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玉米C4型PEPC全長(zhǎng)基因的克隆與表達(dá)載體構(gòu)建

2015-01-15 12:11王雷崔震海張立軍
江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2014年11期
關(guān)鍵詞:序列分析基因克隆玉米

王雷+崔震海+張立軍

摘要:以玉米自交系鄭58基因組DNA為模板,設(shè)計(jì)了2對(duì)特異性引物,分別PCR擴(kuò)增玉米C4型磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶(PEPC)啟動(dòng)子及其全長(zhǎng)編碼序列,利用In-Fusion技術(shù)將兩者定向克隆到載體pCAMBIA-1391Z上,并對(duì)重組子進(jìn)行測(cè)序驗(yàn)證。結(jié)果表明,該P(yáng)EPC啟動(dòng)子序列與GenBank中的玉米自交系B73的同源性為97.70%,片段長(zhǎng)1200bp;全長(zhǎng)編碼序列同源性為97.90%,片段長(zhǎng)6330bp。通過(guò)HindⅢ和EcoRⅠ酶切載體pCAMBIA-1391Z,利用In-Fusion技術(shù)將線性載體與之前獲得的2個(gè)PCR片段連接,測(cè)序結(jié)果與預(yù)期序列一致,表明成功構(gòu)建了pCAMBIA-1391Z-PEPC植物表達(dá)載體。對(duì)克隆和載體構(gòu)建中存在的問(wèn)題進(jìn)行了討論,以期為該類型基因的高效克隆及表達(dá)載體的構(gòu)建提供參考、為C4型PEPC基因功能研究和C3植物遺傳轉(zhuǎn)化提供可用的基因序列。

關(guān)鍵詞:玉米;PEPC;基因克??;序列分析;表達(dá)載體構(gòu)建

中圖分類號(hào):Q786;S513.01文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A文章編號(hào):1002-1302(2014)11-0026-04

根據(jù)CO2固定初始產(chǎn)物的不同,可將高等植物分成C3、C4、CAM這3類。以三碳化合物3-磷酸甘油酸為最初光合產(chǎn)物的光合途徑為C3途徑(或卡爾文循環(huán)),以四碳化合物草酰乙酸為最初光合產(chǎn)物的光合途徑為C4途徑。C4途徑具有CO2濃縮機(jī)制,能高效利用大氣中的CO2,使植物保持較高的光合效率[1-3],因此人們大量開(kāi)展了將C3植物轉(zhuǎn)化為C4植物的研究,但是許多這類轉(zhuǎn)化沒(méi)有達(dá)到預(yù)期目的[4]。

磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶(PEPC)存在于所有能進(jìn)行光合作用的有機(jī)體中,包括植物、綠藻和光合細(xì)菌等。根據(jù)其序列特征和功能結(jié)構(gòu),PEPC基因可劃分為C4、C3-1、C3-23個(gè)亞族,其中C4型主要在葉肉細(xì)胞的胞質(zhì)中表達(dá),并且受光照調(diào)控,C3-1型主要在黃色葉片、莖等部位表達(dá),C3-2型主要在根部表達(dá);C4型的PEPC基因由C3型PEPC基因進(jìn)化而來(lái)[5-7]。研究表明,將雜交玉米品種(GoldenCrossBantam)的C4型PEPC全長(zhǎng)基因(包括自身的啟動(dòng)子)轉(zhuǎn)入C3植物,PEPC酶活性提高了2~110倍,蘋果酸濃度也提高了,光合速率在強(qiáng)光條件下明顯提高。研究還發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)玉米PEPC基因cDNA和水稻Cab啟動(dòng)子的嵌合基因的水稻僅能使光合作用效率提高數(shù)倍,而將完整的玉米PEPC基因(包括外顯子、內(nèi)含子及自身的啟動(dòng)子)轉(zhuǎn)入水稻中則能數(shù)十倍或更高地提高其光合效率[8-17]。這說(shuō)明以嵌合基因形式轉(zhuǎn)化C3植物,即cDNA和組成型啟動(dòng)子CaMV35S或光誘導(dǎo)型Cab啟動(dòng)子,或采用C4全長(zhǎng)基因和自身啟動(dòng)子進(jìn)行轉(zhuǎn)化,對(duì)基因更好地表達(dá)和作用的發(fā)揮是十分必要的。

