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黃瓜霜霉病菌與抗性研究進展

2016-05-30 08:59:02席亞東向運佳韓帥張河慶吳婕李洪浩劉波微陳國華
南方農(nóng)業(yè)學報 2016年10期
關鍵詞:抗性鑒定研究進展

席亞東 向運佳 韓帥 張河慶 吳婕 李洪浩 劉波微 陳國華

摘要:科學利用抗性品種及抗性基因是控制黃瓜霜霉病最經(jīng)濟、有效的途徑。文章對黃瓜霜霉病菌及其抗病性的相關研究進行了全面綜述,總結了黃瓜霜霉病菌的侵染和流行規(guī)律,比較分析了國內(nèi)外不同學者在接種和抗霜霉病性鑒定等方面存在的差異,論述了抗病基因定位的主流方法和最新技術,指出控制霜霉病抗病基因目前尚存在單基因、多基因的不同結論。提出今后應加強輕簡化和標準化的抗病性鑒定方法研究,明確霜霉病抗性基因,篩選和創(chuàng)制出更多、更優(yōu)異的抗性品種和資源。

關鍵詞: 黃瓜霜霉病菌;抗性鑒定;抗性基因;基因定位;研究進展

中圖分類號: S436.421.11 文獻標志碼:A 文章編號:2095-1191(2016)10-1709-06

0 引言

我國是黃瓜(Cucumis sativus Linn.)次生起源地之一(Mliki et al.,2003),擁有豐富的黃瓜種質(zhì)資源。2013年,我國黃瓜栽培面積達116萬ha,占世界黃瓜總栽培面積的55%。由古巴假霜霉病菌[Pseudoperonospora cubensis(Berk. & Curt.) Rostov]引起的黃瓜霜霉病是世界范圍內(nèi)黃瓜產(chǎn)區(qū)的主要病害之一,在整個生育期均可危害黃瓜,輕者造成減產(chǎn)10%~20%,重則在30%以上。與化學藥劑防治相比,選育抗病品種是防治黃瓜霜霉病最經(jīng)濟、有效、安全、環(huán)保的長期控制策略。建立一套科學、準確的抗病性鑒定與評價方法,是篩選抗源和抗病品種的必要條件,也是利用抗霜霉病黃瓜品種的必要前提,而明確黃瓜抗霜霉病的遺傳規(guī)律和抗病基因,有利于育種的目的性和縮短育種年限。因此,對黃瓜霜霉病菌、抗病性鑒定與評價及基因定位的深入了解,可為黃瓜霜霉病的可持續(xù)治理和抗病育種提供理論依據(jù)和實踐支撐。

1 黃瓜霜霉病菌的研究進展

1. 1 黃瓜霜霉病病原菌的分類地位

黃瓜霜霉病菌早在19世紀就在黃瓜上被發(fā)現(xiàn),但直到20世紀80年代才得到廣泛關注,現(xiàn)已成為世界性的重要病害之一。黃瓜霜霉病菌(P. cubensis)屬藻物界(茸鞭生物界)、卵菌門、霜霉目、假霜霉屬,稱為古巴假霜霉菌,是一種專性寄生菌,在親緣關系上與黃綠藻較接近,與真菌較遠。

1. 2 受黃瓜霜霉病菌侵染的癥狀

古巴假霜霉菌不會對整株植物造成系統(tǒng)性侵染(Cohen,1981),僅在葉片上表現(xiàn)出癥狀,但在受害嚴重的瓜類莖、葉柄、卷須、花梗上均可觀察到孢囊梗(Lebeda and Cohen,2011)。黃瓜可在不同的生育期受害,但新長出的葉片很少表現(xiàn)出癥狀(Lebeda,1990),在霜霉病暴發(fā)的季節(jié),霜霉病嚴重發(fā)生的黃瓜成株期的幼嫩新葉未有病斑顯癥。實際上,子葉最容易發(fā)病,黃瓜新長出的葉片很少顯癥的現(xiàn)象值得深入研究和探討。黃瓜霜霉病的典型癥狀是葉片初期出現(xiàn)水浸狀小斑點,后期病斑擴展受葉脈限制而形成黃褐色的多角形病斑,空氣相對濕度大時葉背會長出紫黑色霉層,但在實際生產(chǎn)中不同品種的黃瓜霜霉病癥狀具有多樣性。

