靳晶 王全勝
·述評·
糖尿病腎病上皮細(xì)胞向間充質(zhì)細(xì)胞的轉(zhuǎn)分化
靳晶 王全勝
糖尿病腎病(diabetic nephropathy,DN)是糖尿病患者最嚴(yán)重的并發(fā)癥,也是導(dǎo)致終末期腎衰竭的主要病因,約30%~40%的1型糖尿病或2型糖尿病患者發(fā)生DN,DN的特征是細(xì)胞外基質(zhì)蛋白的積聚,主要包括各種膠原,層黏連蛋白和纖連蛋白沉積在系膜區(qū)和腎小管間質(zhì)、增厚的基底膜[1-3]。細(xì)胞外基質(zhì)的沉積繼發(fā)導(dǎo)致腎小管間質(zhì)纖維化、腎小球硬化、炎癥因子的浸潤、肌成纖維細(xì)胞的活化[1,3-4]。有報道顯示,肌成纖維細(xì)胞的數(shù)量與DN患者的腎功能呈顯著負(fù)相關(guān)[5-6]。雖然有學(xué)者認(rèn)為,活化的肌成纖維細(xì)胞是導(dǎo)致腎間質(zhì)細(xì)胞外基質(zhì)沉積的主要細(xì)胞,但是該細(xì)胞的來源問題仍然是有爭議的[3,7]。最初的研究表明,腎纖維化與上皮細(xì)胞向間充質(zhì)細(xì)胞轉(zhuǎn)分化(epithelial-to-mesenchymal transition,EMT)相關(guān),在疾病狀態(tài)下,上皮細(xì)胞能表達(dá)成纖維細(xì)胞表面標(biāo)志并且發(fā)生表型向成纖維細(xì)胞轉(zhuǎn)化[7-8]。因為腎小管上皮細(xì)胞異常表達(dá)成纖維細(xì)胞特異性蛋白(fibroblast specific protein,F(xiàn)SP),有研究提出部分肌成纖維細(xì)胞來源于腎小管上皮細(xì)胞的轉(zhuǎn)分化[8-9]。Iwano等[10]發(fā)現(xiàn)腎纖維化中,36%以上的肌成纖維細(xì)胞是由局部腎小管上皮細(xì)胞EMT而來。體外的研究顯示,包括轉(zhuǎn)化生長因子β1(transforming growth factor-β1,TGF-β1)在內(nèi)的多種因子能啟動EMT[11]。Zeisberg等[12]研究發(fā)現(xiàn),骨形態(tài)蛋白7(bone morphogenic protein 7,BMP7)能拮抗TGF-β1誘導(dǎo)的EMT,能逆轉(zhuǎn)腎纖維化。但是最近的研究發(fā)現(xiàn),肌成纖維細(xì)胞來源于多種細(xì)胞,使EMT導(dǎo)致腎纖維化的觀點受到質(zhì)疑[4]。Humphreys等[13]采用單側(cè)輸尿管梗阻(unilateral ureteral obstruction,UUO)腎纖維化模型小鼠的研究,沒有發(fā)現(xiàn)EMT來源的肌成纖維細(xì)胞。因此,當(dāng)前對EMT在腎纖維化中的重要作用有激烈的爭議。本述評將總結(jié)并分析、支持或反對EMT的一些證據(jù),討論在DN腎組織中,EMT是否能直接導(dǎo)致腎纖維化的惡性進(jìn)展。
腎間質(zhì)中肌成纖維細(xì)胞是產(chǎn)生細(xì)胞外基質(zhì)的主要來源,但是在纖維化的腎臟中,肌成纖維細(xì)胞的活化過程及來源仍然不清楚,并且存在爭議[7,14]。有研究顯示,在腎纖維化中,多種類型的細(xì)胞能促進(jìn)細(xì)胞外基質(zhì)的積聚及重構(gòu)[15]。例如,有研究顯示,在腎纖維化模型中的肌成纖維細(xì)胞來源于骨髓細(xì)胞、腎小管上皮細(xì)胞及血管內(nèi)皮細(xì)胞[16]。關(guān)于肌成纖維細(xì)胞的來源,有爭議的觀點如下:有研究支持腎纖維化中血管周邊的pericytes細(xì)胞是肌成纖維細(xì)胞的啟動細(xì)胞;也有研究質(zhì)疑,EMT和內(nèi)皮細(xì)胞向間充質(zhì)細(xì)胞轉(zhuǎn)分化在肌成纖維細(xì)胞產(chǎn)生及腎纖維化中的作用[17]。有觀點認(rèn)為,腎纖維化中骨髓是所有肌成纖維細(xì)胞的來源[17]。無論如何,明確肌成纖維細(xì)胞不同種類的特征及行為確定腎臟肌成纖維細(xì)胞的來源是很重要的[18]。當(dāng)前,對其來源問題的研究結(jié)果是差異極大的。Lin等[19]研究提示,少于0.1%的肌成纖維細(xì)胞是骨髓來源的細(xì)胞。Lebleu等[17]研究發(fā)現(xiàn),35%的肌成纖維細(xì)胞來源于骨髓,同樣在關(guān)于腎小管上皮細(xì)胞EMT導(dǎo)致腎纖維化的研究中存在很大的差異。有報道36%的腎小管上皮細(xì)胞發(fā)生EMT[10]、有報道為5%[17],有報道是幾乎沒有腎小管上皮細(xì)胞發(fā)生EMT[13]。這些結(jié)果都是采用UUO腎病模型研究得到的。由于UUO腎病模型能模擬伴有腎小管損傷的腎纖維化的各種關(guān)鍵性的特征,因此成為研究腎纖維化的經(jīng)典模型[18]。然而,當(dāng)前的研究表明,腎臟中產(chǎn)生膠原的肌成纖維細(xì)胞來源于多種細(xì)胞,包括上皮細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、骨髓腔內(nèi)膜細(xì)胞[3,18]。Lebleu 等采用多種基因工程小鼠來示蹤細(xì)胞,檢測在UUO小鼠10 d后的腎纖維化中的肌成纖維細(xì)胞的來源和功能,并且證實所有的肌成纖維細(xì)胞呈異質(zhì)性。聚集的肌成纖維細(xì)胞主要有兩種不同的來源:①50%是固有成纖維細(xì)胞局部增殖的;②35%是骨髓來源的細(xì)胞。另外,他們發(fā)現(xiàn)腎纖維化中,一定數(shù)量的腎小管上皮細(xì)胞獲得α平滑肌肌動蛋白(α-smooth muscle actin,α-SMA)的表達(dá),大約5%的肌成纖維細(xì)胞是真正來源于腎小管上皮細(xì)胞發(fā)生完整的EMT。他們證實,10%的肌成纖維細(xì)胞是來源于內(nèi)皮細(xì)胞發(fā)生間充質(zhì)細(xì)胞轉(zhuǎn)分化[17]。像EMT一樣,內(nèi)皮細(xì)胞向間充質(zhì)細(xì)胞轉(zhuǎn)分化,通過增加腎小球及腎小管間質(zhì)中的肌成纖維細(xì)胞的數(shù)量,參與腎臟纖維化[14,20],同時他們也發(fā)現(xiàn)UUO中pericytes細(xì)胞不參與腎纖維化[13,17-18]。