另外,C4關(guān)鍵酶基因由于序列較長(zhǎng),即使成功克隆,也不容易連入表達(dá)載體。在傳統(tǒng)載體構(gòu)建方法中,需要將基因的2個(gè)末端經(jīng)過(guò)酶切修飾后插入載體,不僅要尋找合適的酶切位點(diǎn),而且操作復(fù)雜,通常還需要構(gòu)建多個(gè)中間載體,并進(jìn)行多次酶切連接轉(zhuǎn)化,工作量較大而且構(gòu)建效率較低,尤其不適合構(gòu)建長(zhǎng)片段、多片段拼接的復(fù)雜載體。In-Fusion是近年來(lái)發(fā)展起來(lái)的高效率載體構(gòu)建技術(shù),已應(yīng)用于多基因融合和長(zhǎng)片段克隆等方面[18],運(yùn)用該技術(shù)進(jìn)行基因克隆和載體構(gòu)建時(shí),不需要借助T4DNA連接酶和補(bǔ)平DNA片段末端等操作步驟,只是在PCR引物設(shè)計(jì)中分別引入載體酶切位點(diǎn)兩端的各15bp序列,在In-Fusion重組酶作用下將PCR產(chǎn)物和已經(jīng)線性化的載體連接起來(lái),從而完成載體構(gòu)建。In-Fusion技術(shù)對(duì)目的片段和載體沒(méi)有特殊的要求,可以將任何目的基因連接到線性化載體上。

玉米的C4型PEPC基因序列較長(zhǎng),同時(shí)還需要連入啟動(dòng)子,多片段連接表達(dá)載體存在困難。因此,本研究利用PCR技術(shù)擴(kuò)增玉米C4型PEPC全長(zhǎng)編碼序列及其啟動(dòng)子序列,結(jié)合In-Fusion技術(shù)一步成功構(gòu)建表達(dá)載體,并對(duì)克隆和載體構(gòu)建中存在的問(wèn)題進(jìn)行討論,以期為該類型基因的高效克隆及表達(dá)載體的構(gòu)建提供參考,進(jìn)而為C4型PEPC基因功能的研究和C3植物的遺傳轉(zhuǎn)化提供可用的基因序列。

1材料與方法

1.1植物材料、菌株和載體

玉米(ZeamaysL.)自交系鄭58、pCAMBIA-1391Z植物表達(dá)載體(圖1)由筆者所在實(shí)驗(yàn)室保存,E.coliHST08Premium菌株購(gòu)自寶生物工程(大連)有限公司。

1.2主要試劑

PrimeSTARGXLDNAPolymerase(CodeNo.R050Q)試劑盒、TaKaRaMiniBESTAgaroseGelDNAExtractionKitVer.3.0試劑盒(CodeNo.9762)、In-FusionHDCloningKit試劑盒、高效感受態(tài)細(xì)菌制備試劑盒E.coliCompetentCellsHST08Premium(CodeNo.9128)、各種限制性內(nèi)切酶、DNAmarker均購(gòu)自寶生物工程(大連)有限公司;植物基因組DNA提取試劑盒、瓊脂糖凝膠回收試劑盒(DP209)、質(zhì)粒提取試劑盒均購(gòu)自天根生化科技(北京)有限公司;所用引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。

1.3引物設(shè)計(jì)

根據(jù)In-Fusion技術(shù)原理,利用NCBI上已經(jīng)發(fā)表的玉米C4光合關(guān)鍵酶PEPC基因全長(zhǎng)DNA序列(GenBank號(hào):CM000785.3)和表達(dá)載體pCAMBIA-1391Z,設(shè)計(jì)并合成PEPC基因啟動(dòng)子及其全長(zhǎng)編碼序列的引物,詳見(jiàn)表1。

