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內(nèi)皮祖細(xì)胞與骨折愈合

2016-03-12 12:55林上進(jìn)程群
國(guó)際骨科學(xué)雜志 2016年1期

林上進(jìn) 程群

200040 上海,  復(fù)旦大學(xué)附屬華東醫(yī)院骨科

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內(nèi)皮祖細(xì)胞與骨折愈合

林上進(jìn)程群

200040上海,復(fù)旦大學(xué)附屬華東醫(yī)院骨科

摘要內(nèi)皮祖細(xì)胞具有參與血管再生和修復(fù)的功能,以及分化為血管內(nèi)皮細(xì)胞和成骨細(xì)胞的潛能,在血管再生和新骨形成方面起到關(guān)鍵作用。骨折時(shí),內(nèi)皮祖細(xì)胞被動(dòng)員從骨髓遷移至外周循環(huán)來(lái)促進(jìn)骨折愈合。內(nèi)皮祖細(xì)胞的移植治療開(kāi)辟了骨折不愈合新的治療途徑。該文就內(nèi)皮祖細(xì)胞與骨折愈合作一綜述。

關(guān)鍵詞內(nèi)皮祖細(xì)胞;血管發(fā)生;新骨形成;骨折愈合

眾所周知,骨組織內(nèi)的脈管系統(tǒng)對(duì)骨組織重塑、骨生成及穩(wěn)態(tài)平衡有著不可或缺的作用。新的血管發(fā)生不僅對(duì)成骨有促進(jìn)作用,而且對(duì)骨折后骨的修復(fù)起著關(guān)鍵作用,且血管的發(fā)生先于新骨形成[1]。骨折愈合是一個(gè)快速和有效的過(guò)程,它通過(guò)形成骨痂來(lái)填補(bǔ)骨折的裂縫和缺口,但有5%~10%的骨折患者愈合失敗,從而導(dǎo)致延遲愈合或永久不愈合。同時(shí)骨折愈合也是一個(gè)復(fù)雜而連續(xù)的過(guò)程,不僅涉及新骨形成,還存在新生血管再生過(guò)程。嚴(yán)重移位的粉碎性骨折會(huì)大大破壞骨折部位骨組織血管及其血供,從而增加骨折不愈合的風(fēng)險(xiǎn)[2]。在眾多骨折不愈合因素中,新生血管數(shù)量及功能不足是影響骨痂形成和骨痂骨重建最關(guān)鍵的因素之一。而內(nèi)皮祖細(xì)胞(EPC)是從骨髓釋放到外周血循環(huán)且具有多種分化潛能如分化成血管內(nèi)皮細(xì)胞、成骨細(xì)胞和造血細(xì)胞,從而參與骨折部位新生血管生成和新骨形成的一類細(xì)胞[3]。本文就EPC與骨折愈合作一綜述。

1EPC概述

Asahara等于1997年將體外培養(yǎng)的CD34+EPC成功分化成血管內(nèi)皮細(xì)胞,這一發(fā)現(xiàn)為血管再生和修復(fù)機(jī)制提供新的解釋,且提示EPC可能參與血管修復(fù)[4]。

