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胚胎干細(xì)胞/誘導(dǎo)多能干細(xì)胞向間充質(zhì)干細(xì)胞轉(zhuǎn)化的研究進(jìn)展

2017-02-25 21:41孫養(yǎng)鵬張志光
哈爾濱醫(yī)藥 2017年3期
關(guān)鍵詞:胰酶傳代包被

孫養(yǎng)鵬 張志光

(中山大學(xué)光華口腔醫(yī)學(xué)院·附屬口腔醫(yī)院·口腔醫(yī)學(xué)研究所,廣東廣州510055)

·綜述·

胚胎干細(xì)胞/誘導(dǎo)多能干細(xì)胞向間充質(zhì)干細(xì)胞轉(zhuǎn)化的研究進(jìn)展

孫養(yǎng)鵬 張志光

(中山大學(xué)光華口腔醫(yī)學(xué)院·附屬口腔醫(yī)院·口腔醫(yī)學(xué)研究所,廣東廣州510055)

胚胎干細(xì)胞(ESCs)/誘導(dǎo)多能干細(xì)胞(iPSCs)因其有潛在成瘤性,制約了它的臨床應(yīng)用。間充質(zhì)干細(xì)胞(MSCs)具有多向分化能力、免疫調(diào)節(jié)功能以及低免疫原性,且仍未發(fā)現(xiàn)它有成瘤性,因而成為干細(xì)胞治療頗具臨床應(yīng)用價值的種子細(xì)胞。近年來研究發(fā)現(xiàn)應(yīng)用合適的誘導(dǎo)方案可以從ESCs/iPSCs獲取MSCs,結(jié)合ESCs/iPSCs的無限自我更新能力,ESCs/iPSCs向MSCs轉(zhuǎn)化將可能是獲取MSCs的一種數(shù)量充足且穩(wěn)定的新來源。本文將對目前ESCs/iPSCs向MSCs轉(zhuǎn)化的方法、機(jī)制以及新衍生的MSCs的免疫調(diào)節(jié)功能、干性特征做一綜述。

胚胎干細(xì)胞;誘導(dǎo)多能干細(xì)胞;間充質(zhì)干細(xì)胞

胚胎干細(xì)胞(ESCs)和誘導(dǎo)多能干細(xì)胞(iPSCs)擁有無限的自我更新能力以及多胚層分化能力,可以在體外維持足量的細(xì)胞儲備。由于ESCs存在倫理爭論、免疫抑制以及潛在的成瘤性,限制了它在臨床上的應(yīng)用。近年來,來源于成體細(xì)胞的iPSCs擺脫了ESCs的倫理困境。同時,它擁有與ESCs相似的胚胎干細(xì)胞特性,使得其較ESCs具有更為優(yōu)越的臨床應(yīng)用前景。然而,其潛在的成瘤風(fēng)險仍是制約其臨床應(yīng)用的關(guān)鍵。研究表明,MSCs在移植的過程中具有多向分化能力、免疫調(diào)節(jié)功能以及免疫耐受性[1]。MSCs能夠遷移到受損組織處,通過分泌細(xì)胞因子、化學(xué)因子以及分泌細(xì)胞外基質(zhì)蛋白促進(jìn)組織損傷修復(fù)。且目前仍未有研究發(fā)現(xiàn)MSCs具有成瘤性。因此,MSCs是干細(xì)胞治療頗具臨床應(yīng)用價值的種子細(xì)胞。MSCs存在于骨髓、脂肪組織、牙髓、滑膜、滑液以及肌肉等身體多處組織器官里。MSCs的獲取需選擇合適的供體,同時多數(shù)操作過程有創(chuàng),且質(zhì)和量差異較大。因此,建立一種穩(wěn)定地、數(shù)量充足的MSCs獲取來源對于臨床應(yīng)用是必不可少的。

研究報道應(yīng)用合適的誘導(dǎo)方案可以從ESCs/ iPSCs獲取MSCs,ESCs/iPSCs的無限自我更新能力,ESCs/iPSCs向MSCs轉(zhuǎn)化策略將可能是獲取臨床應(yīng)用級別MSCs的一種數(shù)量充足且穩(wěn)定的來源。目前,ESCs/iPSCs向MSCs轉(zhuǎn)化的分子機(jī)制不明,而且轉(zhuǎn)化方法較多,且轉(zhuǎn)化效率參差不齊,不同方法轉(zhuǎn)化而來的MSCs干細(xì)胞特征異質(zhì)性大。本文將對目前人ESCs/iPSCs向MSCs轉(zhuǎn)化的方法、分子機(jī)制以及新衍生的MSCs(ESCs/iPSCs-MSCs)的免疫功能特征,表型、分化潛能等干性特征做一綜述。