1. 3 黃瓜霜霉病菌的侵染機制

古巴假霜霉菌最初和最主要的侵染單元是無性孢子(孢子囊),孢子囊在風力和水滴飛濺條件下很容易脫落進行擴散,當其落在葉片表面后,需要有水(如雨或者露)才能萌發(fā)。孢子囊萌發(fā)過程:多核的原生質(zhì)體分化成5~15個雙鞭毛的游動孢子(Palti and Cohen,1980),游動孢子向氣孔方向游動、休止、失去鞭毛內(nèi)裹成囊,隨后長出芽管,產(chǎn)生附著孢并形成侵染菌絲,侵入到葉組織的氣孔到氣腔。通過氣孔侵入是古巴假霜霉菌最頻繁的侵染機制(Cohen,1981),與萵筍霜霉病直接的侵入(表皮)不同。古巴假霜霉菌的病理過程如圖1所示(Lebeda and Cohen,2011)。

古巴假霜霉菌卵孢子的侵染比較少見。據(jù)最新報道,古巴假霜霉菌可通過種子傳播(Cohen et al.,2014)。

1. 4 黃瓜霜霉病菌的流行規(guī)律

黃瓜霜霉病菌在相對濕度RH≥84%時更易侵染(Cohen and Rotem,1971),在孢子囊萌發(fā)期間,短暫的干旱(10~15 min)能夠中斷整個侵染過程(Cohen and Eyal,1977)。最適宜侵染的溫度不同學者的報道有所差異。Cohen和Eyal(1977)認為10~20 ℃為最適宜溫度,而石延霞等(2005)認為15~35 ℃的交替溫度變化最有利于霜霉菌的侵染,且在高濕條件下,一定的高溫(35 ℃以下)更有利于黃瓜霜霉病的發(fā)生。缺氧條件下不利于游動孢子囊釋放游動孢子;光線強弱也對侵染有所影響;孢子囊的形成過程與光照關系不明顯,有無光照均可形成,但孢子囊分化成游動孢子只需在黑暗條件下進行。

在自然條件下,古巴假霜霉菌的潛育期為4~12 d,潛育期長短取決于氣候條件和寄主的基因型(Lebeda,1986)。在侵染初期,白天溫度25~30 ℃和晚上10~15 ℃更適宜侵染。當黃瓜葉片上孢子囊的濃度為103/cm2葉時,初次顯癥時間為3~4 d,而當濃度下降到10/cm2葉時,顯癥時間需要7 d或更長(Cohen and Eyal,1977)。

風力傳播是古巴假霜霉菌遠距離傳播的主要和最有效的方式(Lebeda,1990)。

2 黃瓜抗霜霉病的鑒定研究

2. 1 接種方法、接種濃度、接種量、接種期及培育溫度

在進行黃瓜霜霉病抗性鑒定時,不同的學者所采用的接種方法、接種濃度、接種量、接種期及培育溫度有所差異。周鳳珍和王永?。?987)在黃瓜幼苗子葉展開期時以5×103~1×104個/mL孢子囊懸浮液進行點滴接種,在接種后溫度為23~26 ℃時能體現(xiàn)抗、中、感的差異,且認為以2×104個/mL以上濃度接種后抗感無差異;翁祖信等(1991)在溫度為16~26 ℃時,以孢子囊濃度1.5×103~4.5×103個/mL采用子葉點滴法進行接種,品種間抗性差異明顯;Lebeda(1992)在溫度為15 ℃下,以105個/mL的孢子囊懸浮液用噴霧方法對19個野生種類的黃瓜進行霜霉病抗性鑒定,未發(fā)現(xiàn)有抗性品種;歐陽柳等(2008)在25 ℃條件下,以5×105個/mL的孢子囊懸浮液在2葉期進行點滴接種,品種間抗感差異明顯;Heerden等(2014)在21 ℃下,以5×105個/mL游動孢子的懸浮液在5~6葉期進行接種鑒定,采用接種量為20 μL的葉盤點滴法進行接種,抗感差異明顯。