1.1分化為血管內(nèi)皮細(xì)胞參與血管再生

EPC能在骨髓和外周循環(huán)中被發(fā)現(xiàn),主要分布于骨髓中,外周血中數(shù)量較少,在骨髓中的EPC稱為骨髓內(nèi)皮祖細(xì)胞(BM-EPC),在外周循環(huán)的EPC稱為循環(huán)內(nèi)皮祖細(xì)胞(cEPC),cEPC是BM-EPC從骨髓遷移至外周循環(huán)而來(lái),它們具有分化為成熟血管內(nèi)皮細(xì)胞的潛能。前期研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)組織缺血或創(chuàng)傷時(shí),機(jī)體通過(guò)釋放細(xì)胞因子和趨化因子等動(dòng)員EPC從骨髓遷移到外周血,進(jìn)而遷移到缺血部位且分化為成熟血管內(nèi)皮細(xì)胞參與新生血管建立。同理,骨折時(shí)EPC從骨髓遷移至外周循環(huán),進(jìn)而遷移至骨折部位以提高該組織的血管再生能力、新生毛細(xì)血管密度并促進(jìn)新骨形成,從而促使骨折愈合[5]。 Laing等[6]研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)人體發(fā)生創(chuàng)傷導(dǎo)致組織缺血時(shí),cEPC的數(shù)量較正常時(shí)增高,提示當(dāng)機(jī)體出現(xiàn)組織缺血或血管受損時(shí),EPC作為一種新型的血管內(nèi)皮前體細(xì)胞從骨髓釋放至外周循環(huán)是對(duì)組織創(chuàng)傷的一種代償反應(yīng)。Yao等[7]向心肌梗塞小鼠模型注射標(biāo)記SPIO的EPC,經(jīng)MRI檢查發(fā)現(xiàn)這些標(biāo)記的EPC聚集在心肌梗塞缺血區(qū)域,這進(jìn)一步證實(shí)EPC具有向缺血部位遷移并分化成血管內(nèi)皮的潛能。關(guān)于機(jī)體促使EPC從骨髓遷移至組織缺血部位及分化為血管內(nèi)皮細(xì)胞的病理生理機(jī)制尚未完全明確,但目前多數(shù)研究認(rèn)為組織損傷釋放的炎性因子、趨化因子、細(xì)胞因子及蛋白水解酶等可能與EPC釋放和遷移有關(guān)。Shen等[8]研究認(rèn)為,白細(xì)胞介素(IL)-8可能是促使EPC遷移至組織缺血部位的重要因子。Huang 等[9]的體外實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),蛋白激酶B(AKT)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路對(duì)于EPC的遷移、增殖及分化起著不可缺少的作用。Cheng等[10]研究發(fā)現(xiàn),EPC通過(guò)在心肌缺血區(qū)域高表達(dá)血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(VEGF)、血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子受體(VEGFR)-2、磷酸化蛋白激酶B(pAKT)、一氧化氮(NO)等介質(zhì)來(lái)促進(jìn)血管再生和血管修復(fù)。

1.2分化為成骨細(xì)胞參與新骨形成

EPC不僅具有分化成血管內(nèi)皮細(xì)胞的功能,而且還可能具有分化為成骨細(xì)胞的能力。Bick等[11]在體外實(shí)驗(yàn)中成功將cEPC培育分化為成骨細(xì)胞,提示EPC可能具有分化為成骨細(xì)胞的潛能。 Ford等[12]研究發(fā)現(xiàn),骨折部位周圍存在一些成骨細(xì)胞能表達(dá)與EPC相同的表面標(biāo)志物CD34。Gossl等[13]研究發(fā)現(xiàn),冠狀動(dòng)脈粥樣硬化患者血循環(huán)中表達(dá)骨相關(guān)蛋白和骨鈣素的EPC比例較正常人高,且在早期動(dòng)脈粥樣硬化患者冠狀循環(huán)中還能檢測(cè)到表達(dá)骨鈣素的EPC。Zampetaki等[14]研究發(fā)現(xiàn),EPC從骨髓被動(dòng)員進(jìn)入外周循環(huán)至血管損傷部位參與血管修復(fù)過(guò)程中,作為血管內(nèi)皮前體細(xì)胞對(duì)骨代謝和血管內(nèi)皮系統(tǒng)產(chǎn)生了影響。Pirro等[15]研究發(fā)現(xiàn),在絕經(jīng)后女性體內(nèi)表達(dá)骨鈣素或堿性磷酸酶的CD34+細(xì)胞數(shù)量與機(jī)體內(nèi)骨轉(zhuǎn)化率呈正相關(guān)。Peris等[16]研究認(rèn)為,EPC表達(dá)這些骨相關(guān)蛋白可能會(huì)促使血管鈣化誘發(fā)動(dòng)脈粥樣硬化而不僅是參與血管修復(fù)或再生。此外,F(xiàn)lammer等[17]研究發(fā)現(xiàn)在高水平糖化血紅蛋白的糖尿病患者體內(nèi)可檢測(cè)到高濃度的共表達(dá)骨鈣素蛋白的EPC,這也間接表明EPC具有分化成成骨細(xì)胞的潛能并能表達(dá)成骨相關(guān)蛋白。

