国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

葡萄球菌核酸酶樣結(jié)構(gòu)蛋白1在應(yīng)激刺激下與T細胞胞內(nèi)抗原1共同參與應(yīng)激顆粒聚集

2017-06-29 11:24邵潔張兵兵趙猛周云麗任麗
天津醫(yī)藥 2017年6期
關(guān)鍵詞:核酸酶結(jié)構(gòu)域質(zhì)粒

邵潔,張兵兵,趙猛,周云麗,任麗

葡萄球菌核酸酶樣結(jié)構(gòu)蛋白1在應(yīng)激刺激下與T細胞胞內(nèi)抗原1共同參與應(yīng)激顆粒聚集

邵潔,張兵兵,趙猛,周云麗,任麗△

目的探討葡萄球菌核酸酶樣結(jié)構(gòu)蛋白1(SND1)在應(yīng)激刺激下如何與T細胞胞內(nèi)抗原1(TIA-1)共同參與應(yīng)激顆粒(SG)的聚集以及如何調(diào)節(jié)應(yīng)激反應(yīng)。方法利用免疫熒光實驗和激光共聚焦顯微鏡觀察HeLa細胞中的SND1蛋白與TIA-1蛋白在應(yīng)激刺激下是否形成共定位顆粒,并利用綠色熒光蛋白載體過表達質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HeLa細胞進行外源蛋白表達,從而確定在應(yīng)激刺激下SND1蛋白與TIA-1結(jié)合的結(jié)構(gòu)域。利用RNA干擾技術(shù)敲除HeLa細胞中SND1蛋白表達并利用Western Blotting檢測蛋白表達水平,從而觀察SND1低表達是否對TIA-1聚集形成SG產(chǎn)生影響。利用不同熱休克刺激時間觀察SND1與TIA-1的聚集過程是否存在動態(tài)變化。結(jié)果SND1蛋白在應(yīng)激刺激下與TIA-1蛋白結(jié)合共同參與SG聚集,其主要作用結(jié)構(gòu)域為葡萄球菌核酸酶結(jié)構(gòu)域(SN domain)。SND1低表達不會抑制TIA-1聚集到SG,但會減少SG的數(shù)量。在不同熱休克刺激時間下,SND1聚集到SG的運輸過程滯后于TIA-1。結(jié)論SND1蛋白在應(yīng)激刺激下與TIA-1蛋白共同參與SG的聚集,從而調(diào)節(jié)細胞應(yīng)激反應(yīng)。

應(yīng)激;RNA干擾;葡萄球菌核酸酶樣結(jié)構(gòu)蛋白1;T細胞胞內(nèi)抗原1;應(yīng)激顆粒

真核細胞在受到應(yīng)激刺激時會啟動細胞的保護機制,聚集可調(diào)節(jié)細胞功能的蛋白形成應(yīng)激顆粒(SG)。SG的成分包括未被翻譯的mRNA、翻譯起始因子、核糖體、RNA結(jié)合蛋白等[1]。SG的主要功能

被認為是抑制mRNA的翻譯,同時選擇性地合成生存急需蛋白,從而保護細胞免受應(yīng)激侵害[2]。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn)葡萄球菌核酸酶樣結(jié)構(gòu)蛋白1(SND1)可與Ras-GAP SH3結(jié)構(gòu)域結(jié)合蛋白(G3BP)結(jié)合從而參與SG形成,并調(diào)節(jié)細胞應(yīng)激反應(yīng)[3]。另有研究表明SND1作為含有多聚A尾mRNA的結(jié)合蛋白參與mRNAs的代謝與穿梭[4],而SND1在參與應(yīng)激反應(yīng)時其103位的蘇氨酸會被磷酸化修飾[5],但其對抗應(yīng)激刺激的具體機制尚未闡明。T細胞胞內(nèi)抗原1(TIA-1)是參與SG聚集、結(jié)合多聚A尾mRNA的RNA結(jié)合蛋白[6-7]。TIA-1是RNA識別模序類家族成員,在穩(wěn)定狀態(tài)下會富集于細胞核內(nèi),同時也會在某些生理狀態(tài)下穿梭于胞核與胞質(zhì)之間[7],并且TIA-1是SG的標(biāo)志蛋白,其朊病毒樣結(jié)構(gòu)域(PRD)具有自我聚集功能,可促進SG中的RNA結(jié)合蛋白聚集[6]。本研究旨在探討SND1蛋白如何通過與TIA-1結(jié)合參與應(yīng)激反應(yīng),從而為今后研究細胞應(yīng)激反應(yīng)等保護機制提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 細胞系與過表達質(zhì)粒 HeLa細胞由芬蘭坦佩雷大學(xué)醫(yī)學(xué)技術(shù)研究所分子免疫學(xué)實驗室惠贈。綠色熒光蛋白載體過表達質(zhì)粒包括pEGFP-SND1全長蛋白、pEGFP-SN片段、pEGFP-TSN片段,均為天津醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院免疫學(xué)教研室構(gòu)建。

