国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

青光眼神經(jīng)保護(hù)基因治療的研究進(jìn)展

2015-01-22 02:29麥爾哈巴肖開提莫曉芬
中國(guó)眼耳鼻喉科雜志 2015年6期
關(guān)鍵詞:基因治療視神經(jīng)青光眼

麥爾哈巴·肖開提 莫曉芬

·綜 述·

青光眼神經(jīng)保護(hù)基因治療的研究進(jìn)展

麥爾哈巴·肖開提 莫曉芬

青光眼以進(jìn)行性視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞(RGCs)的丟失及其軸突變性為特征,其臨床表現(xiàn)為典型的視神經(jīng)萎縮和視野缺損。因此,延緩或阻止RGCs凋亡的神經(jīng)保護(hù)性措施應(yīng)作為主要治療手段。本文通過補(bǔ)充神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子,調(diào)控線粒體功能,抑制細(xì)胞凋亡通路和毒性作用等幾個(gè)層面,對(duì)基因治療在RGCs抗凋亡和促進(jìn)存活作用的最新研究進(jìn)展進(jìn)行綜述。(中國(guó)眼耳鼻喉科雜志,2015,15:437-440)

青光眼是一類以特異性的視神經(jīng)損害和視野缺損為特征的眼病,已成為白內(nèi)障后第2位致盲性眼病。最新研究[1]結(jié)果顯示,至2020年,全世界青光眼患者的數(shù)量將達(dá)到7 000萬。青光眼主要的病理變化是視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞(retinal ganglion cells,RGCs)的不可逆喪失。目前對(duì)青光眼的治療,主要以藥物或手術(shù)的方法降低眼壓,可是相當(dāng)一部分患者盡管眼壓控制滿意,但視功能還繼續(xù)惡化;究其根源,是由于發(fā)生細(xì)胞凋亡的病理微環(huán)境持續(xù)存在,使得神經(jīng)元數(shù)量不斷減少,造成視功能進(jìn)行性下降。因此尋找更為有效的治療方法保護(hù)神經(jīng)元或延緩其凋亡迫在眉睫?;蛑委熞蚓哂薪M織特異性高、可長(zhǎng)時(shí)間持續(xù)等特點(diǎn),對(duì)此類慢性終身性疾病的治療具有無可比擬的優(yōu)勢(shì),因而受到業(yè)界的關(guān)注,成為研究熱點(diǎn)[2]。

至今為止,有研究[3]報(bào)道了在各類青光眼患者中至少存在29個(gè)異?;蛭稽c(diǎn),其中已明確12個(gè)為致病性基因。但是在實(shí)行基因治療前,需要進(jìn)一步明確青光眼基因缺陷和RGCs凋亡病理生理間的關(guān)系。此外,除了基因缺陷因素,還有個(gè)體風(fēng)險(xiǎn)因素、環(huán)境因素均可以影響青光眼的發(fā)生和發(fā)展。由于上述原因,目前對(duì)青光眼基因治療策略,主要考慮如何增強(qiáng)RGCs的存活和再生,而非單純修正遺傳缺陷。

隨著病毒和非病毒基因載體的出現(xiàn),更多的研究證實(shí)了基因治療在保護(hù)視網(wǎng)膜神經(jīng)元、延緩RGCs凋亡方面的功效。因此,本文對(duì)基因治療在RGCs抗凋亡和促進(jìn)存活方面的研究進(jìn)展進(jìn)行綜述。

1 基因治療載體

1.1 腺相關(guān)病毒載體 腺相關(guān)病毒(adeno- associated virus,AAV)是一種小的單鏈DNA病毒,具有非免疫原性、基因表達(dá)持續(xù)時(shí)間長(zhǎng)等優(yōu)點(diǎn)[4-5]。在成年大鼠玻璃體腔注射AAV載體,能有效地轉(zhuǎn)染RGCs,轉(zhuǎn)染率達(dá)到68%[6];而在視網(wǎng)膜下腔注射AAV載體,主要轉(zhuǎn)染感光細(xì)胞和視網(wǎng)膜色素上皮層[7-8]。目前應(yīng)用于基因轉(zhuǎn)染的AAV載體具有9種血清型,其中AAV-6載體對(duì)RGCs的轉(zhuǎn)染率較低,只有24%,其他血清型對(duì)RGCs的轉(zhuǎn)染率為57%~71%,其中AAV-2最高[9]。