1.3分期

EPC包含早期EPC和晚期EPC兩個(gè)亞群,每個(gè)亞群的表面標(biāo)志物不相同。早期EPC不成熟,可表達(dá)造血干細(xì)胞標(biāo)志物CD133和CD34,進(jìn)入分化階段后,造血干細(xì)胞標(biāo)志物逐漸消失,開(kāi)始表達(dá)內(nèi)皮細(xì)胞標(biāo)志物如血管內(nèi)皮鈣黏蛋白(VE-cadherin)、血管性血友病因子(vWF)、CD31和一氧化氮合酶,分化成為晚期EPC[18]。目前認(rèn)為早期EPC為CD133+/CD34+/VEGFR-2+,而晚期EPC為CD34+/VEGFR-2+/CD31+/VE-cadherin+/vWF+,明顯失去CD133,并開(kāi)始表達(dá)vWF。但大多數(shù)研究表明,EPC的常用特征性表面標(biāo)志為CD34、CD133及VEGFR-2。CD34是Ⅰ型跨膜糖蛋白,表達(dá)于造血干細(xì)胞、造血祖細(xì)胞、胚胎纖維母細(xì)胞及血管內(nèi)皮細(xì)胞表面。CD133是一種5次跨膜的細(xì)胞表面分子,表達(dá)于骨髓和外周血造血干細(xì)胞及EPC表面,是區(qū)分EPC與成熟內(nèi)皮細(xì)胞的主要指標(biāo)。VEGFR-2是一種酪氨酸激酶受體,分布于成熟內(nèi)皮細(xì)胞及EPC表面[19]。因此,目前研究EPC的分離和鑒定主要通過(guò)免疫檢測(cè)CD34、CD133及VEGFR-2表達(dá)情況。此外,EPC在不同發(fā)展階段所具備的作用也不相同。晚期EPC較早期EPC更具有增殖分化能力,而早期EPC則在主動(dòng)分泌血管生長(zhǎng)因子等旁分泌作用方面更甚一籌[16]。Minami 等[20]根據(jù)培養(yǎng)時(shí)間長(zhǎng)短對(duì)EPC進(jìn)行分期,將培養(yǎng)基培養(yǎng)3~7 d的EPC定義為早期EPC,培養(yǎng)10~16 d的EPC為中期EPC,培養(yǎng)17~23 d的EPC為晚期EPC,培養(yǎng)24~30 d的EPC為超晚期EPC,發(fā)現(xiàn)晚期EPC增殖分化能力和集落形成能力最強(qiáng)。

1.4影響因素

EPC既是血管內(nèi)皮細(xì)胞前體細(xì)胞,也是成骨細(xì)胞和造血細(xì)胞前體細(xì)胞,是具有游走遷移性、增殖分化及自我更新的定向干細(xì)胞,任何影響其凋亡、增殖、歸巢、分化等生理活動(dòng)的因素或病理狀態(tài)均可使外周循環(huán)EPC數(shù)量減少,進(jìn)而影響血管再生和新骨形成。Toupadakis等[21]研究發(fā)現(xiàn),AMD3100作為趨化因子受體-4(CXCR4)拮抗劑通過(guò)抑制基質(zhì)細(xì)胞衍生因子-1(SDF-1)/CXCR4軸作用來(lái)動(dòng)員EPC從骨髓向外周循環(huán)釋放,從而增加cEPC的數(shù)量。Huang等[9]研究發(fā)現(xiàn),每日攝入適量紅酒可提高cEPC水平及改變NO生物利用度而提高EPC功能,從而減少冠心病發(fā)病率。Antonio等[22]研究發(fā)現(xiàn),糖尿病患者cEPC水平較正常人明顯下降,表明高血糖狀態(tài)會(huì)減少cEPC數(shù)量并影響其功能,這是糖尿病患者發(fā)生心血管并發(fā)癥的可能發(fā)病機(jī)制之一。Silva等[23]報(bào)道,長(zhǎng)而持久的運(yùn)動(dòng)會(huì)增加外周循環(huán)VEGF釋放以促進(jìn)cEPC數(shù)量并提高其增殖分化為血管內(nèi)皮的能力。