1.4玉米C4型PEPC啟動(dòng)子及其全長(zhǎng)編碼序列的PCR擴(kuò)增

采用以上引物和PrimeSTARGXLDNAPolymerase(CodeNo.R050Q)試劑盒,以玉米自交系鄭58基因組DNA為模板,對(duì)PEPC基因啟動(dòng)子進(jìn)行PCR擴(kuò)增,50μLPCR總反應(yīng)體系為:1μLDNA模板,10μL5×PrimeSTARGXLbuffer(Mg2+plus),4μLdNTPMixture(各2.5mmol/L),各0.5μL上下游引物(20pmol/μL),1μLPrimeSTARGXLDNAPolymerase(1.25U/μL),33μLddH2O。PCR擴(kuò)增程序?yàn)椋?8℃變性10s,60℃退火15s,68℃延伸1min,共進(jìn)行30個(gè)循環(huán)。同樣,對(duì)PEPC基因全長(zhǎng)編碼序列進(jìn)行PCR擴(kuò)增,50μLPCR總反應(yīng)體系為:1μLDNA模板,10μL5×PrimeSTARGXLbuffer(含Mg2+),4μLdNTPMixture(各2.5mmol/L),各0.5μL上下游引物(20pmol/μL),1μLPrimeSTARGXLDNAPolymerase(1.25U/μL),33μLddH2O。PCR擴(kuò)增程序?yàn)椋?8℃變性10s,60℃退火15s,68℃延伸6min,共進(jìn)行30個(gè)循環(huán)。PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)后切下目的條帶,用膠回收試劑盒回收用于后續(xù)試驗(yàn)。同時(shí)取PCR產(chǎn)物送生工生物工程(上海)股份有限公司進(jìn)行測(cè)序。

1.5植物表達(dá)載體的構(gòu)建

分別用HindⅢ、RcoRⅠ雙酶切植物表達(dá)載體pCAMBIA-1391Z。50μL酶切反應(yīng)體系為:5μLpCAMBIA-1391Z,5μL10×Mbuffer,1.5μLHindⅢ(10U/μL),1.5μLEcoRⅠ(10U/μL),37μLddH2O,37℃完全酶切16h。用瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)并切膠回收目的片段,利用In-FusionHDCloningKit(ClontechCodeNo.639633)試劑盒將“1.4”節(jié)中經(jīng)過(guò)測(cè)序驗(yàn)證正確并回收的PEPC基因全長(zhǎng)編碼序列、PEPC基因啟動(dòng)子片段和線性載體pCAMBIA-1391Z片段連接,連接反應(yīng)體系為:1μLPEPC基因擴(kuò)增回收片段(約80ng/μL),1μLPEPC基因啟動(dòng)子擴(kuò)增回收片段(約80ng/μL),1μLpCAMBIA-1391Z酶切片段,2μL5×In-FusionHDEnzymePremix,5μLddH2O。取1μL連接產(chǎn)物,熱轉(zhuǎn)化至E.coliCompetentCellsHST08Premium中,涂布平板,37℃過(guò)夜培養(yǎng),挑取陽(yáng)性克隆、提質(zhì)粒、測(cè)序驗(yàn)證,所得載體命名為pCAMBIA-1391Z-PEPC。

2結(jié)果與分析

2.1玉米基因組DNA的提取

使用植物基因組DNA提取試劑盒提取的玉米基因組DNA,由圖2的0.8%瓊脂糖凝膠電泳與紫外檢測(cè)結(jié)果看出,D260nm/D280nm在1.8~2.0之間,表明模板質(zhì)量較高,符合后續(xù)試驗(yàn)要求。

2.2玉米C4型PEPC啟動(dòng)子及其全長(zhǎng)編碼序列的克隆

2.2.1目的片段的獲得以玉米自交系鄭58葉片DNA為模板,通過(guò)PCR分別擴(kuò)增出2條大小約為1200bp(圖3)、6330bp的特異性條帶(圖4),利用瓊脂糖回收試劑盒(DP209)進(jìn)行膠回收并測(cè)序。

