呂沁風(fēng),姜侃,楊永耀,何蕾,羅鵬,吳忠華
1.浙江國際旅行衛(wèi)生保健中心,浙江 杭州 310003;2.浙江省質(zhì)量監(jiān)督檢測研究院,浙江 杭州 310003
惡性瘧是由惡性瘧原蟲感染引起的瘧疾,目前高發(fā)于非洲和東南亞熱帶地區(qū)。根據(jù)WHO的報(bào)道,每年約有65 萬人死于惡性瘧,57%的非洲人口仍然生活在惡性瘧流行的高發(fā)地區(qū),在非洲南部惡性瘧仍是住院的主要原因,同時(shí)給這些地區(qū)帶來了沉重的經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)[1-2]。惡性瘧潛伏期為9~14 d,平均12 d;常見發(fā)冷、發(fā)熱、出汗等癥狀,與重癥流行性感冒相似;發(fā)作周期一般為36~48 h。免疫力低下人群,如未及時(shí)治療或治療不當(dāng)易發(fā)展為重癥瘧疾,甚至腦型瘧而死亡。國內(nèi)目前惡性瘧主要來源于輸入性感染,且存在瘧疾的傳播媒介按蚊,開發(fā)快速檢測方法,對(duì)惡性瘧的防治具有重要的意義。
環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增(loop-mediated isothermal amplification,LAMP)是一種新型核酸擴(kuò)增技術(shù),該方法針對(duì)靶基因的6 個(gè)區(qū)域設(shè)計(jì)4 種引物,在等溫條件60℃~65℃下利用Bst聚合酶即可進(jìn)行109~1010倍的核酸擴(kuò)增[3-4]。LAMP 產(chǎn)物通過濁度或熒光變化可用肉眼觀察,具有操作簡便、特異性強(qiáng)、靈敏度高等優(yōu)點(diǎn)[5-6]。自2000 年問世以來,LAMP 技術(shù)在病原體檢測、疾病診斷等領(lǐng)域得到廣泛應(yīng)用[7-10]。目前,如何在現(xiàn)有LAMP 技術(shù)的基礎(chǔ)上發(fā)掘更高效快速的等溫?cái)U(kuò)增方法,成為重要的研究方向。最快速的LAMP反應(yīng)方法就是加入環(huán)引物[11-12]。本研究的目的在于縮短等溫?cái)U(kuò)增的反應(yīng)時(shí)間,達(dá)到比加入環(huán)引物更快的擴(kuò)增效率:把LAMP 的環(huán)引物由1 對(duì)增加至2 對(duì),在進(jìn)行等溫?cái)U(kuò)增反應(yīng)時(shí),2 對(duì)環(huán)引物能同時(shí)和反應(yīng)回環(huán)的產(chǎn)物進(jìn)行貼合,亦即在退火的同時(shí)啟動(dòng)了再回環(huán)的擴(kuò)增,從而增加了反應(yīng)進(jìn)程,縮短反應(yīng)時(shí)間,達(dá)到快速檢測的目的。
2011~2014 年口岸截獲的瘧疾感染者全血標(biāo)本為本室保存。
DNA 提取試劑盒和膠回收試劑盒購自QIAGEN公司;BstDNA 聚合酶購自NEB 公司;ExTaq酶、dNTP、DL2000 DNA marker、瓊脂糖凝膠購自TaKa-Ra 公司;MgSO4和甜菜堿為Sigma-Aldrich 公司產(chǎn)品;EvaGreen 購自Biotium 公司;2720 型PCR 儀購自ABI公司;Chromo 4型熒光定量PCR儀、電泳儀購自BIO-RAD公司。
常規(guī)LAMP 技術(shù)含有1 對(duì)外引物、1 對(duì)內(nèi)引物,選擇加入1 對(duì)環(huán)引物,可在等溫條件下進(jìn)行核酸擴(kuò)增。本研究根據(jù)惡性瘧原蟲18S rRNA 基因保守區(qū)設(shè)計(jì)了 一組引 物[13-14],分別為F3、B3、FIP、BIP、fLoop1、fLoop2、bLoop1 和bLoop2,第2 對(duì)環(huán)引物的加入,使等溫?cái)U(kuò)增回環(huán)的速率增加,從而縮短反應(yīng)的時(shí)間。引物序列見表1。
嚴(yán)格按QIAGEN DNA 抽提試劑盒說明書提取DNA,-20℃保存。
快速LAMP 反應(yīng)體系:10×緩沖液2.5 μL,引物混合 物1 μL(F3、B3 各1 μmol/L,F(xiàn)IP、BIP 各15 μmol/L,fLoop1、fLoop2 各5 μmol/L,bLoop1、bLoop2各15 μmol/L),模板DNA 1 μL,8 UBstDNA 聚合酶1 μL,甜菜堿(8 mol/L)2 μL,dNTP(10 mmol/L)2 μL,MgSO4(100 mmol/L)1.2 μL,1.25 μL 20×的EvaGreen,加入滅菌雙蒸水補(bǔ)足25 μL。
加入環(huán)引物的LAMP 引物混合物為F3、B3 各1 μmol/L,F(xiàn)IP、BIP 各15 μmol/L,fLoop1、fLoop2 各5 μmol/L,其他成分與雙環(huán)引物L(fēng)AMP一致。
反應(yīng)條件:63℃ 55 s,熒光采集5 s,100 個(gè)循環(huán)。反應(yīng)在熒光定量PCR儀中進(jìn)行。