2EPC在骨折愈合中的作用機(jī)制

骨組織是一種含有豐富血管的組織,它的生長(zhǎng)、重塑及修復(fù)過(guò)程需要血管內(nèi)皮細(xì)胞和骨細(xì)胞存在緊密的時(shí)間和空間聯(lián)系,故影響骨折愈合的主要因素是血供不足及血管-骨偶聯(lián)過(guò)程受到破壞[24]。對(duì)于骨折不愈合或延遲愈合的患者,帶血管蒂自體骨移植或異體骨移植被認(rèn)為是唯一能夠解決骨不連部位血供問(wèn)題的傳統(tǒng)方法,但帶血管蒂骨移植手術(shù)要求術(shù)者具備熟練的顯微血管外科技術(shù)和超長(zhǎng)時(shí)間的手術(shù)操作毅力,此外自體骨移植也有一定的失敗率及移植后并發(fā)癥發(fā)生率,其主要原因是由于移植骨血管再生困難導(dǎo)致的血供不足[25]。而骨組織工程學(xué)和細(xì)胞治療學(xué)在過(guò)去10年內(nèi)的迅速發(fā)展給骨折不愈合治療帶來(lái)了新希望,EPC作為一種新的內(nèi)皮細(xì)胞來(lái)源,參與組織缺血后血管再生、血管內(nèi)皮修復(fù)及組織血循環(huán)復(fù)蘇,在再生醫(yī)學(xué)領(lǐng)域上應(yīng)用較多[26]。

當(dāng)機(jī)體發(fā)生骨折導(dǎo)致血管損傷并破壞骨組織的血供及骨的完整性時(shí),骨折部位向血循環(huán)釋放炎性因子、細(xì)胞因子等炎癥介質(zhì),細(xì)胞因子動(dòng)員骨髓中的EPC向外周循環(huán)遷移,且靶向到達(dá)缺血部位,從而參與骨折部位骨生成和血管生成,最終盡快恢復(fù)骨折部位血供和促進(jìn)骨折愈合[24]。近期研究[27]發(fā)現(xiàn),骨折患者外周循環(huán)內(nèi)cEPC數(shù)量在骨折24 h后升高,3 d后達(dá)到高峰,較正常人cEPC數(shù)量明顯增多,且差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。這也支持骨折可以誘發(fā)機(jī)體動(dòng)員EPC從骨髓遷移至外周循環(huán),最終到達(dá)骨折部位參與骨折愈合修復(fù)的結(jié)論。EPC參與骨生成、血管生成的病理生理機(jī)制和動(dòng)力學(xué)機(jī)制,目前尚未明確。它促進(jìn)骨折愈合的可能機(jī)制有2種:①EPC具有分化為血管內(nèi)皮細(xì)胞和成骨細(xì)胞的潛能,為兩種細(xì)胞的前體細(xì)胞。大量研究表明,表達(dá)CD34的EPC在體外能分化成成骨細(xì)胞[13]和血管內(nèi)皮細(xì)胞[28-30]以促進(jìn)骨折部位新骨形成和新生血管形成。有學(xué)者[2]為證明這一假設(shè),經(jīng)靜脈注射免疫標(biāo)記的CD34+細(xì)胞至骨折動(dòng)物模型內(nèi),發(fā)現(xiàn)這些細(xì)胞被靶向遷移至骨折部位且2周后表達(dá)出與人類特有的內(nèi)皮細(xì)胞和成骨細(xì)胞相同的細(xì)胞表面標(biāo)志物。②EPC通過(guò)旁分泌機(jī)制分泌VEGF來(lái)促進(jìn)血管內(nèi)皮生成和新生骨形成。Kuroda等[31]研究發(fā)現(xiàn),靜脈注射VEGF拮抗劑組骨折部位血管內(nèi)皮細(xì)胞和成骨細(xì)胞數(shù)量較未注射組明顯減少,兩者差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。Li等[32]研究發(fā)現(xiàn),將帶有VEGF基因的纖維母細(xì)胞移植至兔骨折模型可明顯促進(jìn)骨折愈合。Pufe等[33]研究發(fā)現(xiàn),骨折愈合早期VEGF對(duì)骨折愈合起非常重要的作用,且VEGF的峰值在骨折5 d后開(kāi)始逐漸下降。Li等[34]移植EPC支架至大鼠骨折部位來(lái)促進(jìn)骨折愈合,結(jié)果發(fā)現(xiàn)骨折部位VEGF基因表達(dá)明顯升高。骨折引起的缺血和VEGF釋放可促進(jìn)新生毛細(xì)血管內(nèi)皮細(xì)胞分泌骨形態(tài)發(fā)生蛋白(BMP)-2和上調(diào)BMP-2 mRNA表達(dá),BMP-2作為成骨因子對(duì)新生骨形成起直接促進(jìn)作用[35]。因此,當(dāng)骨折發(fā)生時(shí)EPC在骨折部位釋放的炎性因子、細(xì)胞因子、趨化因子等介導(dǎo)下從骨髓遷移至外周血循環(huán),再被靶向招募至骨折部位,然后EPC分化成血管內(nèi)皮細(xì)胞和成骨細(xì)胞并釋放VEGF,從而為骨折愈合和血流恢復(fù)提供最適宜的微環(huán)境。