1 ESCs/iPSCs向MSCs轉(zhuǎn)化的方法

1.1 通過與飼養(yǎng)層細(xì)胞共培養(yǎng)的方式實現(xiàn)轉(zhuǎn)化:Trivedi等[2]將ESCs接種于鼠細(xì)胞OP9飼養(yǎng)層中共培養(yǎng)8天分離出了MSCs,同時在2周時利用CD34分選可獲得造血干細(xì)胞。

1.2 通過形成擬胚體再用低密度體外擴(kuò)增或者分選技術(shù)從擬胚體中分離出MSCs:Barbet等[3]先通過36天懸浮培養(yǎng)形成擬胚體,將擬胚體在纖原蛋白元包被板上貼壁培養(yǎng)4周,胰酶消化后,MSCs培養(yǎng)基傳代培養(yǎng)于明膠包被板上,從而獲得MSCs。Villa-Diaz等[4]將ESCs懸浮培養(yǎng)7天,形成的擬胚體接種于明膠包被板,將貼壁細(xì)胞多次傳代培養(yǎng)后形成MSCs。Hong等[5]先將ESCs懸浮培養(yǎng)2天形成擬胚體,接種于多孔膜transwell上室,多孔膜允許帶有EMT標(biāo)志和MSCs標(biāo)志的細(xì)胞通過,從而獲得均一的MSCs。

1.3 引導(dǎo)ESCs/iPSCs克隆團(tuán)出現(xiàn)二維自然分化:通過低密度體外擴(kuò)增或者分選技術(shù)從分化細(xì)胞中分離出MSCs。Olivier等[6]通過機(jī)械分離胚胎干細(xì)胞克隆周圍分化細(xì)胞后,體外傳代培養(yǎng),形成表皮樣細(xì)胞后,約50~180天再次進(jìn)行體外傳代培養(yǎng)可獲得MSCs。Boyd等[7]應(yīng)用內(nèi)皮細(xì)胞培養(yǎng)基EGM2-MV誘導(dǎo)ESCs分化,20~30天后將形成內(nèi)皮細(xì)胞后體外傳代2~3次可獲得MSCs。Gruenloh等[8]通過延長ESCs培養(yǎng)基的更換時間誘導(dǎo)ESCs克隆分化,手動挑去可見克隆團(tuán),擴(kuò)增培養(yǎng)分化細(xì)胞,多次傳代培養(yǎng)后可獲得MSCs。Yen等[9]用MSCs培養(yǎng)基誘導(dǎo)ESCs分化增殖,應(yīng)用胰酶消化傳代,可獲得MSCs。Wang等[10]先將ESCs定向誘導(dǎo)成為滋養(yǎng)層細(xì)胞后,用重組酶TrypLE消化后傳代于明膠包被板,可形成MSCs。

1.4 聯(lián)合細(xì)胞外基質(zhì)和細(xì)胞因子誘導(dǎo)單細(xì)胞狀ESCs/iPSCs發(fā)生轉(zhuǎn)化:Lai等[11]用胰酶將ESCs消化成單細(xì)胞后,接種于明膠包被板,在MSCs培養(yǎng)基中添加FGF2和PDGF AB或者添加FGF2和EGF,經(jīng)低密度傳代后可獲取均一的MSCs。Liu等[12]將ESCs和iPSCs用胰酶打散成單細(xì)胞后,接種于I型膠原包被板,用MSCs培養(yǎng)基添加維生素C、地塞米松和ROCK抑制劑Y-27632培養(yǎng),細(xì)胞貼壁后,胰酶消化傳代于標(biāo)準(zhǔn)培養(yǎng)板,從而獲得MSCs。課題組[13]應(yīng)用胰酶將ESCs消化成單細(xì)胞后,接種于Matrigel包被板,MSCs培養(yǎng)基添加ROCK抑制劑Y-27632培養(yǎng),胰酶多次消化傳代于標(biāo)準(zhǔn)培養(yǎng)板,從而獲得MSCs。

1.5 單純細(xì)胞外基質(zhì)誘導(dǎo)克隆團(tuán)塊狀ESCs/iPSCs發(fā)生轉(zhuǎn)化:Hynes等[14]先將iPSCs消化機(jī)械分離后,接種于明膠包被板,間充質(zhì)干細(xì)胞培養(yǎng)2周,重組酶TrypLE消化,按1:3傳代,第2代后,不用明膠包被板,傳至5~10代可形成均一MSCs。