這與Humphreys等[13]報道超過90%的肌成纖維細(xì)胞來源于活化的pericytes細(xì)胞是完全不一致的。腎臟纖維化中的肌成纖維細(xì)胞還有一種來源是腎小球上皮細(xì)胞即足突細(xì)胞。有研究顯示,足突細(xì)胞損傷后能發(fā)生EMT,導(dǎo)致足突細(xì)胞功能紊亂最終導(dǎo)致腎小球濾過率的減少[21]??傊?,在腎纖維化中的成纖維細(xì)胞來源于多種不同的細(xì)胞,但是很少有研究來確定,特別是在DN中,是否當(dāng)前形容的導(dǎo)致腎纖維化不同類型細(xì)胞的比例是相同的或不同?在腎間質(zhì)成纖維細(xì)胞中,由EMT產(chǎn)生的比例是多少?目前有一些研究顯示,在DN腎纖維化進(jìn)程中的確發(fā)生了EMT。例如在2型糖尿病引起的DN患者中,α-SMA陽性的細(xì)胞總是在腎間質(zhì)區(qū),而且是圍繞在腎小管基底膜周圍或之間[22]。有報道發(fā)現(xiàn),在DN的實驗及臨床研究中,除了足突細(xì)胞和腎小球內(nèi)皮細(xì)胞以外,系膜細(xì)胞也是肌成纖維細(xì)胞的另外一種來源,該過程稱為肌成纖維細(xì)胞轉(zhuǎn)分化即腎小球系膜細(xì)胞正常的表型發(fā)生改變,變成了肌成纖維細(xì)胞,從而產(chǎn)生更多的細(xì)胞外基質(zhì),而且腎纖維化中肌成纖維細(xì)胞轉(zhuǎn)分化是骨髓來源的前體細(xì)胞變成肌成纖維細(xì)胞的機(jī)制[15]。
盡管體內(nèi)EMT或內(nèi)皮細(xì)胞向間充質(zhì)細(xì)胞分化在腎纖維化中是否起重要作用,當(dāng)前的文獻(xiàn)資料還存在爭議,但是在體外的研究中,腎臟細(xì)胞分化為成纖維細(xì)胞的確存在,有多種因子及信號通路參與該過程。TGF-β1是啟動及完成EMT或內(nèi)皮細(xì)胞向間充質(zhì)細(xì)胞分化最有力的誘導(dǎo)因子[1,5,7,16,23-26]。EMT是一種復(fù)雜的表型改變,上皮細(xì)胞失去緊密的細(xì)胞間連接并且其結(jié)構(gòu)極性變成紡錘體樣形狀,像間充質(zhì)細(xì)胞或肌成纖維細(xì)胞[27]。EMT中關(guān)鍵事件是上皮細(xì)胞間緊密連接的破壞、細(xì)胞頂部與底部極性的消失、細(xì)胞骨架的重組和細(xì)胞形態(tài)的改變、上皮細(xì)胞的基因表達(dá)下調(diào)、間充質(zhì)細(xì)胞的基因表達(dá)上調(diào)、細(xì)胞的游走性增加[26]。EMT過程有4個關(guān)鍵的事件:①上皮細(xì)胞間的黏附消失;②新基因α-SMA的表達(dá)和肌動蛋白的重組;③腎小管基底膜被基質(zhì)金屬蛋白酶(matrix metalloproteinase,MMP)裂解;④細(xì)胞的遷移能力和侵襲周圍腎間質(zhì)的能力提高[7,28]。細(xì)胞的這種遷移能力導(dǎo)致細(xì)胞外基質(zhì)的沉積增加,因而使EMT在腎小管間質(zhì)纖維化中起關(guān)鍵作用[4]。EMT的早期階段是上皮細(xì)胞間緊密連接的分解和細(xì)胞極性的消失[23,26]。上皮細(xì)胞的基因表達(dá)受抑制的同時,間充質(zhì)細(xì)胞的基因活化[26],接著上皮細(xì)胞的肌動蛋白結(jié)構(gòu)的重組、上皮細(xì)胞失去鵝卵石樣形態(tài)變成拉長的紡錘體樣形態(tài),同時伴隨有新的基因α-SMA的表達(dá)[11,26]。當(dāng)上皮細(xì)胞從腎小管基底膜釋放后,它們通過被MMP破壞的基底膜的缺口侵襲到腎間質(zhì)[3]。體外研究報道,完整的腎小管基底膜是保持上皮細(xì)胞表型的必須條件,它的破壞足夠啟動EMT[11]。大量的研究報道,EMT的進(jìn)展受多種信號通路或分子的調(diào)節(jié)能相互協(xié)作誘導(dǎo)完整的EMT過程。例如Smad、p38 MAPK、TLRs、Wnt、SGK1、Notch、小分子GTPase和 Hedgehog 等通路能參與EMT[1,26,29-31],miRNAs也參與EMT[32-33]。腎小球上皮細(xì)胞(足突細(xì)胞)同樣能發(fā)生EMT[34]。足突細(xì)胞是一種非常特別的上皮細(xì)胞,它們覆蓋在腎小球基底膜外側(cè),在調(diào)節(jié)腎小球功能中起非常重要的作用[35]。在DN患者及多種不同的DN動物模型中都有蛋白尿的發(fā)生,同時有足突細(xì)胞表型發(fā)生改變及其運動能力的增加和新的基因標(biāo)志表達(dá)發(fā)生[36]。最近的報道提示,EMT是DN足突細(xì)胞丟失的一種新的解釋[21,34,37]。其他的研究還表明,在包括DN的多種慢性腎臟病小鼠模型中,內(nèi)皮細(xì)胞通過向間充質(zhì)細(xì)胞分化獲得了間充質(zhì)細(xì)胞的結(jié)構(gòu)及功能[14,20,38-40]。像EMT一樣,在內(nèi)皮細(xì)胞向間充質(zhì)細(xì)胞分化過程中,內(nèi)皮細(xì)胞失去黏附性和頂部-基底部的極性產(chǎn)生高度的侵襲性、遷移性、紡錘樣拉長樣間充質(zhì)細(xì)胞的形態(tài)[41]。內(nèi)皮細(xì)胞向間充質(zhì)細(xì)胞分化是一種復(fù)雜的生物學(xué)過程,腎小管間質(zhì)血管和腎小球內(nèi)皮細(xì)胞失去特有的內(nèi)皮細(xì)胞標(biāo)志(如血管內(nèi)皮cadherin 和CD31),獲得間充質(zhì)細(xì)胞或肌成纖維細(xì)胞表型α-SMA、vimentin和I型膠原[42]。除此之外,它們還有運動性及遷移到周圍組織的能力[42]。與EMT一樣,TGF-β家族信號蛋白、高血糖、晚期糖基化終末產(chǎn)物(advanced glycation end-products,AGEs)和血管緊張素Ⅱ能誘導(dǎo)內(nèi)皮細(xì)胞向間充質(zhì)細(xì)胞分化[5,16]。