3 EPC在骨折愈合中的應(yīng)用

EPC作為新生血管內(nèi)皮細(xì)胞的祖細(xì)胞,能對(duì)缺血組織進(jìn)行反應(yīng)并在第一時(shí)間進(jìn)入缺血部位以刺激新生血管形成和修復(fù)損傷組織,它還具有分化成血管內(nèi)皮細(xì)胞和成骨細(xì)胞的潛能,以及快速增殖的能力。但EPC對(duì)骨折愈合的治療目前主要處于臨床前研究階段,臨床應(yīng)用至今報(bào)道較少。

EPC移植治療研究主要可分為2個(gè)階段:①經(jīng)靜脈注射進(jìn)行EPC移植治療來(lái)觀察血管損傷修復(fù)的效果,主要應(yīng)用在心血管系統(tǒng)疾病治療方面。Fang等[36]通過(guò)兔子耳緣靜脈注射體外擴(kuò)增的自體EPC來(lái)促進(jìn)動(dòng)脈瘤修復(fù)和內(nèi)皮增生。Iwasaki等[37]通過(guò)靜脈注射人EPC促進(jìn)大鼠心肌和血管再生來(lái)恢復(fù)心肌泵血功能。Matsumoto等[38]通過(guò)靜脈注射人EPC來(lái)促進(jìn)壞死骨組織的血管修復(fù)和新生血管形成,進(jìn)而促進(jìn)骨折愈合。②通過(guò)生物載體進(jìn)行EPC局部移植來(lái)促進(jìn)骨折愈合效果,主要應(yīng)用于骨折愈合或創(chuàng)傷骨科方面。鑒于靜脈注射EPC是全身性反應(yīng),移植的EPC不僅能有效促進(jìn)骨折愈合,而且這些細(xì)胞還會(huì)遷移至其他組織和器官如肺、肝、胸腺、腦等,可能在骨外組織產(chǎn)生一些無(wú)法預(yù)見(jiàn)和控制的遠(yuǎn)期影響,故目前EPC對(duì)骨折愈合影響的研究基本采用局部移植方法。Rozen等[39]在兔骨折模型骨折端之間人為構(gòu)建一楔形纖維竇道,移植預(yù)先在體外擴(kuò)增的EPC至該纖維竇道中,經(jīng)顯微CT檢查發(fā)現(xiàn)EPC局部移植能在骨折缺損處促進(jìn)形成大量致密的編織骨以達(dá)到骨折愈合。Atesok等[40]在大鼠股骨骨折模型中運(yùn)用無(wú)菌明膠海綿載體局部移植EPC,發(fā)現(xiàn)EPC移植治療組骨折全部愈合,而對(duì)照組骨折全部不愈合。Li等[2]利用明膠海綿為載體局部移植EPC治療大鼠股骨骨折,發(fā)現(xiàn)局部EPC移植治療不僅能促進(jìn)骨折愈合,還能提高骨的微結(jié)構(gòu)和生物力學(xué)穩(wěn)定性。以上研究均提示,EPC對(duì)于骨折尤其是骨折延遲愈合、骨折不愈合和骨組織缺損患者有潛在而明顯的治療效果?;谝陨涎芯浚琄uroda等[41]首次進(jìn)行運(yùn)用自體EPC治療骨折不愈合的病例報(bào)道,他們運(yùn)用膠原蛋白支架來(lái)承載粒細(xì)胞集落刺激因子(G-CSF)動(dòng)員的自體EPC并采用髂前上棘進(jìn)行自體骨移植,將支架移植至脛骨不愈合斷端,結(jié)果顯示患者術(shù)后無(wú)嚴(yán)重不良事件發(fā)生,且在術(shù)后9個(gè)月骨折成功愈合。隨后Kuroda等[42]又運(yùn)用膠原蛋白支架承載G-CSF動(dòng)員的自體EPC移植治療7例骨折不愈合,術(shù)后隨訪1年,結(jié)果無(wú)不良及嚴(yán)重并發(fā)癥出現(xiàn),且術(shù)后12周5例(71.4%)達(dá)到影像學(xué)骨折愈合,遠(yuǎn)遠(yuǎn)超過(guò)根據(jù)歷史資料制定的預(yù)先設(shè)定閾值(18.1%)。隨著臨床Ⅰ/Ⅱa期實(shí)驗(yàn)的進(jìn)行,EPC移植治療在人體實(shí)驗(yàn)中獲得較大的成就,且獲得和分離創(chuàng)傷小、安全、有效,不像骨髓間質(zhì)干細(xì)胞只能麻醉下通過(guò)手術(shù)從骨髓中提取[43],這些都對(duì)EPC 在骨折不愈合中的應(yīng)用具有巨大的推動(dòng)作用。

