胡 珊,李 青
(北京林業(yè)大學(xué)園林學(xué)院,花卉種質(zhì)創(chuàng)新與分子育種北京市重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,國(guó)家花卉工程技術(shù)研究中心,城鄉(xiāng)生態(tài)環(huán)境北京實(shí)驗(yàn)室,教育部林木花卉育種實(shí)驗(yàn)室,北京,100083)
紅葉腺柳(Salix chaenomeloides‘Variegata’)為楊柳科柳屬腺柳(Salix chaenomeloides Kimura)的優(yōu)良變種[1],其頂端新葉于3月初至10月上旬呈紅色,紅葉觀賞期長(zhǎng),是為數(shù)不多的高大彩葉喬木樹(shù)種,且對(duì)土壤適應(yīng)性強(qiáng),耐澇旱、耐鹽堿、耐瘠薄,可用作觀賞樹(shù)、行道樹(shù)、遮陰樹(shù)和湖泊固堤、濕地修復(fù)等樹(shù)種[2],近年來(lái)在市場(chǎng)上不斷推廣,種苗需求量大。紅葉腺柳扦插繁殖成活率雖高,但扦插時(shí)期很受局限(僅限于3-7月較合適),使其開(kāi)發(fā)及利用受到極大限制。同時(shí),扦插繁殖需要大量插條,利用組培快繁技術(shù)為其提供插條,可實(shí)現(xiàn)紅葉腺柳的周年生產(chǎn)化生產(chǎn)。因此提高紅葉腺柳在組織培養(yǎng)過(guò)程中的增殖系數(shù)及試管苗質(zhì)量非常關(guān)鍵,本試驗(yàn)研究了繼代培養(yǎng)過(guò)程中影響紅葉腺柳叢生芽增殖及試管苗高生長(zhǎng)的關(guān)鍵因素,并分析了繼代過(guò)程中出現(xiàn)的試管苗莖尖壞死、高生長(zhǎng)緩慢等問(wèn)題的原因,提出了相關(guān)解決方法。
以紅葉腺柳的1年生帶芽莖段為外植體,誘導(dǎo)側(cè)芽萌發(fā),以側(cè)芽為試驗(yàn)材料進(jìn)行繼代增殖及試管苗高生長(zhǎng)培養(yǎng)。
接種側(cè)芽于基本培養(yǎng)基WPM,添加細(xì)胞分裂素6-BA、KT 及 TDZ,分別設(shè)置 5 個(gè)濃度水平:0.2、0.5、1.0、1.5、2.0mg·L-1。 接種 30d 后統(tǒng)計(jì)平均增殖系數(shù)、平均苗高。
接種側(cè)芽于基本培養(yǎng)基WPM+6-BA0.5 mg·L-1。添加生長(zhǎng)素NAA、IBA,分別設(shè)置4個(gè)濃度水平:0.02、0.05、0.10、0.30mg·L-1。 接種 30d 后統(tǒng)計(jì)平均增殖系數(shù)、平均苗高。
接種試管苗于基本培養(yǎng)基WPM+6-BA1mg·L-1+NAA0.1 mg·L-1。 添加物分別為水解乳蛋白(0.5、1.0、2.0g·L-1)、水解酪蛋白(0.5、1.0、2.0g·L-1)、2 倍大量母液Ca2+及2倍有機(jī)母液。接種30d后統(tǒng)計(jì)平均苗高、生長(zhǎng)狀況。
接種試管苗于基本培養(yǎng)基WPM+6-BA1mg·L-1+NAA0.1 mg·L-1。添加抗褐化劑PVP(聚乙烯吡咯烷酮)、維生素C、檸檬酸、硫代硫酸鈉及活性炭,分別設(shè)置 3 個(gè)濃度水平:0.5、1.0、2.0g·L-1。 接種 30d 后統(tǒng)計(jì)平均苗高、生長(zhǎng)狀況。
接種試管苗于基本培養(yǎng)基WPM+活性炭1 g·L-1,添加不同濃度的細(xì)胞分裂素 6-BA(0.1、0.2、0.5、1.0 mg·L-1)及生長(zhǎng)素 NAA(0.05、0.10 mg·L-1),采用完全隨機(jī)區(qū)組設(shè)計(jì)。接種30d后統(tǒng)計(jì)平均苗高、生長(zhǎng)狀況。