1.2 腺病毒載體 最初的腺病毒(adenovirus,Ad)又叫復(fù)制缺陷病毒,具有穩(wěn)定、轉(zhuǎn)染率高等優(yōu)點(diǎn),但由于強(qiáng)免疫原性及毒性反應(yīng),研究者對(duì)Ad載體進(jìn)行了改進(jìn)。第3代Ad載體又叫輔助病毒依賴性Ad載體(helper-dependent adenovirus,Hd-Ad ),此類病毒基因只保留了兩段復(fù)制區(qū)域,其他結(jié)構(gòu)被外源基因序列所替代。這種新病毒載體由于缺失大部分病毒編碼序列,因而有效地減少了機(jī)體的免疫反應(yīng),使基因表達(dá)持續(xù)時(shí)間明顯延長(zhǎng)[10]。Ad載體能夠有效地轉(zhuǎn)染上皮細(xì)胞和神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞。研究[11]發(fā)現(xiàn),在小鼠玻璃體腔注射Hd-Ad-GFP載體,基因產(chǎn)物在Müller細(xì)胞中能夠持續(xù)穩(wěn)定表達(dá)可長(zhǎng)達(dá)1年。在視網(wǎng)膜下腔注射Hd-Ad載體,能有效地轉(zhuǎn)染視網(wǎng)膜色素上皮層[12]。

1.3 非病毒載體方法 與病毒載體相比,非病毒載體基因轉(zhuǎn)染方法相對(duì)安全,不會(huì)引起免疫反應(yīng);但轉(zhuǎn)染率低、持續(xù)時(shí)間較短。電穿孔方法是物理導(dǎo)入方法之一, 具有操作簡(jiǎn)單、安全、轉(zhuǎn)染率不受細(xì)胞增殖性影響等優(yōu)點(diǎn), 是一種良好的外源基因?qū)胂到y(tǒng)。研究顯示,在SD大鼠視神經(jīng)橫斷傷模型及視網(wǎng)膜色素變性大鼠模型上,利用此方法成功地將腦源性神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子(brain-derived neurotrophic factor ,BDNF)轉(zhuǎn)染到RGCs層或視網(wǎng)膜色素上皮層,觀察到基因治療后能產(chǎn)生持久顯著的神經(jīng)元保護(hù)效果[13-14]。

2 基因治療策略

2.1 補(bǔ)充神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子 神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子對(duì)視網(wǎng)膜神經(jīng)元的存活、分化及建立突觸聯(lián)系至關(guān)重要,營(yíng)養(yǎng)因子的剝奪是誘發(fā)青光眼RGCs凋亡的重要因素之一。已有研究表明,眼內(nèi)注射神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子能暫時(shí)性拯救損傷視網(wǎng)膜神經(jīng)元,采用基因治療的方法轉(zhuǎn)染這些神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子,起到更好地持久保護(hù)效果并能克服眼內(nèi)多次注射帶來的各種并發(fā)癥。

2.1.1 BDNF 在神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子家族中,BDNF對(duì)受損RGCs的保護(hù)作用尤為突出。玻璃體腔局部注射外源性BDNF蛋白可以促進(jìn)視神經(jīng)損傷后RGCs的存活,通過病毒載體或活體電穿孔輔助技術(shù),將外源性BDNF基因轉(zhuǎn)染到RGCs層,其保護(hù)效應(yīng)更持久。Martin等[15]研究發(fā)現(xiàn),在大鼠慢性高眼壓模型上,玻璃體腔單次注射AAV-BDNF治療,治療組比對(duì)照組能顯著增加RGCs的存活率。盡管BDNF具有顯著的神經(jīng)保護(hù)效果,但這種作用是暫時(shí)性的。BDNF能延緩RGCs的凋亡,卻不能阻止凋亡進(jìn)展,這跟RGCs表面TrkB受體的表達(dá)下調(diào)相關(guān)[16]。研究[6]表明,在視神經(jīng)橫斷傷大鼠模型上,利用AAV載體將TrkB基因轉(zhuǎn)染到RGCs層,玻璃體腔注射BDNF蛋白,能顯著提高對(duì)RGCs保護(hù)效果及延長(zhǎng)作用時(shí)間。