動(dòng)物實(shí)驗(yàn)和有限的體內(nèi)研究顯示,EPC能明顯促進(jìn)新生血管生成和新生骨形成,提高骨折愈合能力。但血管形成與骨發(fā)生在空間和時(shí)序上有怎樣的聯(lián)系;它們對(duì)骨轉(zhuǎn)換和破骨細(xì)胞的功能作用如何;既然EPC具有分化為成骨細(xì)胞的潛能,那么EPC在骨質(zhì)疏松性骨折,甚至預(yù)防和治療成骨功能低下引起的骨質(zhì)疏松癥方面是否也同樣有效,這需要對(duì)EPC促進(jìn)骨折愈合的分子生物學(xué)機(jī)制進(jìn)一步理解和探索。相信在不久的將來(lái),體外擴(kuò)增的自體EPC移植治療將會(huì)成為骨折不愈合的重要治療策略。

參考文獻(xiàn)

[1]Saran U, Piperni SG, Chatterjee S. Role of angiogenesis in bone repair[J]. Arch Biochem Biophys, 2014, 561(2):109-117.

[2]Li R, Atesok K, Nauth A, et al. Endothelial progenitor cells for fracture healing: a microcomputed tomography and biomechanical analysis[J]. J Orthop Trauma, 2011, 25(8):467-471.

[3]Bai YY, Peng XG, Wang LS, et al. Bone marrow endothelial progenitor cell transplantation after ischemic stroke: an investigation into its possible mechanism[J]. CNS Neurosci Ther, 2015, 21(11):877-886.

[4]Asahara T, Murohara T, Sullivan A, et al. Isolation of putative progenitor endothelial cells for angiogenesis[J]. Science, 1997, 275(5302):964-967.

[5]Matsumoto T, Mifune Y, Kawamoto A, et al. Fracture induced mobilization and incorporation of bone marrow-derived endothelial progenitor cells for bone healing[J]. J Cell Physiol, 2008, 215(1):234-342.

[6]Laing AJ, Dillon JP, Condon ET, et al. Mobilization of endothelial precursor cells: systemic vascular response to musculoskeletal trauma[J]. J Orthop Res, 2007, 25(1):44-50.

[7]Yao Y, Li Y, Ma G, et al. In vivo magnetic resonance imaging of injected endothelial progenitor cells after myocardial infarction in rats[J]. Mol Imaging Biol, 2011, 13(2):303-313.

[8]Shen WC, Liang CJ, Wu VC, et al. Endothelial progenitor cells derived from Wharton’s jelly of the umbilical cord reduces ischemia-induced hind limb injury in diabetic mice by inducing HIF-1α/IL-8 expression[J]. Stem Cells Dev, 2013, 22(9):1408-1418.