1.1.2 主要試劑及儀器 抗SND1抗體(鼠源,多克隆抗體)、抗α-Tubulin抗體(兔源,多克隆抗體)、Texas Red-596標(biāo)記的抗羊熒光二抗(兔源,多克隆抗體)、Alexa Flour-488標(biāo)記的抗鼠熒光二抗(兔源,多克隆抗體)購自Abcam公司??筍ND1抗體(羊源,多克隆抗體)、抗TIA-1抗體(羊源,多克隆抗體)購自Santa Cruz公司。辣根過氧化物酶標(biāo)記的抗鼠源、抗羊源、抗兔源的IgG二抗購自晶美公司。Lipofectamine 2000轉(zhuǎn)染試劑盒購自美國Invitrogen公司。亞砷酸鈉(Arsenite Sodium)購自美國Sigma公司。小干擾RNA序列,包括亂序siRNA(Scramble siRNA)和siRNA-SND1由美國Invitrogen公司設(shè)計并合成。激光共聚焦顯微鏡(FV1000,日本Olympus公司)。

1.2 方法

1.2.1 應(yīng)激刺激實驗 培養(yǎng)HeLa細胞,在細胞處于對數(shù)生長期時將HeLa細胞分別接種到3個90 mm培養(yǎng)皿中,分為A、B、C組,A組即正常對照組,37℃培養(yǎng);B組以45℃-45 min刺激;C組為亞砷酸鈉0.5 mmol/L-1 h刺激,即培養(yǎng)基中加入亞砷酸鈉至終濃度為0.5 mmol/L。按以上刺激條件對細胞進行應(yīng)激刺激,由于TIA-1是SG的標(biāo)志蛋白,所以SG形成標(biāo)準(zhǔn)為:HeLa細胞經(jīng)過抗TIA-1抗體染色后,在顯微鏡下能觀察到TIA-1呈陽性表達的紅色熒光顆粒即為SG。

1.2.2 免疫熒光和激光共聚焦實驗 對經(jīng)過以上刺激條件

的HeLa細胞進行免疫熒光抗體染色。首先用4%多聚甲醛-PBS溶液對細胞進行固定,再加0.2%TritonX-100-PBS溶液對細胞透化處理,并用0.2%BSA-PBS溶液封閉細胞之后進行抗體孵育:加一抗anti-TIA-1羊源(1∶200)在水平搖床上4℃搖16 h,之后加德克薩斯紅(Texas Red)抗羊二抗熒光抗體(1∶500)在水平搖床上室溫搖1 h。再加一抗anti-SND1鼠源(1∶50)和阿萊克斯熒光(Alexa Flour)488抗鼠二抗熒光抗體(1∶500),方法同前。最后用DAPI溶液進行核染色,標(biāo)本用激光共聚焦顯微鏡觀察并收集圖片,100×放大物鏡。結(jié)果圖片用Image J 1.48u圖像處理軟件編輯和整理。紅色圖片是細胞中的TIA-1的表達與定位,綠色圖片是SND1的表達與定位,處理后可觀察兩蛋白細胞內(nèi)共定位(即綠色與紅色重疊的黃色圖片)。