接種后置于培養(yǎng)室中培養(yǎng),培養(yǎng)溫度24±2℃,光周期14 h·d-1,日光燈光源,光照強(qiáng)度2000lx。培養(yǎng)基中其他成分為3%蔗糖+0.6%瓊脂,pH值為5.8~6。
增殖系數(shù)=增殖后苗的個(gè)數(shù)(個(gè))/接種苗的個(gè)數(shù)(個(gè))。
樣本數(shù)為每個(gè)梯度20個(gè)處理,重復(fù)2次。使用SPSS19.0對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行處理分析,運(yùn)用Duncan多范圍檢驗(yàn)比較分析數(shù)據(jù)的差異顯著性。
細(xì)胞分裂素在促進(jìn)DNA合成及細(xì)胞分裂中起關(guān)鍵作用,從而誘導(dǎo)叢生芽的產(chǎn)生[3],故在培養(yǎng)基中分別添加3種不同的細(xì)胞分裂素,以期篩選出適宜種類及濃度的細(xì)胞分裂素。
表1 不同細(xì)胞分裂素種類及濃度對(duì)叢生芽增殖的影響Table1 Effect of different kinds and concentration of cytokinins on multiplication
將初代培養(yǎng)誘導(dǎo)出的側(cè)芽切成1.5cm左右的帶芽莖段接種于叢生芽培養(yǎng)基中。
由表1可知,當(dāng)側(cè)芽接種于WPM空白培養(yǎng)基時(shí),試管苗幾乎無(wú)增殖且長(zhǎng)勢(shì)不良,說(shuō)明細(xì)胞分裂素對(duì)促進(jìn)叢生芽增殖效果顯著。試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),當(dāng)6-BA濃度為0~1.0mg·L-1時(shí),平均增殖系數(shù)隨6-BA濃度的增加而增長(zhǎng)。當(dāng)添加6-BA濃度為1.0mg·L-1時(shí),平均增殖系數(shù)為4.78,與其他梯度之間產(chǎn)生顯著差異,且葉色翠綠,長(zhǎng)勢(shì)旺盛(圖版Ⅰ:1)。
當(dāng)6-BA濃度超過(guò)1.5mg·L-1,試管苗會(huì)出現(xiàn)玻璃化、莖尖壞死等現(xiàn)象。玻璃化現(xiàn)象是指試管苗呈半透明水漬狀,葉色淡易破碎,長(zhǎng)勢(shì)弱[4](圖版Ⅰ:2)。關(guān)亞麗等在研究簸箕柳的組培快繁時(shí)亦發(fā)現(xiàn),隨著6-BA濃度的增加,玻璃化明顯加強(qiáng),嚴(yán)重影響增殖[5]。莖尖壞死現(xiàn)象表現(xiàn)為試管苗莖細(xì)弱,頂芽及嫩葉在接種20d后卷曲發(fā)黑掉落(圖版Ⅰ:3),繼而導(dǎo)致試管苗全部死亡。這可能是由于外源激素不適宜導(dǎo)致頂端分生組織停止分化或細(xì)胞壞死所致[3]。
細(xì)胞分裂素種類不同,對(duì)植物的效應(yīng)亦有所差異。當(dāng)添加KT時(shí),平均增殖系數(shù)為3.53,但試管苗的葉片易脫落。當(dāng)添加TDZ時(shí),試管苗莖節(jié)呈扁平狀,葉片皺縮發(fā)黃,平均增殖系數(shù)為0。表1的結(jié)果顯示KT與TDZ對(duì)紅葉腺柳叢生芽增殖沒(méi)有明顯的作用,在其他文獻(xiàn)中亦有報(bào)道[6]。故誘導(dǎo)紅葉腺柳叢生芽增殖的細(xì)胞分裂素宜選擇1.0mg·L-1的6-BA。
在叢生芽增殖階段,細(xì)胞分裂素通常與生長(zhǎng)素組合使用為宜。在上述試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),單獨(dú)添加6-BA,平均苗高均在2.5 cm以下,高生長(zhǎng)緩慢,故在培養(yǎng)基中分別添加NAA、IBA,以期篩選出適宜種類及濃度的生長(zhǎng)素。