[9]Huang PH, Chen YH, Tsai HY, et al. Intake of red wine increases the number and functional capacity of circulating endothelial progenitor cells by enhancing nitric oxide bioavailability[J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol, 2010, 30(4):869-877.

[10]Cheng Y, Jiang S, Hu R, et al. Potential mechanism for endothelial progenitor cell therapy in acute myocardial infarction: activation of VEGF-PI3K/Akte-NOS pathway[J]. Ann Clin Lab Sci, 2013, 43(4):395-402.

[11]Bick RN, Dreyfuss E, Soudry M, et al. Osteogenic differentiation of circulating endothelial progenitor cells[J]. J Bone Miner Res, 2007, 22(9):S143.

[12]Ford JL, Robinson DE, Scammell BE. Endochondral ossification in fracture callus during long bone repair: the localisation of ‘cavity-lining cells’ within the cartilage[J]. J Orthop Res, 2004, 22(2):368-375.

[13]Gossl M, Modder UI, Gulati R, et al. Coronary endothelial dysfunction in humans is associated with coronary retention of osteogenic endothelial progenitor cells[J]. Eur Heart J, 2010, 31(23):2909-2914.

[14]Zampetaki A, Kirton JP, Xu Q. Vascular repair by endothelial progenitor cells[J]. Cardiovasc Res, 2008, 78(3):413-421.

[15]Pirro M, Leli C, Fabbriciani G, et al. Association between circulating osteoprogenitor cell numbers and bone mineral density in postmenopausal osteoporosis[J]. Osteoporos Int, 2010, 21(2):297-306.

[16]Peris P, Atkinson EJ, Gossl M, et al. Effects of bisphosphonate treatment on circulating osteogenic endothelial progenitor cells in postmenopausal women[J]. Mayo Clin Proc, 2013, 88(1):46-55.

[17]Flammer AJ, Gossl M, Li J, et al. Patients with an HbA1c in the prediabetic and diabetic range have higher numbers of circulating cells withosteogenic and endothelial progenitor cell markers[J]. J Clin Endocrinol Metab, 2012, 97(12):4761-4768.

[18]Ribatti D. The discovery of endothelial progenitor cells.An history review[J]. Leuk Res, 2007, 3l(4):439-444.

[19]Werling NJ, Thorpe R, Zhao Y. A systematic approach to the establishment and characterization of endothelial progenitor cells for gene therapy[J]. Hum Gene Ther Methods, 2013, 24(3):171-184.

[20]Minami Y, Nakajima T, Ikutomi M, et al. Angiogenic potential of early and late outgrowth endothelial progenitor cells is dependent on the time of emergence[J]. Int J Cardiol, 2015, 186:305-314.

[21]Toupadakis CA, Granick JL, Sagy M, et al. Mobilization of endogenous stem cell populations enhances fracture healing in a murine femoral fracture model[J]. Cytotherapy, 2013, 15(9):1136-1147.

[22]Antonio N, Fernandes R, Soares A, et al. Reduced levels of circulating endothelial progenitor cells in acute myocardial infarction patients with diabetes or pre-diabetes: accompanying the glycemic continuum[J]. Cardiovasc Diabetol, 2014, 13:101.

[23]Silva JF, Rocha NG, Nobrega AC. Mobilization of endothelial progenitor cells with exercise in healthy individuals: a systematic review[J]. Arq Bras Cardiol, 2012, 98(2):182-191.

[24]Zigdon-Giladi H, Rudich U, Michaeli-Geller G, et al. Recent advances in bone regeneration using adult stem cells[J]. World J Stem Cells, 2015, 7(3):630-640.

[25]Sen MK, Miclau T. Autologous iliac crest bone graft: should it still be the gold standard for treating nonunions?[J]. Injury, 2007, 38(suppl 1):S75-S80.

[26]Seebach C, Henrich D, Kahling C, et al. Endothelial progenitor cells and mesenchymal stem cells seeded onto beta-TCP granules enhance early vascularization and bone healing in a critical-sized bone defect in rats[J]. Tissue Eng Part A, 2010, 16(6):1961-1970.

[27]Ma XL, Sun XL, Wan CY, et al. Significance of circulating endothelial progenitor cells in patients with fracture healing process[J]. J Orthop Res, 2012, 30(11):1860-1866.