1.2.3 免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation,Co-IP)實驗 培養(yǎng)HeLa細胞,設(shè)置A、B、C 3組,3組細胞的處理條件同方法1.2.1,進行應(yīng)激刺激后裂解HeLa細胞,每個培養(yǎng)皿加細胞裂解液,冰上作用30 min,之后采用超聲破碎法裂解細胞,離心,收集上清獲全細胞裂解液;BCA法測定總蛋白濃度,并取出3組各自的全細胞裂解液樣本的10%作為Input(陽性對照)。再將每組全細胞裂解液混勻后按體積均分3份,每份樣本分別加入抗 SND1抗體(1∶500)、抗 TIA-1抗體(1∶200)和IgG抗體(作為陰性對照)以及瓊脂糖4B磁珠,在4℃水平搖床作用16 h后離心,收集磁珠后得到蛋白復(fù)合物樣本,進行蛋白免疫印跡實驗。

1.2.4 蛋白免疫印跡實驗(Western Blotting) 將Co-IP方法得到的蛋白復(fù)合物在4%SDS-PAGE濃縮凝膠和10%SDSPAGE分離凝膠進行凝膠分離蛋白。電泳結(jié)束后將凝膠在250 mA、90 min條件下電轉(zhuǎn)到PVDF膜上,牛奶常溫封閉1 h,TBST沖洗,裁剪目的條帶SND1和TIA-1,分別置于抗SND1抗體(1∶2 000)和抗 TIA-1抗體(1∶1 000)以及抗 α-Tubulin(1∶5 000)抗體中4℃孵育過夜。而后將PVDF膜置于二抗(1∶5 000)孵育液中1 h,最后用ECL發(fā)光底物顯色陽性蛋白條帶。

1.2.5 pEGFP過表達質(zhì)粒和小干擾RNA轉(zhuǎn)染實驗 培養(yǎng)HeLa細胞,對數(shù)生長期時將細胞接種于6 cm培養(yǎng)皿中,饑餓過夜。取3份同樣的10 μL Lipofectamine 2000分別加入3份200 μL無血清培養(yǎng)基中孵育10 min。再將過表達質(zhì)粒pEGFP-SND1全長蛋白、pEGFP-SN和pEGFP-TSN片段各取10 μL,分別加入3份200 μL無血清培養(yǎng)基中孵育10 min。之后將1份Lipofectamine 2000混合物與pEGFP-SND1全長蛋白質(zhì)?;旌衔镌俜跤?0 min,另2個質(zhì)?;旌衔镆来送āW詈髮?種質(zhì)?;旌衔锞徛渭佑?組細胞中,邊滴加邊混勻,培養(yǎng)24~48 h后觀察轉(zhuǎn)染效率。小干擾RNA轉(zhuǎn)染的方法同質(zhì)粒轉(zhuǎn)染。Scramble siRNA序列為5′-GACTTCATAAGGCGCATGC-3′(作為陰性對照,不敲除SND1的表達),SND1-siRNA 序列為 5′-AAGGCATGAGAGCTAATAATC-3′,并利用Western Blotting檢測SND1是否被敲除。

2 結(jié)果

2.1 SND1與TIA-1在應(yīng)激刺激下可以形成細胞內(nèi)共定位顆粒 激光共聚焦顯微鏡下可見,SND1在應(yīng)激刺激下與TIA-1可形成細胞內(nèi)共定位顆粒。A組顯示SND1與TIA-1彌散、均勻地分布于細胞內(nèi),無共定位顆粒出現(xiàn)。B組和C組可見SND1與TIA-1聚集于同一顆粒中,這些顆粒即為SG,見圖1。

Fig.1 SND1 co-localized with TIA-1 on stress granules under stress condition(scale bar 10 μm)圖1 SND1在應(yīng)激刺激下與TIA-1形成共定位顆粒(比例尺 10 μm)

Fig.2 SND1 interacted with TIA-1 weakly under stress stimuli圖2 SND1在應(yīng)激刺激下與TIA-1有微弱的蛋白結(jié)合作用

Fig.3 SN domain of SND1 associated with TIA-1 under stress stimuli(scale bar 10 μm)圖3 SN結(jié)構(gòu)域是SND1在應(yīng)激刺激下與TIA-1相互作用結(jié)構(gòu)域(比例尺10 μm)