由表2可知,6-BA與生長(zhǎng)素組合使用時(shí)比單獨(dú)使用時(shí)增殖效果好。6-BA與NAA配合使用促進(jìn)試管苗增殖在部分柳屬組織培養(yǎng)中中亦有報(bào)告[5,7,8]。當(dāng)NAA濃度為0.02~0.10mg·L-1時(shí),平均增殖系數(shù)隨NAA濃度的增加而增長(zhǎng),當(dāng)NAA濃度為0.10mg·L-1時(shí),平均增殖系數(shù)為5.77,與其他梯度之間形成顯著差異。試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),在添加IBA的培養(yǎng)基里,試管苗易產(chǎn)生莖尖壞死現(xiàn)象,而在添加NAA的培養(yǎng)基里莖尖壞死現(xiàn)象較少見(jiàn),且試管苗葉色濃綠。但若未及時(shí)轉(zhuǎn)接培養(yǎng)基,亦會(huì)出現(xiàn)莖尖壞死現(xiàn)象,適宜的繼代周期為30d。NAA為人工合成的生長(zhǎng)素,通過(guò)刺激植物細(xì)胞內(nèi)的NAA轉(zhuǎn)化酶而生成相關(guān)生長(zhǎng)素來(lái)刺激植物生長(zhǎng),但僅對(duì)含有NAA轉(zhuǎn)化酶的植物起作用[9],說(shuō)明紅葉腺柳體內(nèi)含NAA轉(zhuǎn)化酶較豐富,所以NAA對(duì)其增殖及苗高的生長(zhǎng)產(chǎn)生影響。故在增殖培養(yǎng)時(shí)生長(zhǎng)素宜選擇0.10 mg·L-1的NAA。
表2 不同生長(zhǎng)素種類及濃度對(duì)叢生芽增殖的影響Table2 Effect of different kinds and concentration of auxins on multiplication
綜上所述,適宜的叢生芽增殖培養(yǎng)基配方為:WPM+6-BA0.5 mg·L-1+NAA0.1 mg·L-1。
在叢生芽增殖培養(yǎng)過(guò)程中會(huì)出現(xiàn)試管苗高生長(zhǎng)緩慢的問(wèn)題,試管苗的平均苗高均不超過(guò)2.5cm,不利于植株的生根移栽,故在培養(yǎng)基中分別添加不同種類的添加物,以期篩選出適宜種類及濃度的添加物。
由表3可知,8組添加物均未促進(jìn)試管苗高生長(zhǎng)。水解乳蛋白及水解酪蛋白易造成試管苗葉子發(fā)黑,植株死亡。水解乳蛋白是由乳蛋白經(jīng)胰酶消化而成,氨基酸含量豐富[10]。水解酪蛋白是以天然牛奶蛋白為原料,是氨基酸、多肽 、蛋白質(zhì)混合物[11]。WPM基本培養(yǎng)基有機(jī)母液含有甘氨酸、維生素等。可能是由于水解乳蛋白、水解酪蛋白及有機(jī)母液中的有機(jī)氮含量豐富,促進(jìn)了乙烯的釋放[12],反而不利于紅葉腺柳生長(zhǎng)。適量Ca2+能抑制葉片衰老,維持葉片濃綠[13],WPM基本培養(yǎng)基所含的Ca2+可能足以維持試管苗正常生長(zhǎng),故添加2倍Ca2+并未有效促進(jìn)試管苗高生長(zhǎng)。上述8組濃度的添加物均不適宜紅葉腺柳試管苗高生長(zhǎng)。
表3 不同添加物種類及濃度對(duì)試管苗高生長(zhǎng)的影響Table3 Effect of different kinds and concentration of additives on elongation
繼代培養(yǎng)過(guò)程中在試管苗基部發(fā)現(xiàn)褐化現(xiàn)象,這可能是試管苗高生長(zhǎng)緩慢的重要原因。褐化現(xiàn)象是指當(dāng)試管苗傷口中的酚類物質(zhì)在多酚氧化酶(PPO)的作用下發(fā)生氧化反應(yīng),形成有毒的醌類物質(zhì),在酪氨酸酶的作用下與試管苗組織中的蛋白質(zhì)發(fā)生聚合,導(dǎo)致組織代謝紊亂,切面的褐色物質(zhì)擴(kuò)散到培養(yǎng)基中,最終使試管苗死亡[14]。木本植物中的酚類物質(zhì)含量豐富,褐化問(wèn)題一直是其組織培養(yǎng)中的難題。