2. 2 鑒定方法

2. 2. 1 田間鑒定 田間接種鑒定分為非人工接種和人工接種鑒定。非人工接種是利用感病品種作為誘發(fā)品種,自然發(fā)病后進行病情嚴重度調(diào)查,并依據(jù)嚴重度判定抗、感類型。Wehner和Shetty(1997)、Call等(2012)利用自然發(fā)病條件對黃瓜進行了抗霜霉病鑒定;Dhillon等(1999)在自然發(fā)病條件下對217個黃瓜地方品種進行了抗霜霉病鑒定,并鑒定出9個最抗的品種起源于日本。Horejsi等(2000)采用2.5×104個/mL的孢子囊懸浮液在田間進行接種鑒定。

2. 2. 2 室內(nèi)鑒定 室內(nèi)鑒定需采用懸浮液接種離體葉片或培養(yǎng)箱中活體黃瓜葉片,根據(jù)葉片發(fā)病程度進行抗病類型的鑒定。Shetty等(2002)采用5×103個/mL孢子囊懸浮液在黃瓜2片真葉期進行噴霧接種,接種后在20 ℃的培養(yǎng)箱培養(yǎng)7~8 d,調(diào)查病情并鑒定品種的抗性類型。

3 抗性基因定位研究方法

3. 1 分子標記與抗性基因定位

分子標記技術應用于抗性基因定位可分為四類:第一類是基于雜交的分子標記,如RFLP分子標記(Foolad and Zhang,2015);第二類是基于PCR的分子標記,如SRAP(Ma et al.,2015)和SSR(Petersen et al., 2015)標記方法;第三類是基于限制性內(nèi)切酶和PCR結合的分子標記,如AFLP標記的指紋技術(Zhang et al.,2015);第四類是基于單核苷酸多態(tài)性的分子標記,如SNP構建圖譜的抗性基因定位技術(Stevanato et al.,2015)。目前,以上分子標記技術已廣泛應用于抗性基因定位研究(Moghaddam et al.,2012;Tao et al.,2013)。

3. 2 基于高通量測序的基因定位

利用高通量測序技術對基因組測序、重測序和表達序列測序可為基因定位提供快速而準確的信息(Ogura and Busch,2014)。二代測序技術使區(qū)間定位與候選基因識別可通過測序完成(Schneeberger et al.,2009)。對于變異較少的材料,可通過測序直接獲取候選基因(Lin et al.,2013)。通過構建遺傳圖譜定位突變位點的方法適用于幾乎所有植物,目前在較小的基因組模式生物中已獲得一定進展(Gao et al.,2013; Xu et al.,2013)。隨著三代測序技術的發(fā)展,抗性基因的定位越來越精細。

3. 3 SLAF-seq(Specific length amplified fragment sequencing)技術

SLAF-seq技術是一種發(fā)掘SNP和大規(guī)?;蚍中偷男录夹g,由位點特異擴增與高通量測序技術聯(lián)合發(fā)展而來(Sun et al.,2013)。SLAF-seq技術具有準確性高、信息豐富、周期短、成本低等優(yōu)勢,已成功應用于水稻抗稻瘟?。–hen et al.,2016)、番茄葉霉?。╖hao et al.,2016)等抗性基因的定位。隨著SLAF-seq新技術的大量應用,必將推動抗病性育種的發(fā)展和進步。

4 黃瓜抗霜霉病遺傳規(guī)律研究

目前,國內(nèi)外學者對黃瓜抗霜霉病遺傳規(guī)律的研究存在分歧。早在1938年Cochran使用耐病品種Bangalare和感病品種雜交,通過對親本和后代進行遺傳分析,證明抗性由數(shù)個基因決定。Doruchoowski和Lakowska-Ryk(1992)利用親本W(wǎng)isconsin SMR 18(感?。┖蚖I4783(抗?。樵牧希芯孔C明了抗霜霉病的基因是由3對隱性基因dm-1、 dm-2和dm-3決定。Szczechura等(2015)通過對抗病品種和感病品種雜交所得的F2進行連鎖圖譜構建和QTL定位分析,證明抗病品種PI 197085對霜霉病的抗性具有多基因特征。Wang等(2016)利用抗性材料PI 330628和感病材料9930為研究對象,發(fā)現(xiàn)抗霜霉病基因是由QTL位點dm2.1、dm4.1、dm5.1和 dm6.1決定。