[28]Fukui T, Matsumoto T, Mifune Y, et al. Local transplantation of granulocyte colony-stimulating factor-mobilized human peripheral blood mononuclear cells for unhealing bone fractures[J]. Cell Transplant, 2012, 21(4):707-721.

[29]Kawakami Y, Ii M, Alev C, et al. Local transplantation of ex vivo expanded bone marrow-derived CD34-positive cells accelerates fracture healing[J]. Cell Transplant, 2012, 21(12):2689-2709.

[30]Kawakami Y, Ii M, Matsumoto T, et al. A small interfering RNA targeting Lnk accelerates bone fracture healing with early neovascularization[J]. Lab Invest, 2013, 93(9):1036-1053.

[31]Kuroda R, Matsumoto T, Kawakami Y, et al. Clinical impact of circulating CD34-positive cells on bone regeneration and healing[J]. Tissue Eng Part B Rev, 2014, 20(3):190-199.

[32]Li R, Stewart DJ, von Schroeder HP, et al. Effect of cell-based VEGF gene therapy on healing of a segmental bone defect[J]. J Orthop Res, 2009, 27(1):8-14.

[33]Pufe T, Wildemann B, Petersen W, et al. Quantitative measurement of the splice variants 120 and 164 of the angiogenic peptide vascular endothelial growth factor in the time flow of fracture healing: a study in the rat[J]. Cell Tissue Res, 2002, 309(3):387-392.

[34]Li R, Nauth A, Li C, et al. Expression of VEGF gene isoforms in a rat segmental bone defect model treated with EPCs[J]. J Orthop Trauma, 2012, 26(12):689-692.

[35]Bouletreau PJ, Warren SM, Spector JA, et al. Hypoxia and VEGF up-regulate BMP-2 mRNA and protein expression in microvascular endothelial cells: implications for fracture healing[J]. Plast Reconstr Surg, 2002, 109(7):2384-2397.

[36]Fang X, Zhao R, Wang K, et al. Bone marrow-derived endothelial progenitor cells are involved in aneurysm repair in rabbits[J]. J Clin Neurosci, 2012, 19(9):1283-1286.

[37]Iwasaki H, Kawamoto A, Ishikawa M, et al. Dose-dependent contribution of CD34-positive cell transplantation to concurrent vasculogenesis and cardiomyogenesis for functional regenerative recovery after myocardial infarction[J]. Circulation, 2006, 113(10):1311-1325.

[38] Matsumoto T, Kawamoto A, Kuroda R, et al. Therapeutic potential of vasculogenesis and osteogenesis promoted by peripheral blood CD34-positive cells for functional bone healing[J]. Am J Pathol, 2006, 169(4):1440-1457.

[39]Rozen N, Bick T, Bajayo A, et al. Transplanted blood-derived endothelial progenitor cells (EPC) enhance bridging of sheep tibia critical size defects[J]. Bone, 2009, 45(5):918-924.

[40]Atesok K, Li R, Stewart DJ, et al. Endothelial progenitor cells promote fracture healing in a segmental bone defect model[J]. J Orthop Res, 2010, 28(8):1007-1014.

[41]Kuroda R, Matsumoto T, Miwa M, et al. Local transplantation of G-CSF-mobilized CD34(+) cells in a patient with tibial nonunion: a case report[J]. Cell Transplant, 2011, 20(9):1491-1496.

[42]Kuroda R, Matsumoto T, Niikura T, et al. Local transplantation of G-CSF-mobilized CD34+ cells for patients with femoral and tibial nonunion: phase 1/2 clinical trial. Stem Cells Transl Med, 2013, 328:41.

[43]Knight MN, Hankenson KD. Mesenchymal stem cells in bone regeneration[J]. Adv Wound Care (New Rochelle), 2013, 2(6):306-316.

(收稿:2015-04-29; 修回:2015-11-30)

(本文編輯:盧千語(yǔ))

DOI:10.3969/j.issn.1673-7083.2016.01.008

通信作者:程群E-mail: quncheng_2014@163.com

基金項(xiàng)目:國(guó)家自然科學(xué)基金(81471089)、上海市衛(wèi)生系統(tǒng)重要疾病聯(lián)合攻關(guān)項(xiàng)目(2013ZYJB0801)