表4 不同抗褐化劑種類及濃度對(duì)試管苗高生長(zhǎng)的影響Table4 Effect of different kinds and concentration of browning inhibitors on elongation
由表4可知,5種抗褐化劑對(duì)抑制紅葉腺柳褐化的效果不同。在活性炭濃度為0.5~1.0g·L-1時(shí),平均苗高隨活性炭濃度的升高而增長(zhǎng),當(dāng)添加1.0g·L-1的活性炭時(shí),平均苗高為6.49 cm,與其他梯度之間形成顯著差異,且試管苗葉片肥厚,莖稈粗壯(圖版Ⅰ:4)?;钚蕴渴菑?qiáng)吸附劑,醌類酚類皆可吸附,有效吸附根部周圍傷口產(chǎn)生的褐色有害物質(zhì)從而抑制褐化現(xiàn)象[15]。同時(shí),活性炭減弱光照,保護(hù)了根端產(chǎn)生的IAA,可有效促進(jìn)壯苗。當(dāng)添加PVP時(shí),平均苗高雖有顯著提高,苗長(zhǎng)勢(shì)亦健壯,但對(duì)苗的影響不如添加活性炭顯著,可能是因?yàn)镻VP是酚類物質(zhì)的專一吸附劑[16],而培養(yǎng)基中有害物質(zhì)種類較多,活性炭可起到一定的吸附作用,而PVP只能部分吸附??箟难?、硫代硫酸鈉對(duì)紅葉腺柳試管苗高生長(zhǎng)無(wú)顯著影響,且在抗壞血酸的作用下,試管苗莖細(xì)弱發(fā)黃,不適宜繼續(xù)試驗(yàn)。檸檬酸、硫代硫酸鈉會(huì)導(dǎo)致試管苗發(fā)黑死亡。故抗褐化劑宜選擇1.0g·L-1的活性炭。
圖版Ⅰ 紅葉腺柳繼代培養(yǎng)過(guò)程 1.叢生芽;2.叢生芽玻璃化;3.叢生芽莖尖壞死;4.添加活性炭后試管苗高生長(zhǎng);5.激素交替培養(yǎng)后試管苗高生長(zhǎng)PlateⅠ SubcultureprocessofSalix Chaenomeloides‘Variegata’ 1.Multiple shoots;2.Vitrification of multiple shoots;3.Apical necrosis of multiple shoots;4.shoot Elongation after adding activated carbon;5.shoot Elongation after using 1.0mg·L-16-BA and 0.5mg·L-16-BA alternately
在繼代培養(yǎng)過(guò)程中,試管苗一直處于高濃度的激素環(huán)境里可能會(huì)抑制其營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng),促使苗增殖但不高生長(zhǎng),且試管苗在同一培養(yǎng)基里繼代多次,易造成試管苗發(fā)黃退化,葉片易發(fā)黑掉落。故降低激素濃度,以期篩選出適宜的促進(jìn)試管苗高生長(zhǎng)的激素配比。
細(xì)胞分裂素質(zhì)量濃度過(guò)高不僅能促進(jìn)酚類物質(zhì)形成,還能刺激多酚氧化酶(PPO)的活性從而造成褐化[7]。由表5可知,當(dāng)6-BA濃度為0.1~1.0mg·L-1時(shí),平均苗高隨6-BA濃度的升高而增長(zhǎng),適當(dāng)降低6-BA濃度能促進(jìn)試管苗高生長(zhǎng)及苗的質(zhì)量(圖版Ⅰ:5)。王關(guān)林等試驗(yàn)研究亦發(fā)現(xiàn),當(dāng)三倍體速生楊誘導(dǎo)出叢生芽后,若直接轉(zhuǎn)入生根培養(yǎng),試管苗會(huì)發(fā)黑死亡,而若將其轉(zhuǎn)入低濃度6-BA培養(yǎng)基里,試管苗將從矮化叢生芽狀態(tài)轉(zhuǎn)入高生長(zhǎng)且長(zhǎng)壯的狀態(tài)[17]。當(dāng)6-BA濃度為0.5mg·L-1時(shí),平均苗高為6.56cm,苗生長(zhǎng)健壯,葉色濃綠。但6-BA濃度為1.0mg·L-1時(shí),平均苗高雖與0.5 mg·L-16-BA時(shí)的平均苗高無(wú)明顯差異,但在培養(yǎng)20d后試管苗發(fā)黃,葉片從尖端開(kāi)始發(fā)黑掉落。故在試管苗高生長(zhǎng)階段6-BA應(yīng)選擇0.5mg·L-1為宜。