TGF-β1、高糖和AGEs能誘導(dǎo)腎小管上皮細(xì)胞和腎小球上皮細(xì)胞(足突細(xì)胞)EMT以及內(nèi)皮細(xì)胞向間充質(zhì)細(xì)胞分化。大量研究顯示,TGF-β1、高糖及其他糖尿病環(huán)境因素刺激腎小管上皮細(xì)胞和腎小球上皮細(xì)胞(足突細(xì)胞)48~72 h,這些上皮細(xì)胞發(fā)生EMT過程中有兩種關(guān)鍵事件發(fā)生:在不同的腎小管上皮細(xì)胞或足突細(xì)胞中,上皮細(xì)胞標(biāo)志減少(如E/P-cadherin、ZO-1)、間充質(zhì)細(xì)胞標(biāo)志蛋白(如α-SMA、vimentin)增加[12,33,37,43-51]。其他的研究觀察EMT中轉(zhuǎn)錄因子表達(dá)及定位的改變(如β-catenin、Snail、Twist等),還觀察了細(xì)胞外基質(zhì)成分如膠原和纖連蛋白的改變[21,33,44-45,52-53]。研究證實,EMT有4個關(guān)鍵的事件:TGF-β1刺激人近端腎小管上皮細(xì)胞3 d后,細(xì)胞出現(xiàn)E-cadherin表達(dá)下降伴有α-SMA表達(dá)及肌動蛋白的重組。細(xì)胞分泌MMP2 和MMP9能裂解15 μm的與腎小管基底膜(tubular basement membrane,TBM)基質(zhì)成分相近的明膠,細(xì)胞出現(xiàn)肌成纖維細(xì)胞形態(tài),并有遷移及侵襲性[28]。后續(xù)的研究發(fā)現(xiàn),體外重組的人BMP-7能逆轉(zhuǎn)TGF-β1誘導(dǎo)的腎小管上皮細(xì)胞及足突細(xì)胞的EMT[12,50],肝細(xì)胞生長因子也能抑制TGF-β1誘導(dǎo)的人近端腎小管上皮細(xì)胞EMT[54]。高糖誘導(dǎo)TGF-β1增加,繼而通過減少connexin-43表達(dá),導(dǎo)致人近端腎小管上皮細(xì)胞黏附降低[55]。Connexins是一組家族轉(zhuǎn)膜蛋白,能與多種黏附分子及結(jié)構(gòu)蛋白(如ZO-1、N-cadherin)配對。在體外糖尿病環(huán)境、糖尿病小鼠模型及DN患者中,足突細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、腎小管上皮細(xì)胞的Connexins表達(dá)下調(diào)[56]。
因為EMT是一個可塑的過程并有多種中間狀態(tài),所以體內(nèi)發(fā)現(xiàn)EMT的證據(jù)較困難[57]。前期的研究發(fā)現(xiàn),DN中有EMT和內(nèi)皮細(xì)胞向間充質(zhì)細(xì)胞分化發(fā)生,并在DN進(jìn)展中起重要作用。Oldfield等[43]研究發(fā)現(xiàn),鏈脲菌素(streptozotocin,STZ)誘導(dǎo)的DN大鼠腎組織中,大約5%腎小管細(xì)胞表達(dá)α-SMA,這表明腎小管上皮細(xì)胞EMT的確存在。他們還發(fā)現(xiàn),在1型DN患者腎穿刺標(biāo)本中,在完整的腎小管中的上皮細(xì)胞有α-SMA表達(dá)。其他的報道顯示,在2型糖尿病患者腎臟組織中的一些腎小管上皮細(xì)胞內(nèi)基底部的細(xì)絲變成束狀,這強(qiáng)烈支持EMT理論。因為,這些變化是反映了細(xì)胞骨架蛋白的表達(dá)與結(jié)構(gòu)的改變,是EMT的關(guān)鍵事件[22]。另外,在STZ誘導(dǎo)的DN中,上皮細(xì)胞特異性的表面標(biāo)志(E-cadherin和ZO-1)減少,同時α-SMA的合成及間充質(zhì)細(xì)胞表面標(biāo)志蛋白出現(xiàn)[2],這與其他在DN患者腎穿刺標(biāo)本及DN動物模型中的研究一致[44-45,58]。Rastaldi等[58]研究發(fā)現(xiàn),EMT標(biāo)志蛋白與血肌酐及腎間質(zhì)損傷有相關(guān)性。Zheng等[59]研究尿中EMT標(biāo)志分子的mRNA與DN患者腎臟進(jìn)展相關(guān)性,他們發(fā)現(xiàn)DN患者中α-SMA、纖連蛋白和MMP-9明顯增加,并且與尿白蛋白及血尿素氮呈明顯相關(guān)。足突細(xì)胞的損傷在DN進(jìn)展中起重要作用,足突細(xì)胞EMT導(dǎo)致足突細(xì)胞功能紊亂,最終導(dǎo)致腎小球濾過率下降。有研究顯示,在STZ誘導(dǎo)的早期DN模型中,足突細(xì)胞的表型發(fā)生改變,間充質(zhì)細(xì)胞標(biāo)志蛋白desmin增加,上皮細(xì)胞標(biāo)志蛋白nephrin減少[21,37]。在1型及2型糖尿病患者中,腎小球的nephrin及ZO-1表達(dá)下降[21,34,60]。Li等[21]采用免疫組織化學(xué)染色方法發(fā)現(xiàn),DN患者中腎小球足突細(xì)胞特異性標(biāo)志蛋白nephrin和ZO-1表達(dá)下調(diào),間充質(zhì)細(xì)胞標(biāo)志蛋白desmin、MMP9和FSP1表達(dá)上調(diào)。日本學(xué)者Yamaguchi 等[34]發(fā)現(xiàn),在2型DN患者尿液及腎組織中有FSP1陽性的足突細(xì)胞,而且FSP1陽性的足突細(xì)胞與患者的臨床及病理損傷的嚴(yán)重性有相關(guān)性。Zeisberg等[20]研究表明,內(nèi)皮細(xì)胞來源的成纖維細(xì)胞促進(jìn)了STZ誘導(dǎo)的DN小鼠早期腎間質(zhì)纖維化,在6個月的STZ誘導(dǎo)的DN小鼠中,他們通過基因示蹤技術(shù)和免疫雙染色法標(biāo)記內(nèi)皮細(xì)胞和成纖維細(xì)胞標(biāo)志蛋白(FSP1/CD31及α-SMA/CD31),發(fā)現(xiàn)約40%FSP1陽性的細(xì)胞和50%α-SMA陽性的細(xì)胞同時表達(dá)CD31,提示這些成纖維細(xì)胞是內(nèi)皮細(xì)胞來源的。Li等[38]研究提示,在DN中內(nèi)皮細(xì)胞向間充質(zhì)細(xì)胞分化是腎間質(zhì)及腎小球肌成纖維細(xì)胞產(chǎn)生新的機(jī)制。他們運用內(nèi)皮細(xì)胞示蹤的小鼠細(xì)胞系發(fā)現(xiàn),在STZ誘導(dǎo)的DN小鼠1個月時,10%的腎間質(zhì)肌成纖維細(xì)胞來源于內(nèi)皮細(xì)胞;在4個月時,25%腎間質(zhì)肌成纖維細(xì)胞是來源于內(nèi)皮細(xì)胞。隨后的研究發(fā)現(xiàn),Smad3能抑制DN腎損傷的早期發(fā)展及AGE誘導(dǎo)的內(nèi)皮細(xì)胞向間充質(zhì)細(xì)胞分化[39]。這些研究證實,在DN小鼠腎組織中25%~50%的成纖維細(xì)胞共表達(dá)內(nèi)皮細(xì)胞表面標(biāo)志和成纖維細(xì)胞/肌成纖維細(xì)胞表面標(biāo)志(如FSP1和α-SMA)。