2.1.2 睫狀神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子 睫狀神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子(ciliary neurotrophic factor,CNTF)是具有保護(hù)RGCs和促進(jìn)軸突再生作用的神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子,在多種視神經(jīng)損傷動(dòng)物模型中,外源性補(bǔ)充CNTF起到顯著的神經(jīng)保護(hù)和再生效果。在大鼠慢性高眼壓模型中,玻璃體腔注射AAV-CNTF治療,與對(duì)照組相比存活的RGCs軸突數(shù)量超過15%[17]。NT-501是Neurotech公司研發(fā)的一種分泌CNTF的植入裝置,通過細(xì)胞封裝技術(shù)將分泌CNTF的細(xì)胞系裝入一種生物半透膜而制成,NT-501通過手術(shù)植入到睫狀體平坦部后,能穩(wěn)定地分泌CNTF。這種裝置已經(jīng)通過了視網(wǎng)膜色素變性和老年黃斑變性的第2期臨床試驗(yàn)[18],并于2011年開始進(jìn)入了原發(fā)性開角型青光眼第1期臨床試驗(yàn)(clinical trials.gov NCT01408472),其療效值得期待。

2.1.3 色素上皮源性因子 色素上皮源性因子(pigment epithelium-derived factor,PEDF)是一種具有抑制內(nèi)源性新生血管形成和神經(jīng)保護(hù)作用的蛋白質(zhì),相對(duì)分子質(zhì)量為50×103。Miyazaki等[19]研究發(fā)現(xiàn),在Wistar大鼠急性缺血再灌注模型中,視網(wǎng)膜下腔注射猿猴免疫缺陷病毒(SIV)載體表達(dá)的人類PEDF基因(SIV-hPEDF),結(jié)果表明,PEDF過表達(dá)能明顯提高受損視網(wǎng)膜神經(jīng)元的存活率。又有學(xué)者[20]發(fā)現(xiàn),在成年大鼠視神經(jīng)挫傷模型中,玻璃體腔注射PEDF還具有促進(jìn)RGCs軸突生長(zhǎng)的效果,聯(lián)合環(huán)磷酸腺苷(cyclicAMP,cAMP)治療,軸突延長(zhǎng)作用更加顯著。

2.1.4 其他 除了上述神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子之外,成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子-2(fibroblast growth factor-2,F(xiàn)GF-2)和膠質(zhì)細(xì)胞源性神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子(glial cellline-derived neurotrophic factor,GDNF)也同樣具有神經(jīng)保護(hù)效果[21]。研究[22]表明,視神經(jīng)損傷后,F(xiàn)GF-2在視網(wǎng)膜內(nèi)核層及RGCs層的表達(dá)上調(diào);在大鼠神神經(jīng)損傷模型上,經(jīng)玻璃體腔注射AAV-FGF-2載體,能誘導(dǎo)損傷后RGCs軸突的延長(zhǎng)。在大鼠視神經(jīng)橫斷傷模型中,利用電穿孔法將GDNF基因轉(zhuǎn)染到RGCs層,視神經(jīng)損傷后2周及4周,能觀察到顯著RGCs保護(hù)效果,與BDNF聯(lián)合治療,效果更顯著[23]。

2.2 阻斷細(xì)胞凋亡通路 視網(wǎng)膜神經(jīng)元凋亡是視神經(jīng)變性性疾病的共同病理基礎(chǔ)。包括內(nèi)在和外在的凋亡通路共同調(diào)控著RGCs的凋亡[24]。外在凋亡信號(hào)通路包括一系列的死亡受體家族:Fas-L、TNF-α、TNF-相關(guān)凋亡誘導(dǎo)配體等。外在信號(hào)通路的激活能誘導(dǎo)RGCs凋亡。在青光眼病理模型中,能觀察到Fas-L、TNF-α的表達(dá)上調(diào)[25]。雖然外在信號(hào)通路在RGCs的凋亡中起到關(guān)鍵作用,但目前基因治療在這方面應(yīng)用較少。

內(nèi)在信號(hào)通路主要包括Bcl-2家族成員:促凋亡(Bax、Bad、Bid)和抗凋亡(Bcl-2、Bcl-XL)因子,共同調(diào)控著線粒體外膜的通透性,控制細(xì)胞色素C釋放到細(xì)胞質(zhì)中,而細(xì)胞色素C的釋放可以激活促進(jìn)細(xì)胞凋亡的半胱氨酸蛋白激酶(caspase)家族。因此內(nèi)在凋亡信號(hào)通路的各種因子已經(jīng)作為基因治療的靶向目標(biāo),用來研究對(duì)RGCs保護(hù)作用。研究[26-27]發(fā)現(xiàn),在視神經(jīng)橫斷傷動(dòng)物模型中,通過基因轉(zhuǎn)染使抗凋亡基因Bcl-2或Bcl-XL過表達(dá),能顯著提高RGCs的存活率。