2.2 SND1蛋白與TIA-1在應(yīng)激刺激下可形成微弱的Co-IP結(jié)合 Co-IP結(jié)果顯示,A組培養(yǎng)條件下得到的蛋白復(fù)合物中幾乎檢測不到SND1和TIA-1的結(jié)合作用。而在B組和C組培養(yǎng)條件刺激下,Co-IP所得到的蛋白復(fù)合物中能檢測到兩者微弱的結(jié)合作用,見圖2。

2.3 SND1在應(yīng)激刺激下通過其SN結(jié)構(gòu)域與TIA-1產(chǎn)生細胞內(nèi)共定位 不同蛋白片段與TIA-1的蛋白定位情況有所不同,pEGFP-SND1、pEGFP-SN過表達蛋白均可與TIA-1形成共定位顆粒,但pEGFP-TSN過表達蛋白不能與TIA-1形成共定位顆粒,見圖3。

2.4 敲除HeLa細胞內(nèi)源性SND1蛋白的表達 轉(zhuǎn)染了SND1-siRNA的HeLa細胞被敲除了SND1表達。轉(zhuǎn)染了SND1-siRNA的HeLa細胞,SND1表達降低,而轉(zhuǎn)染了Scramble siRNA的HeLa細胞并沒有影響SND1表達量,同時以TIA-1以及α-tubulin的表達作為參照蛋白,見圖4。

2.5 敲除SND1表達未抑制TIA-1的聚集但會影響SG的大小和數(shù)量 敲除HeLa細胞的SND1蛋白表達后,免疫熒光結(jié)果顯示SND1低表達,未影響TIA-1的聚集,但減少了SG的數(shù)量。轉(zhuǎn)染了ScramblesiRNA的HeLa細胞在應(yīng)激刺激下,SND1與TIA-1的聚集未受任何影響,而轉(zhuǎn)染了SND1-siRNA的HeLa細胞經(jīng)過45℃-45 min刺激后,雖然TIA-1仍能聚集形成SG,但SG的數(shù)量明顯減少,見圖5。

2.6 SND1在應(yīng)激刺激下聚集到SG的過程滯后于TIA-1 在不同的熱休克刺激時間下,隨著刺激時間的延長,SND1與TIA-1逐漸聚集形成SG,在刺激5 min時已經(jīng)可見明顯的TIA-1陽性顆粒,但SND1的聚集還不明顯,刺激30 min時SND1陽性顆粒才基本形成,兩者共同聚集于SG。在不同的刺激時間,分別計數(shù)100個HeLa細胞,其中含有SND1陽性顆粒的細胞數(shù)明顯少于含有TIA-1陽性顆粒的細胞數(shù),SND1聚集到SG的運輸過程滯后于TIA-1,見圖 6、7。

Fig.4 The expression of SND1 interfered by RNAi and measured by Western Blotting assay圖4 SND1蛋白表達水平通過RNAi被敲除并利用Western Blotting檢測蛋白表達

Fig.5 Knockdown of SND1 did not inhibit the recruitment of TIA-1 onstress granules(scale bar 10 μm)圖5 敲除SND1不會抑制TIA-1聚集到SG(比例尺10 μm)

Fig.6 Aggregation of SND1 laged behind TIA-1 on stress granules(scale bar 10 μm)圖6 SND1聚集到SG的過程滯后于TIA-1(比例尺10 μm)

3 討論

SG是細胞在應(yīng)對應(yīng)激刺激時形成的胞內(nèi)動態(tài)顆粒結(jié)構(gòu)[3]。當(dāng)真核細胞受到氧化應(yīng)激、熱休克、紫外線照射及病毒感染等應(yīng)激刺激時,首先會終止蛋白質(zhì)翻譯的起始過程,然后重新改編mRNAs代謝程序,調(diào)節(jié)具有修復(fù)損傷功能的蛋白質(zhì)基因轉(zhuǎn)錄及表達[3,8-9]。由此,細胞胞質(zhì)中就形成了這種無胞膜的細胞亞結(jié)構(gòu)[4],它的出現(xiàn)是細胞保護性機制啟動的表現(xiàn)。近來研究報道了TIA-1、G3BP、多聚A尾mRNA結(jié)合蛋白(PABP)等許多分子都參與SG的聚集[7,10]。TIA-1 作為 SG 的重要標(biāo)志蛋白,可以通過其PRD結(jié)構(gòu)調(diào)節(jié)SG中蛋白的相互聚集過程,因而被稱為 SG 的啟動因子[2,11]。TIA-1 可調(diào)節(jié)血管緊張素Ⅱ受體 1(AT1R)的 mRNA 的聚集[12],這些研究顯示TIA-1是調(diào)節(jié)SG功能的重要分子。

