吳衛(wèi)賓,任志勇,宋君,張維彬,魏長月
(1.陽光融和醫(yī)院 骨科,山東 濰坊 261000;2.中國人民解放軍第89醫(yī)院 骨科,山東 濰坊 261021)
因外傷等各種原因致四肢長骨大段缺損較為常見,臨床上有較多的方法治療,而Ilizarov技術是由前蘇聯(lián)醫(yī)學專家Gavriil Ilizarov于1952年設計并初步應用于臨床。該技術的理念是在損傷肢體用鋼針貫穿固定骨骼的幾個平面,Ilizarov外固定器連接固定,但需較長的外固定時間,有骨質(zhì)疏松、針道感染等各種并發(fā)癥存在。而解決并發(fā)癥則需縮短外固定架的固定時間,然而牽張成骨區(qū)成骨質(zhì)量必須盡早接近或達到正常就顯得尤為重要。近年來組織工程技術的迅猛發(fā)展,IGF-1在成骨于骨生長中起到非常重要的骨代謝平衡調(diào)節(jié),參與了整個生命周期[1,2]。Johansson等[3]發(fā)現(xiàn)IGF-1既可增加成骨細胞的合成、分泌,又可加強破骨細胞的功能,但對成骨細胞作用更強,使骨質(zhì)增多,骨密度增加。任志勇等[4]在實驗中設計兔脛骨模型牽張成骨應用骨形態(tài)蛋白2基因轉(zhuǎn)染骨髓間充質(zhì)干細胞證明了有促進骨形成及提高骨質(zhì)量作用。因此,我們通過分別將兔脛骨干骺端截骨,應用Ilizarov技術制作兔脛骨牽張成骨模型,在固定期內(nèi)第2天實驗組分別注入IGF-1轉(zhuǎn)染的自體骨髓間充質(zhì)干細胞于兔脛骨牽張延長區(qū)間隙內(nèi),驗證IGF-1轉(zhuǎn)染的自體骨髓間充質(zhì)干細胞移植是否有促進對兔脛骨牽張成骨骨形成質(zhì)量的作用,并為臨床提供重要參考依據(jù)。
健康新西蘭白兔48只,體重(2.5±0.2)kg,(9±1)周齡,雄性,由中國人民解放軍第89醫(yī)院動物實驗中心提供。
1.2.1 實驗動物分組
健康新西蘭白兔隨機分三組,每組16只,A組為實驗組:固定期第2天于牽張成骨區(qū)間隙內(nèi)注入IGF-1轉(zhuǎn)染的自體骨髓間充質(zhì)干細胞200μL。B組為對照組:于牽張成骨區(qū)間隙內(nèi)注入相同濃度200μL自體骨髓間充質(zhì)干細胞。C組為空白組:牽張成骨區(qū)間隙內(nèi)不注入任何物質(zhì)。
1.2.2 兔自體骨髓間充質(zhì)干細胞的分離和培養(yǎng)
隨機取16只新西蘭白兔并依次標號1-16號,用5 mL注射器,取稀釋的肝素(1×104U/L)1 mL,肌肉注射。消毒后在兔股骨大粗隆頂點用實驗骨髓穿刺針抽取股骨骨髓4 mL,直接加入含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液5 mL中,置于5%的CO2培養(yǎng)箱內(nèi),溫度為37℃。3 d后更換一次,半量,此后每2天換液1次,方法同上。80%細胞鋪滿瓶底時,完全去掉上清液。沖洗:用PBS沖洗1遍后,加入0.25%胰蛋白酶消化2 min等待細胞變圓后,再加含血清DMEM液終止消化,吹打細胞,將兔自體骨髓間充質(zhì)干細胞培養(yǎng)傳代至第P3代細胞,觀察細胞生長狀態(tài)良好。
1.2.3 真核質(zhì)粒pcDNA3.1-IGF-1轉(zhuǎn)染兔自體骨髓間充質(zhì)干細胞
利用重組大腸桿菌擴增并提取足夠數(shù)量空載質(zhì)粒、重組質(zhì)粒。將轉(zhuǎn)染48 h后的兔骨髓間充質(zhì)干細胞FITC標記后在熒光顯微鏡下觀察,轉(zhuǎn)染pcDNA3.1-IGF-1后的骨髓間充質(zhì)干細胞在熒光鏡下呈現(xiàn)綠色,而未轉(zhuǎn)染組及轉(zhuǎn)染空載體pcDNA3.1組未見熒光反應(圖 1 ,2)。
圖1 轉(zhuǎn)染 pcDNA3.1-IGF-1(FITC標記×20)
圖2未轉(zhuǎn)染及轉(zhuǎn)染空載體pcDNA3.1(FITC標記×20)
1.2.4 動物模型的制作
無菌條件下進行,肌注氯胺酮麻醉。沿兔左脛前內(nèi)側(cè)縱行切開中上1/3皮膚及皮下組織,鈍性分離脛前肌,暴露脛骨,在脛骨粗隆下約1.0 cm水平處截骨,分別在截骨面上下各0.5~1.0 cm處穿放兩組平行克氏針,將雙邊外固定架給予固定。截斷腓骨,縫合、包扎。術前、術中及術后青霉素肌肉注射預防感染。術后1周開始延長遠端穿骨模塊,每天牽張1.0 mm,分2次進行,牽張長度共1.0cm。固定期第2天,將相應編號IGF-1基因轉(zhuǎn)染的自體骨髓間充質(zhì)干細胞200 uL注入兔脛骨模型A組的牽張延長間隙內(nèi);B組在牽張延長間隙給予注入相應編號相同濃度的自體骨髓間充質(zhì)干細胞;C組不予任何物質(zhì)注入。
