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白念珠菌Ras/cAMP/PKA通路的研究進(jìn)展

2017-03-16 00:52魯仁義馬錢瑤張曉龍曹永兵王彥閻瀾姜遠(yuǎn)英
中國(guó)真菌學(xué)雜志 2017年1期
關(guān)鍵詞:念珠菌毒力結(jié)構(gòu)域

魯仁義 馬錢瑤 張曉龍 曹永兵 王彥 閻瀾 姜遠(yuǎn)英

(1.中國(guó)人民解放軍第二軍醫(yī)大學(xué)藥學(xué)院新藥研究中心,上海 200433;2.沈陽(yáng)藥科大學(xué)生命科學(xué)與生物制藥學(xué)院,沈陽(yáng) 110016)

·綜述·

白念珠菌Ras/cAMP/PKA通路的研究進(jìn)展

魯仁義1馬錢瑤2張曉龍1曹永兵1王彥1閻瀾1姜遠(yuǎn)英1

(1.中國(guó)人民解放軍第二軍醫(yī)大學(xué)藥學(xué)院新藥研究中心,上海 200433;2.沈陽(yáng)藥科大學(xué)生命科學(xué)與生物制藥學(xué)院,沈陽(yáng) 110016)

白念珠菌是一種重要的條件致病真菌,Ras/cAMP/PKA信號(hào)通路在白念珠菌的多種生理過(guò)程中發(fā)揮作用,如形態(tài)轉(zhuǎn)換、黏附、生物被膜形成等,對(duì)于維持白念珠菌的毒力以及侵襲能力是十分重要的。對(duì)這一信號(hào)通路的深入研究有助于更好地了解白念珠菌對(duì)人體致病的機(jī)制,給抗真菌新藥的研發(fā)提供新的思路。該文重點(diǎn)闡述通路相關(guān)蛋白功能、上下游調(diào)控關(guān)系及機(jī)制。

白念珠菌;Ras/cAMP/PKA信號(hào)通路;形態(tài)轉(zhuǎn)換

由于器官移植術(shù)后免疫抑制劑的使用,腫瘤放療化療患者的增加,介入治療和駐ICU患者的增加,艾滋病的流行和廣譜抗生素的大量使用等原因,侵襲性真菌感染發(fā)病率呈明顯上升趨勢(shì)[1]。

白念珠菌是最常見(jiàn)的機(jī)會(huì)致病真菌,主要侵襲和感染機(jī)體口腔黏膜、消化道、陰道等部位,在免疫力低下人群中易引發(fā)系統(tǒng)性念珠菌感染,累及多個(gè)臟器[2]。白念珠菌有酵母態(tài)及菌絲態(tài)兩種形態(tài),形態(tài)轉(zhuǎn)換對(duì)于白念珠菌的致病力是至關(guān)重要的,在機(jī)體內(nèi),菌絲態(tài)的白念珠菌具有更強(qiáng)侵襲性。

菌絲形成、形態(tài)轉(zhuǎn)換、生物被膜形成、甾醇合成、糖酵解等一系列生物和代謝過(guò)程對(duì)白念珠菌的生長(zhǎng)繁殖及致病力都是十分重要的[3-4],這些過(guò)程由多條信號(hào)通路參與調(diào)控,其中Ras/cAMP/PKA通路至關(guān)重要[5],有望從中發(fā)現(xiàn)抗真菌藥物新的重要靶點(diǎn) (見(jiàn)圖1)。本文綜述了白念珠菌Ras/cAMP/PKA信號(hào)通路中各相關(guān)分子的上下游關(guān)系及分子調(diào)控機(jī)制,重點(diǎn)闡述通路中關(guān)鍵基因及蛋白質(zhì)的生物學(xué)功能及表達(dá)調(diào)控機(jī)制。

1 Ras、Ira2和Cdc25

Ras是高度保守GTP酶家族中的成員,在許多重要的細(xì)胞生長(zhǎng)和分化信號(hào)通路中起著重要的“分子開(kāi)關(guān)”的作用。

圖1 白念珠菌中Ras/cAMP/PKA通路示意圖(黑色箭頭表示激活作用,紅色線表示抑制作用)

Fig.1 Schematic diagram of Ras/cAMP/PKA pathway inCandidaalbicans(Black arrows indicate activation and red lines indicate suppression)

