.4 [文獻(xiàn)標(biāo)志碼]A [文章編號(hào)]1008-6455(2017)09-0122-03
Differentiation of Adipose-derived Stem Cells into Endothelial Cells and their Transplantation for Hindlimb Ischemia
XU Gui-zhen,JIAN Xue-ping,SUI Yun-peng,MA Li,LIU Yan-ping,WEN Hui-cai
(Department of Plastic and Cosmetic Surgery,the First Affiliated Hospital of Nanchang University,Nanchang 330006,Jiangxi,China)
Abstract: Ischemicdiseaseoflowerextremityisaseverediseasethreateninghumanhealth.Treatmentforischemicdiseasecommonlyusedrugs, vascular bypass,interventional surgery, but the long-term effect is unsatisfied.Thisreview aimstosummarizethedifferentiation of adipose-derived stem cells into endothelial cells and their transplantation for Hindlimb Ischemia, and to analyze current problems and to prospect the future.
Key words:adipose-derivedstemcells; vascularendothelial cells; hindlimb ischemia; transplantation;differentiation
隨著社會(huì)的發(fā)展和人口老齡化進(jìn)程的加快,下肢缺血性疾病越來(lái)越困擾著中老年患者及其家人,已成為臨床上嚴(yán)重危害中老年人群體健康的常見(jiàn)疾病之一。目前,臨床針對(duì)下肢缺血性疾病的治療方法多樣,一般采用藥物、血管搭橋、介入手術(shù)等方式,但遠(yuǎn)期療效較差,對(duì)于肢體嚴(yán)重缺血的患者需要進(jìn)行截肢處理,因此治療效果往往不甚理想[1]。近年來(lái),干細(xì)胞因其強(qiáng)大的多向分化能力和自我更新能力而不斷被研究,在臨床治療下肢缺血性疾病方面得到廣泛的應(yīng)用。脂肪干細(xì)胞(adipose-derived stem cells,ADSCs)不僅具有多向分化潛能和細(xì)胞因子分泌能力,更因其儲(chǔ)量豐富,獲取方便,免疫排斥反應(yīng)弱,無(wú)倫理限制等特性,干細(xì)胞移植治療展現(xiàn)了較好的臨床應(yīng)用前景,為下肢缺血患者帶來(lái)新的希望?,F(xiàn)將近年來(lái)ADSCs向血管內(nèi)皮細(xì)胞分化的基礎(chǔ)研究及其在下肢缺血性疾病中的應(yīng)用進(jìn)行綜述。
1 ADSCs的生物學(xué)特性
ADSCs主要位于機(jī)體脂肪組織中,屬于一種中胚層來(lái)源間充質(zhì)干細(xì)胞,經(jīng)膠原酶消化、離心、培養(yǎng)后所得。ADSCs在人類和動(dòng)物體內(nèi)獲取方式不一樣,人ADSCs可由脂肪抽吸或外科手術(shù)切取的方式獲取,動(dòng)物ADSCs可由腹股溝脂肪、內(nèi)臟脂肪等部位獲取。ADSCs的活性同時(shí)受到取材部位、方式以及供者年齡等因素的影響,一定程度上存在差異。在下腹部和大腿內(nèi)側(cè)獲取的ADSCs其單位體積內(nèi)的數(shù)量最高[2]。隨著年齡增長(zhǎng),ADSCs老化程度更高,表現(xiàn)出増殖、分化及遷移能力的相應(yīng)降低[3]。
研究表明ADSCs在低血清或者無(wú)血清的條件下也能生長(zhǎng),并且其誘導(dǎo)潛能不受影響[4]。在低糖、低氧和低谷氨酸等條件下,ADSCs的濃度是骨髓中干細(xì)胞的100~300倍[5]。ADSCs的傳代培養(yǎng)平均倍增時(shí)間需要兩天,在10代左右仍然能保持穩(wěn)定的倍增率,且衰老和死亡的細(xì)胞比例出現(xiàn)的較少。以上說(shuō)明ADSCs是間充質(zhì)干細(xì)胞中易于培養(yǎng)和大量應(yīng)用的種子細(xì)胞。