國內(nèi)外也有報道稱黃瓜抗霜霉病的基因由單一隱性基因控制。Van Vliet和Meysing(1974,1977)、Fanourakis和Simon(1987)則發(fā)現(xiàn)抗病品種Poinsett的抗性是由一個隱性單基因dm控制,并認為其與黃瓜抗白粉病的基因連鎖。孟攀奇等(2014)發(fā)現(xiàn)黃瓜對霜霉病的抗性是由單隱性基因控制,且感病性相對于抗性為不完全顯性。

由于黃瓜抗霜霉病性狀受環(huán)境、品種等多方影響,不確定因素多,研究難度大,因此其遺傳規(guī)律尚需進一步驗證。

5 黃瓜抗霜霉病相關基因的研究

國內(nèi)外學者采用多種手段對黃瓜抗霜霉病相關基因的定位、鑒定及功能分析進行了大量研究。Wan等(2010)采用抗病基因類似序列克隆和標記基因的策略,獲得了28個RGA片段,其中的CSRGA23在黃瓜葉片受到SA、ABA和H2O2等刺激物誘導或霜霉病菌侵染后,其表達量顯著高于對照組。李建吾等(2011)以黃瓜高抗自交系IL57為材料,利用抑制性差減雜交(SSH)技術構建了黃瓜抗霜霉病相關基因的正、反向差減文庫,并使用反向Northern斑點雜交技術進行篩選,獲得3個未知功能的抗病相關基因。劉大軍等(2013)利用擬南芥和甜瓜抗霜霉病蛋白質(zhì)序列,通過生物信息學對候選基因進行分析,共獲得187個黃瓜抗霜霉病的候選基因,其中有2個與甜瓜抗霜霉病基因Atl和At2同源,屬eR基因,其余基因與擬南芥抗霜霉病基因同源,初步認定基因Csa001907和Csa002921為黃瓜抗霜霉病的R基因。Jin和Wu(2015)構建了兩個sRNA文庫,分別來自接種黃瓜霜霉病菌的葉片和未接菌的對照葉片,通過Solexa/Illumina系統(tǒng)進行測序分析,獲得42個在黃瓜霜霉病菌侵染葉片過程中差異表達的miRNA。

2009年以來,隨著黃瓜基因組測序工作相繼完成,為黃瓜抗病相關基因的深入研究打下了重要基礎。

6 展望

黃瓜霜霉病菌是一種專性寄生菌,難以在培養(yǎng)基上生長,給培養(yǎng)和保存帶來了極大困難,限制了不同地域菌株間的比較;另外,不同學者所采用的室內(nèi)、外接種方法和抗性鑒定均有差異。因此,下一步在深入研究黃瓜霜霉病菌的基礎上,加強國內(nèi)外的合作,建立標準化的抗性鑒定平臺,在限定溫度、濕度、光強、黃瓜生育期等環(huán)境條件下,建立一套輕簡化的抗病性鑒定體系和評價方法,可快速鑒定大量的品種資源,具有地域、品種資源間的廣適性、可比性和應用性。

目前,黃瓜霜霉病抗病基因存在單基因和多基因的不同結論,主要是與所采用的材料、接種霜霉病菌的小種、定位技術方法等因素不同有關。隨著測序技術、生物信息學和基因工程技術的發(fā)展和進步,黃瓜抗霜霉病的基因定位必將向著精細化、多基因準確聚合應用化方向發(fā)展,也必將提升抗性育種的水平和產(chǎn)業(yè)化發(fā)展。

參考文獻:

李建吾,司勝偉,胡建斌,劉麗君. 2011. 黃瓜霜霉病抗性相關基因的初步研究[J]. 園藝學報, 38(3): 471-478.

Li J W,Si S W,Hu J B, Liu L J. 2011. Preliminary study on resistance-related genes in cucumber inoculated with Pseudoperonospora cubensis[J]. Acta Horticulturae Sinica, 38 (3): 471-478.