Ras屬于小G蛋白家族 (與普通G蛋白由αβγ三個(gè)亞基組成異三聚體不同,以單體分子存在,并且分子量只有20~35 kD),Ras有GTP結(jié)合的活化狀態(tài)和GDP結(jié)合的非活化狀態(tài)兩種存在形式,當(dāng)其處于活化狀態(tài)時(shí),可使下游的效應(yīng)分子活化,兩者之間的轉(zhuǎn)換依賴于Ras本身具有的GTP酶活性[6]。

RAS1在白念珠菌的形態(tài)轉(zhuǎn)換過(guò)程中發(fā)揮著重要的作用[7],能促進(jìn)菌絲的形成,當(dāng)RAS1基因被敲除后,白念珠菌生長(zhǎng)減慢、呈假菌絲樣生長(zhǎng)、菌絲形成能力減弱、胞內(nèi)cAMP水平顯著降低,將Ras1第13位的甘氨酸突變成纈氨酸后,Ras1活性顯著增強(qiáng),胞內(nèi)cAMP含量升高且菌絲形成能力增強(qiáng)[8]。除Ras1外,白念珠菌中還存在另一個(gè)非典型的鳥苷酸結(jié)合調(diào)節(jié)蛋白R(shí)as2,Ras2與Ras1有拮抗作用,RAS2單敲除的菌株增殖速度、cAMP含量以及菌絲生長(zhǎng)基本與野生型一致,但RAS1和RAS2雙敲除的菌株中,cAMP的含量是親本菌的30%,但比RAS1單敲除菌株高約6~7倍,且生長(zhǎng)速率恢復(fù)到親本菌水平[9]。以上結(jié)果表明RAS1在白念珠菌中cAMP水平調(diào)控、菌絲生長(zhǎng)及形態(tài)轉(zhuǎn)換發(fā)揮著重要的作用。另外,最新研究表明,在RAS1缺失菌中,由TORC1介導(dǎo)的核糖體生物合成減少,從而導(dǎo)致了菌株對(duì)兩性霉素B耐受性升高[10]。

葡萄糖和血清無(wú)法誘導(dǎo)RAS1缺失菌中cAMP生成,RAS1缺失菌形態(tài)轉(zhuǎn)換的缺陷可以通過(guò)外源性cAMP解救,這兩種表型在CDC25缺失菌中也能觀察到[11],表明CDC25和RAS1是在cAMP-PKA通路的上游發(fā)揮作用的。Cdc25是參與Ras1-GTP/GDP轉(zhuǎn)換的鳥苷酸交換因子,能夠激活Ras1,當(dāng)CDC25被敲除后,菌株中Ras1-GTP水平降低并且不能形成菌絲[12]。而Ira2能夠激活Ras1的GTP酶活性,負(fù)性調(diào)控Ras1的活性,使Ras1-GTP分解為Ras1-GDP,IRA2缺失會(huì)導(dǎo)致Ras1/cAMP/PKA通路的持續(xù)激活,進(jìn)而增強(qiáng)菌絲生成[13]。此外,Seneviratne等[14]通過(guò)篩選單倍體突變文庫(kù),揭示了IRA2還參與了生物被膜的形成,發(fā)揮著正向調(diào)控的作用。最新的研究表明[12],白念珠菌中Ras1的活性與線粒體活性也密切相關(guān),線粒體抑制劑能夠顯著減少Ras1與GTP的結(jié)合,并且在其他念珠菌中也能觀察到類似的效應(yīng)。線粒體氧化呼吸活性和Ras1-GTP結(jié)合之間有密切關(guān)系,缺少?gòu)?fù)合物I或復(fù)合物IV的菌株在菌絲誘導(dǎo)條件下依然呈酵母狀生長(zhǎng),并且具有較低水平的Ras1-GTP。

2 Cyr1、Srv2、Gpr1和Gpa2

CYR1 (又稱CDC35)在白念珠菌中負(fù)責(zé)編碼腺苷酸環(huán)化酶 (adenylate cyclase,AC),CYR1缺失菌菌絲形成缺陷,cAMP含量下降。AC在細(xì)胞內(nèi)的的作用是催化ATP生成cAMP,在白念珠菌的凋亡、CO2感知等過(guò)程中發(fā)揮重要作用,是Ras1的下游效應(yīng)物。在Fang等[8]的研究中,酵母雙雜交實(shí)驗(yàn)證明Ras1是與Cyr1的RA (Ras-association)結(jié)構(gòu)域相互作用而發(fā)揮激活A(yù)C作用的,當(dāng)Ras1與GTP結(jié)合時(shí),可以與AC上保守的RA結(jié)構(gòu)域結(jié)合,激活A(yù)C的活性提高cAMP的水平。此外,在低pH的環(huán)境下,CYR1的表達(dá)下調(diào),菌絲生長(zhǎng)缺陷,說(shuō)明CYR1在白念珠菌適應(yīng)不同pH環(huán)境中也發(fā)揮著作用[15]。