最近研究證實(shí),在成年大鼠視神經(jīng)橫斷傷模型中檢測(cè)到caspase-2在RGCs中有表達(dá)和激活,利用siRNA技術(shù)阻斷caspase-2的表達(dá),起到顯著的神經(jīng)保護(hù)效果。有關(guān)caspase-2的研究目前正處于非動(dòng)脈炎性前部缺血性視神經(jīng)病變的第1期臨床試驗(yàn)階段[28]。

2.3 調(diào)控線粒體功能 長(zhǎng)期以來,線粒體一直被公認(rèn)為是細(xì)胞內(nèi)的能量加工廠,然而越來越多的研究發(fā)現(xiàn),線粒體具有調(diào)控細(xì)胞凋亡的作用。細(xì)胞凋亡過程中許多重要環(huán)節(jié)與線粒體的功能密切相關(guān),包括caspase激活因子的釋放、線粒體膜電位的喪失、細(xì)胞內(nèi)氧化還原狀態(tài)的改變、Bcl-2家族促進(jìn)和抑制凋亡蛋白的參與等。

OPA-1是GTP酶類動(dòng)力蛋白,能穩(wěn)定線粒體的嵴結(jié)構(gòu),減輕線粒體結(jié)構(gòu)的破壞,從而減少細(xì)胞凋亡。在多數(shù)常染色體顯性遺傳的視神經(jīng)萎縮患者中,發(fā)現(xiàn)編碼OPA-1的基因出現(xiàn)突變,而OPA-1蛋白功能的喪失導(dǎo)致線粒體分裂、細(xì)胞色素C釋放、線粒體DNA損傷和增加活性氧產(chǎn)物,最終引起細(xì)胞凋亡。在DBA/2J小鼠(一種先天性基因缺陷小鼠),通過AAV載體使OPA-1基因過表達(dá),可以增加存活的RGCs數(shù)量,并能顯著降低活化的星形膠質(zhì)細(xì)胞和小膠質(zhì)細(xì)胞的數(shù)量[29]。

腦紅蛋白是神經(jīng)系統(tǒng)特異的攜氧球蛋白,與腦內(nèi)供氧密切相關(guān),推測(cè)與線粒體之間存在著功能鏈接。Hq小鼠由于呼吸鏈復(fù)合體1的缺陷,引起RGCs的變性和視神經(jīng)萎縮。研究者通過AAV載體介導(dǎo)的基因轉(zhuǎn)染方法使Hq小鼠腦紅蛋白過表達(dá),腦紅蛋白能穩(wěn)定表達(dá)7個(gè)月,并無引起視網(wǎng)膜結(jié)構(gòu)和功能變化,相反起到了保護(hù)RGCs和軸突的作用。提示腦紅蛋白通過修復(fù)呼吸鏈功能的缺陷,而發(fā)揮保護(hù)視覺功能的作用[30]。

Leber遺傳性視神經(jīng)病變是線粒體DNA突變引起的特征性RGCs凋亡的一種罕見疾病。ND4是線粒體DNA呼吸鏈復(fù)合物NADH脫氫酶第4亞單位區(qū)域基因。利用電穿孔基因轉(zhuǎn)染方法將野生型人類ND4亞基因轉(zhuǎn)染到Leber視神經(jīng)病變大鼠模型中,能夠起到保護(hù)RGCs的作用。在電穿孔轉(zhuǎn)染后第48天,與野生型ND4基因組相比,突變ND4基因組存活的RGCs數(shù)量下降了38%[31]。最近AAV載體介導(dǎo)的ND4(AAV-ND4)基因治療在Leber遺傳性視神經(jīng)病變第1期臨床試驗(yàn)中顯示了安全性[32]。