表5 降低激素組合濃度對(duì)試管苗高生長(zhǎng)的影響Table5 Effect of different reduced plant growth regulators combination on elongation
由試驗(yàn)得出結(jié):適宜的繼代培養(yǎng)周期為30d。適宜紅葉腺柳叢生芽增殖培養(yǎng)基為:WPM+6-BA1.0mg·L-1+NAA0.1mg·L-1,適宜紅葉腺柳試管苗高 生 長(zhǎng) 培 養(yǎng) 基 為 :WPM+6-BA0.5mg·L-1+NAA0.1mg·L-1+活性炭 1.0g·L-1。在繼代叢生芽增殖培養(yǎng)過(guò)程中會(huì)出現(xiàn)試管苗高生長(zhǎng)緩慢,莖尖壞死等現(xiàn)象,原因主要是褐化問(wèn)題及6-BA濃度過(guò)高、試管苗長(zhǎng)期處于同一激素種類與濃度所致。
對(duì)于褐化問(wèn)題,抗褐化劑選擇1.0g·L-1的活性炭為宜?;钚蕴渴菑?qiáng)吸附劑,可有效吸附根部周圍傷口產(chǎn)生的各類醌類酚類物質(zhì)從而抑制褐化現(xiàn)象[15]。PVP效果不如活性炭可能是因?yàn)镻VP是酚類物質(zhì)的專一吸附劑[16],只能部分吸附培養(yǎng)基中的有害物質(zhì)??箟难?、亞硫酸鈉、檸檬酸為抗氧化劑,不適宜做紅葉腺柳試管苗的抗褐化劑。對(duì)抗壞血酸抑制褐化的機(jī)理,陳凱認(rèn)為抗壞血酸能使多酚氧化酶失活同時(shí)消耗掉溶解氧從而阻止酚類物質(zhì)氧化,但無(wú)法破壞已形成的醌類物質(zhì),所以其抗褐化效果較弱[18]。硫代硫酸鈉作為有效的抗氧化劑但同時(shí)也是鈣的螯合劑[19],會(huì)降低培養(yǎng)基里Ca2+濃度,從而不利于試管苗生長(zhǎng)。檸檬酸可能由于抗氧化性太強(qiáng),消耗培養(yǎng)基中的溶解氧過(guò)量,從而促使試管苗發(fā)黑死亡。
Siddique等研究表明6-BA會(huì)抑制頂端優(yōu)勢(shì),從而促進(jìn)芽增殖及分化[20],故6-BA濃度過(guò)高是抑制試管苗高生長(zhǎng)的關(guān)鍵因素之一。Khan等在研究四子柳的組織培養(yǎng)時(shí)發(fā)現(xiàn)高濃度的細(xì)胞分裂素在試管苗擴(kuò)繁階段效果顯著,但在生長(zhǎng)后期應(yīng)轉(zhuǎn)入低濃度的細(xì)胞分裂素中,有利于試管苗的長(zhǎng)期增殖和高生長(zhǎng)[12]。故在試管苗高生長(zhǎng)階段應(yīng)降低6-BA用量,6-BA濃度0.5mg·L-1與1.0 mg·L-1交替使用,可使紅葉腺柳試管苗保持高繁殖率的同時(shí),試管苗高生長(zhǎng)顯著,長(zhǎng)勢(shì)健壯,葉色濃綠。余如剛[8]、郭小燕[21]等分別在旱柳Q106、柳樹(shù)優(yōu)良雜交品種的繼代培養(yǎng)時(shí)使用激素交替的方法。
試驗(yàn)研究了適宜紅葉腺柳試管苗增殖與高生長(zhǎng)的培養(yǎng)基配比,分析繼代培養(yǎng)過(guò)程中出現(xiàn)的問(wèn)題及其解決方法,對(duì)于如何提高成苗速度及試管苗質(zhì)量,如何更適宜工廠化生產(chǎn)擴(kuò)繁,降低成本等問(wèn)題還有待進(jìn)一步研究。
參考文獻(xiàn):
[1]鄭萬(wàn)鈞.中國(guó)樹(shù)木志:第 2卷[Z].北京:中國(guó)林業(yè)出版社,1985.