Srv2是一個(gè)AC相關(guān)蛋白,能夠調(diào)節(jié)AC的活性,參與調(diào)控白念珠菌的形態(tài)轉(zhuǎn)換等生理過(guò)程,SRV2在釀酒酵母中的同源基因是CAP1,SRV2缺失菌在小鼠系統(tǒng)性念珠菌感染模型中毒力喪失[16],像通路中的其他突變體一樣,SRV2缺失菌有形態(tài)轉(zhuǎn)換缺陷,又可以通過(guò)添加cAMP或dbcAMP解救。有研究發(fā)現(xiàn)Srv2能夠通過(guò)它的N-端和C-端分別連接Cyr1和G-actin,形成一個(gè)三聚體,在菌絲生長(zhǎng)時(shí)起著激活cAMP合成的作用[17]。

在真核細(xì)胞中,G蛋白偶聯(lián)受體能夠調(diào)控多種信號(hào)通路,當(dāng)其與配體結(jié)合后,本身構(gòu)象發(fā)生改變激活效應(yīng)蛋白,將信號(hào)傳遞至下游的效應(yīng)器分子,包括腺苷酸環(huán)化酶和磷脂酶C[18]。

Gpr1是真菌細(xì)胞膜上的G蛋白偶聯(lián)受體,由GPR1編碼,在白念珠菌中其真正的配體是什么仍然存在爭(zhēng)議,有研究認(rèn)為是葡萄糖,也有研究認(rèn)為是氨基酸尤其是甲硫氨酸發(fā)揮著與受體結(jié)合的作用[19]。在GPR1缺失菌中,Gα蛋白即Gpa2的組成性激活能夠解救其在菌絲形成中的缺陷至與野生菌一致,說(shuō)明GPR1在GPA2的上游發(fā)揮作用[11],Gpa2是由GPA2基因編碼的G蛋白α亞基,與Gpr1能夠相互作用,Gpr1的C端連接Gpa2后,后者能夠激活A(yù)C。在GPR1或者GPA2的缺失菌中,白念珠菌在固體培養(yǎng)基中菌絲形成和形態(tài)轉(zhuǎn)換都有障礙,但是在液體培養(yǎng)基中并沒(méi)有缺陷并且毒力保持完整[11,20]。此外,Ballou等[21]發(fā)現(xiàn)當(dāng)白念珠菌暴露于乳酸中時(shí),Gpr1能夠幫助其掩蔽β-葡聚糖從而逃避免疫系統(tǒng)的檢測(cè)。

3 Pde2和cAMP

cAMP是生物體內(nèi)重要的第2信使分子,cAMP激活PKA (cAMP依賴性蛋白激酶),使靶蛋白磷酸化,產(chǎn)生后續(xù)的效應(yīng),最后cAMP被磷酸二酯酶 (Pde)水解成5'-AMP而失活,發(fā)揮這一作用的主要是由PDE2編碼的磷酸二酯酶2蛋白 (Pde2)。

Jung等[22]發(fā)現(xiàn)白念珠菌PDE2缺失菌表現(xiàn)出細(xì)胞壁和細(xì)胞膜性質(zhì)改變相關(guān)表型,例如對(duì)膜干擾劑熒光素白和抗真菌藥物氟胞嘧啶的敏感性增加,同時(shí)細(xì)胞壁組成成分中麥角甾醇和葡聚糖的含量也發(fā)生了改變,導(dǎo)致細(xì)胞壁厚度減少了大約25%。PDE2缺失菌對(duì)于營(yíng)養(yǎng)缺失的敏感性顯著升高,37℃下PDE2缺失菌在PBS中4 h后死亡超過(guò)50%,而野生菌超過(guò)90%依然存活[23]。另外PDE2缺失菌的體外黏附能力和侵襲能力也有所下降[24]。