1.EMT是一個高度動態(tài)過程 當(dāng)前(2017年1月22日),在pubmed用關(guān)鍵詞“epithelial-to-mesenchymal transition”和“kidney fibrosis”檢索,得到712篇文獻(xiàn),其中近5年有384篇。用關(guān)鍵詞“epithelial-to-mesenchymal transition”和“diabetic nephropathy”檢索得到140篇文獻(xiàn),其中有98篇文獻(xiàn)是近5年的。這些大量的文獻(xiàn)表明,EMT在腎纖維化及DN中的研究仍然是一個研究的熱點。盡管腎纖維化體內(nèi)EMT的存在仍然遠(yuǎn)未得到證實,但是很多研究者支持在腎纖維化中EMT是一個真實的現(xiàn)象。盡管有EMT的反對者,如Jeremy Duffield用細(xì)胞示蹤技術(shù)的體內(nèi)研究沒有證實到腎纖維化中上皮細(xì)胞的遷移及分化為肌成纖維細(xì)胞[61]。盡管用細(xì)胞示蹤技術(shù)的實驗檢測體內(nèi)腎臟成纖維細(xì)胞的來源被廣泛接受,但是如何在體內(nèi)檢測EMT的問題仍然存在。證實EMT發(fā)生的理想方法需要用實時監(jiān)測的方法觀察并追蹤上皮細(xì)胞轉(zhuǎn)分化為成纖維細(xì)胞并遷移到腎間質(zhì),但是當(dāng)前的技術(shù)是無法完成的,替代的方法僅用組織化學(xué)技術(shù)對腎纖維化組織,對EMT過程進(jìn)行簡單快速定時檢測[14,61]。有一些研究發(fā)現(xiàn),糖尿病狀態(tài)下腎小管上皮細(xì)胞發(fā)生部分EMT表型證實細(xì)胞同時表達(dá)上皮細(xì)胞標(biāo)志和間充質(zhì)細(xì)胞標(biāo)志[25,48,62]。因此,EMT變成成纖維細(xì)胞的確是一個高度動態(tài)過程,EMT不需要完成一個完整的成纖維細(xì)胞轉(zhuǎn)型,而是能停止在各種時期[61]。
2.當(dāng)前存在2個根本性的問題 腎纖維化中體內(nèi)EMT是否真的發(fā)生?EMT是否促進(jìn)了腎間質(zhì)纖維化?或換一句話講,EMT是在慢性腎臟病腎纖維化中還是僅在DN腎纖維化中起關(guān)鍵作用[7]?如本文中討論的,無論是小鼠還是人的腎活檢標(biāo)本,大量的EMT研究是集中在EMT初期,不能提供EMT體內(nèi)存在的直接證據(jù)。無論如何,綜合這些揭示腎纖維化中上皮細(xì)胞侵襲到腎間質(zhì)并轉(zhuǎn)分化為活化的肌成纖維細(xì)胞的獨立研究,這些支持EMT的證據(jù)是不能被忽略的。另一方面,來自Humphreys、Koesters和Faulkners的細(xì)胞示蹤研究未能檢測到腎纖維化體內(nèi)EMT的任何證據(jù),特別是Koesters等[63]在TGF-β誘導(dǎo)的腎間質(zhì)纖維化模型中未能檢測到EMT的貢獻(xiàn)。大多數(shù)研究是采用α-SMA和FSP1的表達(dá)作為腎小管上皮細(xì)胞分化為肌成纖維細(xì)胞的代表性標(biāo)志,但是有爭論表明α-SMA和FSP1不是可靠的標(biāo)志,因為他們?nèi)狈?xì)胞特異性和持續(xù)性[7,61]。FSP1在受傷的腎組織的白細(xì)胞中也表達(dá)。因此,F(xiàn)SP1是否能作為成纖維細(xì)胞特有的蛋白是受到質(zhì)疑的[61,64]。有趣的是,足突細(xì)胞也表達(dá)FSP1,表明足突細(xì)胞發(fā)生EMT是可能的[64]。綜合這些DN中EMT的研究,Humphreys等[13]未能在UUO模型中發(fā)現(xiàn)腎小管上皮細(xì)胞表達(dá)α-SMA的研究是值得關(guān)注的。這些研究的差異性可能是不同的實驗設(shè)計及EMT過程的復(fù)雜性導(dǎo)致的。當(dāng)前的研究共識是,EMT是像波浪樣的極度動態(tài)過程,正確的時間選擇是檢測EMT的重要因素[7]。如Liu等[45]證明,在STZ誘導(dǎo)的大鼠DN中有EMT發(fā)生,DN模型2周后,發(fā)現(xiàn)腎組織中E-cadherin的表達(dá)減少同時纖連蛋白的表達(dá)急劇增加,但是延遲到建模12周才有α-SMA的表達(dá)上調(diào)。有趣的是,在人DN腎臟組織EMT過程中都有α-SMA的延遲表達(dá)或表達(dá)極低[9]。EMT的主要研究高度依賴于檢測動態(tài)轉(zhuǎn)型細(xì)胞共表達(dá)上皮細(xì)胞及間充質(zhì)細(xì)胞標(biāo)志,但是對假定的中間形態(tài)的轉(zhuǎn)型細(xì)胞持續(xù)的時間及命運還不知道。由于,EMT的轉(zhuǎn)型時間非常短暫,因而腎組織的檢測分析時間的選擇存在爭論[7,61]。可是,UUO小鼠模型是否是一個好的模擬人腎纖維化的模型,還有爭論因為腎損傷的產(chǎn)生,在UUO小鼠僅數(shù)月,而人是數(shù)年[11]。在DN 3期及4期患者中,是肌成纖維細(xì)胞介導(dǎo)的DN腎小管間質(zhì)纖維化最明顯階段[22]。Koesters等[63]對UUO建模后僅4 d小鼠的腎組織進(jìn)行分析,盡管該時期的腎組織有腎纖維化的各種特征包括小管的損傷等,但是未能檢測到腎小管上皮細(xì)胞發(fā)生EMT。因此,還存在疑問的是,UUO小鼠模型中發(fā)生的一切腎臟事件能否應(yīng)用到其他類型的腎纖維或者能否反映人的UUO腎臟病理經(jīng)過[18,59]。