1.3.1 影像學觀察
各組分別在固定期的第2周末,第6周末行兔左側(cè)脛骨模型全長X線透視,觀察牽張成骨延長區(qū)的成骨情況。
1.3.2 HE染色觀察
固定期第2,6周末在牽張成骨區(qū)內(nèi)取材,HE染色,切成50 um厚切片,光鏡下觀察組織學變化。
1.3.3 骨密度測定
于第3個月末取各組6只動物標本,用Hologic QDR-2000雙能X線骨密度儀(中國人民解放軍第89醫(yī)院影像科)測定骨密度。
1.3.4 結構力學實驗
第3個月末取各組6只動物標本,用CSS-4000萬能材料測試儀(中國人民解放軍第89醫(yī)院全軍創(chuàng)傷骨科研究所生物力學實驗室提供)行承受負荷強度、結構剛度、能量吸收結構生物力學測定。
固定期第2周末:X線片示三組牽張成骨兔脛骨模型正位片上,對位對線良好。三組延長區(qū)均可見低密度骨痂形成影像,骨痂密度A組略高于B組及C組(圖3)。
圖3 固定期第2周末X線表現(xiàn)
圖4 固定期第6周末X線表現(xiàn)
圖5 固定期第2周末HE染色(HE染色×200)
圖6 固定期第6周末HE染色(HE染色×100)
固定期第6周末:X線片示三組牽張成骨兔脛骨模型正位片上,對位對線良好。牽張成骨延長區(qū)三組新骨形成的數(shù)量及骨密度明顯增加,填充于整個牽張成骨延長區(qū),骨痂影似由延長區(qū)間隙的兩端向中央生長,兩端有骨皮質(zhì)征象。延長區(qū)可見少量新骨影,呈片狀及條索狀排列。在X線片上顯示A組較B組及C組亮度高(圖4)。
固定期第2周末:顯示A組有少量纖維軟骨骨痂形成,B組及C組無纖維軟骨骨痂形成,炎性細胞及破骨細胞均減少(圖5)。
固定期第6周末:三組均有成熟骨基質(zhì)及骨小梁,但A組較B組及C組骨細胞增生活躍,軟骨肥厚帶增大,成骨細胞明顯可見密度增加、骨細胞肥大、鈣鹽沉積均勻,軟骨骨痂已向骨性骨痂轉(zhuǎn)變(圖6)。
牽張成骨固定期3個月后各組隨機取6只實驗動物標本,Hologic QDR--2000雙能X線骨密度儀測定骨密度,用SPSS17.0統(tǒng)計程序在電子計算機上對實驗結果進行統(tǒng)計學分析,A組骨密度相對值(%)顯著高于B組與C組P<0.05,差異有統(tǒng)計學意義。B組與C組對比P>0.05無統(tǒng)計學意義。骨密度值由高到低順序排列為:A組>B組>C組(表1)。說明胰島素樣生長因子1轉(zhuǎn)染的自體骨髓間充質(zhì)干細胞在兔脛骨牽張成骨實驗中可以促進骨生成。
牽張成骨固定期3個月后各組取6只實驗動物標本行骨密度測定,使用CSS-4000萬能材料測試儀行生物力學測定。測定承受負荷強度、結構剛度、能量吸收各項指標,用SPSS 17.0統(tǒng)計程序行統(tǒng)計分析,分析實驗數(shù)據(jù)結果示:A組優(yōu)于B組和C組P<0.05,差異有統(tǒng)計學意義。B組與C組對比,P>0.05無統(tǒng)計學意義。A組載荷強度最大(表2)。生物力學測試數(shù)值由高到低順序排列為:A組>B組>C組。說明IGF-1轉(zhuǎn)染的自體骨髓間充質(zhì)干細胞在兔脛骨牽張成骨實驗中可以促進骨生成的質(zhì)量。
表1 骨密度測試結果(±s)
表1 骨密度測試結果(±s)
Group n BMD相對值(%)A組 6 47.9±23.1 B組 6 28.9±21.2 C組 6 26.8±22.3
表2 結構生物力學差數(shù)(±s)
表2 結構生物力學差數(shù)(±s)
Group n 最大負荷(N) 結構剛度(N·mm-1) 能量吸收(N·mm)A 組 6 187.35±11.68 207.66±35.73 209.73±26.51 B 組 6 173.87±21.54 189.17±38.34 170.66±29.31 C 組 6 169.97±29.34 185.82±40.53 169.75±20.67