在白念珠菌出芽過(guò)程中,PDE2的高表達(dá)能夠拮抗SRV2激活的cAMP合成,抑制菌絲的生成,在PDE2缺失菌中,觀察到了高水平的cAMP和菌絲的超常生長(zhǎng),但是超常菌絲生長(zhǎng)的狀態(tài)和無(wú)菌絲狀態(tài)都是毒力缺失的[23]。

在瓊脂培養(yǎng)基上,野生型菌株形成由出芽酵母構(gòu)成的光滑菌落,而在同樣的條件下,純合的PDE2缺失菌表現(xiàn)出皺褶的菌落表型,褶皺的菌落由假菌絲和真菌絲混合而成[23]。綜上,我們可以知道,Pde2對(duì)于調(diào)節(jié)細(xì)胞內(nèi)cAMP水平是必不可少的,PDE2基因缺失后會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)cAMP無(wú)法降解以及PKA途徑的持續(xù)性激活。

4 PKA和Bcy1

PKA又稱cAMP依賴的蛋白激酶A,它的激活依賴于cAMP,當(dāng)cAMP水平升高后,與PKA的調(diào)節(jié)亞基結(jié)合從而改變構(gòu)象釋放出催化亞基而激活PKA。白念珠菌中PKA的調(diào)節(jié)亞基由BCY1編碼,催化亞基分別由TPK1和TPK2編碼[25]。

在TPK2基因缺失后,細(xì)胞內(nèi)的PKA活性顯著下降,只有野生型的10%,說(shuō)明PKA的活性主要由Tpk2發(fā)揮[26]。但是,Tpk1在白念珠菌細(xì)胞壁成分的調(diào)控中發(fā)揮著更重要的作用[27]。在TPK2缺失菌中,液體培養(yǎng)基菌絲的生長(zhǎng)顯著受阻而在固體培養(yǎng)基中菌絲形成的影響較小,菌株的毒力也部分下降,反之TPK2的過(guò)表達(dá)能誘導(dǎo)菌絲的生成并且促進(jìn)瓊脂侵襲[28];與TPK2缺失菌相反,TPK1缺失菌在固體培養(yǎng)基中表現(xiàn)出菌絲生長(zhǎng)的缺陷,而在液體培養(yǎng)基中菌絲形成只受到了輕微的影響[29],造成這些差異的原因是兩者的N-末端結(jié)構(gòu)域的不同,在N-末端它們大約有80~90個(gè)氨基酸的組成不同,Tpk的N-末端結(jié)構(gòu)域雜交實(shí)驗(yàn)表明瓊脂的侵襲是由Tpk2的N-末端結(jié)構(gòu)域介導(dǎo)的,但是Tpk1和Tpk2的催化域是高度同源的。

由于BCY1純合子缺失菌不能存活,所以Cassola等構(gòu)建了BCY1TPK2雜合缺失菌,缺失菌在GlcNac和血清誘導(dǎo)的條件下存在出芽缺陷。另外,通過(guò)Tpk1-GFP考察了野生菌、TPK2缺失菌和BCY1TPK2缺失菌細(xì)胞中Tpk1的定位,發(fā)現(xiàn)與野生菌、TPK2缺失菌中,Tpk1主要定位于細(xì)胞核中不同的是BCY1TPK2缺失菌中Tpk1分散于整個(gè)細(xì)胞中。另外,免疫共沉淀發(fā)現(xiàn)Bcy1與Tpk1-GFP有直接作用,說(shuō)明Bcy1可能在PKA的催化亞基的細(xì)胞核定位中發(fā)揮重要的功能[30]。

5 Efg1和Flo8

多項(xiàng)證據(jù)表明Efg1是PKA的下游元件,TPK2的過(guò)表達(dá)不能恢復(fù)EFG1缺失菌的表型,而EFG1的過(guò)表達(dá)卻能夠回復(fù)TPK2基因缺失的菌絲生長(zhǎng)缺陷;此外血清誘導(dǎo)的形態(tài)轉(zhuǎn)換已知是由PKA途徑介導(dǎo)的,而EFG1在這個(gè)過(guò)程中是不可或缺的[31-32]。Efg1作為該通路下游重要的轉(zhuǎn)錄因子,能夠調(diào)節(jié)下游多種基因的表達(dá),從而調(diào)控白念珠菌中菌絲形成、生物被膜生成等多種生物學(xué)功能。