SND1是近來發(fā)現(xiàn)參與SG聚集的組分之一,其不僅可以與G3BP結(jié)合參與SG的形成[3],還可與AT1R共定位于SG,調(diào)節(jié)其聚集和穿梭過程,并可調(diào)節(jié)多聚A尾mRNAs向SG的聚集過程[4,13]。而本研究顯示SND1在應(yīng)激刺激時通過其SN結(jié)構(gòu)域與TIA-1結(jié)合并共定位于SG,證實SND1實現(xiàn)其功能的結(jié)構(gòu)基礎(chǔ)是N端4個相似的葡萄球菌核酸酶樣結(jié)構(gòu)域[3,14]。由此結(jié)果推測SN結(jié)構(gòu)域很可能起到蛋白與蛋白之間的橋聯(lián)作用,從而促進蛋白復(fù)合物的形成。另外,RNAi敲除SND1表達不會影響TIA-1聚集形成SG,提示SND1不是啟動SG聚集的蛋白組分,SG的形成也不是單一某個蛋白就能決定的。其具體機制,一方面可能與蛋白自身結(jié)構(gòu)特點有關(guān),另一方面可能與其調(diào)節(jié)不同的RNA代謝有關(guān),SND1的缺失可能只影響某一類mRNA的代謝而不會影響其他mRNA及RNA結(jié)合蛋白的聚集,由此就表現(xiàn)為聚集顆粒數(shù)量的減少而不是完全被抑制。而在不同熱休克刺激時間下,TIA-1是先于SND1聚集到SG的蛋白,這也佐證了SG中的蛋白聚集是有時序性和階段性的,應(yīng)激刺激所影響的mRNA及對應(yīng)的RNA結(jié)合蛋白很可能在某些具有引導(dǎo)作用的分子的“指揮”下或依賴不同的信號通路按照一定的時間順序聚集成SG,由此可以推測SG結(jié)構(gòu)具有動態(tài)可變性,這可能與不同的刺激因素和刺激時間有關(guān)[8]。

綜上所述,SND1在應(yīng)激刺激下與TIA-1共同參與SG聚集,從而參與細胞的應(yīng)激反應(yīng)。SG從本質(zhì)上說就是被終止翻譯的那些“受傷”的mRNAs的分類急救中心[9,15],它不僅掌管著那些 mRNAs的最終命運,而且也作為細胞的信號通路上的“集線器”直接參與應(yīng)激狀態(tài)下的不同信號通路之間的“溝通與對話”[9,16]。而 SND1作為具有結(jié)合多聚A尾mRNAs的一種RNA結(jié)合蛋白,其參與真核細胞對抗應(yīng)激刺激的生物學(xué)機制勢必成為SG及應(yīng)激相關(guān)理論的關(guān)鍵點之一[17]。盡管SND1究竟參與哪種mRNA的代謝以及遵循哪幾條信號通路起作用仍有待進一步驗證,但其作為SG的重要組分已經(jīng)逐漸成為SG理論研究和治療相關(guān)疾病的潛在新靶點。

Fig.7 The number of cells per 100 with SND1+and TIA-1+granules under different stress time points圖7 在不同刺激時間下每100個HeLa細胞中的含有SND1+顆粒和TIA-1+顆粒的細胞數(shù)

[1]Panas MD,Ivanov P,Anderson P.Mechanistic insights into mammalian stress granule dynamics[J].J Cell Biol,2016,215(3):313-323.doi:10.1083/201609081.