近期的研究報道,在不同的腎臟病模型中EMT對腎纖維化的貢獻(xiàn)不同[65-66]。Inoue等[66]推測不同實驗條件(包括疾病模型)、小鼠品系的遺傳背景、基因型的改變能導(dǎo)致EMT參與腎纖維化的差異性。為證明這種可能性,他們通過控制γ-glutamyl 轉(zhuǎn)肽酶啟動子改變遺傳基因,在腎皮質(zhì)小管上皮細(xì)胞中,高表達(dá)綠色熒光蛋白(enhanced green fluorescence protein,EGFP)的幾種品系的小鼠中制造腎臟疾病模型。他們發(fā)現(xiàn)腎組織中EMT的發(fā)生及促進(jìn)腎間質(zhì)纖維化,依賴于特異性腎病和小鼠的品系。例如,通過使用Humphreys等同樣的小鼠UUO模型,Inoue等檢測到表達(dá)EGFP陽性的腎間質(zhì)細(xì)胞,而且EMT的相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子表達(dá)上調(diào)。特別重要的是,他們用一種對腎纖維化有抵抗的品系小鼠制造UUO模型,雖然有腎間質(zhì)的病變,但是沒有檢測到EGFP陽性的腎間質(zhì)細(xì)胞。這和其他前期的研究報道,在UUO模型中EMT發(fā)生率極低是一致的[65-66]。有文獻(xiàn)報道,在不同的腎臟疾病模型中用不同的方法來檢測EMT存在不一致的研究結(jié)果[67]。由于實驗方法的不一致性,為檢測EMT的小鼠品系和腎病模型應(yīng)該有統(tǒng)一標(biāo)準(zhǔn)[9]。因此,Zeisberg等[57]提出研究EMT的統(tǒng)一標(biāo)準(zhǔn):應(yīng)該包括4個關(guān)鍵事件中每一個事件中一種改變的標(biāo)志蛋白,達(dá)到研究相同現(xiàn)象的結(jié)果一致性,而且用多種標(biāo)志而不是單一標(biāo)志,同時檢測上皮細(xì)胞EMT相關(guān)改變更加可信。因為,實時觀察上皮細(xì)胞轉(zhuǎn)分化為成纖維細(xì)胞并遷移到腎間質(zhì)是無法完成的,并建議同時檢測上皮細(xì)胞標(biāo)志(如N-cadherin、E-cadherin和ZO-1)細(xì)胞骨架蛋白(如α-SMA和vimentin),轉(zhuǎn)錄因子信號(如Snail、Slug、Twist和FOXC2)和分泌的microRNAs的水平的改變是檢測體內(nèi)EMT存在的好方法[9,57]。最近的一項研究,通過檢測EMT4個類別中,每一類別多個標(biāo)記,證實STZ誘導(dǎo)的DN模型腎組織中的EMT的重要作用[2]。像Simonson提出的爭議問題,要證明EMT促進(jìn)DN腎纖維化,需有兩種事實證據(jù):①細(xì)胞外能誘導(dǎo)EMT的因素也應(yīng)該促進(jìn)DN模型腎纖維化;②EMT的抑制因子能減輕或阻斷DN模型中腎纖維化進(jìn)程[15]。必須強(qiáng)調(diào)的是,在體內(nèi)腎小管上皮細(xì)胞暴露在血液中,與體外細(xì)胞的實驗相比較,血液中每一種因子的濃度都很低[27]。另一方面,在體內(nèi)糖尿病環(huán)境下的腎小管上皮細(xì)胞受到多種潛在EMT誘導(dǎo)因素刺激,這與UUO模型不同。針對Simonson的第二個爭論的問題,有研究顯示,給予BMP7或肝細(xì)胞生長因子能阻斷腎小管上皮細(xì)胞EMT,同時能逆轉(zhuǎn)慢性腎臟病腎損傷[3,12,54]。還有研究報道,二甲雙呱(一種治療2型糖尿病的藥物),能夠通過抑制TGF-β誘導(dǎo)的腎小管上皮細(xì)胞EMT,防止腎小管的損傷[68-69]。最近的研究顯示,Snail1能誘導(dǎo)梗阻性腎病小鼠腎小管上皮細(xì)胞發(fā)生部分EMT,導(dǎo)致腎纖維化,抑制Snail1能減輕腎纖維化。敲除Snail或Twist基因,能減輕梗阻性腎病小鼠腎小管上皮細(xì)胞EMT,繼而抑制腎損傷,保護(hù)腎小管功能[70-71]。這些研究強(qiáng)烈支持EMT在慢性腎臟病特別是DN腎纖維化中起關(guān)鍵性作用。綜合考慮,腎小管上皮細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、足突細(xì)胞發(fā)生表型轉(zhuǎn)分化,促進(jìn)DN腎小球硬化及腎間質(zhì)纖維化的事實,這些是EMT和內(nèi)皮細(xì)胞向間充質(zhì)細(xì)胞分化對DN患者腎臟病理生理有顯著作用的強(qiáng)有力證據(jù)。
本文是針對DN中是否存在EMT,一個過去有較大爭論的問題。目前,有大量的文獻(xiàn)證據(jù)支持EMT不僅發(fā)生在體外,同時也發(fā)生在DN體內(nèi),這種觀點被廣泛接受。盡管有較堅實的體內(nèi)研究反對EMT是腎纖維化中肌成纖維細(xì)胞的來源。大多數(shù)研究者仍然強(qiáng)烈支持DN腎組織中肌成纖維細(xì)胞的數(shù)量,與腎小管基底膜的厚度及破壞、與腎間質(zhì)纖維化之間存在直接的聯(lián)系,而且我們相信EMT在DN腎纖維化發(fā)展進(jìn)程中起重要作用。另外,這里討論的來自于獨立原始研究文獻(xiàn)的大量數(shù)據(jù),使我們相信EMT和內(nèi)皮細(xì)胞向間充質(zhì)細(xì)胞分化至少在一定程度上的確存在,它們在DN腎纖維化發(fā)展中不能被忽視。因為,目前DN中腎臟上皮細(xì)胞或腎臟內(nèi)皮細(xì)胞分化為肌成纖維細(xì)胞的精確比例是完全不知道。為了解更多,期望上皮細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞示蹤的小鼠用于STZ或基因改造誘導(dǎo)的DN模型中。所以,當(dāng)前DN腎纖維化中的研究觀點不存在實質(zhì)性矛盾。
[1] Hu C, Sun L, Xiao L, et al. Insights into the mechanisms involved in the expression and regulation of extracellular matrix proteins in diabetic nephropathy[J]. Curr Med Chem, 2015, 22(24): 2858-2870.