ADSCs由于其形態(tài)上與骨髓來(lái)源干細(xì)胞相似,因此無(wú)法從形態(tài)學(xué)上將兩者進(jìn)行區(qū)分。目前ADSCs尚無(wú)特異的表面標(biāo)志物,ADSCs表面標(biāo)志物也略有差別,主要受ADSCs培養(yǎng)方式的不同、細(xì)胞使用代數(shù)的變換、流式和免疫學(xué)檢查使用抗體來(lái)源不一致等因素的影響[6]。最常用的是通過(guò)分化表型逆推的方式鑒定ADSCs,流式細(xì)胞儀來(lái)鑒定ADSCs。研究表明[7],ADSCs陽(yáng)性表達(dá)CD29、CD44、CD49、CD71、CD90、CDl05,Sca-1等抗原,陰性表達(dá)CD31、CD34、CD45等抗原,通過(guò)免疫標(biāo)志對(duì)細(xì)胞進(jìn)行有效篩選,可以得到較純的干細(xì)胞,有助于ADSCs的進(jìn)一步研究。
ADSCs可通過(guò)自身分泌或者旁分泌方式分泌抗炎、抗凋亡、免疫調(diào)節(jié)等因子。研究證實(shí),ADSCs在缺血、缺氧及損傷的條件下可促進(jìn)相關(guān)細(xì)胞因子的分泌,包括血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(VEGF)、肝細(xì)胞生長(zhǎng)因子(HGF)、b型成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(bFGF)、基質(zhì)源性血管因子(SDF-1)、前列腺素E2(PGE2)等。Hao等[8]發(fā)現(xiàn)ADSCs可通過(guò)調(diào)節(jié)PGE2的表達(dá)影響巨噬細(xì)胞IL-10、IL-6、TNF-α細(xì)胞因子的分泌,為損傷組織的再生及修復(fù)提供適宜的微環(huán)境。endprint
2 ADSCs向血管內(nèi)皮細(xì)胞分化
2.1 在體外ADSCs向血管內(nèi)皮細(xì)胞分化:ADSCs在條件培養(yǎng)基下可以向組織內(nèi)多種細(xì)胞分化,在局部微環(huán)境下ADSCs能誘導(dǎo)分化成為骨細(xì)胞、軟骨細(xì)胞、脂肪細(xì)胞以及心肌細(xì)胞等。作為間充質(zhì)干細(xì)胞的一員,ADSCs具有跨胚層分化的潛能,可被誘導(dǎo)分化為血管內(nèi)皮細(xì)胞。
Miranville等[9]的實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),在低濃度血清的培養(yǎng)基中,表面ADSCs可分化為具有功能性的血管內(nèi)皮樣細(xì)胞,特異性表達(dá)CD31標(biāo)記物和第VIII因子相關(guān)抗原。Amos等[10]的報(bào)道表明,在血管內(nèi)皮細(xì)胞生長(zhǎng)因子和外來(lái)剪切力的作用下,ADSCs重新排列,表達(dá)血管內(nèi)皮細(xì)胞表面標(biāo)志物、周細(xì)胞表面標(biāo)志物和血管干細(xì)胞相關(guān)分子;Volz等[11]研究證實(shí),ADSCs與內(nèi)皮細(xì)胞共培養(yǎng),在表皮生長(zhǎng)因子(EGF)、氫化可的松(Hydrocortisone)誘導(dǎo)下可向血管內(nèi)皮細(xì)胞方向分化。以上說(shuō)明ADSCs經(jīng)過(guò)一定的環(huán)境誘導(dǎo)可向成熟血管內(nèi)皮細(xì)胞分化。
2.2 在體內(nèi)ADSCs向血管內(nèi)皮細(xì)胞分化和遷徙:近年來(lái),ADSCs參與血管構(gòu)建過(guò)程,在許多研究中得到證實(shí)。此外,ADSCs被不斷應(yīng)用于移植治療各種難治性疾病,如糖尿病潰瘍、腦卒中、下肢缺血以及心肌梗死等,均表明ADSCs可改善缺血區(qū)域的供血和功能。新生血管生成主要包括兩階段,即血管發(fā)生和血管形成。血管發(fā)生主要是通過(guò)內(nèi)皮祖細(xì)胞的分化、增殖、遷移,形成血管網(wǎng),血管形成是在已經(jīng)成熟的血管床基礎(chǔ)上形成毛細(xì)血管。據(jù)此理論,學(xué)者們提出了治療性血管形成和治療性血管生成兩個(gè)概念,為提高細(xì)胞治療組織的存活率、治療組織缺血性疾病提升了理論層次。由于ADSCs自分泌和旁分泌的作用特點(diǎn),其不僅可以治療血管形成,也可以治療血管新生。Fischer等[12]研究證實(shí),在內(nèi)皮生長(zhǎng)因子和外來(lái)剪切力的作用下,ADSCs可向成熟血管內(nèi)皮細(xì)胞分化。