周麗霞, 肖 勇, 楊耀東
(中國(guó)熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院椰子研究所,海南省熱帶油料作物生物學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,海南 文昌571339)
大腸桿菌(Escherichia coli)O157∶ H7 屬于腸桿菌科埃希氏菌屬,是一種毒性較強(qiáng)的食源性病原菌,主要通過飲用水、牛奶等食品進(jìn)行傳播[1-5],人體感染該類病原菌會(huì)患有腹瀉、出血性結(jié)腸炎等疾病,此外還可引發(fā)溶血性尿毒綜合癥及血栓性血小板減少紫斑等嚴(yán)重并發(fā)癥,嚴(yán)重者可導(dǎo)致死亡[6-7]。因此,快速、靈敏的檢測(cè)和分析此類感染性病原菌對(duì)于疾病防治、環(huán)境保護(hù)等都具有十分重要的意義。傳統(tǒng)的病原菌檢測(cè)方法通常建立在免疫學(xué)和細(xì)菌分離的基礎(chǔ)上,如細(xì)胞計(jì)數(shù)法、酶聯(lián)免疫吸附法、PCR 分析法等,該類方法具有較高的準(zhǔn)確度,但也存在很多缺點(diǎn),如細(xì)菌培養(yǎng)費(fèi)時(shí),檢測(cè)不靈敏,分離過程中造成菌數(shù)目的損失等[8-10]。因此,傳統(tǒng)的檢測(cè)方法已遠(yuǎn)不能滿足現(xiàn)代生活和醫(yī)學(xué)應(yīng)用中對(duì)大腸桿菌O157∶ H7 快速靈敏檢測(cè)的要求,探索一種快速、靈敏、低成本和易操作的病原菌檢測(cè)新方法對(duì)于預(yù)防疾病傳播和環(huán)境保護(hù)都具有深遠(yuǎn)的意義。
隨著納米科技與生物學(xué)的深入發(fā)展,金納米顆粒作為納米材料的重要成員之一,其在量子尺寸效應(yīng)、光穩(wěn)定性和生物相容性等方面的獨(dú)特優(yōu)勢(shì),已在微生物和細(xì)胞檢測(cè)領(lǐng)域得到了廣泛應(yīng)用[11]。本試驗(yàn)利用抗體功能化金納米顆粒與大腸桿菌之間的聚合,發(fā)展了一種基于金納米顆粒的比色法,并用此方法分別對(duì)緩沖液體系和礦泉水中大腸桿菌O157∶H7 進(jìn)行快速檢測(cè),以期為多種食源性病原菌的快速、靈敏檢測(cè)提供新思路。
HAuCl4購(gòu)于天津市化學(xué)試劑研究所;檸檬酸三鈉購(gòu)于天津市化學(xué)試劑一廠;多克隆羊抗大腸桿菌O157∶ H7 抗體、溶菌肉湯(LB)培養(yǎng)基、N-羥基琥珀酰亞胺(NHS)和1-乙基-3-(3-二甲基氨丙基)-碳化二亞胺(EDC·HCl)購(gòu)于北京鼎國(guó)生物科技有限公司;E.coliO157∶ H7 購(gòu)于廣州環(huán)凱生物科技有限公司;E.coliO149 購(gòu)于廣東省微生物研究所;E.coliDH5α 購(gòu)于廣東省微生物研究所微生物菌種保藏中心。
JEOL-1230 型透射電子顯微鏡購(gòu)自日本JEOL公司;高速離心機(jī)購(gòu)于日本Hitachi 公司;納米粒度及Zeta 電位儀(Nano-ZS)購(gòu)于英國(guó)Malvern 公司;Lambda 900UV 光譜儀購(gòu)自Perkin Elmer 公司。
1.2.1 金納米顆粒的制備、生物修飾及表征 參照文獻(xiàn)[12]報(bào)道的方法制備金納米顆粒,在100 ml 的燒杯中,加入濃度為0.01%的氯金酸50 ml,加熱攪拌至沸騰后,加入濃度為1.00%的檸檬酸三鈉2 ml,繼續(xù)保持沸騰并反應(yīng)15 min,溶液顏色變?yōu)榫萍t色,停止加熱并使其自然冷卻至室溫,即合成了金納米顆粒。
參照文獻(xiàn)[13]、[14]方法進(jìn)行納米顆粒的生物修飾。取1 ml 金納米顆粒溶液,離心后去掉上清液,向體系中加入10 μl 巰基丙酸,輕輕混勻后室溫下放置4 d,高速離心后用pH 為7.4 的磷酸鹽緩沖液(PBS)洗滌一次,然后將顆粒分散在1 ml PBS 中。向體系中加入3.5 mgNHS,于25 ℃下反應(yīng)30 min,再加入50 μl 1 mg/ml 的多克隆羊抗大腸桿菌O157∶ H7抗體和3.5 mg EDC·HCl,于25 ℃下反應(yīng)3 h,待反應(yīng)終止后離心除去上清液,然后分散在PBS 緩沖液中,并避光于4 ℃保存。采用納米粒度儀及Zeta 電位儀、透射電鏡和紫外吸收對(duì)修飾前后的顆粒進(jìn)行表征[15]。