[2]Waris S,Charles M,Wilce J,et al.RNA recognition and stress granule formation by TIA proteins[J].J Mol Sci,2014,15(12):23377-23388.doi:10.3390/ijms151223377.

[3]Gao XJ,Ge L,Shao J,et al.Tudor-SN interacts with and colocalizes with G3BP in stress granules under stress conditions[J].FEBS Lett,2010,584(16) :3525-3532.doi:10.1016/j.febslet.2010.07.022.

[4]Gao X,F(xiàn)U X,Song J,et al.Poly(A)+mRNA-binding protein Tudor-SN regulates stress granules aggregation dynamics[J].FEBS J,2015,282(5):874-890.doi:10.1111/febs.13186.

[5]Su C,Gao XJ,Yang W,et al.Phosphorylation of Tudor-SN,a novel substrate of JNK,is involved in the efficient recruitment of Tudor-SN into stress granules[J].J Biochim Biophys Acta,2017,1864(3):562-571.doi:10.1016/j.bbamcr.2016.12.018.

[6]Gilks N,Kedersha N,Ayodele M,et al.Stress granule assembly is mediated by prion-like aggregation of TIA-1[J].Mol Biol Cell,2004,15(12):5383-5398.doi:10.1091/mbc.E04-08-0715.

[7]Moutaoufik TM,F(xiàn)atimy RE,Nassour H,et al.UVC-induced stress granules in mammalian cells[J].PLoS One,2014,9(11):e112742.doi:10.1371/journal.pone.0112742.

[8]Wheeler JR,Matheny T,Jain S,et al.Distinct stages in stress granule assembly and disassembly[J].Elife,2016,5.pii:e18413.doi:10.7554/eLife.18413.

[9]Kedersha N,Ivanov P,Anderson P.Stress granules and cell signaling:more than just a passing phase?[J].Trends Biochem Sci,2013,38(10):494-506.doi:10.1016/j.tibs.2013.07.004.

[10]Brunello CA,Yan X,Huttunen HJ,et al.Internalized Tau sensitizes cells to stress by promoting formation and stability of stress granules[J].Sci Rep,2016,6:30498.doi:10.1038/srep30498.

[11]Cruz GI,Aroca á,Gunzburg MJ,et al.The binding of TIA-1 to RNA C-rich sequences is driven by its C-terminal RRM domain[J].RNA Biol,2014,11(6):766-776.doi:10.4161/rna.28801.

[12]Backlund M,Paukku K,Kontula KK,et al.Endoplasmic reticulum stress increases AT1R mRNA expression via TIA-1-dependent mechanism[J].Nucleic Acids Res,2016,44(7):3095-3104.doi:10.1093/nar/gkv1368.

[13]Gao X,Shi X,F(xiàn)u X,et al.Human Tudor staphylococcal nuclease(Tudor-SN)protein modulates the kinetics of AGTR1-3′UTR granule formation[J].FEBS Lett,2014,588(13):2154-2161.doi:10.1016/j.febslet.2014.04.045.

[14]Gutierrez-Beltran E,Denisenko TV,Zhivotovsky B,et al.Tudor staphylococcal nuclease:biochemistry and functions[J].Cell Death Diffe,2016,23(11):1739-1748.doi:10.1038/cdd.2016.93.

[15]Dimasi P,Quintiero A,Shelkovnikova TA,et al.Modulation of peIF2α cellular levels and stress granule assembly/disassembly by trehalose[J].Sci Rep,2017,7:44088.doi:10.1038/srep44088.

[16]Buchan JR.mRNP granules.Assembly,function,and connections with disease[J].RNA Biol,2014,11(8):1019-1030.doi:10.4161/15476286.2014.972208.

[17]Gutiérrez-Beltran E, Bozhkov PV, Moschou PN.Tudor Staphylococcal Nuclease plays two antagonistic roles in RNA metabolism under stress[J].Plant Signal Behav,2015,10(10):e1071005.doi:10.1080/15592324.2015.1071005.