Efg1是真菌特異性轉(zhuǎn)錄因子APSES (Asm1,Phd1,Sok2,Efg1,StuA)家族的成員,在形態(tài)轉(zhuǎn)換以及能量代謝等許多不同的生物學(xué)過(guò)程中發(fā)揮著重要的作用[33]。APSES家族還包括構(gòu)巢曲霉的StuA和粗糙脈孢菌中的Asm1,以及釀酒酵母中的Phd1和Sok2,所有APSES蛋白共享約100個(gè)氨基酸的高度保守的DNA結(jié)合結(jié)構(gòu)域 (APSES結(jié)構(gòu)域),其中心結(jié)構(gòu)域?yàn)榈湫偷膲A性螺旋-環(huán)-螺旋 (bHLH)結(jié)構(gòu)[34],在白念珠菌中,已經(jīng)發(fā)現(xiàn)了兩種APSES蛋白:Efg1和Efh1。

Efg1中央是堿性螺旋-環(huán)-螺旋 (bHLH)結(jié)構(gòu)域,其側(cè)翼是在真菌APSES蛋白中高度保守的序列,在N-和C-末端有多聚谷氨酰胺的延伸。Efg1的APSES域是真菌菌絲形態(tài)發(fā)生中必需的,而bHLH側(cè)翼序列是維持Efg1穩(wěn)定所必不可少的。Flo8轉(zhuǎn)錄因子與Efg1的結(jié)合不依賴于APSES結(jié)構(gòu)域,而Efg1與MluI細(xì)胞周期盒 (MCB)元件結(jié)合僅需要APSES結(jié)構(gòu)域。這表明Efg1的功能域包括參與DNA結(jié)合的APSES結(jié)構(gòu)域,以及同各種蛋白質(zhì)相互作用和調(diào)節(jié)活性所需的側(cè)翼區(qū)[35]。

EFG1缺失菌在許多誘導(dǎo)條件下菌絲生長(zhǎng)缺陷[36],在液體或固體培養(yǎng)基中添加血清或GlcNAc誘導(dǎo)菌絲形成被完全阻斷,相比之下,在微需氧或包埋條件下,EFG1基因缺失菌菌絲形成不受影響,甚至可能促進(jìn)菌絲的生長(zhǎng)[37]。這些結(jié)果表明,在不同的條件下,Efg1既可以發(fā)揮促進(jìn)菌絲形成的作用,也能抑制這一過(guò)程。

Efg1的DNA結(jié)合域可以與菌絲特異基因HYR1、HGC1和ECE1等相結(jié)合,并且介導(dǎo)它們與菌絲特異性Swi/Snf復(fù)合物的結(jié)合,從而實(shí)現(xiàn)靶基因在菌絲生成期間的轉(zhuǎn)錄激活[38]。另外,Efg1通過(guò)調(diào)節(jié)細(xì)胞壁相關(guān)蛋白基因 (如HWP1、ALS3)的表達(dá)來(lái)調(diào)節(jié)細(xì)胞表面特性。Hwp1在白念珠菌細(xì)胞間相互作用以及生物膜形成中十分重要的,在白念珠菌黏附于上皮細(xì)胞的過(guò)程中也是必不可少的[39];Als3是白念珠菌黏附到多種宿主細(xì)胞表面蛋白所必需的,包括內(nèi)皮細(xì)胞上的N-鈣粘蛋白和口腔上皮細(xì)胞上的E-鈣粘蛋白[40]。Efg1還參與了白念珠菌的代謝,在糖酵解中發(fā)揮著作用,在EFG1缺失菌中,糖酵解相關(guān)基因如FBA1、PFK1和ENO1等轉(zhuǎn)錄水平下降[41]。Efg1還負(fù)責(zé)調(diào)控天冬氨酸蛋白酶家族SAP3、SAP5等的表達(dá),在EFG1缺失菌中,SAP3和SAP5表達(dá)量明顯降低,菌株毒力下降[42],天冬氨酸蛋白酶是白念珠菌分泌的關(guān)鍵毒力因子,表明Ras/cAMP/PKA信號(hào)通路在毒力因子的控制中也發(fā)揮著重要的作用。