2.4 抑制細(xì)胞毒性作用 在青光眼的發(fā)病機(jī)制中,興奮性毒性、離子失衡、氧化應(yīng)激通過激活多種受體和通路引起RGCs的凋亡。高水平的谷氨酸過度刺激NMDA受體,導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)Ca2+超載,產(chǎn)生過多的一氧化氮和活性氧類,導(dǎo)致細(xì)胞毒性[33]。利用NMDA受體拮抗劑,阻斷RGCs表面NMDA受體和興奮性氨基酸的結(jié)合,可以減輕低氧、興奮性毒性等對(duì)RGCs的損傷,從而達(dá)到保護(hù)效果;但NMDA受體拮抗劑美金剛在第3期臨床試驗(yàn)中失敗[34],提示谷氨酸興奮性毒性可能存在其他途徑,包括臨近的細(xì)胞,尤其是膠質(zhì)細(xì)胞。研究[35]證明Müller細(xì)胞對(duì)谷氨酸興奮性毒性作用極其敏感,并能上調(diào)TNF-α引起RGCs凋亡。興奮性毒性的作用分子通路已被多種藥物、拮抗劑來抑制,但是基因治療在這方面還沒有被應(yīng)用。

影響細(xì)胞凋亡的其他因素是通過引起細(xì)胞離子失衡,而導(dǎo)致細(xì)胞皺縮和凋亡。研究證實(shí),細(xì)胞皺縮發(fā)生在線粒體功能出現(xiàn)異常之前,更重要的是,細(xì)胞皺縮和凋亡伴隨著K+電流的增加以及胞內(nèi)的K+離子水平的降低。因此K+通道在RGCs凋亡過程中也起到關(guān)鍵作用。研究[36]指出,用siRNA介導(dǎo)方法去除K+通道中的kv1家族,能有效地保護(hù)RGCs。

氧化應(yīng)激由活性氧產(chǎn)物和抗氧化劑間的失衡引起,是RGCs受損和凋亡的另一重要原因。SOD2是一種抗抗氧化物歧化酶。研究[37]證明,Wistar大鼠玻璃體腔注射AAV載體表達(dá)的SOD2(AAV-SOD2),注射后21 d進(jìn)行缺血再灌注損傷顯示,實(shí)驗(yàn)組能明顯降低超氧離子、丙二醛(MDA)、8-羥脫氧鳥苷(8-OHDG)、硝基酪氨酸水平,并能挽救RGCs和內(nèi)叢狀層受損。

3 結(jié)語

視網(wǎng)膜保護(hù)性治療對(duì)于青光眼等視神經(jīng)變性性疾病來說,顯得非常重要。在過去的十幾年中,基因治療在了解RGCs凋亡的分子機(jī)制、促進(jìn)RGCs存活和再生方面取得了巨大進(jìn)展。相關(guān)研究也從動(dòng)物實(shí)驗(yàn)進(jìn)展到個(gè)別致盲性眼病的臨床試驗(yàn)當(dāng)中。盡管仍存在不少問題, 但它具有普通治療措施所難以達(dá)到的優(yōu)越性。基因治療是否能夠成功地應(yīng)用于青光眼或其他視神經(jīng)變性疾病的治療,除了對(duì)疾病的發(fā)生、發(fā)展有進(jìn)一步的認(rèn)識(shí)外,還有待于轉(zhuǎn)基因載體或基因轉(zhuǎn)染方法的進(jìn)一步改進(jìn), 使其降低毒副作用的同時(shí)提高轉(zhuǎn)染效率,同時(shí)提高組織特異性。隨著對(duì)青光眼發(fā)病機(jī)制和遺傳基礎(chǔ)的理解加深,相信基因治療在不久的未來會(huì)逐步應(yīng)用到這類疾病的治療。

[1] Quigley HA, Broman AT. The number of people with glaucoma worldwide in 2010 and 2020[J]. Br J Ophthalmol, 2006, 90(3):262-267.

[2] Duebel J, Marazova K, Sahel JA. Optogenetics[J]. Curr Opin Ophthalmol, 2015, 26(3):226-232.

[3] Fan BJ, Wiggs JL. Glaucoma: genes, phenotypes, and new directions for therapy[J]. J Clin Invest, 2010, 120(9):3064-3072.

[4] Vandenberghe LH, Auricchio A. Novel adeno-associated viral vectors for retinal gene therapy[J]. Gene Ther, 2012, 19(2):162-168.

[5] Weinberg MS, Samulski RJ, McCown TJ. Adeno-associated virus (AAV) gene therapy for neurological disease[J]. Neuropharmacology, 2013, 69:82-88.

[6] Cheng L, Sapieha P, Kittlerova P, et al. TrkB gene transfer protects retinal ganglion cells from axotomy-induced death in vivo[J]. J Neurosci, 2002, 22(10):3977-3986.