劉大軍,秦智偉,周秀艷,武濤,辛明. 2013. 黃瓜基因組中抗霜霉病候選基因的生物信息學及其表達特異性[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學, 46(19):4066-4074.

Liu D J,Qin Z W,Zhou X Y,Wu T,Xin M. 2013. Bioinformatics of downy mildew resistance to cucumber candidate genes and specific expression in organise[J]. Scientia Agricultura Sinica, 46(19):4066-4074.

孟攀奇,蔡麗靜,張桂華,杜勝利. 2014. 與黃瓜霜霉病抗性相關基因連鎖的分子標記研究[J]. 長江蔬菜,(8):12-14.

Meng P Q, Cai L J, Zhang G H, Du S L. 2014. Study on molecu-

lar markers linked to cucumber downy mildew resistance gene[J]. Journal of Changjiang Vegetables,(8):12-14.

歐陽柳,陳勁楓,萬紅建,錢春桃. 2008. 黃瓜漸滲系對霜霉病抗性的篩選鑒定[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學,(4):130-132.

Ouyang L,Chen J F,Wan H J,Qian C T. 2008. Screening for downy mildew resistance in cucumber introgression lines[J]. Jiangsu Agricultural Sciences,(4):130-132.

石延霞,李寶聚,劉學敏. 2005. 黃瓜霜霉病菌侵染若干因子的研究[J]. 應用生態(tài)學報, 16(2):257-261.

Shi Y X, Li B J, Liu X M. 2005. Several infection factors of Pseudoperonospora cubensis[J]. Chinese Journal of Applied Ecology,16(2):257-261.

翁祖信,馮東昕,李寶棟. 1991. 黃瓜霜霉病抗病性鑒定技術研究初報[J]. 中國蔬菜, (4):7-9.

Weng Z X,F(xiàn)eng D X,Li B D. 1991. Preliminary research on identificatiob technique of cucumber resistance against downy mildew[J]. Chineses Vegetables,(4):7-9.

周鳳珍,王永健. 1987. 黃瓜霜霉病抗病性鑒定方法的研究[J]. 蔬菜, (4):7-9.

Zhou F Z,Wang Y J. 1987. Research on identificatication me-

thods of cucumber resistance against downy Mildew[J]. Vege-

tables,(4):7-9.

Call A D,Criswell A D,Wehner T C,Klosinska U,Kozik E U. 2012. Screening cucumber for resistance to downy mildew caused by Pesudoperonospora cubensis(Berk. and Curt.)Rostov[J]. Crop Science, 52(2):577-592.

Chen S, Wang W J, Su J, Wang C Y, Feng A Q, Yang J Y, Zeng L X, Zhu X Y. 2016. Rapid identification of rice blast resistance gene by specific length amplified fragment sequencing[J]. Biotechnology & Biotechnological Equipment, 30(3):462-468.

Cochran F D. 1938. Breeding cucumbers for resistance to downy mildew[J]. Proceedings American Society for Horticultural Science, 35:541-543.

Cohen Y. 1981. Downy mildew of cucurbits[C]//In:D M. Spencer(Ed.),The downy mildews. London:Academic Press:341-354.

Cohen Y,Eyal H. 1977. Growth and differentiation of sporangia and sporangiophores of Pseudoperonospora cubensis on cucumber cotyledons under various combinations of light and temperature[J]. Physiological Plant Pathology, 10(2):93-103.

Cohen Y,Rotem J. 1971. Dispersal and viability of sporangia of Pseudoperonospora cubensis[J]. Transactions of the British Mycological Society,57(1):67-74.

Cohen Y, Rubin A E, Galperin M, Ploch S, Runge F, Thines M. 2014. Seed transmission of Pseudoperonospora cubensis[J]. PLoS ONE,9(10):e109766.

Dhillon N P S,Singh P P,Ishiki K. 1999. Evaluation of landraces of cucumber(cucumis sativus L.) for resistance to downy mildew (Pseudoperonospora cubensis)[J]. Plant Genetic Resource Newsletter,(119):59-61.

Doruchoowski R W,Lakowska-Ryk E. 1992. Inheritance of resistance to downy mildew(Pseudoperonospoa cubensis) in Cucumis sativus[C]. Warsaw:Proc. 5th Eucaprpla Cucurbi-

taceae Symp.:66-69.