2.2.2PCR產(chǎn)物測(cè)序結(jié)果的比對(duì)通過(guò)BLAST將測(cè)序結(jié)果與玉米B73相關(guān)序列進(jìn)行比對(duì),PEPC啟動(dòng)子PCR擴(kuò)增產(chǎn)物與玉米B73PEPC啟動(dòng)子的比對(duì)結(jié)果見(jiàn)圖5,經(jīng)分析相似度達(dá)到97.70%;PEPC基因全長(zhǎng)編碼序列PCR擴(kuò)增產(chǎn)物與玉米B73PEPC基因的比對(duì)結(jié)果見(jiàn)圖6,經(jīng)分析相似度達(dá)到97.90%。

由以上結(jié)果可以看出,試驗(yàn)用的玉米自交系鄭58C4型PEPC基因及其啟動(dòng)子序列與已注冊(cè)的玉米B73的序列相似度都在90%以上,可以用作后續(xù)載體構(gòu)建。

2.2.3PEPC基因植物表達(dá)載體的構(gòu)建采用In-Fusion克隆技術(shù),將載體pCAMBIA-1391Z經(jīng)HindⅢ/RcoRⅠ雙酶切,獲得的片段檢測(cè)結(jié)果見(jiàn)圖7,可見(jiàn)片段大小為11000bp。線性化載體pCAMBIA-1391Z、PEPC基因全長(zhǎng)及其啟動(dòng)子在In-FusionHDEnzymePremix作用下重組,成功獲得重組質(zhì)粒pCAMBIA-1391Z-PEPC。將重組質(zhì)粒熱轉(zhuǎn)化至E.coliCompetentCellsHST08Premium中,挑陽(yáng)性克隆測(cè)序,結(jié)果表明,PEPC基因全長(zhǎng)及其啟動(dòng)子已經(jīng)成功插入到載體pCAMBIA-1391Z之中,測(cè)序結(jié)果與預(yù)期結(jié)果一致(圖8),表明成功構(gòu)建了植物表達(dá)載體pCAMBIA-1391Z-PEPC。

3討論與結(jié)論

植物表達(dá)載體的構(gòu)建在植物基因工程研究中占據(jù)重要地位,直接關(guān)系到目的基因的表達(dá)效果,因此選擇方便與快捷的載體構(gòu)建方法具有重要的意義。目前,人們已經(jīng)發(fā)明了多種表達(dá)載體構(gòu)建的方法,例如傳統(tǒng)酶切連接方法、一步克隆法、Gateway技術(shù)等[19-20]。在構(gòu)建表達(dá)載體過(guò)程中,首先需要對(duì)表達(dá)載體進(jìn)行選擇,常用的植物表達(dá)載體有pBI121、pBI221、pCAMBIA系列載體(載體的骨架是pUC18)。根據(jù)本試驗(yàn)克隆的PEPC基因全長(zhǎng)編碼序列及其啟動(dòng)子,筆者選擇了沒(méi)有

啟動(dòng)子序列的植物表達(dá)載體pCAMBIA-1391Z。多個(gè)目的片段插入植物表達(dá)載體常常受到酶切位點(diǎn)的限制,操作復(fù)雜,費(fèi)時(shí)費(fèi)力。與傳統(tǒng)的載體構(gòu)建方法相比,In-Fusion技術(shù)可以減少中間載體的構(gòu)建,減少連接、轉(zhuǎn)化次數(shù),重組效率高;相對(duì)于Gateway技術(shù)來(lái)說(shuō),In-Fusion技術(shù)更簡(jiǎn)單,更快速。本研究采用In-Fusion技術(shù)進(jìn)行目的片段克隆時(shí),引物5′端設(shè)計(jì)與線性載體同源的15bp序列,通過(guò)PCR實(shí)現(xiàn)多目的片段與表達(dá)載體重組連接。試驗(yàn)中分別用HindⅢ/EcoRⅠ進(jìn)行雙酶切,利用In-Fusion酶將線性載體與之前獲得的2個(gè)PCR片段連接,成功構(gòu)建pCAMBIA-1391Z-PEPC植物表達(dá)載體,測(cè)序結(jié)果與預(yù)期序列一致。