(2017-03-06收稿 2017-04-27修回)

(本文編輯 李國琪)

SND1 protein co-localization with TIA-1 on stress granules under stress stimuli

SHAO Jie,ZHANG Bing-bing,ZHAO Meng,ZHOU Yun-li,REN Li△
Department of Clinical Laboratory,Cancer Institute and Hospital,Tianjin Medical University,National Clinical Research Center of Cancer,Tianjin Key Laboratory of Cancer Prevention and Therapy,Tianjin 300060,China△

E-mail:roland-li@163.com

ObjectiveTo analyze the association of staphylococcal nuclease domain-containing protein 1(SND1)and T-cell intracellular antigen 1(TIA-1)on stress granules,and the regulation of SND1 on stress granules under stress stimuli.MethodsThe immunofluorescence assay and laser scanning confocal microscopy were used to observe the co-localization of SND1 protein and TIA-1 protein under stress stimuli,and the over-expression plasmids of pEGFP vector were transfected into HeLa cells and to verify which domain of SND1 co-localized with TIA-1 under stress stimuli.RNA interferencemediated knockdown of the expression of SND1 protein in HeLa cells was measured by Western Blotting assay.Then whether the knockdown of SND1 affected the recruitment of TIA-1 on stress granules was observed.Heat shocks under different times were used to identify whether there were dynamic changes in transportation of SND1 and TIA-1 on stress granules.ResultsSND1 co-localized with TIA-1 on stress granules under stress stimuli,and the associated domain of SND1 were SN domain.TIA-1 still can be recruited on stress granules but a large amount of stress granules were reduced even though the expression of SND1 protein was decreased.And the transportation of SND1 on stress granules was laged behind TIA-1 under different-times of heat shocks.ConclusionSND1 protein co-localizes with TIA-1 on stress granules,and which co-regulates the cellular stress response under stress stimuli.

stress;RNA interference;Staphylococcal nuclease domain-containing protein 1;T-cell intracellular antigen 1;stress granule

R349.5

:A

10.11958/20170286

國家自然科學(xué)基金青年項目(31501091)

天津醫(yī)科大學(xué)腫瘤醫(yī)院檢驗科,國家腫瘤臨床醫(yī)學(xué)研究中心,天津市惡性腫瘤臨床醫(yī)學(xué)研究中心,天津市“腫瘤防治”重點實驗室(郵編300060)

邵潔(1980),女,博士研究生,講師,主要從事免疫學(xué)及臨床腫瘤標(biāo)志物研究

△通訊作者 E-mail:roland-li@163.com

猜你喜歡
核酸酶結(jié)構(gòu)域質(zhì)粒
細菌四類胞外感覺結(jié)構(gòu)域的概述
mcr-1陽性類噬菌體質(zhì)粒與F33∶A-∶B-質(zhì)粒共整合形成的融合質(zhì)粒的生物學(xué)特性分析
多變魚腥藻ATCC 29413基因的一步插入失活
UBR5突變與淋巴瘤B細胞成熟
含季銨鹽的芳酰腙配體的銅 (Ⅱ)配合物的合成和表征:體外DNA鍵合和核酸酶活性
開發(fā)新方法追蹤植物病害的全球傳播(2020.6.7 iPlants)
金黃色葡萄球菌胞外分泌蛋白的核酸酶活性研究
多種Cas12a蛋白變體能識別不同的PAM序列(2020.4.27 Plant Biotechnology Journal)
用megaTAL 核酸酶對原代人T 細胞CCR5 基因座進行有效修飾可建立HIV-1 抵抗力
Survivin-siRNA重組質(zhì)粒對人神經(jīng)母細胞瘤細胞SH-SY5Y的作用
略阳县| 健康| 西平县| 久治县| 车险| 卢氏县| 平湖市| 太湖县| 区。| 远安县| 山阳县| 沛县| 湖南省| 阿克苏市| 松滋市| 渭源县| 涞水县| 许昌市| 松潘县| 武山县| 昌平区| 拜城县| 中西区| 澄城县| 什邡市| 拜泉县| 延边| 北碚区| 炉霍县| 临朐县| 安新县| 金溪县| 锦州市| 城口县| 海兴县| 荆门市| 甘洛县| 阿瓦提县| 景谷| 临泽县| 陆川县|