[7] Ali RR, Reichel MB, De Alwis M, et al. Adeno-associated virus gene transfer to mouse retina[J]. Hum Gene Ther, 1998, 9(1):81-86.

[8] Bennett J, Maguire AM, Cideciyan AV, et al. Stable transgene expression in rod photoreceptors after recombinant adeno-associated virus-mediated gene transfer to monkey retina[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 1999, 96(17):9920-9925.

[9] Hellstrom M, Ruitenberg MJ, Pollett MA, et al. Cellular tropism and transduction properties of seven adeno-associated viral vector serotypes in adult retina after intravitreal injection[J]. Gene Ther, 2009, 16(4):521-532.

[10] Cots D, Bosch A, Chillon M. Helper dependent adenovirus vectors: progress and future prospects[J]. Curr Gene Ther, 2013, 13(5):370-381.

[11] Lamartina S, Cimino M, Roscilli G, et al. Helper-dependent adenovirus for the gene therapy of proliferative retinopathies: stable gene transfer, regulated gene expression and therapeutic efficacy[J]. J Gene Med, 2007, 9(10):862-874.

[12] Puppo A, Cesi G, Marrocco E, et al. Retinal transduction profiles by high-capacity viral vectors[J]. Gene Ther, 2014, 21(10):855-865.

[13] Mo X, Yokoyama A, Oshitari T, et al. Rescue of axotomized retinal ganglion cells by BDNF gene electroporation in adult rats[J]. Invest Ophthalmol Vis Sci, 2002, 43(7):2401-2405.

[14] Zhang M, Mo XF, Fang Y, et al. Rescue of Photoreceptors by BDNF Gene Transfer Using In Vivo Electroporation in the RCS Rat of Retinitis Pigmentosa[J]. Current Eye Research, 2009, 34(9):791-799.

[15] Martin KRG, Quigley HA, Zack DJ, et al. Gene therapy with brain-derived neurotrophic factor as a protection: Retinal ganglion cells in a rat glaucoma model[J]. Invest Ophthalmol Vis Sci, 2003, 44(10):4357-4365.

[16] Meyer-Franke A, Wilkinson GA, Kruttgen A, et al. Depolarization and cAMP elevation rapidly recruit TrkB to the plasma membrane of CNS neurons[J]. Neuron, 1998, 21(4):681-693.

[17] Pease ME, Zack DJ, Berlinicke C, et al. Effect of CNTF on retinal ganglion cell survival in experimental glaucoma[J]. Invest Ophthalmol Vis Sci, 2009, 50(5):2194-2200.

[18] Zhang K, Hopkins JJ, Heier JS, et al. Ciliary neurotrophic factor delivered by encapsulated cell intraocular implants for treatment of geographic atrophy in age-related macular degeneration[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2011, 108(15):6241-6245.

[19] Miyazaki M, Ikeda Y, Yonemitsu Y, et al. Pigment epithelium-derived factor gene therapy targeting retinal ganglion cell injuries: neuroprotection against loss of function in two animal models[J]. Hum Gene Ther, 2011, 22(5):559-565.

[20] Vigneswara V, Berry M, Logan A, et al. Pigment Epithelium-Derived Factor Is Retinal Ganglion Cell Neuroprotective and Axogenic After Optic Nerve Crush Injury[J]. Invest Ophthalmol Vis Sci, 2013, 54(4):2624-2633.

[21] Wong WK, Cheung AW, Yu SW, et al. Hepatocyte growth factor promotes long-term survival and axonal regeneration of retinal ganglion cells after optic nerve injury: comparison with CNTF and BDNF[J]. CNS Neurosci Ther, 2014, 20(10):916-929.

[22] Sapieha PS, Peltier M, Rendahl KG, et al. Fibroblast growth factor-2 gene delivery stimulates axon growth by adult retinal ganglion cells after acute optic nerve injury[J]. Mol Cell Neurosci, 2003, 24(3):656-672.

[23] Ishikawa H, Takano M, Matsumoto N, et al. Effect of GDNF gene transfer into axotomized retinal ganglion cells using in vivo electroporation with a contact lens-type electrode[J]. Gene Therapy, 2005, 12(4):289-298.

[24] Almasieh M, Wilson AM, Morquette B, et al. The molecular basis of retinal ganglion cell death in glaucoma[J]. Prog Retin Eye Res, 2012, 31(2):152-181.