[2]侯元?jiǎng)P,劉松楊,張彥.紅葉柳等彩葉樹(shù)種栽培與管理[Z].北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)出版社,2008.
[3]Amo-Marco J B,Lledo M D.In vitro propagation of Salix tarraconensis Pau ex Font Quer,an endemic and threatened plant [J].In Vitro Cellular&Developmental Biology-Plant.1995,32(1):42-46.
[4]Leshem B,Sachs T.'Vitrified'Dianthus—Teratomata in vitro due to Growth Factor Imbalance [J].Annals of Botany.1985,56(5):613-617.
[5]關(guān)亞麗,陳英,黃敏仁.簸箕柳組織培養(yǎng)初步研究[J].海南師范大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版).2009,(02):204-208.
[6]胡珊,李青.紅葉腺柳組織培養(yǎng)及快速繁殖技術(shù)研究:2015年中國(guó)觀賞園藝學(xué)術(shù)研討會(huì)[Z].中國(guó)福建廈門(mén):20156.
[7]王雅群,李辛晨,陳玉珍,等.北京頤和園西堤古柳組織培養(yǎng)體系的建立[J].林業(yè)科技開(kāi)發(fā).2009,(03):48-51.
[8]余如剛,杜雪玲,夏陽(yáng),等.旱柳Q106組織培養(yǎng)及快繁體系的建立[J].草原與草坪.2005,(05):59-61.
[9]馬宗新,高玉祥,趙紅,等.三倍體速生楊樹(shù)的組織培養(yǎng)及應(yīng)用[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué).2004,(04):715-716.
[10]湯青林,牛義,王志敏,等.芋芽繼代培養(yǎng)中激素、水解乳蛋白、碳源的調(diào)節(jié)研究 [J].西南農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào).2006,(05):928-930.
[11]李忠光,龔明.水解酪蛋白對(duì)煙草愈傷組織和懸浮培養(yǎng)細(xì)胞生長(zhǎng)的促進(jìn)作用[J].云南師范大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版).2006,(04):60-61.
[12]Khan M,Ahmad N,Anis M.The role of cytokinins on in vitro shoot production in Salix tetrasperma Roxb.:a tree of ecological importance [J].Trees.2011,25(4):577-584.
[13]王亞琴,張康健,黃江康.植物衰老的分子基礎(chǔ)與調(diào)控[J].西北植物學(xué)報(bào).2003,(01):182-189.
[14]陳菲,李黎,宮偉.植物組織培養(yǎng)的防褐化探討[J].北方園藝.2005,(02):69.
[15]鄭文靜,趙海巖,楊立國(guó).植物組織培養(yǎng)操作過(guò)程中的常見(jiàn)問(wèn)題及其解決辦法[J].遼寧農(nóng)業(yè)科學(xué).2001,(02):49-51.
[16]杜敬然,趙斌,李英麗,等.紅掌組織培養(yǎng)過(guò)程中外植體褐變的研究[J].北方園藝.2010,(09):160-162.
[17]王關(guān)林,方宏筠,那杰.高活性細(xì)胞激動(dòng)素TDZ在植物組織培養(yǎng)中的應(yīng)用 [J].植物學(xué)通報(bào).1997,(03):48-54.
[18]陳凱.植物組織培養(yǎng)中褐變的產(chǎn)生機(jī)理及抑制措施[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué).2004,(05):1034-1036.
[19]Hayden M R,Tyagi S C,Kolb L,et al.Vascular ossification –calcification in metabolicsyndrome,type 2 diabetes mellitus,chronic kidney disease,and calciphylaxis–calcific uremic arteriolopathy:the emerging role of sodium thiosulfate [J].Cardiovascular Diabetology.2005:4.
[20]Siddique I,Anis M.Direct plant regeneration from nodal explants of Balanites?aegyptiaca L.(Del.):a valuable medicinal tree[J].New Forests.2009,37(1):53-62.
[21]郭小燕.材用優(yōu)良無(wú)性系雜交柳遺傳轉(zhuǎn)化體系的研究[D].山東師范大學(xué),2007.