1.2.2E.coliO157∶ H7 的培養(yǎng) 將含有0.5 g 酵母提取物、1.0 g 蛋白胨和0.5 g NaCl 的LB 培養(yǎng)基粉末溶于100 ml 水中,于121 ℃下高溫滅菌30 min[16]。分別將E.coliO157∶ H7、E.coliO149 和E.coliDH5α 在液體培養(yǎng)基中于37 ℃培養(yǎng)2.5 ~3.0 h,用涂板計(jì)數(shù)法計(jì)算初始菌濃度,并將培養(yǎng)好的菌懸液放在4 ℃保存。
1.2.3E.coliO157∶ H7 的檢測(cè) 將1 ml 6.3 ×106個(gè)E.coliO157∶ H7 菌懸液8 000 r/min離心5 min,去除上清液后,加入1 ml pH 為7.4 的PBS 緩沖液沖洗2 次,并最終將菌充分分散在1 ml PBS 緩沖液中。根據(jù)梯度濃度稀釋法,得到濃度為1 ml 6.3 ×101~6.3 ×106個(gè)菌懸液。
分別取100 μl 終濃度為9.3 mg/ml的抗體功能化金納米顆粒,加入400 μl 上述不同濃度的菌懸液,于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中孵育1 h。根據(jù)抗原-抗體的免疫特異性結(jié)合,原本分散的金納米顆粒集中聚合在菌的表面,根據(jù)金納米顆粒的尺寸效應(yīng),使得混合體系的顏色發(fā)生變化。由于緩沖液中目標(biāo)菌的濃度不同,顆粒的聚合程度也不同,混合體系的顏色也逐漸由紅色變?yōu)樗{(lán)色,從而實(shí)現(xiàn)了對(duì)大腸桿菌O157∶ H7快速、直觀地檢測(cè)。
1.2.4 食品中大腸桿菌O157∶ H7 的檢測(cè) 為考察該檢測(cè)方法的實(shí)用性,從當(dāng)?shù)爻匈I了瓶裝礦泉水,人為加入目標(biāo)菌后直接使用。將1 ml 4.1×106個(gè)E.coliO157∶ H7 菌懸液8 000 r/min離心5 min,去除上清液后,加入1 ml 礦泉水沖洗2 次,并最終將菌充分分散在1 ml 礦泉水中。根據(jù)梯度濃度稀釋法,得到濃度為1 ml 4.1×101~4.1×106個(gè)菌懸液。
合成的金納米顆粒形貌如圖1 所示,顆粒呈規(guī)則的球形,大小均勻且分散性較好,另外,納米粒度儀測(cè)定出金納米顆粒的平均直徑約為(12.3 ±2.0)nm,該結(jié)果與電鏡圖的大小基本吻合,有利于顆粒的下一步應(yīng)用。圖2 為金納米顆粒修飾巰基丙酸前后的吸收光譜,測(cè)得其最大熒光發(fā)射峰位于520 nm左右。當(dāng)顆粒表面修飾了巰基丙酸后,表面有大量的羧基基團(tuán),其電位約為-44.7 mV(圖3),這一結(jié)果表明,顆粒表面成功地修飾了大量巰基丙酸。
圖1 金納米顆粒的透射電鏡圖Fig.1 Transmission electron microscopic(TEM)image of gold nanoparticles
圖2 金納米顆粒修飾前后的吸收光譜圖Fig.2 Absorption spectrum of gold nanoparticles and modified gold nanoparticles
圖3 羧基化金納米顆粒的Zeta 電位圖Fig.3 Zeta potential spectrum of carboxyl modified nanoparticles
2.2.1 可行性考察 基于金納米顆粒的比色法對(duì)1 ml 6.3 ×105個(gè)大腸桿菌純培養(yǎng)物陽性對(duì)照和陰性對(duì)照(陰性對(duì)照1:以無菌緩沖液取代大腸桿菌O157∶ H7;陰性對(duì)照2:以裸金納米顆粒取代功能化金納米顆粒)進(jìn)行可行性考察。結(jié)果顯示,在陽性對(duì)照組中,抗體功能化金納米顆粒與目標(biāo)菌共孵育后,體系顏色變?yōu)樗{(lán)色,而在2 個(gè)陰性對(duì)照中,體系顏色仍為紅色,幾乎沒有發(fā)生顏色變化,這一結(jié)果說明該方法檢測(cè)大腸桿菌O157∶ H7 是可行的,同時(shí)表明抗體與金納米顆粒的交聯(lián)效果較好。
2.2.2 大腸桿菌O157∶ H7 的檢測(cè)結(jié)果 基于金納米顆粒的比色法對(duì)梯度濃度為1 ml 6.3 ×101~6.3 ×106個(gè)大腸桿菌O157∶ H7 進(jìn)行檢測(cè),通過溶液顏色的變化,來考察方法的檢測(cè)靈敏度。結(jié)果顯示,當(dāng)菌液濃度為1 ml 6.3 ×102個(gè)時(shí),體系顏色由紅色變?yōu)樽仙?,隨著菌濃度的增大,顏色逐漸變?yōu)樗{(lán)色,因此,該方法檢測(cè)下限為1 ml 6.3 ×102個(gè)大腸桿菌O157∶ H7。為進(jìn)一步驗(yàn)證這一結(jié)果,取適量濃度為1 ml 6.3 ×103個(gè)大腸桿菌O157∶ H7 與功能化金納米顆粒的混合液滴在銅網(wǎng)上,室溫下放置24 h 陰干,在透射電鏡下觀察金納米顆粒與大腸桿菌O157∶ H7的形態(tài)(圖4),發(fā)現(xiàn)大腸桿菌O157∶ H7表面成功聚集了一定量的金納米顆粒。