Flo8是一個(gè)含有LisH結(jié)構(gòu)域的轉(zhuǎn)錄因子,是RAS/cAMP/PKA通路下游的調(diào)節(jié)因子,通過(guò)影響白念珠菌形態(tài)轉(zhuǎn)換從而影響其致病性和毒力[43-44],在生物被膜的形成中也發(fā)揮重要的作用[45]。

白念珠菌中FLO8的缺失完全阻斷菌絲形成和菌絲相關(guān)基因的表達(dá),并導(dǎo)致系統(tǒng)性念珠菌病模型中毒力的喪失。FLO8和EFG1缺失菌的全基因組轉(zhuǎn)錄分析表明,F(xiàn)lo8特異性調(diào)節(jié)Efg1調(diào)節(jié)基因的子集,主要是菌絲特異性基因,提示Flo8可能在Efg1的下游發(fā)生作用,另外免疫共沉淀實(shí)驗(yàn)表明Flo8與Efg1有直接的相互作用,這些結(jié)果提示我們Efg1/Flo8復(fù)合物可能調(diào)控著眾多RAS/cAMP/PKA通路相關(guān)基因的表達(dá),如HWP1、HYR1、ECE1、ALS3、IHD1、SAP5和HGC1等[46]。此外,Du等[47]的研究表明Flo8在CO2誘導(dǎo)的灰白轉(zhuǎn)換以及菌絲生長(zhǎng)中扮演著關(guān)鍵的角色,并且Flo8的異位表達(dá)能夠顯著提高白念珠菌對(duì)CO2的敏感性。

RAS/cAMP/PKA信號(hào)通路在白念珠菌中發(fā)揮著十分廣泛且重要的作用,在白念珠菌的生存以及對(duì)宿主的感染中都扮演著舉足輕重的角色,對(duì)于形態(tài)轉(zhuǎn)換、黏附、侵襲、代謝、耐藥、應(yīng)激反應(yīng)和毒力都是不可或缺的。該通路還有許多新的未知功能的基因等待著被發(fā)掘研究,對(duì)這些基因功能的探索將會(huì)幫助我們了解RAS/cAMP/PKA通路的調(diào)控及分子機(jī)制。隨著白念珠菌中一些重要的毒力因子和信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路被闡釋清楚,其中一些基因或者蛋白未來(lái)或許能夠成為研發(fā)新的抗真菌藥物的靶點(diǎn)。

[1] Perfect JR,Hachem R,Wingard JR.Update on epidemiology of and preventive strategies for invasive fungal infections in cancer patients[J].Clin Infect Dis,2014,59(Suppl 5):S352-S355.

[2] Kullberg BJ,Arendrup MC.Invasive candidiasis[J].N Engl J Med,2015,373(15):1445-1456.

[3] Noble SM,Gianetti BA,Witchley JN.Candidaalbicanscell-type switching and functional plasticity in the mammalian host[J].Nat Rev Microbiol,2016,15(2):96-108.

[4] Lu Y,Su C,Liu H.Candidaalbicanshyphal initiation and elongation[J].Trends Microbiol,2014,22(12):707-714.

[5] Hogan DA,Sundstrom P.The Ras/cAMP/PKA signaling pathway and virulence inCandidaalbicans[J].Future Microbiol,2009,4(10):1263-1270.

[6] Bourne HR,Sanders DA,McCormick F.The GTPase superfamily:a conserved switch for diverse cell functions[J].Nature,1990,348(6297):125-132.

[7] David R.Fungal biology:Ras1 as a switch forCandidaalbicans[J].Nat Rev Micro,2013,11(7):431-431.

[8] Fang HM,Wang Y.RA domain-mediated interaction of Cdc35 with Ras1 is essential for increasing cellular cAMP level forCandidaalbicanshyphal development[J].Mol Microbiol,2006,61(2):484-496.

[9] Zhu Y,Fang HM,Wang YM,et al.Ras1 and Ras2 play antagonistic roles in regulating cellular cAMP level,stationary-phase entry and stress response inCandidaalbicans[J].Mol Microbiol,2009,74(4):862-875.

[10] Bojsen R,Regenberg B,Gresham D,et al.A common mechanism involving the TORC1 pathway can lead to amphotericin B-persistence in biofilm and planktonicSaccharomycescerevisiaepopulations[J].Sci Rep,2016,6:21874.