1.6 單純添加細(xì)胞因子誘導(dǎo)單細(xì)胞狀ESCs/iPSCs發(fā)生轉(zhuǎn)化:Chen等[15]用擬胚體培養(yǎng)基添加TGF-β抑制劑SB431542誘導(dǎo)ESCs克隆分化,重組酶TrypleSelect消化成單細(xì)胞懸液,MSCs培養(yǎng)基傳代培養(yǎng),可獲得MSCs。 1.7通過在ESCs/iPSCs中過表達(dá)基因?qū)崿F(xiàn)轉(zhuǎn)化:Liu[16]等發(fā)現(xiàn)在ESCs過表達(dá)HOXB4,2周后可獲得36%CD73+MSCs,經(jīng)體外傳代3次后,可獲得均一的MSCs。

2 ESCs/iPSCs向MSCs轉(zhuǎn)化的機(jī)制研究

目前,ESCs/iPSCs向MSCs轉(zhuǎn)化的分子調(diào)控機(jī)制研究十有分有限。近期研究發(fā)現(xiàn)通過抑制IκB激酶(IKK)/NF-κB信號通號能抑制ESCs表達(dá)胚胎干細(xì)胞標(biāo)志,促進(jìn)其表達(dá)間充質(zhì)干細(xì)胞標(biāo)志,從而有效地促進(jìn)人ESCs向MSCs轉(zhuǎn)化。Chen等[15]報道抑制TGFβ/activin/nodal信號通路能促使ESCs向MSCs轉(zhuǎn)化。

3 ESCs/iPSCs-MSCs的免疫調(diào)節(jié)功能

Wang等[10]研究中ESCs-MSCs能有效抑制T、B淋巴細(xì)胞增殖,與骨髓MSCs不同,IFNγ刺激不會上調(diào)其表達(dá)炎性介質(zhì)。同時,它還高表達(dá)免疫抑制配體PD-L1。研究發(fā)現(xiàn)iPSCs-MSCs通過旁分泌遷移抑制因子和生長分化因子-15在蒽環(huán)霉素誘導(dǎo)的心肌病中起保護(hù)心肌作用。有報道iPSCs-MSCs能維持CD34+造血干細(xì)胞的自我更新和增殖能力,同時它能抑制CD4+細(xì)胞增殖,在混合淋巴細(xì)胞反應(yīng)中減少促炎因子的分泌,同時增加調(diào)節(jié)T淋巴細(xì)胞的數(shù)量。研究發(fā)現(xiàn)ESCs-MSCs與BMMSCs相似,能抑制CD4+或者CD8+淋巴細(xì)胞增殖,但ESCs-MSCs抑制NK細(xì)胞介導(dǎo)的細(xì)胞溶解比BMMSCs強(qiáng);同時它還能抑制NK細(xì)胞的毒性效應(yīng),下調(diào)NK細(xì)胞激活受體NKp30和NKp46。

4 小結(jié)和展望

ESCs/iPSCs向MSCs轉(zhuǎn)化為臨床干細(xì)胞治療提供新的細(xì)胞來源。ESCs/iPSCs-MSCs細(xì)胞擁有與BMMSCs類似的免疫調(diào)節(jié)功能以及多向分化能力,同時無成瘤性,使得其在再生醫(yī)學(xué)中十分有前景。由于ESCs/iPSCs向MSCs的分子機(jī)制認(rèn)識十分有限,目前ESCs/iPSCs向MSCs的方法呈多樣化且效率差參不齊,ESCs/iPSCs向MSCs的分子機(jī)制研究將是未來研究的熱點。

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Researching Advances in Embryonic Stem Cell/induced Pluripotent Stem Cell Transforming into Mesenchymal Stem Cells

Sun YangpengZhang Zhiguang
(Guanghua School of Stomatology,Hospital of Stomatology,Sun Yat-sen University,Guangdong Provincial Key Laboratory of Stomatology,Guangzhou 510055,China)

The application of embryonic stem cells(ESCs)/induced pluripotent stem cells(iPSCs)in clinical is limited because of its potential tumorigenicity.Mesenchymal stem cells(MSCs)possess multipotent differentiation capacity,immunoregulatory function and low immunogenicity.Furthermore,no tumorigenicity was observed so far.All the this make MSCs a promising cell source for cell based threapy in clinical application.Recent studies have found that MSCs could be obtained from ESCs/iPSCs through a suitable induction program.In addition,ESCs/iPSCs possess unlimited self-renewal capacity.Therefore,ESCs/iPSCs transforming to MSCs will likely be a promising,stable new cell source for obtaining sufficient MSCs.In This paper,we will present the programs about ESCs/iPSCs transforming to MSCs and the underlying mechanisms that were reported so far,meanwhile,the stemness characteristics and immunoregulatory function of these new MSCs were also reviewed.

Embryonic stem cells;Induced stem cells;Mesenchymal stem cells

R392

A學(xué)科分類代碼:32011

1001-8131(2017)03-0282-03

2016-10-08

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