Altman等[13]報(bào)道表明,植入的ADSCs在局部微環(huán)境下可以向血管內(nèi)皮細(xì)胞方向分化。Borges等[14]將ADSCs和血管內(nèi)皮細(xì)胞共同移植,能有效構(gòu)建絨毛尿囊膜的微血管網(wǎng)絡(luò),發(fā)揮ADSCs促進(jìn)血管生成的作用。總結(jié)歸納ADSCs促進(jìn)血管再生的機(jī)制可能為:①ADSCs自我分化成血管內(nèi)皮細(xì)胞參與新生血管的形成;②ADSCs在損傷局部自身分泌以及調(diào)節(jié)周邊細(xì)胞表達(dá)多種細(xì)胞活性因子,促進(jìn)局部血管新生,抑制細(xì)胞凋亡;③ADSCs與血管內(nèi)皮細(xì)胞協(xié)同作用,從而促進(jìn)血管新生。
3 ADSCs在下肢缺血中的應(yīng)用
ADSCs是一種具有很強(qiáng)的自我更新能力和多向分化潛能的間充質(zhì)干細(xì)胞,相比于臍帶血間充質(zhì)干細(xì)胞及骨髓來(lái)源干細(xì)胞,ADSCs具有儲(chǔ)量豐富,獲取方便,無(wú)免疫排斥反應(yīng),不受醫(yī)學(xué)倫理問(wèn)題束縛等優(yōu)點(diǎn),其在組織修復(fù)和再生醫(yī)學(xué)的各個(gè)領(lǐng)域被廣泛地研究。大量的研究證實(shí),采用自體ADSCs移植治療缺血組織,可以促進(jìn)下肢缺血的恢復(fù)。
3.1 細(xì)胞治療:近年來(lái)研究證實(shí)[15],自體或者異體ADSCs移植治療下肢缺血,其治療結(jié)果是有效的。ADSCs可分化為成熟血管內(nèi)皮細(xì)胞,并參與缺血下肢的微血管新生。在基因治療領(lǐng)域,導(dǎo)入的外源基因在ADSCs體內(nèi)能夠穩(wěn)定地表達(dá),因此ADSCs可以作為目的基因的載體。近年來(lái)有報(bào)道介紹通過(guò)病毒介導(dǎo)VEGF、HGF等基因轉(zhuǎn)染,以及低氧預(yù)處理ADSCs,可以增強(qiáng)下肢缺血組織血管新生的能力。Shevchenko等[16]的研究用腺病毒介導(dǎo)的VEGF165基因轉(zhuǎn)染ADSCs,其仍然保持了成脂、成骨的分化能力和粘附特性,血管生成素-1(Ang-I)基因的mRNA表達(dá)水平顯著增加,而成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子-1(FGF-1)、干細(xì)胞生長(zhǎng)因子(HGF)的水平無(wú)明顯變化;將轉(zhuǎn)染后的ADSCs與人工基質(zhì)膠混合后植入小鼠皮下,發(fā)現(xiàn)ADSCs能夠顯著促進(jìn)血管生成;用轉(zhuǎn)染后的ADSCs注射移植到小鼠缺血下肢肌肉內(nèi),VEGF165在ADSCs中得到持續(xù)性的高表達(dá),并且血流恢復(fù)速度明顯優(yōu)于未轉(zhuǎn)染組。
3.2 組織工程(微凝膠):游離的ADSCs移植注射到動(dòng)物病灶區(qū)域,會(huì)出現(xiàn)大量流失和死亡現(xiàn)象,導(dǎo)致細(xì)胞治療效率低、不穩(wěn)定、重復(fù)性差[17]。因此,在臨床治療研究領(lǐng)域,尋找到一種高效、可控的方法應(yīng)對(duì)以上問(wèn)題顯得尤為重要。Lee等[18]將ADSCs與含有成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子-2(FGF2)的可降解緩釋凝膠共同注射到小鼠缺血下肢肌肉內(nèi),在注射后第4周和12周進(jìn)行肌肉樣本分析發(fā)現(xiàn),聯(lián)合處理后細(xì)胞存活率、新生毛細(xì)血管數(shù)量和相關(guān)促血管生長(zhǎng)因子的表達(dá)量顯著高于ADSCs懸液組和單純FGF2凝膠組。以上結(jié)果表明FGF2緩釋凝膠和ADSCs共同移植可提高干細(xì)胞移植到缺血區(qū)域的長(zhǎng)期保留率和促血管再生能力。Li等[19]將ADSCs與可注射明膠微冰膠進(jìn)行體外預(yù)培養(yǎng),其目的是促進(jìn)ADSCs間的相互作用形成3D微組織,積累大量細(xì)胞外基質(zhì)和活性因子。然后通過(guò)注射器定點(diǎn)注射使其聚集在治療區(qū)域,發(fā)現(xiàn)ADSCs可有效地應(yīng)對(duì)機(jī)體病灶區(qū)域缺血、炎癥等惡劣環(huán)境,并且3D微組織相當(dāng)于傳統(tǒng)游離細(xì)胞療法十分之一的間充質(zhì)干細(xì)胞的用量,就可使得患有下肢缺血性疾病的小鼠實(shí)現(xiàn)血管和肌肉組織再生,避免截肢的發(fā)生。