參考文獻(xiàn):

[1]龔春梅,寧蓬勃,王根軒,等.C3和C4植物光合途徑的適應(yīng)性變化和進(jìn)化[J].植物生態(tài)學(xué)報(bào),2009,33(1):206-221.

[2]崔國(guó)瑞,張立軍,朱延姝,等.植物C4光合途徑的形成及其影響因素[J].植物生理學(xué)通訊,2009(7):711-720.

[3]VonCaemmererS,F(xiàn)urbankRT.TheC4pathway:anefficientCO2pump[J].PhotosynthesisResearch,2003,77(2/3):191-207.

[4]李衛(wèi)華,郝乃斌,戈巧英,等.C3植物中C4途徑的研究進(jìn)展[J].植物學(xué)通報(bào),1999,16(2):2-11.

[5]MatsuokaM,F(xiàn)urbankRT,F(xiàn)ukayamaH,etal.MolecularengineeringofC4photosynthesis[J].AnnualReviewofPlantPhysiologyandPlantMolecularBiology,2001,52(1):297-314.

[6]EngelmannS,BlsingOE,GowikU,etal.MolecularevolutionofC4phosphoenolpyruvatecarboxylaseinthegenusFlaveria—agradualincreasefromC3toC4characteristics[J].Planta,2003,217(5):717-725.

[7]BlsingOE,ErnstK,StreubelM,etal.Thenon-photosyntheticphosphoenolpyruvatecarboxylasesoftheC4dicotFlaveriatrinervia—implicationsfortheevolutionofC4photosynthesis[J].Planta,2002,215(3):448-456.

[8]OsborneCP,SackL.EvolutionofC4plants:anewhypothesisforaninteractionofCO2andwaterrelationsmediatedbyplanthydraulics[J].PhilosophicalTransactionsoftheRoyalSocietyofLondon.SeriesB,BiologicalSciences,2012,367(1588):583-600.

[9]陳緒清,張曉東,梁榮奇,等.玉米C4型pepc基因的分子克隆及其在小麥的轉(zhuǎn)基因研究[J].科學(xué)通報(bào),2004,49(19):1976-1982.

[10]HudspethRL,GrulaJW,DaiZ,etal.Expressionofmaizephosphoenolpyruvatecarboxylaseintransgenictobacco[J].PlantPhysiology,1992,98(2):458-464.

[11]HuslerRE,HirschHJ,KreuzalerF,etal.OverexpressionofC4-cycleenzymesintransgenicC3plants:abiotechnologicalapproachtoimproveC3-photosynthesis[J].JournalofExperimentalBotany,2002,53(369):591-607.

[12]AgarieS,MiuraA,SumikuraR,etal.OverexpressionofC4PEPCcausedO2-insensitivephotosynthesisintransgenicriceplants[J].PlantScience,2002,162(2):257-265.

[13]MerkelbachS,GehlenJ,DeneckeM,etal.Cloning,sequenceanalysisandexpressionofacDNAencodingactivephosphoenolpyruvatecarboxylaseoftheC3plantSolanumtuberosum[J].PlantMolecularBiology,1993,23(4):881-888.

[14]FukayamaH,TsuchidaH,AgarieS,etal.SignificantaccumulationofC4-specificpyruvate,orthophosphatedikinaseinaC3plant,rice[J].PlantPhysiology,2001,127(3):1136-1146.

[15]FukayamaH,TamaiT,TaniguchiY,etal.Characterizationandfunctionalanalysisofphosphoenolpyruvatecarboxylasekinasegenesinrice[J].ThePlantJournal:forCellandMolecularBiology,2006,47(2):258-268.