[11] Maidan MM,De Rop L,Serneels J,et al.The G protein-coupled receptor Gpr1 and the Galpha protein Gpa2 act through the cAMP-protein kinase A pathway to induce morphogenesis inCandidaalbicans[J].Mol Biol Cell,2005,16(4):1971-1986.

[12] Grahl N,Demers EG,Lindsay AK,et al.Mitochondrial activity and Cyr1 are key regulators of Ras1 activation ofC.albicansvirulence pathways[J].PLoS Pathog,2015,11(8):e1005133.

[13] Shapiro RS,Uppuluri P,Zaas AK,et al.Hsp90 orchestrates temperature-dependentCandidaalbicansmorphogenesis via Ras1-PKA signaling[J].Curr Biol,2009,19(8):621-629.

[14] Seneviratne CJ,Zeng G,Truong T,et al.New "haploid biofilm model" unravels IRA2 as a novel regulator ofCandidaalbicansbiofilm formation[J].Sci Rep,2015,5:12433.

[15] Hollomon JM,Grahl N,Willger SD,et al.Global role of cyclic AMP signaling in pH-dependent responses inCandidaalbicans[J].mSphere,2016,1(6):e00283-00216.

[16] Bahn YS,Sundstrom P.CAP1,an adenylate cyclase-associated protein gene,regulates bud-hypha transitions,filamentous growth,and cyclic AMP levels and is required for virulence of Candida albicans[J].J Bacteriol,2001,183(10):3211-3223.

[17] Zou H,Fang HM,Zhu Y,et al.CandidaalbicansCyr1,Cap1 and G-actin form a sensor/effector apparatus for activating cAMP synthesis in hyphal growth[J].Mol Microbiol,2010,75(3):579-591.

[18] Neer EJ.Heterotrimeric G proteins:organizers of transmembrane signals[J].Cell,1995,80(2):249-257.

[19] Sabina J,Brown V.Glucose sensing network inCandidaalbicans:a sweet spot for fungal morphogenesis[J].Eukaryot Cell,2009,8(9):1314-1320.

[20] Miwa T,Takagi Y,Shinozaki M,et al.Gpr1,a putative G-protein-coupled receptor,regulates morphogenesis and hypha formation in the pathogenic fungusCandidaalbicans[J].Eukaryot Cell,2004,3(4):919-931.

[21] Ballou ER,Avelar GM,Childers DS,et al.Lactate signalling regulates fungal beta-glucan masking and immune evasion[J].Nat Microbiol,2016,2:16238.

[22] Jung WH,Warn P,Ragni E,et al.Deletion of PDE2,the gene encoding the high-affinity cAMP phosphodiesterase,results in changes of the cell wall and membrane inCandidaalbicans[J].Yeast,2005,22(4):285-294.

[23] Bahn YS,Staab J,Sundstrom P.Increased high-affinity phosphodiesterase PDE2 gene expression in germ tubes counteracts CAP1-dependent synthesis of cyclic AMP,limits hypha production and promotes virulence ofCandidaalbicans[J].Mol Microbiol,2003,50(2):391-409.

[24] Wilson D,Tutulan-Cunita A,Jung W,et al.Deletion of the high-affinity cAMP phosphodiesterase encoded by PDE2 affects stress responses and virulence inCandidaalbicans[J].Mol Microbiol,2007,65(4):841-856.

[25] Giacometti R,Kronberg F,Biondi RM,et al.Cross regulation betweenCandidaalbicanscatalytic and regulatory subunits of protein kinase A[J].Fungal Genet Biol,2012,49(1):74-85.

[26] Cloutier M,Castilla R,Bolduc N,et al.The two isoforms of the cAMP-dependent protein kinase catalytic subunit are involved in the control of dimorphism in the human fungal pathogenCandidaalbicans[J].Fungal Genet Biol,2003,38(1):133-141.

[27] Fanning S,Xu W,Beaurepaire C,et al.Functional control of theCandidaalbicanscell wall by catalytic protein kinase A subunit Tpk1[J].Mol Microbiol,2012,86(2):284-302.

[28] Giacometti R,Kronberg F,Biondi RM,et al.CandidaalbicansTpk1p and Tpk2p isoforms differentially regulate pseudohyphal development,biofilm structure,cell aggregation and adhesins expression[J].Yeast,2011,28(4):293-308.

[29] Bockmuhl DP,Krishnamurthy S,Gerads M,et al.Distinct and redundant roles of the two protein kinase A isoforms Tpk1p and Tpk2p in morphogenesis and growth ofCandidaalbicans[J].Mol Microbiol,2001,42(5):1243-1257.