以DNA 為模板,用PCR 混合引物進(jìn)行擴(kuò)增,將PCR 產(chǎn)物純化回收試劑盒進(jìn)行純化回收,對(duì)純化后的PCR產(chǎn)物測定D260nm值,根據(jù)產(chǎn)物長度和D260nm值計(jì)算拷貝數(shù),將產(chǎn)物以1/10 梯度稀釋,最終稀釋到1×100拷貝/μL。分別取1 μL 作為模板加入反應(yīng)體系中,在63℃恒溫條件下反應(yīng)60 min。在熒光定量PCR 儀上觀察實(shí)時(shí)熒光反應(yīng)曲線,反應(yīng)結(jié)束后進(jìn)行65℃到95℃溶解曲線試驗(yàn),每增加1℃保溫30 s,檢測熒光強(qiáng)度,試驗(yàn)結(jié)束后取2 μL 反應(yīng)產(chǎn)物進(jìn)行10 g/L瓊脂糖凝膠電泳,同時(shí)用外引物進(jìn)行PCR反應(yīng)檢測靈敏度。
表1 惡性瘧原蟲快速LAMP擴(kuò)增引物
同時(shí)提取間日瘧、卵形瘧和三日瘧等感染者全血核酸,同時(shí)用雙環(huán)LAMP方法進(jìn)行檢測。
根據(jù)靈敏度試驗(yàn)結(jié)果,選擇陰性、1×100拷貝/μL和1×106拷貝/μL 濃度的cDNA 模板分別進(jìn)行快速LAMP,每份樣本各取1 μL 重復(fù)3 次,采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR 儀進(jìn)行檢測,觀察反應(yīng)的Ct 值,根據(jù)Ct 值計(jì)算變異系數(shù),對(duì)該方法的重復(fù)性進(jìn)行考核。
采用該方法對(duì)全省口岸送檢的29 例全血標(biāo)本及30例健康體檢者全血標(biāo)本進(jìn)行檢測,觀察結(jié)果。
在熒光定量PCR 儀上觀察實(shí)時(shí)熒光反應(yīng),結(jié)果見圖1;取2 μL 反應(yīng)產(chǎn)物進(jìn)行10 g/L 瓊脂糖凝膠電泳,結(jié)果見圖2,1~5 泳道均出現(xiàn)細(xì)密的階梯狀條帶,表示有陽性擴(kuò)增反應(yīng)??梢耘卸ū痉椒ǖ臋z測極限約為1×101拷貝/μL。PCR 靈敏度試驗(yàn)結(jié)果見圖3,可見檢測限為1×102拷貝/μL。經(jīng)比較雙環(huán)引物L(fēng)AMP 檢測方法的靈敏度比PCR 法高一個(gè)數(shù)量級(jí)。溶解曲線試驗(yàn)結(jié)果見圖4,可見每個(gè)不同濃度的產(chǎn)物溶解曲線溫度都在同一點(diǎn)上。
采用惡性瘧快速LAMP 方法進(jìn)行檢測,電泳反應(yīng)結(jié)果見圖5,惡性瘧出現(xiàn)與普通LAMP 反應(yīng)相同的的階梯狀條帶。此外,陰性對(duì)照、間日瘧、卵形瘧、三日瘧核酸的檢測結(jié)果均為陰性,由此顯示了該方法具有很好的特異性。
根據(jù)實(shí)時(shí)熒光LAMP 的結(jié)果,記錄各次試驗(yàn)的Ct 值。根據(jù)Ct 值計(jì)算SD值及變異系數(shù)(CV),結(jié)果見表2,強(qiáng)陽性及臨界值樣本的CV值均小于5%,重復(fù)性良好。
根據(jù)實(shí)時(shí)熒光檢測結(jié)果可見,快速LAMP 的反應(yīng)時(shí)間最快可達(dá)15 min 左右,加入環(huán)引物的LAMP反應(yīng)時(shí)間為25 min左右。實(shí)時(shí)熒光檢測見圖6。
采用快速LAMP 技術(shù)進(jìn)行檢測,發(fā)現(xiàn)29 例口岸送檢本實(shí)驗(yàn)室的樣本中有8 例惡性瘧陽性,與熒光定量PCR 檢測結(jié)果相符。30 例健康體檢者檢測結(jié)果全部為陰性。
環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)由于操作簡單、不需要昂貴的專用實(shí)驗(yàn)儀器、反應(yīng)在1~1.5 h 內(nèi)完成、靈敏度高,而吸引了大量研究力量投入該領(lǐng)域的研究。我們改進(jìn)的方法縮短了檢測時(shí)間,在實(shí)際檢測應(yīng)用中和定量PCR 檢測結(jié)果相符,證明本檢測方法具有應(yīng)用價(jià)值。但2對(duì)環(huán)引物設(shè)計(jì)比1對(duì)引物設(shè)計(jì)要困難,對(duì)于擴(kuò)增片段太短和能設(shè)計(jì)引物的位置太少的核酸檢測并不適合。對(duì)能設(shè)計(jì)雙環(huán)引物的LAMP 擴(kuò)增來說,能不能真正提高擴(kuò)增效率需要通過大量實(shí)驗(yàn)進(jìn)行驗(yàn)證。
圖1 惡性瘧原蟲雙環(huán)引物L(fēng)AMP靈敏度檢測實(shí)時(shí)熒光結(jié)果
圖2 惡性瘧原蟲雙環(huán)引物L(fēng)AMP產(chǎn)物電泳結(jié)果
圖3 惡性瘧原蟲PCR產(chǎn)物電泳結(jié)果
表2 惡性瘧原蟲雙環(huán)引物L(fēng)AMP重復(fù)性實(shí)驗(yàn)結(jié)果
圖4 惡性瘧原蟲雙環(huán)引物L(fēng)AMP產(chǎn)物溶解曲線試驗(yàn)
圖5 雙環(huán)引物L(fēng)AMP特異性試驗(yàn)結(jié)果
圖6 雙環(huán)引物和環(huán)引物擴(kuò)增速度比較
[1]Maitland K.Management of severe paediatric malaria in resource-limited settings[J].BMC Med,2015,13:42.