Fanourakis N E, Simon P W. 1987. Analysis of genetic linkage in the cucumber[J]. Journal of Heredity, 78(4): 238-242.

Foolad M,Zhang L P. 2015. A recombinant inbred line population of tomato and its genetic map constructed based on a Solanum lycopersicum×S. pimpinellifolium cross[J]. Advanced Studies in Biology, 7(11): 441-471.

Gao Z Y, Zhao S C, He W M,Guo L B,Peng Y L. 2013. Dissecting yield-associated loci in super hybrid rice by resequencing recombinant inbred lines and improving parental genome sequences[J]. Proceedings of the National Academy of Science, 110(35):14492-14497.

Heerden C J V,Burger P,Vermeulen A,Prins R. 2014. Detection of downy and powdery mildew resistance QTL in a ‘Regent 3 ‘RedGlobe population[J]. Euphytica, 200(2):281-295.

Horejsi T, Staub J E,Thomas C. 2000. Linkage of random amplified polymorphic DNA markers to downy mildew resistance in cucumber(Cucumis sativus L.)[J]. Euphytica, 115(2):105-113.

Jin W B, Wu F G. 2015. Identification and characterization of cucumber microRNAs in response to Pseudoperonospora cubensis infection[J]. Gene, 569(2):225-232.

Lebeda A. 1986. Pseudoperonospora cubensis[M]//Lebeda A. Me-

tody testování rezistence zelenin v i rostlinn m patogen m. Olomouc,Czechoslovakia: VHJ Sempra, Research and Bree-

ding Institute for Vegetable Crops:81-85.

Lebeda A. 1990. Biologie a ekologie plísně okurkové[M]//Lebeda A. Plíseň okurková. Praha,Czechoslovakia: eskoslovenská vědecká spole nost pro mykologii p i SAV:13-45.

Lebeda A. 1992. Screening of wild cucumis species against downy mildew(Pseudoperonospora cubensis) isolates from cucumbers[J]. Phytoparasitica, 20(3):203-210.

Lebeda A,Cohen Y. 2011. Cucurbit downy mildew(Pseudoperonospora cubensis)-biology, ecology, epidemiology, host-pathogen interaction and control[J]. European Journal of Plant Pathology,129(2):157-192.

Lin H W,Miller M L,Granas D M, Dutcher S K. 2013. Whole genome sequencing identifies a deletion in protein phosphatase 2A that affects its stability and localization in Chlamydomonas reinhardtii[J]. PLoS Genet, 9(9):e1003841.

Ma D F,Li Q,Tang M S,Chao K X,Li J C,Wang B T,Jing J X. 2015. Mapping of gene conferring adult-plant resistance to stripe rust in Chinese wheat landrace Baidatou[J]. Molecular Breeding, 35(8):1-8.

Mliki A,Staub J E,Sun Z Y,Ghorbel A. 2003. Genetic diversity in african cucumber(Cucumis sativus L.) provides potential for germplasm enhancement[J]. Genetic Resources and Crop Evolution, 50(5):461-468.

Moghaddam H H,Leus L, Riek D J, Huylenbroeck J V, Bockstaele E V. 2012. Construction of a genetic linkage map with SSR,AFLP and morphological markers to locate QTLs controlling pathotype-specific powdery mildew resistance in diploid roses[J]. Euphytica, 184(3):413-427.

Ogura T,Busch W. 2014. From phenotypes to causal sequences:using genome wide association studies to dissect the sequence basis for variation of plant development[J]. Current Opinion in Plant Biology, 23(2):98-108.

Palti J, Cohen Y. 1980. Downy mildew of cucurbits(Pseudoperonospora cubensis): the fungus and its hosts,distribution, epidemiology and control[J]. Phytoparasitica, 8(2):109-147.

Petersen S, Lyerly J H, Worthington M L, Parks W R, Cowger C, Marshall D S, Brown-Guedira G, Murphy J P. 2015. Mapping of powdery mildew resistance gene Pm53 introgressed from Aegilops speltoides into soft red winter wheat[J]. Theoretical and Applied Genetics,128(2):303-312.