[25] Tezel G. TNF-alpha signaling in glaucomatous neurodegeneration[J]. Prog Brain Res, 2008, 173:409-421.

[26] Bonfanti L, Strettoi E, Chierzi S, et al. Protection of retinal ganglion cells from natural and axotomy-induced cell death in neonatal transgenic mice overexpressing bcl-2[J]. J Neurosci, 1996, 16(13):4186-4194.

[27] Malik JM, Shevtsova Z, Bahr M, et al. Long-term in vivo inhibition of CNS neurodegeneration by Bcl-XL gene transfer[J]. Mol Ther, 2005, 11(3):373-381.

[28] Ahmed Z, Kalinski H, Berry M, et al. Ocular neuroprotection by siRNA targeting caspase-2[J]. Cell Death Dis, 2011, 2:e173.

[29] Ju WK, Kim KY, Duong-Polk KX, et al. Increased optic atrophy type 1 expression protects retinal ganglion cells in a mouse model of glaucoma[J]. Mol Vis, 2010, 16:1331-1342.

[30] Lechauve C, Augustin S, Cwerman-Thibault H, et al. Neuroglobin gene therapy prevents optic atrophy and preserves durably visual function in Harlequin mice[J]. Mol Ther, 2014, 22(6):1096-1109.

[31] Ellouze S, Augustin S, Bouaita A, et al. Optimized allotopic expression of the human mitochondrial ND4 prevents blindness in a rat model of mitochondrial dysfunction[J]. Am J Hum Genet, 2008, 83(3):373-387.

[32] Lam BL, Feuer WJ, Abukhalil F, et al. Leber hereditary optic neuropathy gene therapy clinical trial recruitment: year 1[J]. Arch Ophthalmol, 2010, 128(9):1129-1135.

[33] Chang EE, Goldberg JL. Glaucoma 2.0: neuroprotection, neuroregeneration, neuroenhancement[J]. Ophthalmology, 2012, 119(5):979-986.

[34] NN O. Recent clinical findings with memantine should not mean that the idea of neuroprotection in glaucoma is abandoned[J]. Acta Ophthalmol, 2009, 87(4):450-454.

[35] Lebrun-Julien F, Duplan L, Pernet V, et al. Excitotoxic death of retinal neurons in vivo occurs via a non-cell-autonomous mechanism[J]. J Neurosci, 2009, 29(17):5536-5545.

[36] Koeberle PD, Wang Y, Schlichter LC. Kv1.1 and Kv1.3 channels contribute to the degeneration of retinal ganglion cells after optic nerve transection in vivo[J]. Cell Death Differ, 2010, 17(1):134-144.

[37] Liu Y TL, Chen B. Effects ofantioxidant gene therapy on retinal neurons and oxidative stress in a model of retinal schemia /reperfusion[J]. Free Radic Biol Med, 2012, 52(5):909-915.

(本文編輯 諸靜英)

復(fù)旦大學(xué)附屬眼耳鼻喉科醫(yī)院眼科 上海 200031

莫曉芬(Email: xfmo@fudan.edu.cn)

10.14166/j.issn.1671-2420.2015.06.020

2015-04-27)

猜你喜歡
基因治療視神經(jīng)青光眼
青光眼問答
“青光眼之家”11周年
視神經(jīng)減壓術(shù)治療創(chuàng)傷性視神經(jīng)病變的研究現(xiàn)狀
視神經(jīng)節(jié)細(xì)胞再生令小鼠復(fù)明
淺談基因診斷的方法和基因治療的前景
You Must Have A Healthy Diet
防治青光眼,別只盯著眼睛看
針灸在缺血性視神經(jīng)病變應(yīng)用
中醫(yī)藥治療青光眼的研究進(jìn)展
洪專:中國(guó)基因治療領(lǐng)域的引路人
景泰县| 金华市| 洛隆县| 民丰县| 灵丘县| 彰化县| 岐山县| 广宁县| 海城市| 玉屏| 陕西省| 嵊泗县| 大足县| 荃湾区| 理塘县| 喀喇沁旗| 个旧市| 闵行区| 澄迈县| 瓮安县| 若尔盖县| 阳春市| 东乡县| 延吉市| 六盘水市| 金沙县| 原平市| 诸暨市| 高州市| 西青区| 崇礼县| 三江| 阿克| 中西区| 改则县| 泌阳县| 同江市| 鹿泉市| 筠连县| 嘉兴市| 孝感市|