[16]BrownRH,BassettCL,CameronRG,etal.PhotosynthesisofF1hybridsbetweenC4andC3-C4speciesofflaveria[J].PlantPhysiology,1986,82(1):211-217.

[17]AgarieS,KaiM,TakatsujiH,etal.ExpressionofC3andC4photosyntheticcharacteristicsintheamphibiousplantEleocharisvivipara:structureandanalysisoftheexpressionofisogenesforpyruvate,orthophosphatedikinase[J].PlantMolecularBiology,1997,34(2):363-369.

[18]SleightSC,SauroHM.BioBrickTM:assemblyusingthein-fusionPCRcloningkit[J].MethodsinMolecularBiology,2013,1073:19-30.

[19]韓凱,翁建峰,郝轉(zhuǎn)芳,等.一種快速高效構(gòu)建植物表達(dá)載體的方法[J].玉米科學(xué),2012,20(1):61-66.

[20]林春晶,韋正乙,蔡勤安,等.幾種植物轉(zhuǎn)基因表達(dá)載體的構(gòu)建方法[J].生物技術(shù),2008,18(5):84-87.

[7]BlsingOE,ErnstK,StreubelM,etal.Thenon-photosyntheticphosphoenolpyruvatecarboxylasesoftheC4dicotFlaveriatrinervia—implicationsfortheevolutionofC4photosynthesis[J].Planta,2002,215(3):448-456.

[8]OsborneCP,SackL.EvolutionofC4plants:anewhypothesisforaninteractionofCO2andwaterrelationsmediatedbyplanthydraulics[J].PhilosophicalTransactionsoftheRoyalSocietyofLondon.SeriesB,BiologicalSciences,2012,367(1588):583-600.

[9]陳緒清,張曉東,梁榮奇,等.玉米C4型pepc基因的分子克隆及其在小麥的轉(zhuǎn)基因研究[J].科學(xué)通報(bào),2004,49(19):1976-1982.

[10]HudspethRL,GrulaJW,DaiZ,etal.Expressionofmaizephosphoenolpyruvatecarboxylaseintransgenictobacco[J].PlantPhysiology,1992,98(2):458-464.

[11]HuslerRE,HirschHJ,KreuzalerF,etal.OverexpressionofC4-cycleenzymesintransgenicC3plants:abiotechnologicalapproachtoimproveC3-photosynthesis[J].JournalofExperimentalBotany,2002,53(369):591-607.

[12]AgarieS,MiuraA,SumikuraR,etal.OverexpressionofC4PEPCcausedO2-insensitivephotosynthesisintransgenicriceplants[J].PlantScience,2002,162(2):257-265.

[13]MerkelbachS,GehlenJ,DeneckeM,etal.Cloning,sequenceanalysisandexpressionofacDNAencodingactivephosphoenolpyruvatecarboxylaseoftheC3plantSolanumtuberosum[J].PlantMolecularBiology,1993,23(4):881-888.

[14]FukayamaH,TsuchidaH,AgarieS,etal.SignificantaccumulationofC4-specificpyruvate,orthophosphatedikinaseinaC3plant,rice[J].PlantPhysiology,2001,127(3):1136-1146.

[15]FukayamaH,TamaiT,TaniguchiY,etal.Characterizationandfunctionalanalysisofphosphoenolpyruvatecarboxylasekinasegenesinrice[J].ThePlantJournal:forCellandMolecularBiology,2006,47(2):258-268.

[16]BrownRH,BassettCL,CameronRG,etal.PhotosynthesisofF1hybridsbetweenC4andC3-C4speciesofflaveria[J].PlantPhysiology,1986,82(1):211-217.

[17]AgarieS,KaiM,TakatsujiH,etal.ExpressionofC3andC4photosyntheticcharacteristicsintheamphibiousplantEleocharisvivipara:structureandanalysisoftheexpressionofisogenesforpyruvate,orthophosphatedikinase[J].PlantMolecularBiology,1997,34(2):363-369.