該種可注射型可降解明膠微冰膠能與ADSCs相互作用,為ADSCs創(chuàng)造一個(gè)較好的微環(huán)境,使細(xì)胞在其中粘附、生長(zhǎng)和增殖,減少細(xì)胞在缺血部位的死亡率和流失率,保證缺血局部有足夠的細(xì)胞數(shù)量發(fā)揮治愈功能。Park等[20]通過(guò)3D培養(yǎng)法形成ADSCs球體混合基質(zhì)膠注射到大鼠缺血患肢皮下,ADSCs能持續(xù)性地分泌各種細(xì)胞生長(zhǎng)因子,起到促進(jìn)患肢血管再生的作用,且治療效果優(yōu)于ADSCs懸液混合基質(zhì)膠注射組,該種方法不僅能促進(jìn)周圍血管生長(zhǎng),同時(shí)能有效的促進(jìn)內(nèi)部血管生成。
3.3 物理輔助及其他聯(lián)合治療:2015年P(guān)rochroka等[21]學(xué)者提出一種雞尾酒療法,在含有多種細(xì)胞因子的人脂肪干培養(yǎng)基中,采用ADSCs培養(yǎng)基提取物治療兔下肢缺血模型,研究表明治療組下肢肌肉血管密度顯著高于對(duì)照組,說(shuō)明ADSCs在體內(nèi)局部缺血環(huán)境下分泌的多種細(xì)胞因子也可直接起到治療效果。2016年Yoshida等[22]報(bào)道使用ADSCs聯(lián)合帶蒂血管皮瓣治療大鼠下肢缺血模型的創(chuàng)面,實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示在聯(lián)合治療組的效果較單純ADSCs治療組和單純帶蒂血管皮瓣治療組更好。Park等[23]提出使用ADSCs聯(lián)合微光照射治療小鼠下肢缺血,觀察到效果比單純注射更佳。endprint
以上研究顯示,通過(guò)改變ADSCs的培養(yǎng)方式,或者聯(lián)合其他治療方法,都能有效改善ADSCs治療下肢缺血的效果。
4 總結(jié)和展望
應(yīng)用ADSCs治療下肢缺血,是一項(xiàng)具有巨大發(fā)展?jié)摿Φ尼t(yī)療技術(shù),可為一系列難治性疾病提供新的治療方向,引起了各國(guó)臨床醫(yī)師、科研工作者及患者的關(guān)注。無(wú)論是基礎(chǔ)研究還是臨床研究均證實(shí)了ADSCs移植治療下肢缺血性疾病的有效性。目前此技術(shù)的應(yīng)用仍處于起步階段,臨床研究大多是單中心小樣本報(bào)告病例總結(jié)式報(bào)告,未形成統(tǒng)一的評(píng)價(jià)標(biāo)準(zhǔn),觀察時(shí)間短,樣本量少,說(shuō)服力、科學(xué)性不強(qiáng),未來(lái)亟待開(kāi)展多中心前瞻性隨機(jī)對(duì)照研究。另,理論研究尚未不完善,其治療的安全性及有效性并沒(méi)有充分的數(shù)據(jù)可以證實(shí),更多的研究依然是集中在動(dòng)物實(shí)驗(yàn)領(lǐng)域。隨著研究的不斷深入,ADSCs移植治療下肢缺血的機(jī)制將會(huì)得到更全面、具體的解釋,同時(shí)也將為下肢缺血等難治性疾病的防治帶來(lái)更多思路和方法,能使更多患者受益。
[參考文獻(xiàn)]
[1]Etsu,Suzuki,Daishi,et al.Adipose tissue-derived stem cells as a therapeutic tool for cardiovascular disease[J].World J Cardiol,2015,7(8):454-465.
[2]Gir P,Brown SA,Oni G,et al.Fat grafting: evidence-based review on autologous fat harvesting, processing, reinjection, and storage[J].Plast Reconstr Surg,2012,130(1):249-258.
[3]Kawagishi-Hotta M,Hasegawa S,Igarashi T,et al.Enhancement of individual differences in proliferation and differentiation potentials of aged human adipose-derived stem cells[J].Regn Ther,2017,6:29-40.