[2] Loeffler I, Liebisch M, Wolf G. Collagen viii influences epithelial phenotypic changes in experimental diabetic nephropathy[J]. Am J Physiol Renal Physiol, 2012, 303(5): 733-745.
[3] Zeisberg M, Neilson EG. Mechanisms of tubulointerstitial fibrosis[J]. J Am Soc Nephrol, 2010, 21(11): 1819-1834.
[4] Hills CE, Squires PE. The role of tgf-beta and epithelial-to mesenchymal transition in diabetic nephropathy[J]. Cytokine Growth Factor Rev, 2011, 22(3): 131-139.
[5] Li J, Bertram JF. Review: fndothelial-myofibroblast transition, a new player in diabetic renal fibrosis[J]. Nephrology (Carlton), 2010, 15(5): 507-512.
[6] Pedagogos E, Hewitson T, Fraser I, et al. Myofibroblasts and arteriolar sclerosis in human diabetic nephropathy[J]. Am J Kidney Dis, 1997, 29(6): 912-918.
[7] Liu Y. Epithelial to mesenchymal transition inrenal fibrogenesis: pathologic significance, molecular mechanism, and therapeutic intervention[J]. J Am Soc Nephrol, 2004, 15(1): 1-12.
[8] Strutz F, Okada H, Lo CW, et al. Identification and characterization of a fibroblast marker: fsp1[J]. J Cell Biol, 1995, 130(2): 393-405.
[9] Galichon P, Hertig A. Epithelial tomesenchymal transition as a biomarker in renal fibrosis: are we ready for the bedside[J]? Fibrogenesis Tissue Repair, 2011, 4(11): 1-7.
[10]Iwano M, Plieth D, Danoff TM, et al. Evidence that fibroblasts derive from epithelium during tissue fibrosis[J]. J Clin Invest, 2002, 110(3): 341-350.
[11]Fragiadaki M, Mason RM. Epithelial-mesenchymal transition in renal fibrosis-evidence for and against[J]. Int J Exp Pathol, 2011, 92(3): 143-150.
[12]Zeisberg M, Hanai J, Sugimoto H, et al. BMP-7 counteracts TGF-beta1-induced epithelial-to-mesenchymal transition and reverses chronic renal injury[J]. Nat Med, 2003, 9(7): 964-968.
[13]Humphreys BD, Lin SL, Kobayashi A, et al. Fate tracing reveals the pericyte and not epithelial origin of myofibroblasts in kidney fibrosis[J]. Am J Pathol, 2010, 176(1): 85-97.
[14]Loeffler I, Wolf G. Transforming growth factor-beta and the progression of renal disease[J]. Nephrol Dial Transplant, 2014, 29(Suppl 1): i37-i45.
[15]Simonson MS. Phenotypic transitions and fibrosis in diabetic nephropathy[J]. Kidney Int, 2007, 71(9): 846-854.
[16]Kizu A, Medici D, Kalluri R. Endothelial-mesenchymal transition as a novel mechanism for generating myofibroblasts during diabetic nephropathy[J]. Am J Pathol, 2009, 175(4): 1371-1373.
[17]Lebleu VS, Taduri G, O'Connell J, et al. Origin and function of myofibroblasts in kidney fibrosis[J]. Nat Med, 2013, 19(8): 1047-1053.
[18]Mack M, Yanagita M. Origin of myofibroblasts and cellular events triggering fibrosis[J]. Kidney Int, 2015, 87(2): 297-307.