[18]SleightSC,SauroHM.BioBrickTM:assemblyusingthein-fusionPCRcloningkit[J].MethodsinMolecularBiology,2013,1073:19-30.

[19]韓凱,翁建峰,郝轉(zhuǎn)芳,等.一種快速高效構(gòu)建植物表達(dá)載體的方法[J].玉米科學(xué),2012,20(1):61-66.

[20]林春晶,韋正乙,蔡勤安,等.幾種植物轉(zhuǎn)基因表達(dá)載體的構(gòu)建方法[J].生物技術(shù),2008,18(5):84-87.

[7]BlsingOE,ErnstK,StreubelM,etal.Thenon-photosyntheticphosphoenolpyruvatecarboxylasesoftheC4dicotFlaveriatrinervia—implicationsfortheevolutionofC4photosynthesis[J].Planta,2002,215(3):448-456.

[8]OsborneCP,SackL.EvolutionofC4plants:anewhypothesisforaninteractionofCO2andwaterrelationsmediatedbyplanthydraulics[J].PhilosophicalTransactionsoftheRoyalSocietyofLondon.SeriesB,BiologicalSciences,2012,367(1588):583-600.

[9]陳緒清,張曉東,梁榮奇,等.玉米C4型pepc基因的分子克隆及其在小麥的轉(zhuǎn)基因研究[J].科學(xué)通報(bào),2004,49(19):1976-1982.

[10]HudspethRL,GrulaJW,DaiZ,etal.Expressionofmaizephosphoenolpyruvatecarboxylaseintransgenictobacco[J].PlantPhysiology,1992,98(2):458-464.

[11]HuslerRE,HirschHJ,KreuzalerF,etal.OverexpressionofC4-cycleenzymesintransgenicC3plants:abiotechnologicalapproachtoimproveC3-photosynthesis[J].JournalofExperimentalBotany,2002,53(369):591-607.

[12]AgarieS,MiuraA,SumikuraR,etal.OverexpressionofC4PEPCcausedO2-insensitivephotosynthesisintransgenicriceplants[J].PlantScience,2002,162(2):257-265.

[13]MerkelbachS,GehlenJ,DeneckeM,etal.Cloning,sequenceanalysisandexpressionofacDNAencodingactivephosphoenolpyruvatecarboxylaseoftheC3plantSolanumtuberosum[J].PlantMolecularBiology,1993,23(4):881-888.

[14]FukayamaH,TsuchidaH,AgarieS,etal.SignificantaccumulationofC4-specificpyruvate,orthophosphatedikinaseinaC3plant,rice[J].PlantPhysiology,2001,127(3):1136-1146.

[15]FukayamaH,TamaiT,TaniguchiY,etal.Characterizationandfunctionalanalysisofphosphoenolpyruvatecarboxylasekinasegenesinrice[J].ThePlantJournal:forCellandMolecularBiology,2006,47(2):258-268.

[16]BrownRH,BassettCL,CameronRG,etal.PhotosynthesisofF1hybridsbetweenC4andC3-C4speciesofflaveria[J].PlantPhysiology,1986,82(1):211-217.

[17]AgarieS,KaiM,TakatsujiH,etal.ExpressionofC3andC4photosyntheticcharacteristicsintheamphibiousplantEleocharisvivipara:structureandanalysisoftheexpressionofisogenesforpyruvate,orthophosphatedikinase[J].PlantMolecularBiology,1997,34(2):363-369.

[18]SleightSC,SauroHM.BioBrickTM:assemblyusingthein-fusionPCRcloningkit[J].MethodsinMolecularBiology,2013,1073:19-30.

[19]韓凱,翁建峰,郝轉(zhuǎn)芳,等.一種快速高效構(gòu)建植物表達(dá)載體的方法[J].玉米科學(xué),2012,20(1):61-66.

[20]林春晶,韋正乙,蔡勤安,等.幾種植物轉(zhuǎn)基因表達(dá)載體的構(gòu)建方法[J].生物技術(shù),2008,18(5):84-87.

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