[30] Cassola A,Parrot M,Silberstein S,et al.Candidaalbicanslacking the gene encoding the regulatory subunit of protein kinase A displays a defect in hyphal formation and an altered localization of the catalytic subunit[J].Eukaryot Cell,2004,3(1):190-199.

[31] Staniszewska M,Bondaryk M,Swoboda-Kopec E,et al.Candidaalbicansmorphologies revealed by scanning electron microscopy analysis[J].Braz J Microbiol,2013,44(3):813-821.

[32] Caplice N,Moran GP.Candidaalbicansexhibits enhanced alkaline and temperature induction of Efg1-regulated transcripts relative toCandidadubliniensis[J].Genom Data,2015,6(30 Suppl 1):130-135.

[33] Connolly LA,Riccombeni A,Grozer Z,et al.The APSES transcription factor Efg1 is a global regulator that controls morphogenesis and biofilm formation inCandidaparapsilosis[J].Mol Microbiol,2013,90(1):36-53.

[34] Zhao Y,Su H,Zhou J,et al.The APSES family proteins in fungi:Characterizations,evolution and functions[J].Fungal Genet Biol,2015,81:271-280.

[35] Noffz CS,Liedschulte V,Lengeler K,et al.Functional mapping of theCandidaalbicansEfg1 regulator[J].Eukaryot Cell,2008,7(5):881-893.

[36] Wartenberg A,Linde J,Martin R,et al.Microevolution ofCandidaalbicansin macrophages restores filamentation in a nonfilamentous mutant[J].PLoS Genet,2014,10(12):e1004824.

[37] Giusani AD,Vinces M,Kumamoto CA.Invasive filamentous growth ofCandidaalbicansis promoted by Czf1p-dependent relief of Efg1p-mediated repression[J].Genetics,2002,160(4):1749-1753.

[38] Lu Y,Su C,Mao X,et al.Efg1-mediated recruitment of NuA4 to promoters is required for hypha-specific Swi/Snf binding and activation inCandidaalbicans[J].Mol Biol Cell,2008,19(10):4260-4272.

[39] James KM,MacDonald KW,Chanyi RM,et al.Inhibition ofCandidaalbicansbiofilm formation and modulation of gene expression by probiotic cells and supernatant[J].J Med Microbiol,2016,65(4):328-336.

[40] Phan QT,Eng DK,Mostowy S,et al.Role of endothelial cell septin 7 in the endocytosis ofCandidaalbicans[J].MBio,2013,4(6):e00542-00513.

[41] Doedt T,Krishnamurthy S,Bockmuhl DP,et al.APSES proteins regulate morphogenesis and metabolism inCandidaalbicans[J].Mol Biol Cell,2004,15(7):3167-3180.

[42] Moazeni M,Khoramizadeh MR,Teimoori-Toolabi L,et al.The effect of EFG1 gene silencing on down-regulation of SAP5 gene,by use of RNAi technology[J].Acta Med Iran,2014,52(1):9-14.

[43] Liu JY,Li WJ,Shi C,et al.Mutations in the Flo8 transcription factor contribute to virulence and phenotypic traits inCandidaalbicansstrains[J].Microbiol Res,2015,178:1-8.

[44] Ryan O,Shapiro RS,Kurat CF,et al.Global gene deletion analysis exploring yeast filamentous growth[J].Science,2012,337(6100):1353-1356.

[45] Fox EP,Bui CK,Nett JE,et al.An expanded regulatory network temporally controlsCandidaalbicansbiofilm formation[J].Mol Microbiol,2015,96(6):1226-1239.

[46] Cao F,Lane S,Raniga PP,et al.The Flo8 transcription factor is essential for hyphal development and virulence inCandidaalbicans[J].Mol Biol Cell,2006,17(1):295-307.

[47] Du H,Guan G,Xie J,et al.The transcription factor Flo8 mediates CO2sensing in the human fungal pathogenCandidaalbicans[J].Mol Biol Cell,2012,23(14):2692-2701.

[本文編輯] 衛(wèi)鳳蓮

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魯仁義,男 (漢族),碩士研究生在讀.E-mail:15821695738@163.com

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R 379.4

B

1673-3827(2017)12-0052-06

2017-01-12

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