1905年意大利學者Codivila曾報道骨延長術;Ilizarov研究發(fā)現(xiàn)了牽張應力對組織生長再生的刺激作用,即牽張再生規(guī)律。Hamdy等[5]發(fā)現(xiàn)延長區(qū)出現(xiàn)牽引縱軸方向排列的膠原纖維和骨小梁,鈣化從兩端逐漸向中心。Cope等[6]的實驗也發(fā)現(xiàn)兩端向延長區(qū)中心逐漸鈣化,纖維組織和新生的骨小梁也逐漸增多,在延長后的第42天左右,則可見相對成熟的再生骨組織。Aronson等[7]研究觀察肢體延長區(qū)的細胞增殖現(xiàn)象,實驗中利用增殖細胞核抗原(PCNA)發(fā)現(xiàn)骨延長區(qū)增殖細胞呈區(qū)域分布,細胞的增殖與牽拉作用有關。Ilizarov外固定器連接固定,用于創(chuàng)傷及矯形方面如骨折、骨缺損、肢體延長、關節(jié)問題等。牽張成骨過程中成骨區(qū)在牽張期與固定早期骨質(zhì)脆弱,使該項技術需較長的外固定時間,然而有骨質(zhì)疏松、針道感染等各種并發(fā)癥存在。這些存在的問題一直讓我們探究。
IGF-1具有內(nèi)分泌和旁分泌特性的單鏈多肽因子,幾乎參與體內(nèi)每個器官的生長和功能[8-10]。在青春期和成年期IGF-1骨骼發(fā)育和成熟方面都起到重要作用,分別參與長骨生長、骨成熟、鈣質(zhì)在骨骼中的沉積和保持骨質(zhì)密度[11,12]的過程。在出生后及整個青春期,IGF-1和生長激素兩個因子對長骨的發(fā)育成熟都起著至關重要的作用[13,14],IGF-1促進骨基質(zhì)的合成和礦化是多樣性的,可以通過不依賴促有絲分裂的途徑,影響骨代謝。IGFs還可以顯著增加骨吸收與骨形成的偶聯(lián)作用。鑒于IGF在成骨中的重要作用,科學研究人員將外源性生長因子應用于牽張成骨或骨折愈合區(qū),從而加速骨創(chuàng)傷修復愈合過程,但由于外源性生長因子半衰期短,加之提取困難,價格昂貴等限制性因素的存在,應用效果不盡人意。自體骨髓間充質(zhì)干細胞不具有免疫原性,且具有取材創(chuàng)傷小、儲備多、易培養(yǎng)等優(yōu)點,經(jīng)IGF-1基因介導后植入牽張成骨區(qū)后可很好地存活增殖,并持續(xù)分泌IGF-1,可以很好地避免外源性生長因子應用的限制因素。應用符合Ilizarov骨牽張技術理念外固定架固定,在固定期內(nèi)第2天于牽張間隙內(nèi)注入IGF-1基因轉(zhuǎn)染的自體骨髓間充質(zhì)干細胞,驗證IGF-1基因介導的自體骨髓間充質(zhì)干細胞移植對兔脛骨牽張成骨骨形成質(zhì)量是否有促進作用未見文獻相關報道。
成骨質(zhì)量與多方面有密切關系,非介入的影像檢查是常用的臨床檢測手段,臨床常據(jù)此評估骨愈合的質(zhì)量,決定何時可以安全地拆除外固定器,目前常規(guī)的X線片還是最經(jīng)濟、有效的方法。我們于固定期的第2周末,第6周末對各組實驗動物分別行牽張成骨區(qū)X線攝片。在X線片上顯示實驗組明顯較對照組及空白組亮度高。我們同時在固定期的第2周末及第6周末將牽張成骨區(qū)骨組織作了HE染色觀察。除此之外我們還在本實驗中行骨密度及生物力學測定,實驗組均優(yōu)于對照組及空白組。因此我們推斷經(jīng)IGF-1基因轉(zhuǎn)染的自體骨髓間充質(zhì)干細胞通過分泌IGF-1對牽張區(qū)成骨質(zhì)量有明顯的促進作用。總之,本實驗將經(jīng)IGF-1基因轉(zhuǎn)染的自體骨髓間充質(zhì)干細胞移植到牽張成骨區(qū),通過干細胞的增殖分泌IGF1促進牽張成骨區(qū)成骨質(zhì)量。但IGF-1相互作用復雜且與多環(huán)節(jié)相關,目前還需我們進一步實驗研究。
[1]Giustina A.Does growth hormone replacement therapyimprove cardiac function[J].Nat Clin Pract EndocrinolMetab,2007,3(9):614-615.
[2]Mazziotti G,A Giustina,E Canalis,et al.Glucocorticoid induced osteoporosis:clinical and therapeutic aspects[J].Arq Bras Endocrinol Metabol,2007,51(8):1404-1412.