[19]Lin SL, Kisseleva T, Brenner DA, et al. Pericytes and perivascular fibroblasts are the primary source of collagen-producing cells in obstructive fibrosis of the kidney[J]. Am J Pathol, 2008, 173(6): 1617-1627.
[20]Zeisberg EM, Potenta SE, Sugimoto H, et al. Fibroblasts in kidney fibrosis emerge via endothelial-to-mesenchymal transition [J]. J Am Soc Nephrol, 2008, 19(12): 2282-2287.
[21]Li Y, Kang YS, Dai C, et al. Epithelial-to-mesenchymal transition is a potential pathway leading to podocyte dysfunction and proteinuria[J]. Am J Pathol, 2008, 172(2): 299-308.
[22]Mandache E, Gherghiceanu M, Serafinceanu C, et al. Myofibroblast involvement in tubular basement membrane remodeling in type ii diabetic nephropathy[J]. Rom J Morphol Embryol, 2011, 52(1): 75-79.
[23]Hills CE, Squires PE. TGF-beta1-induced epithelial-to-mesenchymal transition and therapeutic intervention in diabetic nephropathy[J]. Am J Nephrol, 2010, 31(1): 68-74.
[24]Burns WC, Kantharidis P, Thomas MC. The role of tubular epithelial-mesenchymal transition in progressive kidney disease[J]. Cells Tissues Organs, 2007, 185(1-3): 222-231.
[25]Lee JM, Dedhar S, Kalluri R, et al. The epithelial-mesenchymal transition: new insights in signaling, development, and disease[J]. J Cell Biol, 2006, 172(7): 973-981.
[26]Lamouille S, Xu J, Derynck R. Molecular mechanisms of epithelial-mesenchymal transition[J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2014, 15(3): 178-196.
[27]Carew RM, Wang B, Kantharidis P. The role of emt in renal fibrosis[J]. Cell Tissue Res, 2012, 347(1): 103-116.
[28]Yang J, Liu Y. Dissection of key events in tubular epithelial to myofibroblast transition and its implications in renal interstitial fibrosis[J]. Am J Pathol, 2001, 159(4): 1465-1475.
[29]Cheng J, Truong LD, Wu X, et al. Serum and glucocorticoid-regulated kinase 1 is upregulated following unilateral ureteral obstruction causing epithelial mesenchymal transition[J]. Kidney Int, 2010, 78(7): 668-678.
[30]Zeng R, Han M, Luo Y, et al. Role of sema4c in tgf-beta1-induced mitogen-activatedprotein kinase activation and epithelialmesenchymal transition in renal tubular epithelial cells[J]. Nephrol Dial Transplant, 2011, 26(4): 1149-1156.
[31]Phanish MK, Wahab NA, Colville-Nash P, et al. The differential role of smad2 and smad3 in the regulation of pro-fibrotic tgf-beta1 responses in human proximaltubule epithelial cells[J]. Biochem J, 2006, 393(Pt 2): 601-607.
[32]Wang B, Herman-Edelstein M, Koh P, et al. E-cadherin expression is regulated by mir-192/215 by a mechanism that is independent of the profibrotic effects of transforming growth factor-beta[J]. Diabetes, 2010, 59(7): 1794-1802.
[33]Wang B, Koh P, Winbanks C, et al. Mir-200a prevents renal fibrogenesis through repression of tgf-beta2 expression[J]. Diabetes, 2011, 60(1): 280-287.
[34]Yamaguchi Y, Iwano M, Suzuki D, et al. Epithelial-mesenchymal transition as a potential explanation for podocyte depletion in diabetic nephropathy[J]. Am J Kidney Dis, 2009, 54(4): 653-664.
[35]Zheng M, Lv LL, Ni J, et al. Urinary podocyte-associated mrna profile in various stages of diabetic nephropathy[J]. PLoS One, 2011, 6(5): e20431.
[36]Reidy K, Susztak K. Epithelial-mesenchymal transition and podocyte loss in diabetic kidney disease[J]. Am J Kidney Dis, 2009, 54(4): 590-593.
[37]Dai HY, Zheng M, Tang RN, et al. Effects of angiotensin receptor blocker on phenotypic alterations of podocytes in early diabetic nephropathy[J]. Am J Med Sci, 2011, 341(3): 207-214.
[38]Li J, Qu X, Bertram JF. Endothelial-myofibroblast transition contributes to the early development of diabetic renal interstitial fibrosis in streptozotocin-induced diabetic mice[J]. Am J Pathol, 2009, 175(4): 1380-1388.
[39]Li J, Qu X, Yao J, et al. Blockade of endothelial-mesenchymal transition by a smad3 inhibitor delays the early development of streptozotocin-induced diabetic nephropathy[J]. Diabetes, 2010, 59(10): 2612-2624.
[40] Guerrot D, Dussaule JC, Kavvadas P, et al. Progression of renal fibrosis: the underestimated role of endothelial alterations[J]. Fibrogenesis Tissue Repair, 2012, 5(Suppl 1): 15.
[41]He J, Xu Y, Koya D, et al. Role of the endothelial-to-mesenchymal transition in renal fibrosis of chronic kidney disease[J]. Clin Exp Nephrol, 2013, 17(4): 488-497.
[42]Piera-Velazquez S, Li Z, Jimenez SA. Role of endothelial-mesenchymal transition(endomt) in the pathogenesis of fibrotic disorders[J]. Am J Pathol, 2011, 179(3): 1074-1080.
[43]Oldfield MD, Bach LA, Forbes JM, et al. Advanced glycation end products cause epithelial-myofibroblast transdifferentiation via the receptor for advanced glycation end products (rage)[J]. J Clin Invest, 2001, 108(12): 1853-1863.
[44]Lu Q, Ji XJ, Zhou YX, et al. Quercetin inhibits the mtorc1/p70s6k signaling-mediated renal tubular epithelial-mesenchymal transition and renal fibrosis in diabetic nephropathy[J]. Pharmacol Res, 2015, 99: 237-247.
[45]Liu R, Wang Y, Xiao Y, et al. Snon as a key regulator of the high glucose-induced epithelial-mesenchymal transition in cells of the proximal tubule[J]. Kidney Blood Press Res, 2012, 35(6): 517-528.
[46]Zhang A, Wang MH, Dong Z, et al. Prostaglandin e2 is a potent inhibitor of epithelial-tomesenchymal transition: interaction with hepatocyte growth factor[J]. Am J Physiol Renal Physiol, 2006, 291(6): 1323-1331.