圖4 金納米顆粒與大腸桿菌O157∶ H7 的透射電鏡圖Fig.4 TEM image of the mixture of E.coli O157 ∶ H7 and gold nanoparticles
為進(jìn)一步評(píng)價(jià)該檢測(cè)方法的特異性,現(xiàn)分別采用E.coliDH5α(1 ml 5.7 ×105個(gè))和E.coliO149(1 ml 7.2 × 105個(gè))作為非目標(biāo)菌,與大腸桿菌O157∶ H7經(jīng)過同樣的處理方法后,加入抗體功能化金納米顆粒,并于37 ℃恒溫孵育1 h??疾旖Y(jié)果顯示,當(dāng)分別采用無菌緩沖液、E.coliO149、E.coliDH5α 代替目標(biāo)菌(E.coliO157∶ H7)時(shí),體系顏色均未發(fā)生變化,而加入大腸桿菌O157∶ H7 時(shí),體系顏色從紅色變?yōu)樗{(lán)色,由此可見,該方法的檢測(cè)特異性較好。同時(shí),我們測(cè)定了每個(gè)體系的紫外吸收光譜,如圖5 所示,當(dāng)體系中加入大腸桿菌O157∶ H7時(shí),金納米顆粒520 nm 吸收峰降低,隨著顆粒的聚集程度增大,在630 nm 出現(xiàn)新的吸收峰。表明只有大腸桿菌O157∶ H7 誘導(dǎo)金納米顆粒聚集,而其他非目標(biāo)菌未與功能化顆粒結(jié)合,這一結(jié)果進(jìn)一步證明該方法具有較好的檢測(cè)特異性,未出現(xiàn)抗體與非目標(biāo)菌的交叉反應(yīng)。
圖5 不同菌存在時(shí)金納米顆粒的吸收光譜Fig.5 Absorption spectra of gold nanoparticles in the presence of different bacteria
為證明基于金納米顆粒的比色法可用于檢測(cè)食品中的大腸桿菌O157∶ H7,用礦泉水配制了400 μl終濃度為1 ml 4.1 × 101~4.1 × 106個(gè)大腸桿菌O157∶ H7,并分別加入100 μl 抗體功能化的金納米顆粒,于37 ℃恒溫中孵育1 h。結(jié)果顯示,當(dāng)菌濃度為1 ml 4.1 ×102個(gè)時(shí),體系顏色由紅色變?yōu)樽仙?,隨著菌濃度的增大,體系顏色逐漸變?yōu)樗{(lán)色。為進(jìn)一步證明該檢測(cè)方法的靈敏度,分別對(duì)1 ml 4.1 ×101個(gè)和1 ml 4.1 ×102個(gè)菌濃度的反應(yīng)體系進(jìn)行光譜分析,結(jié)果(圖6)顯示,1 ml 4.1 ×101個(gè)菌濃度的反應(yīng)體系在520 nm 有吸收峰,630 nm 處無鋒,而1 ml 4.1 ×102個(gè)菌濃度的反應(yīng)體系在520 nm的吸收峰降低,隨著顆粒的聚集程度增大,在630 nm 出現(xiàn)新的吸收峰。表明應(yīng)用該比色法對(duì)礦泉水樣本進(jìn)行檢測(cè),其靈敏度為1 ml 4.1 ×102個(gè) 大腸桿菌O157∶ H7。
圖6 不同濃度大腸桿菌O157∶ H7 存在時(shí)金納米顆粒的吸收光譜Fig.6 Absorption spectra of gold nanoparticles in the presence of different concentrations of E.coli
基于抗體功能化的金納米顆粒,發(fā)展了一種直觀、簡(jiǎn)便的比色分析法用于大腸桿菌O157∶ H7 的檢測(cè)。該方法巧妙的運(yùn)用了金納米顆粒的量子尺寸效應(yīng),由于聚集程度不同,其吸收光譜發(fā)生紅移,從而引起溶液顏色發(fā)生不同的變化,實(shí)現(xiàn)了對(duì)緩沖體系和礦泉水中目標(biāo)菌的快速檢測(cè)。若采用針對(duì)其他病原菌以及細(xì)胞的特異性抗體,有望成為一種通用的方法用于食品檢測(cè)、疾病診斷和環(huán)境保護(hù)等領(lǐng)域中多種病原菌與細(xì)胞的測(cè)定與分析。
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江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào)2014年4期