[3]Woods KA,C Camacho-Hubner,MO Savage,et al.Intrauterine growth retardation and postnatal growth failure associated with deletion of the insulin-like growth factor I gene[J].N Engl J Med,1996,335(18):1363-1367.
[4]任志勇,邱世超,黃現(xiàn)峰.骨形態(tài)發(fā)生蛋白2基因修飾自體骨髓間充質(zhì)干細胞移植促進兔脛骨牽張成骨的實驗研究[J].中國矯形外科雜志,2014,22(5):453-457.
[5]Hamdy RC,Rivard Ch.Histologic evaluation of bone regeneration in cases of limb lengthing by Ilizarov’s technique[D].An experimental study in the dog Ann Chir,1997,51(8):875-883.
[6]Cope JB,Samchukov ML.Regenerate bone formation and remodeling during mandibular osteodistraction[J].Angle Orthop,2000,70(2):99-111.
[7]Aronson J,Shen XC,Gao GG,et al.Sustained proliferation accmpanies distraction osteogenesis in the rats[J].Orthop Res,1997,15(4):563-569.
[8]Kurtoglu S,Kondolot M,Mazicioglu MM,et a1.Growth hormone,insulin like growth factor-1,and insulin-like growth factor-binding protein-3 levels in the neonatal period:a preliminary study[J].Pediatr Endocrinol Metab,2010,23(9):885-889.
[9]Skamoto T,Nakagawa T,Horie RT,et a1.Inner ear drug delivery system from the clinical point of view[J].Acta Otolaryngol Suppl,2010,5(563):101-104.
[10]Sassoon CS,Zhu E,Fang L,et a1.Interactive efects of corticosteroid and mechanical ventilation on diaphragm muscle function[J].Muscle Nerve,2011,43(1):103-111.
[11]Baroncelli GI,S Bertelloni,FSodini,etal.Acquisition of bone mass in normal individuals and in paticrinol Metab,2003,16(2):327-335.
[12]Monson JP,WM Drake,PV Carroll,et al.Influence of growth hormone on accretion of bone mass[J].Horm Res,2002,58(1):52-56.
[13]Codrons V,F Vanderbist,RK Verbeeck,et al.Systemic delivery of parathyroid hormone(1-34)using inhalation dry powders in rats[J].Pharm Sci,2003,92(5):938-950.
[14]Guler HP,J Zapf,E Scheiwiller,et al.Recombinant human insulin-like growth factor I stimulates growth and has distinct effects on organ size in hypophysectomized rats[J].Proc Natl Acad Sci USA,1988,85(13):4889-4893.