[47]Park SH, Choi MJ, Song IK, et al. Erythropoietin decreases renal fibrosis in mice with ureteral obstruction: role of inhibiting TGF-beta-induced epithelial-to-mesenchymal transition[J]. J Am Soc Nephrol, 2007, 18(5): 1497-1507.
[48]Burns WC, Twigg SM, Forbes JM, et al. Connective tissue growth factor plays an important role in advanced glycation end product-induced tubular epithelial-to-mesenchymal transition: implications for diabetic renal disease[J]. J Am Soc Nephrol, 2006, 17(9): 2484-2494.
[49]Lee JH, Kim JH, Kim JS, et al. Amp-activated protein kinase inhibits tgf-beta-, angiotensin ii-, aldosterone-, high glucose-, and albumin-induced epithelial-mesenchymal transition[J]. Am J Physiol Renal Physiol, 2013, 304(6): 686-697.
[50]Liu L, Fu W, Xu J, et al. Effect of bmp7 on podocyte transdifferentiation and smad7 expression induced by hyperglycemia[J]. Clin Nephrol, 2015 , 84(2): 95-99.
[51]Ibrini J, Fadel S, Chana RS, et al. Albumininduced epithelial mesenchymal transformation[J]. Nephron Exp Nephrol, 2012, 120(3): 91-102.
[52]Zheng G, Lyons JG, Tan TK, et al. Disruption of e-cadherin by matrix metalloproteinase directly mediates epithelial-mesenchymal transition downstream of transforming growth factorbeta 1 in renal tubular epithelial cells[J]. Am J Pathol, 2009, 175(2): 580-591.
[53]Kang YS, Li Y, Dai C, et al. Inhibition of integrin-linked kinase blocks podocyte epithelial-mesenchymal transition and ameliorates proteinuria[J]. Kidney Int, 2010, 78(4): 363-373.
[54]Yang J, Liu Y. Blockage of tubular epithelial to myofibroblast transition by hepatocyte growth factor prevents renal interstitial fibrosis[J]. J Am Soc Nephrol, 2002, 13(1): 96-107.
[55]Hills CE, Siamantouras E, Smith SW, et al. TGF beta modulates cell-to-cell communication in early epithelial-to-mesenchymal transition[J]. Diabetologia, 2012, 55 (3): 812-824.
[56]Hills CE, Price GW, Squires PE. Mind the gap: connexins and cell-cell communication in the diabetic kidney[J]. Diabetologia, 2015, 58(2): 233-241.
[57]Zeisberg M, Neilson EG. Biomarkers for epithelial-mesenchymal transitions[J]. J Clin Invest, 2009, 119(6): 1429-1437.
[58]Rastaldi MP, Ferrario F, Giardino L, et al. Epithelial-mesenchymal transition of tubular epithelial cells in human renal biopsies[J]. Kidney Int, 2002 , 62(1): 137-146.
[59]Zheng M, Lv LL, Cao YH, et al. Urinary mrna markers of epithelial-mesenchymal transition correlate with progression of diabetic nephropathy[J]. Clin Endocrinol(Oxf), 2012, 6(5): 657-664.
[60]Doublier S, Salvidio G, Lupia E, et al. Nephrin expression is reduced in human diabetic nephropathy: evidence for a distinct role for glycated albumin and angiotensin ii[J]. Diabetes, 2003, 52(4): 1023-1030.
[61]Zeisberg M, Duffield JS. Resolved: emt produces fibroblasts in the kidney[J]. J Am Soc Nephrol, 2010, 21(8): 1247-1253.
[62]Leroy P, Mostov KE. Slug is required for cell survival during partial epithelial-mesenchymal transition of hgf-induced tubulogenesis[J]. Mol Biol Cell, 2007, 18(5): 1943-1952.
[63]Koesters R, Kaissling B, Lehir M, et al. Tubular overexpression of transforming growth factor-beta1 induces autophagy and fibrosis but not mesenchymal transition of renal epithelial cells[J]. Am J Pathol, 2010, 177(2): 632-643.
[64]Cook HT. The origin of renal fibroblasts and progression of kidney disease[J]. Am J Pathol, 2010, 176(1): 22-24.
[65]Falke LL, Gholizadeh S, Goldschmeding R, et al. Diverse origins of the myofibroblast-implications for kidney fibrosis[J]. Nat Rev Nephrol, 2015, 11(4): 233-244.
[66]Inoue T, Umezawa A, Takenaka T, et al. The contribution of epithelialmesenchymal transition torenal fibrosis differs among kidney disease models[J]. Kidney Int, 2015, 87(1): 233-238.
[67]Quaggin SE, Kapus A. Scar wars: mapping the fate of epithelial-mesenchymal-myofibroblast transition[J]. Kidney Int, 2011, 80(1): 41-50.
[68]Cuf S, Vazquez-Martin A, Oliveras-Ferraros C, et al. Metformin against tgfbeta-induced epithelial-to-mesenchymal transition (emt): from cancer stem cells to aging-associated fibrosis[J]. Cell Cycle, 2010, 9(22): 4461-4468.
[69]Takiyama Y, Harumi T, Watanabe J, et al. Tubular injury in a rat model of type 2 diabetes is prevented by metformin: a possible role of hif-1alpha expression and oxygen metabolism[J]. Diabetes, 2011, 60(3): 981-992.
[70]Lovisa S, Lebleu VS, Tampe B, et al. Epithelial-to-mesenchymal transition induces cell cycle arrest and parenchymal damage in renal fibrosis[J].Nat Med, 2015, 21(9): 998-1009.
[71]Grande MT, Sánchez-Laorden B, López-Blau C, et al. Snail1-induced partial epithelial-to-mesenchymal transition drives renal fibrosis in mice and can be targeted to reverse established disease[J]. Nat Med, 2015, 21(9): 989-997.
10.3969/j.issn.1671-2390.2017.02.001
2014年湖北省自然科學(xué)基金面上項目資助(No.2014CFB408);第49批教育部留學(xué)歸國人員科研啟動基金
430022 武漢,華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)學(xué)院附屬協(xié)和醫(yī)院中西醫(yī)結(jié)合科;靳晶現(xiàn)在武漢市中醫(yī)醫(yī)院腦病科工作
王全勝,E-mail:wangquansheng@hust.edu.cn
2017-01-31)