[4]Song SY,Chung HM,Sung JH.The pivotal role of VEGF in adipose-derived-stem-cell-mediated regeneration[J].Expert Opin Biol Th,2010, 10(11):1529-1537.
[5]Dhanasekaran M,Indumathi S,Poojitha R,et al.Plasticity and banking potential of cultured adipose tissue derived mesenchymal stem cells[J].Cell Tissue Bank,2013, 14(2):303.
[6]袁???,秦金保,葉開(kāi)創(chuàng),等.脂肪干細(xì)胞治療下肢缺血的研究進(jìn)展[J].現(xiàn)代生物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2015,15(28):5598-5600.
[7]Li K,Gao J,Zhang Z,et al.Selection of donor site for fat grafting and cell isolation[J].Aesthet Plast Surg,2013,37(1):153.
[8]Hao C,Shintani S,Shimizu Y,et al.Therapeutic angiogenesis by autologous adipose-derived regenerative cells: comparison with bone marrow mononuclear cells[J].Am J Physiol-Heart C,2014,307(6): H869.
[9]Miranville A,Heeschen C,Sengenès C,et al.Improvement of postnatal neovascularization by human adipose tissue-derived stem cells[J].Circulation,2004,110(3):349.
[10]Amos P J,Shang H,Bailey AM,et al.IFATS Collection: The Role of Human Adipose-Derived Stromal Cells in Inflammatory Microvascular Remodeling and Evidence of a Perivascular Phenotype[J].Stem Cells,2008,26(10):2682.
[11]Volz A C, Huber B, Schwandt A M, et al. EGF and hydrocortisone as critical factors for the co-culture of adipogenic differentiated ASCs and endothelial cells[J]. Differentiation,2017, 95: 21-30.
[12]Fischer LJ,Mcilhenny S,Tulenko T,et al.Endothelial differentiation of adipose-derived stem cells: Effects of endothelial cell growth supplement and shear force[J].J Surg Res,2009,152(1):157-166.endprint
[13]Altman AM,Yan Y,Matthias N,et al.IFATS collection: Human adipose-derived stem cells seeded on a silk fibroin-chitosan scaffold enhance wound repair in a murine soft tissue injury model[J].Stem Cells,2009,27(1):250.
[14]Borges J,Mueller MC,Padron NT,et al.Engineered adipose tissue supplied by functional microvessels[J].Tissue Eng,2004,9(6):1263-1270.
[15]Sz?ke K,Brinchmann JE.Concise Review: Therapeutic Potential of Adipose Tissue-Derived Angiogenic Cells[J].Stem Cell Transl Med,2012,1(9):658.
[16]Shevchenko EK, Makarevich PI,Tsokolaeva ZI,et al.Transplantation of modified human adipose derived stromal cells expressing VEGF165 results in more efficient angiogenic response in ischemic skeletal muscle[J].J Transl Med,2013,11(1):138.
[17]Cheng AY, García AJ.Engineering the matrix microenvironment for cell delivery and engraftment for tissue repair[J].Curr Opin Bi,2013,24(5):864.
[18]Lee TJ,Bhang SH,Yang HS,et al.Enhancement of long-term angiogenic efficacy of adipose stem cells by delivery of FGF2[J].Microvasc Res,2012,84(1):1.
[19]Li Y,Liu W,Liu F,et al.Primed 3D injectable microniches enabling low-dosage cell therapy for critical limb ischemia[J].P Natl Acad Sci USA,2014,111(37): 13511-13516.
[20]In-Su P,Kang JA,Jungmi K,et al.Therapeutic effect of human adipose-derived stromal cells cluster in rat hind-limb ischemia[J].Anat Rec,2014,297(12): 2289-2298.
[21]Procházka V,Jur?íková J,La??ák O,et al.Therapeutic Potential of Adipose-Derived Therapeutic Factor Concentrate for Treating Critical Limb Ischemia[J].Cell Transplan,2015,25(9):1623-1633.
[22]Yoshida S,Yoshimoto H,Hirano A,et al.Wound Healing and Angiogenesis through Combined Use of a Vascularized Tissue Flap and Adipose-Derived Stem Cells in a Rat Hindlimb Irradiated Ischemia Model[J].Plast Reconstr Surg,2016,22(2):1486-1497.
[23]Park IS,Chung PS,Ahn JC.Enhanced angiogenic effect of adipose-derived stromal cell spheroid with low-level light therapy in hind limb ischemia mice[J]. Biomaterial,2014,35(34):9280-9289.
[收稿日期]2017-01-18 [修回日期]2017-07-16
編輯/張惠娟endprint