Schneeberger K, Ossowski S, Lanz C, Juul T,Petersen A H, Nielsen K L, J rgensen J E, Weigel D, Andersen S U. 2009. SHOREmap:simultaneous mapping and mutation identi-

fication by deep sequencing[J]. Nature Methods, 6(8):550-551.

Shetty N V,Wehner T C,Thomas C E,Doruchowski R W,KPV Shetty K P. 2002. Evidence for downy mildew races in cucumber tested in Asia,Europe,and North America[J]. Scientia Horticulturae, 94(3):231-239.

Stevanato P,Trebbi D,Panella L,Richardson K,Broccanello C,Pakish L, Fenwick A L,Saccomani M. 2015. Identification and validation of a SNP marker linked to the gene HsBvm-1 for nematode resistance in sugar beet[J]. Plant Molecular Biology Reporter, 33(3):474-479.

Sun X W, Liu D Y, Zhang X F, Li W B, Liu H, Hong W G, Jiang C B, Guan N, Ma C X, Zeng H P, Xu C H, Song J, Huang L, Wang C M, Shi J J, Wang R,Zheng X H, Lu C Y, Wang X W, Zheng H K. 2013. SLAF-seq: an efficient method of large-scale de novo SNP discovery and genotyping using high-throughput sequencing[J]. PLoS One, 8(3):e58700.

Szczechura W,Staniaszek M, Klosinska U, Kozik E U. 2015. Molecular analysis of new sources of resistance to Pseudo-

peronospora cubensis(Berk. et Curt.) Rostovzev in cucumber[J]. Russian Journal of Genetics, 51(10):974-979.

Tao Y F, Liu Q C, Wang H H, Zhang Y J, Huang X Y, Wang B B, Lai J S, Ye J R, Liu B S, Xu M L. 2013. Identification and fine-mapping of a QTL, qMrdd1, that confers recessive resistance to maize rough dwarf disease[J]. BMC Plant Biology, 13(1): 1-13.

Van Vliet G J A,Meysing W D. 1974. Inheritance of resistance to Pseudoperonospora cubensis rost. in cucumber(Cucumis sativus L.)[J]. Euphytica, 23(2):251-255.

Van Vliet G J A,Meysing W D. 1977. Relation in the inheritance of resistance to Pseudoperonospora cubensis rost. and Sphaerotheca fuligineapoll in cucumber(Cucumis sativus L.)[J]. Euphytica, 26(3):793-796.

Wan H J, Zhao Z G, Malik A A, Qian C T,Chen J F. 2010. Identification and characterization of potential NBS-enco-

ding resistance genes and induction kinetics of a putative candidate gene associated with downy mildew resistance in Cucumis[J]. BMC Plant Biology, 10:186.

Wang Y H,VandenLangenberg K,Wehner T C,Kraan P A G,Suelmann J,Zheng X Y,Owens K,Weng Y Q. 2016. QTL mapping for downy mildew resistance in cucumber inbred line WI7120 (PI 330628)[J]. Theoretical and Applied Genetics, 129(8):1-13.

Wehner T C,Shetty N V. 1997. Downey mildew resistance of the cucumber germplasm collection in North Carolina field tests[J]. Crop Science, 37(4):1331-1340.

Xu X, Zeng L, Tao Y, Vuong T, Wan J, Boerma R, Noe J, Li Z, Finnerty S, Pathan S M, Shannon J G, Nguyen H T. 2013. Pinpointing genes underlying the quantitative trait loci for root-knot nematode resistance in palaeopolyploid soybean by whole genome resequencing[J]. Proceedings of the National Academy of Science,110(33):13469-13474.

Zhang P P, Zhou H X, Lan C X,Li Z F, Liu D Q. 2015. An AFLP marker linked to the leaf rust resistance gene LrBi16 and test of allelism with Lr14a on chromosome arm 7BL[J].The Crop Journal, 3(2):152-156.

Zhao T T, Jiang J B, Liu G, He S S, Zhang H, Chen X L, Li J F, Xu X Y. 2016. Mapping and candidate gene screening of tomato Cladosporium fulvum-resistant gene Cf-19, based on high-throughput sequencing technology[J]. BMC Plant Biology, 16(1):1-10.

(責任編輯 麻小燕)

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