[2]Cox-Singh J,Davis T M,Lee K S,et al.Plasmodium knowlesi malaria in humans is widely distributed and potentially life threatening[J].Clin Infect Dis,2008,46(2):165-171.
[3]Notom T,Okayama H,Masubuchi H,et al.Loop-mediated isothermal amplification of DNA[J].Nucleic Acid Res,2000,28(12):e63.
[4]Nagamine K,Watanabe K,Ohtsuka K,et al.Loop-mediated isothermal amplification reaction using a nondenatured template[J].Clin Chem,2001,47:1742-1743.
[5]Goto M,Honda E,Ogura A,et al.Colorimetric detection of loop-mediated isothermal amplification reaction by using hydroxyl naphthol blue[J].Biotechniques,2009,46(3):167-172.
[6]Mori Y,Nagamine K,Tomita N,et al.Detection of loop-mediated isothermal amplification reaction by turbidity derived from magnesium pyrophosphate formation[J].Biochem Biophys Res Commun,2001,289(1):150-154.
[7]Lyu Q F,Chen Y,Zheng W,et al.Establishment of a reserve transcription loop-mediated isothermal amplification method for Yellow fever virus[J].Microbiol China,2014,41(1):184-190.
[8]Zhao Z,Fan B,Wu G,Yan X,et al.Development of loop-mediated isothermal amplification assay for specific and rapid detection of differential goat pox virus and sheep pox virus[J].BMC Microbiol,2014,14:10.
[9]Su J,Liu X,Cui H,et al.Rapid and simple detection of methicillinresistance staphylococcus aureus by orfX loop-mediated isothermal amplification assay[J].BMC Biotechnol,2014,14:8.
[10]Tomita N,Mori Y,Kanda H,et al.Loop-mediated isothermal amplification(LAMP) of gene sequences and simple visual detection of products[J].Nat Protoc,2008,3(5):877-882.
[11]Nagamine K,Hase T,Notomi T.Accelerated reaction by loopmediated isothermal amplification using loop primers[J].Mol Cell Probes,2002,16(3):223-229.
[12]Ihira M,Yoshikawa T,Enomoto Y,et al.Rapid diagnosis of human herpesvirus 6 infection by a novel DNA amplification method,loop-mediated isothermal amplification[J].J Clin Microbiol,2004,42(1):140-145.
[13]Oriero C E,van Geertuyden J P,Jacobs J,et al.Validation of an apicoplast genome target for the detection of Plasmodium species using polymerase chain reaction (PCR) and loop mediated isothermal amplification(LAMP)[J].Clin Microbiol Infect,2015,21(7):686.e1-686.e7.
[14]Pakalapati D,Garg S,Middha S,et al Comparative evaluation of microscopy,OptiMAL and 18S rRNA gene based multiplex PCR for detection of Plasmodium falciparum &Plasmodium vivax from field isolates of Bikaner,India[J].Asian Pac J Trop Med,2013,6(5):346-351.